MTT比色法
细胞活力测试实验报告
通过本实验，了解细胞活力测试的基本原理和方法，掌握MTT法（MTT比色法）测定细胞活力的操作步骤，并分析细胞在不同条件下的活力变化。
实验时间：2023年4月10日实验地点：细胞生物学实验室实验材料：1. 细胞系：人肺上皮细胞（A549）2. MTT试剂：3-（4，5-二甲基噻唑-2-yl）-2，5-二苯基四氮唑溴盐（MTT）3. DMSO（二甲基亚砜）4. 细胞培养试剂：DMEM培养基、胎牛血清、青霉素、链霉素5. 细胞培养瓶、细胞培养板、移液器、吸管、试管、离心机、酶标仪等实验方法：1. 细胞培养：将人肺上皮细胞（A549）接种于培养瓶中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养。
2. 细胞传代：待细胞生长至约80%融合时，用0.25%胰蛋白酶消化细胞，传代至新的培养瓶中。
3. 实验分组：将传代后的细胞分为实验组和对照组，实验组细胞在特定条件下培养，对照组细胞在正常培养条件下培养。
4. 细胞接种：将实验组和对照组细胞分别接种于96孔细胞培养板中，每孔接种细胞数量为5×104个。
5. 细胞培养：将细胞培养板置于37℃、5%CO2的培养箱中培养24小时。
6. MTT实验：向每孔细胞中加入20μl MTT试剂，继续培养4小时。
7. 终止培养：弃去孔内液体，向每孔加入150μl DMSO，振荡混匀。
8. 比色：用酶标仪在490nm波长下测定各孔的吸光度（OD）值。
9. 数据分析：计算实验组和对照组的细胞活力，并比较两组间的差异。
1. 实验组细胞活力较对照组显著降低，说明特定条件下细胞活力受到抑制。
2. 不同浓度药物处理的实验组细胞活力呈剂量依赖性下降，说明药物浓度越高，细胞活力抑制越明显。
实验结论：通过MTT法测定细胞活力，可以有效地评估细胞在不同条件下的生长状态。
本实验结果表明，特定条件下细胞活力受到抑制，且药物浓度越高，细胞活力抑制越明显。
实验讨论：1. MTT法是一种简单、快速、灵敏的细胞活力测定方法，适用于多种细胞系和药物筛选实验。
MTT,CCK 8,BrdU,EdU细胞增殖检测原理
MTT，CCK 8，BrdU，EdU细胞增殖检测原理MTT，CCK 8，BrdU，EdU细胞增殖检测原理MTT又称MTT比色法，是一种检测细胞存活和生长的方法。
其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒，用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值，可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内，MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
缺点:由于MTT经还原所产生的甲瓒产物不溶于水，需被溶解后才能检测。
这不仅使工作量增加，也会对实验结果的准确性产生影响，而且溶解甲瓒的有机溶剂对实验者也有损害。
CCK-8Cell Counting Kit-8简称CCK-8试剂盒，是一种基于WST-8的广泛应用于细胞增殖和细胞毒性的快速高灵敏度检测试剂盒。
WST-8是一种类似于MTT的化合物，在电子耦合试剂存在的情况下，可以被线粒体内的一些脱氢酶还原生成橙黄色的formazan。
细胞增殖越多越快，则颜色越深;细胞毒性越大，则颜色越浅。
对于同样的细胞，颜色的深浅和细胞数目呈线性关系。
CCK-8的原理跟MTT其实是相同的，不同之处在于CCK-8法生成的formazan是水溶性的，不需要再吸出培养液加入有机溶剂溶解这个步骤，因此可以减少一定的误差。
其他优点就是重复性优于MTT;对细胞毒性小;为1瓶溶液，毋需预制，即开即用。
但是CCK-8比MTT的价格要贵不少。
具体操作步骤BrdUBrdu，即5-Bromo-2'-Deoxyuridine,中文全名5-溴脱氧尿嘧啶核苷，为胸腺嘧啶的衍生物，可代替胸腺嘧啶在DNA合成期(S期)，活体注射或细胞培养加入，而后利用抗Brdu单克隆抗体，ICC染色，显示增殖细胞。
细胞功能实验
细胞功能实验细胞功能实验是一种科学实验方法，以评估细胞的生理功能和功能。
这些实验可以帮助科学家了解细胞在正常状态下的功能，以及在不同病理条件下的变化。
细胞功能实验通常使用细胞培养技术，即将细胞放入营养物质丰富的培养基中，提供适宜的生长环境。
细胞培养箱提供了稳定的温度、湿度和气体条件，以模拟细胞在体外的生长环境。
细胞功能实验中最常用的是细胞增殖实验。
这种实验可以评估细胞的增殖能力和生长速度，通常使用MTT法或细胞计数法。
MTT法是将一种被代谢活跃的染色剂加入细胞培养物中，待细胞内的代谢物还原染色剂后，通过比色法测定细胞数量。
细胞计数法则是用显微镜观察细胞的数量和形态，通过计算细胞的密度来评估细胞增殖速度。
除了细胞增殖实验，细胞功能实验还包括细胞凋亡实验、细胞迁移和侵袭实验、细胞分化实验等。
细胞凋亡实验可以评估细胞的死亡和存活状态，常用的方法包括Annexin V-FITC/PI双染实验和DNA断裂实验。
细胞迁移和侵袭实验可以研究肿瘤细胞和其他细胞在体外的迁移和侵袭能力，常用的方法包括Transwell迁移和划痕实验。
细胞分化实验通常用于观察干细胞的分化能力，常见的方法包括倒置显微镜观察和特定细胞标记物的染色。
此外，细胞功能实验中还可以使用分子生物学技术，例如PCR、Western blot和ELISA等，来研究细胞内的信号传导通路、基因表达和蛋白质水平等。
这些实验方法的综合应用可以揭示细胞的功能调控机制，为疾病的预防和治疗提供依据。
总之，细胞功能实验是一种重要的科研方法，可以评估细胞的生理功能和功能。
通过这些实验，科学家可以更好地理解细胞的机制和疾病的发生发展，为疾病的治疗和预防提供重要的依据。
应用MTT法-文章
1 MTT比色法的条件探讨方蓉,李芳秋,武建国每孔接种SK 2BR23 细胞，用全自动酶标仪(Awareness , Stat Fax22100)测定492 nm波长吸光度( A )值。
波长与吸光度成良好线性的范围为450 nm至550 nm。
2 茶多酚对幼犬淋巴细胞转化率的影响徐玮，王利华，聂宁T淋巴细胞转化率测定参照《动物免疫学实验技术》（刘玉斌主编，1989）中的方法进行。
结果用刺激指数（SI）表示。
SI=丝裂原刺激孔OD490 nm/对照孔OD490 nm。
采用SPSS15.0数据处理软件进行差异显著性分析。
王芙蓉等（2006）试验结果表明淋巴细胞增殖能力是衡量细胞免疫功能的重要指标之一。
3含乳铁素的酸乳制品对淋巴细胞增殖的影响刘传国，胡志和，李娜外周血单个核细胞的制备[5]：无菌条件下Balb/c摘眼球取血约2ml置于肝素抗凝管(1.5ml 淋巴细胞分离液)中，与低速冷冻离心机2000r/min离心20min后，用针管吸出云雾层细胞，用Hank's液在1500r/min，10min条件下洗涤两次，弃去上清。
最后用10%FCS RPMI 1640培养液调细胞浓度为1×107/ml。
本研究运用MTT法检测含乳铁蛋白水解物的酸乳制品、乳铁蛋白水解物以及乳铁素对外周血单核细胞以及脾细胞的增殖影响4 MTT法检测淋巴细胞增殖功能的方法学探讨与应林忠宁童胜璋黄书芸卢次勇余贵英按常规方法分离制备下列生物样本，包括BALB/C小鼠、昆明种小鼠、SD大鼠、外周血淋巴细胞。
参照Mosmann法于570nm比色测定光密度分析比较。
以各样本的测定孔OD (OD S)减对照孔OD (OD C),求得OD差值(△OD)，进行组内平均（X±SD）和组间比较(t检验或ANOV A)；并计算增殖指数（SI=△OD/ OD C×100％）和单位细胞（108）增殖力（CCP=△OD/细胞数×108），评价淋巴细胞增殖功能。
利用MTT法检测活细胞数量和结果分析
1）对数生长期细胞 2）受试因素（药物或细胞） 3）Actinomycin D 4）MTT：以PBS配制成5mg/ml，抽虑除菌，避光 保存在4˚C 5）DMSO（二甲基亚砜） 6）96孔板 7）酶联免疫检测仪 8）细胞培养箱
三、实验步骤
1）收集对数期细胞，调整细胞悬液浓度， 将待测细胞(L-929)调密度至3×105/ml，含 10% FCS的完全培养基，100l/孔，（边缘 孔用无菌水填充），5%CO2，37℃孵育， 至细胞单层铺满孔底（96孔平底板）。 2）置37℃、5%CO2温箱培养使细胞贴壁过 夜。
MTT法
一、原理
噻唑兰，简称MTT，可透过细胞膜进入细 胞内，活细胞线粒体中的琥珀脱氢酶能使 外源性MTT还原为难溶于水的蓝紫色的 Formazan结晶并沉积在细胞中，结晶物能 被二甲基亚砜（DMSO）溶解，用酶联免疫 检测仪在570nm波长处测定其光吸收值，可 间接反映细胞数量。
二、试剂材料准备与实验仪器
6）96孔板在培养箱中，由于湿度不够，而培养箱由于具 有一定的温度，使得边缘的孔水分蒸发较快，导致培养基 中各种成分浓度变化增大，导致细胞状态不同。对于这种 现象，边缘孔用无菌水填充并要保证培养箱中的湿度，减 少开关培养箱的次数和时间。 7）注意细胞悬液一定要混匀，以避免细胞沉淀下来，导 致每孔中的细胞数量不等，可以每接几个就要再混匀一下。 建议使用连续加样器。 8）没有去掉上清直接加DMSO，沉淀会很难溶解。加 DMSO前要把液体吸掉，但培养液里的紫色结晶可能会吸 去，也可在倒之前先用平板离心机离心96孔板，1000r，5 分钟，然后吸掉上清。 9）为了减少误差，培养板的四边孔只加培养基或只接种 细胞，而不作为指标检测孔。 10）除置摇床上低速振荡10 min，使结晶物充分溶解外， 可用枪头吹打，加快溶解，效果亦可；或放入37度放孵箱 15分钟溶解结晶。
免疫细胞分离及NK活性测定
取对数生长期YAC- 细胞， Hanks液洗涤 取对数生长期YAC-1细胞， Hanks液洗涤2次，计数， 液洗涤2 计数， 调整至2 调整至2×105/ml。 /ml。
3、细胞毒试验： 细胞毒试验：
实验组 靶细胞 效应细胞 1640培养基 1640培养基 100µ 100µl 100µ 100µl － 靶细胞对照 效应细胞对 组 照组 100µ 100µl － 100µ 100µl － 100µ 100µl 100µ 100µl 空白组 － － 200µ 200µl
细胞活性测定方法
细胞活性测定方法细胞活性测定方法有台盼蓝染色法、克隆（集落）形成法、3H放射性同位素掺入法、MTT法等。
其中MTT法以其快速简便，不需要特殊检测仪器、无放射性同位素、适合大批量检测的特点而得到广泛的应用。
但MTT法形成的Formazan 为水不溶性的，需要加有机溶剂溶解，由于在去上清操作时会有可能带走小部分的Formazan，故有时重复性略差。
为了解决这个问题，研究人员又开发了很多种水溶性的四氮唑盐类：如XTT、CCK-8（WST-8）等。
现就这三种四氮唑盐类方法作一个简单介绍：1.MTT法MTT：化学名： 3-(4，5-二甲基噻唑-2)-2，5-二苯基四氮唑溴盐，商品名：噻唑蓝。
检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲臜（Formazan）并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜（DMSO）能溶解细胞中的甲，用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值，可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内，MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。
它的特点是灵敏度高、经济。
缺点：由于MTT经还原所产生的甲产物不溶于水，需被溶解后才能检测。
这不仅使工作量增加，也会对实验结果的准确性产生影响，而且溶解甲的有机溶剂对实验者也有损害。
2.XTT法XTT：化学名：2,3- bis(2-methoxy-4-nitro-5- sulfophenyl)-5-[(phenylamino)carbonyl]-2H-tetrazolium hydroxide，作为线粒体脱氢酶的作用底物，被活细胞还原成水溶性的橙黄色甲产物。
当XTT与电子偶合剂（例如PMS）联合应用时，其所产生的水溶性的甲产物的吸光度与活细胞的数量成正比。
优点：1、使用方便，省去了洗涤细胞；2、检测快速；3、灵敏度高，甚至可以测定较低细胞密度；4、重复性优于MTT。
MTT分析法
悬浮细胞：MTT分析法是以活细胞代谢物还原剂3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide, MTT 噻唑蓝为基础。
MTT为黄色化合物，是一种接受氢离子的染料，可作用于活细胞线粒体中的呼吸链，在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂，生成蓝色的for mazan结晶，formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比（死细胞中琥珀酸脱氢酶消失，不能将MTT还原）。
还原生成的for mazan结晶可在含50%的N, N-二甲基甲酰胺和20%的十二甲基磺酸钠（pH 4.7）的MTT溶解液中溶解，利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值，以反映出活细胞数目。
也可以用DMSO来溶解。
MTT粉末和溶液保存时都需要避光，用铝箔纸包好就可以。
实验的时候建议关闭超净台上的日光灯来避光。
步骤如下：1:接种细胞：用含10％胎小牛血清的培养液配成单个细胞悬液，以每孔 1000－10000个细胞接种到96孔板，每孔体积200ul。
2:培养细胞：同一般培养条件，培养3－5天（可根据试验目的和要求决定培养时间）。
3: 呈色：培养3-5天后，每孔加MTT溶液（5mg/ml用PBS <ph=7.4>配）20ul. 继续孵育4小时，终止培养，小心吸弃孔内培养上清液，对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。
每孔加150ul DMSO，振荡10 分钟，使结晶物充分融解。
4：比色：选择490nm波长，在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值，记录结果，以时间为横坐标，吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
注意事项：1、选择适当得细胞接种浓度。
2、避免血清干扰：一般选小于10％的胎牛血清的培养液进行试验。
在呈色后尽量吸尽孔内残余培养液。
3、设空白对照：与试验平行不加细胞只加培养液的空白对照。
其他试验步骤保持一致，最后比色以空白调零。
MTT法
MTT法筛选有效抑制胰腺星状细胞药物的具体操作方法1、主要原理活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性的MTT还原为难溶性的蓝紫结晶物formazan ，并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
我们通过在培养液中加入对胰腺星状细胞具有不同程度抑制作用的药物，使得存活的细胞数目不同，进而运用MTT比色法测定光吸收值，来判断药物的有效性。
选择适当的细胞接种浓度，一般情况下，96 孔培养板内贴壁细胞长满时约5 ×102——5 ×104个细胞，经药物干预后，加入二甲基亚砜或SDS 裂解液能溶解细胞中的紫色结晶物formazan ，用酶标仪在570 nm 波长附近(500 - 600 nm) 测定其光吸收值，范围在0. 75 - 1. 25 ，MTT 结晶物形成的量与细胞数成正比，增殖生长旺盛的细胞将还原更多的MTT ，并具有较高的光吸收值;反之，则光吸收度越低。
2、实验材料和仪器经药物干预的胰腺星状细胞MTT ( 四甲基偶氮唑盐) 、DMSO(二甲基亚砜) 、倒置显微镜、加样枪、酶标仪3、实验步骤3.1 接种和培养细胞使用与酶标仪匹配的96孔培养板，测定细胞增殖每孔体积200μl 含约2 000个细胞，应根据所用的细胞类型、增殖速度进行调节，注意设置3个重复孔和无细胞培养基对照，37 ℃培养细胞至合适的时间，然后给予特定的药物或物理因素刺激。
3.2加入MTT药物处理结束后，一般每孔200μl 培养基加入20μl MTT (5 mg/ ml) ，37 ℃培养箱内继续孵育4 h ，血清浓度尽量不高于5 % ，最好在加MTT(5 mg/ ml) 前换成无血清的培养基。
3.3呈色和比色如果是贴壁细胞，小心吸出培养上清液，每孔加入100μl DMSO ，使结晶物充分溶解，选择波长（500 - 600 nm）测定，对悬浮生长的细胞，需离心1 000r/ min ，5 min ，然后弃去孔内上清再加100μl DMSO ，或者直接加入100μl SDS 裂解液更为方便，在酶标仪上测定各孔数值，记录结果，以时间为横坐标，吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
【整理总结】关于MTT实验总结--心血啊!大全[修改版]
第一篇：【整理总结】关于MTT实验总结--心血啊!大全【整理总结】关于MTT实验总结－－心血啊！MTT分析法以活细胞代谢物还原剂3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide, MTT 噻唑蓝为基础。
MTT为黄色化合物，是一种接受氢离子的染料，可作用于活细胞线粒体中的呼吸链，在琥珀酸脱氢酶和细胞色素C的作用下tetrazolium环开裂，生成蓝色的formazan结晶，formazan结晶的生成量仅与活细胞数目成正比（死细胞中琥珀酸脱氢酶消失，不能将MTT还原）。
还原生成的formazan结晶可在含50%的N,N-二甲基甲酰胺和20%的十二甲基磺酸钠（pH 4.7）的MTT溶解液中溶解，利用酶标仪测定490 nm处的光密度OD值，以反映出活细胞数目。
也可以用DMSO来溶解。
MTT粉末和溶液保存时都需要避光，用铝箔纸包好就可以。
实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光，觉得这样比较好。
MTT步骤如下：1：接种细胞：用含10％胎小牛血清得培养液配成单个细胞悬液，以每孔1000－10000个细胞接种到96孔板，每孔体积200ul.2:培养细胞：同一般培养条件，培养3－5天（可根据试验目的和要求决定培养时间）。
3：呈色：培养3－5天后，每孔加MTT溶液（5mg/ml用PBS 配)20ul.继续孵育4小时，终止培养，小心吸弃孔内培养上清液，对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。
每孔加150ul DMSO，振荡10分钟，使结晶物充分融解。
4：比色：选择490nm波长，在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值，记录结果，以时间为横坐标，吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。
注意事项：（1）选择适当得细胞接种浓度。
（2）避免血清干扰：一般选小于10％的胎牛血清的培养液进行试验。
在呈色后尽量吸尽孔内残余培养液。
（3）设空白对照：与试验平行不加细胞只加培养液的空白对照。
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MTT比色法要点 实验前应明确的问题
1.选择适当的细胞接种浓度。一般情况下，96孔培养板的一内贴壁细胞长满时约有105个细胞。但由于不同细胞贴壁后面积差异很大，因此，在进行MTT试验前，要进行预实验检测其贴壁率、倍增时间以及不同接种细胞数条件下的生长曲线，确定试验中每孔的接种细胞数和培养时间，以保证培养终止致细胞过满。这样，才能保证MTT结晶形成酌量与细胞数呈的线性关系。否则细胞数太多敏感性降低，太少观察不到差异。
2.药物浓度的设定。一定要多看文献，参考别人的结果再定个比较大的范围先初筛。根据自己初筛的结果缩小浓度和时间范围再细筛。切记！否则，可能你用的时间和浓度根本不是药物的有效浓度和时间。
3. 时间点的设定。在不同时间点的测定OD值，输入excel表，最后得到不同时间点的抑制率变化情况，画出变化的曲线，曲线什么时候变得平坦了（到了平台期）那个时间点应该就是最好的时间点（因为这个时候的细胞增殖抑制表现的最明显）。
4.培养时间。200ul的培养液对于10的4～5次方的增殖期细胞来说，很难维持68h，如果营养不够的话，细胞会由增殖期渐渐趋向G0期而趋于静止，影响结果，我们是在48h换液的。
5.MTT法只能测定细胞相对数和相对活力，不能测定细胞绝对数。做MTT时，尽量无菌操作，因为细菌也可以导致MTT比色OD值的升高。
6.理论未必都是对的。要根据自己的实际情况调整。 7.实验时应设置调零孔，对照孔，加药孔。调零孔加培养基、MTT、二甲基亚砜。对照孔和加药孔都要加细胞、培养液、MTT、二甲基亚砜，不同的是对照孔加溶解药物的介质，而加药组加入不同浓度的药物。
8.避免血清干扰。用含15％胎牛血清培养液培养细胞时，高的血清物质会影响试验孔的光吸收值。由于试验本底增加，会试验敏感性。因此，一般选小于10％胎牛血清的培养液进行。在呈色后，尽量吸净培养孔内残余培养液。
实验步骤 贴壁细胞： 1.收集对数期细胞，调整细胞悬液浓度，每孔加入100ul,铺板使待测细胞调密度至1000-10000孔，（边缘孔用无菌PBS填充）。
2.5%CO2，37℃孵育，至细胞单层铺满孔底（96孔平底板）,加入浓度梯度的药物,原则上，细胞贴壁后即可加药，或两小时，或半天时间，但我们常在前一天下午铺板，次日上午加药.一般5-7个梯度,每孔100ul,设3-5个复孔.建议设5个，否则难以反应真实情况
3.5%CO2，37℃孵育16-48小时，倒置显微镜下观察。 4.每孔加入20ulMTT溶液（5mg/ml，即0.5%MTT），继续培养4h。若药物与MTT能够反应，可先离心后弃去培养液，小心用PBS冲2-3遍后，再加入含MTT的培养液。
5.终止培养，小心吸去孔内培养液。 6.每孔加入150ul二甲基亚砜，置摇床上低速振荡10min，使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪OD490nm处测量各孔的吸光值。
7.同时设置调零孔（培养基、MTT、二甲基亚砜），对照孔（细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、二甲基亚砜）
悬浮细胞： 1）收集对数期细胞，调节细胞悬液浓度1×106/ml，按次序将①补足的1640（无血清）培养基40ul ；②加Actinomycin D（有毒性）10ul用培养液稀释 (储存液100g/ml，需预试寻找最佳稀释度，1:10-1:20)；③需检测物10ul；④细胞悬液50ul（即5×104cell/孔），共100ul加入到96孔板（边缘孔用无菌水填充）。每板设对照（加100l 1640）。 2）置37℃，5%CO2孵育16-48小时，倒置显微镜下观察。 3）每孔加入10 ul MTT溶液（5 mg/ml，即0.5%MTT），继续培养4 h。（悬浮细胞推荐使用WST-1，培养4 h后可跳过步骤4），直接酶联免疫检测仪OD570nm（630nm校准）测量各孔的吸光值） 4）离心（1000转x10min），小心吸掉上清，每孔加入100 ul二甲基亚砜，置摇床上低速振荡10 min，使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪OD570nm（630nm校准）测量各孔的吸光值。 5）同时设置调零孔（培养基、MTT、二甲基亚砜），对照孔（细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、二甲基亚砜），每组设定3复孔。
MTT的配制 MTT一般最好现用现配，过滤后4ºC避光保存两周内有效，或配制成5mg/ml保存在-20度长期保存，避免反复冻融，最好小剂量分装，用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。我一般都把MTT粉分装在EP管里，用的时候现配，直接往培养板中加，没必要一下子配那么多,尤其当MTT变为灰绿色时就绝对不能再用了。
MTT有致癌性，用的时候小心,有条件最好带那种透明的簿膜手套.配成的MTT需要无菌，MTT对菌很敏感；往96孔板加时不避光也没有关系，毕竟时间较短，或者你不放心的时候可以把操作台上的照明灯关掉.
配制MTT时用用PBS溶解,也有人用生理盐水配，60℃水浴助溶。 PBS配方: Nacl 8g Kcl 0.2g Na2HPO4 1.44g KH2PO4 0.24g 调ph 7.4 定容1L 关于细胞的接种(铺板) 细胞过了30代以后就不要用了,因为状态不好了;培养板要用好的（最好进口板），不好的板或重复利用的板只可做预实验。
接种时最好按照预实验摸索出的密度接种, 因为细胞密度在10000/ml左右时，所测得的OD值的区间即细胞抑制率（或者增值率）的所呈现的线性关系最好，结果最可信。如果铺的太稀细胞的杀伤不会很明显，太密细胞可能都会凋亡，因为细胞长的太快营养会不够，最后导致死亡。且而细胞过密或者过少，增殖都会过快或者过慢，其增值率线性关系不佳。故而MTT细胞密度多采用10000/ml，100ul/孔。
细胞密度要根据不同细胞的特点来定.如果你做的药品对细胞具有刺激作用那么取小点的细胞浓度，如果你做的药品对细胞具有抑制作用那么取大点的细胞浓度，这样与对照的区别更明显，数据更好。悬浮细胞每孔的细胞数可达到105,贴壁细胞可为103-104.
其它的声音： 1.首先细胞的接种密度一定不能过大，一般每孔1000个左右就够了，我认为宁少勿多。尤其是对于肿瘤细胞。10000/孔是太高了，这样即使药物有作用，MTT方法也是表现不出的，最佳点板浓度在4000-5000/孔，太少的话SD值会很大。
2.MTT本身就是比较粗的实验，增殖率10%左右的波动都不算奇怪。特别是新手，20％的波动也是常见的，所以很可能是技术原因引起的，特别是种板技术一定要过关。
3.我做的是肿瘤细胞的MTT实验,这种细胞长的很快一开始我是用100000/ML的浓度来接种的,结果细胞长的太满结果是没有梯度也没有线性关系.后来调整浓度,用过40000~80000/ML的浓度都做过MTT实验,结果发现做的结果比较好点的是60000~70000/ML的浓度组的.用40000/M的浓度的组,由于细胞少,药物作用的梯度还是有,只是没有很好的线性关系.还有根据细胞生长速度以及药物的特性(有时间依赖性和浓度依赖性的药物)来确定培养时间是48小时还是72小时.
注意细胞悬液一定要混匀，已避免细胞沉淀下来，导致每孔中的细胞数量不等，可以每接几个就要再混匀一下。加样器操作要熟练，尽量避免人为误差。虽然移液器比移液管精确得多，但是如果操作不熟，CV会在8%左右。另外，吹散次数过多也会影响细胞活力。所以要熟练鞋、快些上板。
首先说说我的一点经验： 1.吹打时悬液总量不能太多，达到吸管吸液量的3到4倍，可能比较容易混匀。10ml的离心管里面最好装3~4ml的悬液：悬液太少容易吹起很多气泡，悬液太多又不容易吹成单细胞悬液。。。
2.吸管的吸液量最好在1ml左右：吸液量过多的话，一下吸起很多液体，管中所剩就很少，这样吹打容易起泡，吸液量过少，吹打的力度就不够，吹打就会不均匀。如果是吸液量1ml多的吸管，总液量在5ml左右为益 3.吸的时候要在悬液底部，然后提起来一点，但是吹下去的时候不要离开液面，否则容易吹打出气泡。
4.吹打次数100左右，就可以吹打均匀了（有人认为加细胞前吹打30－50次基本就差不多均匀了。加细胞的时候每接种2孔反复吹打3次，每吹打3次后枪头垂悬与细胞悬液中5秒钟，然后再以一定的速度吸取悬液。）
5.向每孔中用枪头加入细胞时不要太快，否则你会发现细胞在加入的瞬间会由于枪头的冲力在孔底聚集一堆，一般都在孔的底部中央，而周边很少，这种不均匀的分散会产生接触抑制，影响细胞的生长。所以速度不能太快也不能太慢。我习惯每块板加完后平握手中，向左3下，向右3下，在往返回复3下移动，目的是使得细胞能分散的均匀些。（铺板技术是MTT实验的关键，也是基础，一定要练好。曾经有同学用漩涡振荡器混匀细胞，最后细胞全死了，建议不要采用这种方法混匀细胞。
加入MTT 个人认为MTT最关键的是你的细胞数目和你加入真正起作用的的MTT的适当比例，具体细胞数目和真正起作用的的MTT之间的关系确实不好确定，我认为MTT多加一些比少加好一些
MTT的量各家报道不同，一般是过量的，所以10ul即够了。如果不使用96孔板，培养基超过100ul，MTT按照10%的比例加入.加入MTT以后振荡一下让MTT与培养基混匀，不过这个应该关系不大。
如加入MTT后都有个别孔立即变为蓝黑色，则污染的可能性極大,另外MTT稀釋後加入細胞前還是需要以過濾的方式滅菌為宜.且在加MTT前可以先在镜下观察，看看是否有孔染菌，染菌的孔常常是临近的
因为血清中白蛋白对大部分的药物都有结合效应，所以可以单独将药物和MTT加在一起，看会不会起反应。如果不起反应，就不用去除含药物的培液，直接加MTT即可。
如何清除上清 百家争鸣：
1.加DMSO前要把液体吸掉，但培养液里的紫色结晶可能会吸去，可在这之前先用平板离心机离心96孔板，2000r，5分钟，然后吸掉上清(如果是悬浮细胞，则推荐此法,悬浮细胞要离心2500rpm×10min.且其做MTT最好用圆底型96孔板,清除上清时注意不要把下面的结晶颗粒吸掉,建议各孔吸弃150-160ul即可)。
2.我每次将MTT加入后，再孵育四个小时，然后用离心机离心1000G,5min。但是用枪小心地吸上清，还是会将一小部分蓝色结晶吸出。所以还是建议翻转倒扣的方法吧！
3.另外，可以直接将板翻转倒扣（垫几层滤纸）2－3次，比用“吸”的办法更不容易使细胞脱离出来。可以轻拍，或者倾斜一点帮助吸液，发现紫色结晶几乎没有肉眼可见的掉脱，但前提是你本身细胞贴壁要比较牢，半贴壁生长的细胞容易脱离。假如药物作用时间长的话，阴性对照组可能由于细胞过多而使加入ＭＴＴ后形成的结晶漂起来，这样就不能直接倒掉上清。