大黄素对人肝癌HepG2细胞迁移侵袭能力及E—钙黏蛋白、Slug蛋白表达的影响
翼核果素对肝癌HepG2细胞增殖、迁移的影响

翼核果素对肝癌HepG2细胞增殖、迁移的影响吕纪华;刘瑛;陆国寿;胡筱希;苏华【期刊名称】《中国老年学杂志》【年(卷),期】2024(44)2【摘要】目的研究翼核果素对肝癌HepG2细胞增殖、迁移的影响。
方法通过CCK-8法、克隆形成实验、划痕实验、荧光定量聚合酶链反应(PCR)、Western 印迹研究翼核果素对肝癌HepG2细胞的影响。
结果与空白对照组比较,翼核果素对HepG2细胞增殖、集落形成有显著抑制作用,可显著降低细胞迁移率,对原癌基因(c-Myc)、成纤维细胞生长因子受体(FGFR)3 mRNA表达有显著的抑制作用,对细胞骨架蛋白β微管蛋白(tubulin)、埃兹蛋白(Ezrin)表达有显著的抑制作用(P<0.05,P<0.01),但对c-Jun mRNA表达无明显影响(P>0.05)。
结论翼核果素对HepG2细胞增殖迁移有抑制作用,机制可能与下调c-Myc、FGFR3、β-tubulin、Ezrin表达有关。
【总页数】5页(P442-446)【作者】吕纪华;刘瑛;陆国寿;胡筱希;苏华【作者单位】广西壮族自治区中医药研究院中药药理所;广西壮族自治区中医药研究院广西中药质量标准研究重点实验室;广西壮族自治区中医药研究院中药化学所【正文语种】中文【中图分类】R966【相关文献】1.翼核果素对肝癌HepG2细胞凋亡及细胞骨架蛋白F-actin的影响2.翼核果素对人肝癌细胞HepG2裸鼠移植瘤的抑制作用及其机制探讨3.去氧地胆草素对肝癌HepG2细胞增殖、迁移和糖酵解的影响4.金合欢素对肝癌HepG2细胞增殖、凋亡和迁移的影响及机制研究5.毛兰素对人肝癌细胞系HEPG2增殖、迁移、凋亡和上皮间质转化的影响及其机制因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
5-FU对肝癌细胞HepG2增殖的影响

1.
王惠,徐陆周,吴坚,等.理冲汤加减联合5-氟尿嘧啶对人肝癌细HepG2上皮间质转化的影响[J].中国实验方剂学杂志,2019,25(7):14-21..
2.
Venook AP, Papandreou C, Furuse J, de Guevara LL. The incidence and epidemiology of hepatocellular carcinoma: a global and regional perspective.Oncologist. 2010;15 Suppl 4:5-13. doi:10.1634/theoncologist.2010-S4-05.
1.2仪器
IX71倒置显微镜(日本奥林巴斯株式会社),Epoch超微量分光光度计(美国BIO-TEK公司),Calibur流式细胞仪(美国BD公司)。
1.3细胞培养
HepG2细胞,含10%小牛血清,1%青/链霉素的高糖DMEM培养液,于37℃、5%CO2培养箱中培养。0.25%的胰酶消化传代。
1.4CCK-8检测细胞增殖
6.
殷晓丽,刘兆玉.上皮间质转化在肿瘤中的研究进展[J].医学综述,2017,23(12):2359-2363,2369
7.
Matheson DS, Green B, Hoar DI. The influence of methotrexate and thymidine on the human natural killer cell function in vitro. J Immunol. 1983;131(4):1619-1621.
1材料与方法
1.1材料
人肝癌细胞HepG2,为本实验室保存。小牛血清购自杭州四季青公司,DMEM培养液购自Invitrogen公司。CCK8细胞增殖检测试剂盒和细胞周期检测试剂盒购自江苏凯基生物公司。其他生化试剂均为进口或国产分析纯试剂。5-氟尿嘧啶购自天津金耀氨基酸有限公司(批号:1803091)。
木犀草素对人肝癌HepG2细胞株侵袭、迁移和黏附能力的影响

木犀草素对人肝癌HepG2细胞株侵袭、迁移和黏附能力的影响李春雨;王琪;申珅;李国霞【期刊名称】《中国病理生理杂志》【年(卷),期】2017(033)009【摘要】目的:探讨木犀草素对人肝癌HepG2细胞株侵袭、迁移和黏附能力的影响及其作用机制.方法:采用不同浓度木犀草素处理体外培养的人肝癌HepG2细胞株,Transwell实验检测细胞的侵袭能力,划痕实验检测细胞的迁移能力,黏附实验评价细胞的黏附能力,Westem blot检测E-钙黏蛋白(E-cadherin)、N-钙黏蛋白(N-cadherin)、波形蛋白(vimentin)和Snai1蛋白的表达.结果:木犀草素可明显降低肝癌HepG2细胞的体外侵袭、迁移及黏附能力(P<0.01),且在一定浓度范围内呈明显量效关系.木犀草素处理肝癌细胞后,上皮细胞标志蛋白E-cadherin表达明显上调,间质细胞标志蛋白N-cadherin和vimentin以及转录因子Snai1表达均明显下调,木犀草素对以上蛋白的调节呈明显浓度依赖性.结论:木犀草素体外具有抑制肝癌HepG2细胞株侵袭、迁移和黏附的作用,其作用机制可能与调控上皮-间质转化有关.【总页数】5页(P1606-1610)【作者】李春雨;王琪;申珅;李国霞【作者单位】天津医科大学国际医学院,天津300070;同济大学附属上海市肺科医院肿瘤科,上海200433;天津医科大学国际医学院,天津300070;天津医科大学国际医学院,天津300070【正文语种】中文【中图分类】R730.23;R735.7;R965【相关文献】1.Aurora蛋白激酶抑制剂VX-680对人肝癌细胞HepG2细胞间同质黏附力和迁移能力的影响 [J], 任本洪;孙雪娇;郝跃鹏;寇俊婷;牛仕诗;杨成园;王晓霞2.5-脂氧合酶抑制剂对人肝癌细胞株HepG2体外迁移及侵袭的影响 [J], 张强3.亚砷酸联合电离辐射对肝癌细胞株HepG2增殖、迁移及侵袭能力的影响 [J], 叶家才;黄赖机;张秀萍;邓瑾;丁研4.低分子肝素对肝癌细胞株HepG2迁移率及黏附率的影响 [J], 崔灿;武文娟5.NEK2对肝癌细胞株HepG2迁移侵袭的影响及其机制的研究 [J], 张东强;徐细明;张美霞因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
塞来昔布联合索拉非尼对人肝癌HepG2细胞迁移与侵袭能力的影响

临床医学研究与实践2021年3月第6卷第7期肝癌细胞侵袭与转移是肝癌患者预后差的重要原因,抑制肝癌细胞的侵袭与转移是肝癌防治的重要策略。
索拉非尼为当前肝癌治疗的一线药物,但高剂量下不良反应限制了其在临床上的应用,将索拉非尼与其他抗肿瘤药联合用药成为肿瘤防治的方向之一[1]。
文献报道,选择性环氧化酶-2(cyclooxygenase-2,COX-2)抑制剂塞来昔布可通过阻滞细胞周期、诱导细胞凋亡等机制增强索拉非尼的抗肝癌作用[2-3],塞来昔布能否增强索拉非尼对肝癌细胞侵袭与转移的抑制作用及相关机制尚不清楚。
本研究以人肝癌HepG2细胞为模型,评价塞来昔布与索拉非尼联用防治肝癌细胞侵袭与转移的效果,并探讨联合用药对E-钙粘蛋白(E-cadherin )、COX-2、Notch1、Snail 等蛋白表达的影响,为索拉非尼治疗肝癌的用药方案提供理论基础。
1材料与方法1.1材料1.1.1细胞系。
人肝癌HepG2细胞购自江苏凯基生物技术股份有限公司。
1.1.2药品和试剂。
塞来昔布(s126106)、索拉非尼(s739702)购自selleck 公司;DMEM 培养基(11965-084)、胎牛血清(2017490C )购自Gibco 公司;E-cadherin (GR3209210-7)、COX -2(GR222252-20)、Notch1(GR3236292-1)、Snail (GR3245013-1)均购自abcam 公司;Matrigel (354248)胶购自Corning 公司;四甲基偶氮唑盐(MTT,KGA311)、青霉素/链霉素溶液(KGY002)、0.25%胰酶(含EDTA ,KGY001)、DOI :10.19347/ki.2096-1413.202107002基金项目:山东省医药卫生科技发展计划项目(No.2018WS182)。
作者简介:苗久旺(1979-),男,汉族,河南商丘人,副教授,博士。
胰蛋白酶抑制剂对人肝癌HepG2细胞的增殖和迁移的影响

胰蛋白酶抑制剂对人肝癌HepG2细胞的增殖和迁移的影响目的:体外研究尿胰蛋白酶抑制剂(urinary trypsin inhibitor,UTI)对人肝癌HepG2细胞增殖和迁移等肿瘤生物学特性的影响。
方法:MTT法检测UTI 对肝癌HepG2细胞增殖的影响;Transwell法检测不同浓度UTI对细胞迁移能力的作用;结果:UTI组对肝癌HepG2细胞的增殖无影响(P>0.05);与对照组相比较,不同浓度的UTI组均能抑制人肝癌细胞HepG2的体外迁移能力,且呈剂量效应关系,差异有统计学意义(P<0.05);结论:UTI能抑制人肝癌细胞HepG2迁移。
标签:尿胰蛋白酶抑制剂(UTI);肝癌细胞HepG2;增殖;迁移Effects of urinary trypsin inhibitor (UTI)on the migration and invasion of HEPG2 hepatocellular carcinoma cells in vitro.Yang Chaowen Luo Jiaxing Luo WeiminAbstract:Objective:To investigate effects of urinary trypsin inhibitor (UTI)on the proliferation and migration of HepG2 hepatocellular carcinoma cells in vitro. Methods:Effects of UTI on HepG2 cells proliferation was evaluated by MTT assaya;Effect on HepG2 cells migration by UTI was evaluated by Transwell assay. Results:The UTI do not effect the proliferation of HEPG2 cells (P>0.05). UTI suppress the migration of HepG2 cells dose-dependantly(P<0.05). Conclusions:UTI can suppress the migration of HEPG2 hepatocellular cells.Key words:Urinary trypsin inhibitor (UTI);Liver hepatocellular carcinoma HepG2 cells;Proliferation;MigrationUTI是从尿液中提取的一种Ⅱ型Kunitz第二结构域的蛋白多糖,对丝氨酸蛋白酶(胰蛋白酶)、透明质酸酶和纤溶酶等多种酶具有抑制作用[1],属于蛋白酶抑制剂,临床上常用于急慢性胰腺炎的治疗。
E_cadherin黏附系统及其与肿瘤侵袭转移的关系

Tianjin Med J, Jun 2008, Vol 36 No 6
综述
E- cadherin 黏附系统及其与肿瘤侵袭转移的关系
石珍亮 张 逊 *
关键词 钙黏着糖蛋白类 肿瘤转移 肿瘤侵润 综述[文献类型]
侵袭与转移是恶性肿瘤最基本的生物学特征, 也是导致 肿 瘤 患 者 治 疗 失 败 及 患 者 死 亡 的 主 要 原 因 。 肿 瘤 的 侵 袭 、转 移是个复杂的过程, 涉及面很广, 如癌细胞本身的生物学特 性, 宿主细胞及细胞外基质与癌细胞的相互作用等[1]。最早是 Liotta 提 出 的 黏 附 、降 解 、移 动 学 说 , 每 个 步 骤 也 是 有 多 个 因 素的共同参与, 因而其具有复杂性, 其中细胞黏附参与并起 着重要作用。目前已分离鉴定出 4 类与肿瘤转移有关的细胞 黏 附 分 子( cell adhesion molecules, CAM) , 它 们 是 整 合 蛋 白 、 免 疫 球 蛋 白 超 家 族 分 子 、钙 黏 附 蛋 白 和 选 择 素 [2]。钙 黏 附 蛋 白 ( cadherin) 是 一 类 主 要 介 导 细 胞 间 同 质 黏 附 的 钙 依 赖 性 跨 膜 糖 蛋 白 , 其 作 用 依 赖 于 Ca2+, 至 今 已 鉴 定 出 分 布 于 不 同 组 织的 钙 黏 素 30 余 种 [3], 主 要 为 分 布 于 上 皮 组 织 中 的 E- cad ( epitheliacadherin, L- CAM) , 近年来已成为肿瘤细胞侵袭和 转移研究的热点之一。
α- catenin 在 连 接 细 胞 骨 架 蛋 白 网 时 , 需 要 和 许 多 肌 动 蛋 白 连 接 蛋 白 相 互 作 用 , 比 如 α- actinin, vinculin, ZO- 1, F- actin 等。这些连接蛋白对调节 E- cadherin/catenins 的作用有 一定意义。比如失去 ZO- 1 将影响 E- cadherin/catenins- actins 复 合 体 的 稳 定 性 [12]。
大黄素和小檗碱对高浓度瘦素作用下HepG2细胞瘦素受体mRNA表达的影响
大黄素和小檗碱对高浓度瘦素作用下HepG2细胞瘦素受体mRNA表达的影响尹春梅;王琦;王慧莲【期刊名称】《世界华人消化杂志》【年(卷),期】2009()11【摘要】目的:探讨大黄素、小檗碱改善非酒精性脂肪肝患者体内高瘦素水平的作用及机制.方法:用MTT法筛选大黄素、小檗碱作用于HepG2细胞实验浓度,在HepG2细胞中加入高浓度的瘦素(10-6mol/L)作为模型组,在模型组中分别加入大黄素、小檗碱及地塞米松,并设对照组进行比较.用RT-PCR检测细胞上瘦素长型受体及短型受体mRNA的表达水平.结果:模型组细胞上瘦素长型受体及短型受体mRNA的表达水平较对照组显著下调(P<0.01),大黄素、小檗碱及地塞米松组较模型组显著上调(P<0.01),较对照组无明显改变(P>0.05).结论:大黄素和小檗碱具有通过上调瘦素受体mRNA的表达来治疗高浓度瘦素诱导机体产生非酒精性脂肪肝的作用.【总页数】4页(P1122-1125)【关键词】大黄素;小檗碱;地塞米松;瘦素;瘦素受体;HepG2细胞【作者】尹春梅;王琦;王慧莲【作者单位】山西医科大学附属第二临床医学院消化内科【正文语种】中文【中图分类】R735.7;R589.2【相关文献】1.瘦素及胰岛素对人类肝细胞癌细胞系细胞瘦素受体mRNA表达的作用 [J], 刘正娟;姚兴家;王玉川;王德颖;陈竹名;翟玲玲2.瘦素、胰岛素及IL-6对平滑肌细胞瘦素受体mRNA表达的影响 [J], 徐成胜;吴勇波;何涛;周千星;王德鹏;曾和松3.瘦素受体在小鼠皮肤中表达及瘦素受体阳性细胞在皮肤发育和创伤愈合中的作用[J], 王傲;褚宏尚;吴红光;李科;刘慧娟4.瘦素对Hep G2细胞瘦素受体mRNA表达的影响(英文) [J], 刘正娟;姚兴家;翟玲玲5.瘦素和瘦素受体在结肠癌组织中的表达及瘦素对结肠癌细胞株HT-29增殖及凋亡的影响 [J], 赵勇;王志刚;章必成;饶智国;高建飞;杨波;胡萌因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
迷迭香酸联合槲皮素对人肝癌HepG2细胞增殖和迁移的影响
安徽医药Anhui Medical and Pharmaceutical Journal2020Sep,24(9)doi:10.3969/j.issn.1009⁃6469.2020.09.003◇药学研究◇迷迭香酸联合槲皮素对人肝癌HepG2细胞增殖和迁移的影响刘庆东1a,白跳艳2a,王晔飞1b,姚杨2b作者单位:1榆林市第一医院,a消化内科,b肝胆外科,陕西榆林719000;2西安医学院第一附属医院,a检验科,b中心实验室,陕西西安710077通信作者:姚杨,女,高级实验师,研究方向为肝损伤的机制及防治,E⁃mail:********************基金项目:陕西省科技厅基金(2020SF⁃062)摘要:目的探讨迷迭香酸联合槲皮素对人肝癌HepG2细胞增殖、侵袭力的影响,并探讨其可能的机制。
方法以不同浓度迷迭香酸(12.5、25.0、50.0和100.0μmol/L)和槲皮素(12.5、25.0、50.0和100.0μmol/L)单药及二者联合用药处理HepG2细胞36h,用四甲基偶氮唑盐微量酶反应比色法(MTT法)检测细胞增殖,划痕实验检测细胞迁移能力,蛋白质印迹法检测凋亡相关蛋白E⁃钙黏蛋白(E⁃cad)及N⁃钙黏蛋白(N⁃cad)的表达情况。
结果槲皮素和迷迭香酸单药均能使细胞活力降低,二者联合用药对细胞活力抑制率更加显著,且呈剂量依赖性(P<0.05)。
25μmol/L迷迭香酸组及25μmol/L槲皮素组划痕愈合距离分别为(11.35±2.37)mm、(11.46±3.86)mm,均能抑制细胞的迁移;两者联合用药组划痕愈合距离为(4.36±0.56)mm,抑制细胞迁移效果更加明显(F=6.73,P=0.003)。
槲皮素组及迷迭香酸组中E⁃cad蛋白相对表达量为(1.02±0.10)及(1.25±0.14),N⁃cad蛋白相对表达量为(0.98±0.05)及(0.73±0.02),与之相比二者联合用药可显著上调E⁃cad[(1.42±0.06),F=5.28,P=0.02]及下调N⁃cad[(0.61±0.07),F=3.28,P=0.03]的表达。
RNA干扰沉默mTOR基因对肝癌HepG2细胞侵袭和转移的影响
Ta s e h m e iow st d tc ecl cu t hc eea l t vd tgl mba et ass l bly rnw lc a b ri vt a eet h e o n ihw r be oi a ema e l n i o t l w n i f me rn o sestea it i i
【 键 词】 发性 肝癌 ; p 关 原 He G2细 胞 ; mTOR ; RNA 干 扰 ; p 2细 胞 ; 袭 ; 移 He G 侵 转
【 图分 类号]R 3 . 中 7 57
【 文献 标识 码】A
【 文章 编 号]1 7 — 2 0 2 1 ) 2( ) 0 4 0 6 3 7 1 (0 0 C一 1 — 3 1
l e ta a o te ot l r p r< . )T ei ai n e s s f eG esrnf t i T Rs N o rhnt t fh n' o s P 0o . h vs nadm t t io H p 2cl・as c dwt m O lt e e h R w r dcesdta oeo teen o gop f< . ) C nls n R A itf ec f T R i H p 2cll e e erae nt s fh ot l ru s P 0 5 o c i : N ee neo m O eG e i e h h r 0. uo n rr n ln
Efe t o TOR g n n i i o y sRNA n i v so a d fc f m e e i h bt n b i i o n a i n n me a t ss o t sa i f
h m a p t m a He G2 c l u n He a o p el s
干扰NBS1表达抑制肝癌HepG2细胞增殖并促进凋亡
ation,migraUon and iuvvsion by targeting TRAF5iu colorectalcaucegj].BiochemBiopyys Res Commun,2212,510(5):799-7050[12]CHEN QY,DES MARAIS T,COSTA M.Dereaulatiov of SATB0iu carciuoyexesis with emppasis on miRNA-mediated control[J].Caniuoyexesis,258,45(3):596-450.[07]PATEL Y,SONI M,AWGULEWITSCH A,et al.OverexpresUon ofmiU-489derails mamma/hierarchy structure and indibitsHER2/kex-induced tumo/gexesis[J].Odcoyexe,228,38(3):245-453.[13]ZHAO T,QIC B,ZHOU S,et al.Expression of DEK iu paucreaticcauces and Us correlation with clinicopatSoloyicai features andproyuosis[J]■8Caucer,2219,15(4):910-909.[12]WEN Y,XU HN,PRIEETTE VIENEDGE L,et al.Optical ndopimaging detects the effects of DEK oncoyexe kuochkoou on theredop state of MDA-MB-050breast cauces cells[J].Mol Imaging BUU258,20(3):412-48.[22]LIE L,PIAO J GAO W,et al.DEK oves expression as as inde-pexdext biomarkes for poos proyuosis iu colorectal cauces[J].BMC Cauces,2513,13:367.[20]李景阳,孙丽梅,徐慧,等・DEK蛋白在非小细胞肺癌中的表达及临床意义[J]现代肿瘤医学,2512,20(20):3556-35590LI JY,SUN LM,XU H,et al.The clinical WgmUcadce of DEKproteiu expression iu uon-small cell lung cauces[J]•MoVeruOdcology,2212,24(20):3556-3559.(编校:张西敏)干扰NBS1表达抑制肝癌HepG2细胞增殖并促进凋亡肖瑞雪1,魏飞力2,徐忠法1,甄亚男1InteCering NBS1expression匚血巾匚恰proliferation and promotes apoptosis of livet cancer HepG2celloXIKO Ruixue1,WEI FeiU,XU Zhongfu1,ZHEN Yansu11Thr Thirg J^filiated Hospitai of Shandong First Medicai Universito(Affiliated Hospital ep ShanOong Acalema of Medical Sciences P, ShanOong Jinan250031,China;1Beijing Huhe op Henatolopa,Beijing Youan Hospital,Capital Medical Unwersito,Beijing100067, China.【Abstrvct i Objective:To invesUgato the ekect of NBS1knochdown oo yrollra/od and apoptosis of HepG2ceks.Methodt:NBS1specific small interference RNA(siNBSl)was transfected into HepG2cells,performed using Lipc-fectamine2000,with empty liposome as coowO grovp■The expressioo of NBS1was detected by RT-PCR and Western blot.The HepG2cell yrolifera/od was detected bs CCK-8methoV,and cell apoptosis was analyzed bs usingFCM.R csu U s:DiRerent codcekWatiods of siNBS1(10nmol/P,20nmol/L,50nmol/P)conlU indibit the expression ofNBS1gene at mRNA level in HepG2cells(P<0.05or P<0.01)■The highest codcekWa/od of UNBS1(50nmol/L)conlU significantly indibit the expression of NSB)K-8assas demodsWateX that the yrolifera/od of HepG2cells in siNBSl grovp transfected with diNerent codcekWatiods of siNBSl was lowec than that of the coowO grovp(P<0.05or P<0.01), and the yrolifera/od rate decreased most significantly aftec44h of Wansfectioo.FCM revealed thatthe apoptosis rate increased significantly aftec Wansfectioo(P<0.05or P<0.01),and was related to the concenWa-tioo.Conclusion:1ndibikod of NBS1gene expression can significantly inhibit the yrolifera/od and promote apoptosisof HepG2ceks.【Key words】NBS1,RNA interference,HepG2ceks,cek pndfen/od,cek apoptosisMoVern Oncoloyy2021,29(11):1859-1871【摘要】目的:探讨干扰NBS1基因表达对肝癌细胞HepG2增殖及凋亡的影响。
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大黄素对人肝癌HepG2细胞迁移侵袭能力及E—钙黏蛋白、Slug蛋白表达的影响目的观察大黄素对人肝癌HepG2细胞迁移侵袭能力及E-钙黏蛋白(E-cadherin)、Slug蛋白表达的影响,探讨其相关作用机制。
方法体外培养HepG2细胞,大黄素低、高剂量组分别加入10、20 μmol/L大黄素,阴性对照组加入等体积RPMI-1640培养液,阳性对照组加入10 μmol/L 5-氟尿嘧啶。
分别采用细胞-基质黏附实验、划痕修复实验、Transwell小室体外侵袭实验观察HepG2细胞黏附率、迁移、侵袭能力;Western blot检测E-cadherin和Slug蛋白表达。
结果与阴性对照组比较,大黄素低、高剂量组显著抑制HepG2细胞黏附率、迁移、侵袭能力,E-cadherin蛋白表达水平显著升高,Slug蛋白表达水平显著降低(P<0.05,P<0.01),并呈浓度依赖性。
结论大黄素能明显抑制HepG2细胞迁移和侵袭能力,其机制可能与增强E-cadherin及抑制Slug蛋白表达有关。
标签:大黄素;肝细胞癌;迁移;侵袭;E-钙黏蛋白;Slug蛋白Abstract:Objective To investigate the effects of emodin on the migration and invasion ability and expressions of E-cadherin and Slug of human hepatoma cell lines HepG2;To discuss the possible mechanisms of anti-hepatocellular carcinoma. Methods HepG2 cells were cultured in vitro. The experimental group was treated with emodin at concentrations of 10 μmol/L and 20 μmol/L as. The negative control group was treated with the same volume of RPMI-1640 medium,while the positive control group was treated with 10 μmol/L floxuridine. The c ell matrix adhesion assay,wound healing and transwell chamber in vitro invasion assay were used to observe the effects of emodin on HepG2 cell adhesion rate and migration and invasion ability. Western blot analysis was used to observe the changes of expressions of E-cadherin and Slug. Results Compared with the negative control group,emodin inhibited significantly HepG2 cell adhesion rate and migration and invasion ability were in a dose-dependent manner (P<0.05,P<0.01);Western blot analysis showed that the protein expression of E-cadherin increased significantly,and the level of Slug decreased significantly in a dose-dependent manner (P<0.05,P<0.01). Conclusion Emodin can significantly inhibit migration and invasion of HepG2 cells,which mechanism may up-regulate expressions of E-cadherin and down-regulate Slug.Key words:emodin;hepatocellular carcinoma;migration;invasion;E-cadherin;Slug protein大黄素是从大黄中提取的有效单体,具有抗肿瘤、抗病毒、免疫调节等功效功效[1-2]。
近年研究发现,大黄素抗肿瘤作用明显,对宫颈癌、大肠癌、肝癌细胞等肿瘤细胞具有杀伤和抑制作用[3-5],大黄素还可通过促进人肝癌HepG2细胞的凋亡而发挥抗肿瘤作用[6]。
肝细胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是我国目前十分常见的消化道恶性肿瘤之一,具有起病隐匿、早期症状不典型、恶性程度高、临床治疗困难、预后不良、病死率高等特点,迁移和侵袭是患者死亡和治疗效果不理想的主要原因[7]。
目前放疗、化疗等治疗HCC的手段已经进入平台期,然而其分子机制尚未明了。
虽然大黄素具有促进HepG2细胞凋亡作用,但是有关其对HepG2细胞迁移和侵袭的影响国内鲜见报道。
另外,E-钙黏蛋白(E-cadherin)和Slug蛋白被证实是与多种恶性肿瘤迁移和侵袭相关的蛋白。
因此,本研究采用体外培养HepG2细胞,观察大黄素对HepG2细胞迁移侵袭能力及E-cadherin、Slug蛋白表达的影响,探讨其相关作用机制。
1 实验材料1.1 细胞人肝癌HepG2细胞,哈尔滨医科大学第三附属医院消化内科惠赠。
1.2 药物及制备大黄素购自中国食品药品检定研究院,批号140675-201410。
1 mg大黄素溶于200 μL 0.1%二甲基亚砜(DMSO)溶液,溶解后依次加入7.4 mL灭菌三蒸水、50 μL 5 mol/L NaOH溶液,过滤后溶液作为母液,浓度为500 μmol/L,-20 ℃冰箱保存备用,临用时以灭菌三蒸水稀释至所需浓度。
1.3 主要试剂及仪器5-氟尿嘧啶(5-Fu),上海海普药厂,批号150073;DMSO,徐州试剂二厂,批号150217;牛血清白蛋白(BSA),PAA公司,批号715396;Matrigel基质胶和RPMI-1640培养液,美国HyClone公司;E-cadherin、Slug多克隆抗体,美国ProMab公司;辣根过氧化物酶标记抗鼠IgG二抗,美国Santa Cruz公司;Trizol 试剂盒,美国Invitrogen公司。
CO2培养箱(MCO-20AIC),日本SANYO;紫外可见分光光度计(Libra S22),英国Biochrom;移液枪(Thermo F2),美国Thermo;倒置显微镜(CKX41),日本Olympus;荧光显微镜(IX51),日本Olympus。
1.4 细胞培养HepG2细胞培养于含有10%BSA和5%青-链霉素双抗的RPMI-1640培养液中。
置于37 ℃、5%CO2及饱和湿度培养箱中培养。
2~3 d更换培养液,当HepG2细胞达80%汇合度时,用0.05%胰蛋白酶/0.02%EDTA消化。
37 ℃、5%CO2及饱和湿度培养48 h。
收集悬浮细胞经EDTA处理制备成单细胞悬液,然后用RPMI-1640培养液洗涤细胞。
收集对数生长期细胞,用于后续实验。
2 实验方法2.1 细胞-基质黏附实验参照文献[8]及预实验结果,低剂量组加10 μmol/L大黄素50 μL,高剂量组加20 μmol/L大黄素50 μL,阳性对照组加10 μmol/L 5-Fu 50 μL,阴性对照组加50 μL RPMI-1640培养液,37 ℃、5%CO2及饱和湿度培养24 h。
调整细胞密度1×105个细胞/mL,接种于涂有10 μg/mL Ⅳ型胶原500 μL的24孔板中,37 ℃、5%CO2及饱和湿度培养30 min。
PBS洗涤去除未结合的悬液细胞,乙醇固定贴壁细胞。
0.1%结晶紫染色,0.2%Triton X-100固定,于波长550 nm处紫外分光光度法测定吸光度(A)值,计算细胞黏附率。
细胞黏附率(%)=实验组细胞A 值÷阴性对照组细胞A值×100%2.2 划痕修复实验HepG2细胞按照细胞密度1×105个/孔接种于6孔板中,待细胞单层生长铺满板底时,用移液枪头沿培养板底部划“一”字型划痕。
各组给药同“2.1”项。
37 ℃、5%CO2及饱和湿度培养24 h。
镜下检测细胞向致伤区迁移的相对距离并拍照,计算细胞迁移率。
细胞迁移率(%)=实验组细胞迁移面积÷阴性对照组细胞迁移面积×100%。
实验重复3次,取其平均值。
2.3 Transwell小室体外侵袭实验Transwell小室用前铺上50 ?L 0.5%Matrigel膜基质37 ℃孵育过夜。
HepG2细胞各组给药同“2.1”项。
调整细胞密度1×105个/mL,分别取200 ?L接种于Transwell小室内室,并在Transwell小室下室加入含有10%BSA的RPMI-1640培养液。
孵育24 h后,取出Transwell小室,去除未穿膜细胞。
甲醇固定15 min。
OlympusIX51荧光显微镜计数穿过微孔膜的细胞数。
每组细胞随机选取10个视野计数,取其平均值。
实验重复3次。
2.4 Western blot检测E-钙黏蛋白和Slug蛋白表达HepG2细胞各组给药同“2.1”项。
37 ℃、5%CO2及饱和湿度培养24 h。
按细胞总蛋白抽提试剂盒说明书提取细胞总蛋白,Bradford法测定蛋白质含量。
取50 ?g蛋白质进行10%~12%SDS-PAGE凝胶电泳。
电泳后,湿法电转印至PVDF 膜,用含1%脱脂奶粉TBS和0.1%TBST封闭超过2 h,TBST洗膜3次,每次3 min,加E-cadherin或Slug多克隆抗体(1∶1000),4 ℃孵育过夜,TBST洗膜3次,每次3 min。
加辣根过氧化物酶标记的二抗(1∶2000),常温孵育2 h,TBST 洗膜3次,每次3 min。
β-actin作为内参照。
ECL化学发光试剂显色,通过富士生物图像处理软件进行目的条带的表达检测及分析。
3 统计学方法采用Graphpad5.0软件进行描述性统计。
实验数据以—x±s表示,正态分布资料组间比较采用t检验,多样本均数比较采用方差分析。