大肠杆菌高密度发醇研究
大肠杆菌表达系统

大肠杆菌表达系统总结随着分子生物学和蛋白组学的迅猛发展,外源基因表达的遗传操作技术日趋成熟。
表达系统是外源基因表达的核心,常用表达系统一般为模式生物,包括真核表达系统和原核表达系统,其中真核系统包括了哺乳动物细胞表达系统、植物体表达系统、昆虫杆状病毒表达载体系统以及酵母表达系统,原核表达系统则主要为大肠杆菌表达系统。
大肠杆菌是目前应用最广泛的原核表达系统,也是最早进行研究的外源基因表达系统,其遗传学背景清晰、生长快、较易实现高密度培养、成本低、产量高,相较于其它表达系统具有难以比拟的优越性,是商业生产中应用最广泛的表达系统,取得了巨大的科研价值和经济效益。
大肠杆菌表达系统目前广泛应用于表达生产多种蛋白质/多肽类药物和生物化学产品,包括:重组人胰岛素、a2b型干扰素、兰尼单抗、紫色杆菌素和牡丹皮葡萄糖苷等。
据统计,1986-2018年由美国FDA和欧洲EMA批准上市的重组蛋白类药物中有26%来自于大肠杆菌。
与此同时,目前通过大肠杆菌表达的基因工程疫苗也进入市场或处于临床实验阶段,如戊型肝炎疫苗、人乳头瘤病毒疫苗、流感A型疫苗等。
常见的大肠杆菌表达系统有BL21系列、JM109系列、 W3110系列和K802系列等,其中大肠杆菌 BL21( DE3)菌株是目前应用于重组蛋白表达研究最广泛的菌株之一,BL21(DE3)是由大肠杆菌B系列与K-12系列的衍生菌株通过 P1 转导等遗传突变获得的。
该类菌株通常为宿主蛋白酶缺失型,以保证外源蛋白在表达过程中不被降解,维持表达的稳定性。
大肠杆菌表达系统在商业生产中具有巨大的优越性和价值,但建立高效匹配的表达系统是实现商业价值的关键,包括宿主菌、外源基因、载体的选择与匹配。
宿主菌的选择是第一步,对表达活性和表达量影响很大,理想的宿主菌株是蛋白酶缺陷型,避免蛋白酶过多引起的产物不稳定,常见的蛋白酶缺陷型菌株为BL21系列菌株。
其次是外源基因,外源基因决定了是否可获得目的产物,原核基因可在大肠杆菌中直接表达,而真核基因不能再大肠杆菌中直接表达。
工程菌的知识

工程菌的知识基因工程大肠杆菌发酵的研究摘要:基因工程菌的发酵工艺研究在生物高技术产业化的发展中具有重要的意义。
研究结果表明,每10L发酵液可得1~2kg湿菌体,发酵时间从一般的24~30h缩短到6~8h,5L、15L、150L发酵罐都可得重复性的结果。
这项发酵工艺研究不仅适用于E.coli各种不同类型的表达启动子的工程菌,也适用于野生菌株疫苗等的生产,将对我国基因工程产业化起重要作用。
关键词基因工程菌,高密度发酵,人干扰素α22b ,鲑鱼降钙素,鱼生长激素, K88K99 基因工程疫苗作者:巫爱珍. 孙玉昆.刊名:生物工程学报讨论:含PL 启动子的E. coli 工程菌的表达及温度敏感株活菌疫苗的生产。
要求细菌在较低的温度(30 ℃) 发酵增殖,在一定时间内提高菌体密度,然后迅速提高温度诱导目的产物的表达。
这类菌表达产物的表达量取决于二个因素:一是在30 ℃发酵过程中尽可能提高菌体密度,二是快速升温诱导,要同时解决这二个问题是较困难的,目前不少基因工程研究室或生产厂对于这类菌的发酵均遇到上述同类的问题,即菌体密度不高和表达量低,他们为了得到足量菌体只好采用扩大发酵体积,显然不是良策,因为含PL 启动子的工程菌在发酵过程中发酵体积越大(500~1000L) ,其表达效率愈低,并大大增加了抽提分离表达产物的工作量、设备投资、运转费及污水处理量。
而本文报道的高密度发酵技术能同时解决以上的问题,发酵时间短(约8h) ,菌体密度及表达效率高,生产车间小型化,能节省大量后处理的设备投资、人力、能源、废物废水处理量少,符合发展现代化生产的要求。
对于不需温度诱导表达,在30 ℃发酵的工程菌或野生菌应用我们的工艺技术发酵,当发酵持续6 小时,菌体仍在直线增殖的情况下,如果延长发酵时间,菌体将继续增加。
E. coli 的不同工程菌或野生菌具有不同的特性,在发酵过程中我们随之对发酵条件作了相应的改变,均取得高密度的发酵结果。
基于人工神经网络和遗传算法的普鲁兰酶重组大肠杆菌高密度发酵工艺优化

基于人工神经网络和遗传算法的普鲁兰酶重组大肠杆菌高密度发酵工艺优化迟 雷,王静雨,侯俊超,魏佳佳,魏 涛,胡晓龙,何培新*(郑州轻工业大学食品与生物工程学院,河南 郑州450000)摘 要:基于人工神经网络和遗传算法,对重组大肠杆菌(Escherichia coli )BL 21表达热稳定普鲁兰酶的高密度发酵工艺进行优化。
在5 L 的发酵罐中,通过比较不同发酵温度、pH 值及培养基碳氮比(C /N ,mol /mol )对细胞量和产物产量的影响,确定最佳发酵工艺。
结果表明,诱导前适合细胞生长的发酵条件为发酵温度34.4 ℃、pH 6.87、培养基C /N 6.1;诱导后适合产物表达的发酵条件为发酵温度32.5 ℃、pH 6.69、培养基C /N 5.3,最终获得细胞质量浓度56.5 g /L ,重组蛋白产量3.21 g /L ,酶活力为268.3 U /mL 。
关键词:重组普鲁兰酶;神经网络;遗传算法;高密度发酵Artificial Neural Network-Genetic Algorithm-Based Optimization of High Cell Density Cultivation ofRecombinant Escherichia coli for Producing PullulanaseCHI Lei, WANG Jingyu, HOU Junchao, WEI Jiajia, WEI Tao, HU Xiaolong, HE Peixin *(School of Food and Bioengineering, Zhengzhou University of Light Industry, Zhengzhou 450000, China)Abstract: In this study, the high cell density cultivation of recombinant Escherichia coli BL 21 for the production of a novel thermostable pullulanase was optimized using artificial neural network and genetic algorithm. The effects of culture temperature, medium pH, and carbon-to-nitrogen (C /N) molar ratio were tested in a 5 L bioreactor. The results suggested that the optimal culture conditions before the induction phase were as follows: temperature 34.4 ℃, pH 6.87 and C /N ratio 6.1, and the optimal culture conditions after induction were 32.5 ℃, pH 6.69 and 5.3 C /N ratio. The maximum biomass, protein concentration and pullulanase activity obtained under these conditions were 56.5 g /L, 3.21 g /L and 268.3 U /mL, respectively.Keywords: recombinant pullulanase; neural network; genetic algorithm; high cell density cultivation DOI:10.7506/spkx1002-6630-20200101-006中图分类号:Q815 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2021)10-0073-06引文格式:迟雷, 王静雨, 侯俊超, 等. 基于人工神经网络和遗传算法的普鲁兰酶重组大肠杆菌高密度发酵工艺优化[J]. 食品科学, 2021, 42(10): 73-78. DOI:10.7506/spkx1002-6630-20200101-006. CHI Lei, WANG Jingyu, HOU Junchao, et al. Artificial neural network-genetic algorithm-based optimization of high cell density cultivation of recombinant Escherichia coli for producing pullulanase[J]. Food Science, 2021, 42(10): 73-78. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-20200101-006. 收稿日期:2020-01-01基金项目:国家自然科学基金青年科学基金项目(31801535);河南省重大科技专项(181100211400);河南省教育厅科技创新人才项目(18HASTIT040);郑州轻工业大学博士科研启动基金项目(2013BSJJ004)第一作者简介:迟雷(1983—)(ORCID: 0000-0002-7824-2785),男,副教授,博士,研究方向为发酵工程。
最新大肠杆菌发酵经验总结

大肠杆菌发酵经验总结首先,补料速率与比生长速率直接影响着乙酸的生成速率和积累量(主要是补料速率与比生长速率影响发酵液中的残糖量,进而影响),所以适当的控制补料速率和比生长速率,对于控制乙酸的量有很好的效果。
其次,必须要保证充足的溶氧,并严格控制pH值,而且补酸碱的速率尽量缓和,不能太快;温度对于蛋白的表达也有很重要的影响,较低的发酵温度下所生产出的蛋白大多是有活性的,而较高的发酵温度下产生的蛋白大多一包涵体形式存在。
第三,选取合理的诱导时间非常重要,一般的诱导时间选在指数生长后期,而且诱导时的比生长速率最好能控制在0.2之内,选在此时诱导,1.将菌体的快速生长期与蛋白合成期分开,使这两个阶段互不影响,有利于蛋白的高表达;2.已经得到了大量的菌体,而且菌体的生物量基本接近稳定,不论是从动力学角度,还是能耗,物料成本方面,都比较合理。
第四,补料过程中的碳氮比也很重要。
若氮源过高,会使菌体生长过于旺盛,pH偏高,不利于代谢产物的积累,氮源不足,则菌体繁殖量少从而影响产量;碳源过多,则容易刑场较低的pH,抑制菌体生长,碳源不足,则容易引起菌体的衰老和自溶。
另外,碳氮比不当还会引起菌体按比例的吸收营养物质,从而直接影响菌体的生长和产物的合成。
根据自己的经验,一般情况下,对于一个稳定的发酵工艺下,如果总是在固定的发酵时间段出现溶菌现象,而且能排除噬菌体和染菌的可能性后,那就可能是因为碳氮比不合理造成的。
可以适当调整碳氮比。
大家讨论得较多的是关于代谢副产物乙酸对大肠杆菌发酵的影响,针对我们论坛所发的帖,我先总结以下几点,并作出相应解决措施。
一、代谢副产物-乙酸乙酸是大肠杆菌发酵过程中的代谢副产物,在多大的浓度下产生抑制作用各种说法不一,一般认为在好气性条件下,5~10g/L 的乙酸浓度就能对滞后期、最大比生长速率、菌体浓度以及最后蛋白收率等都产生可观测到的抑制作用。
当乙酸浓度大于10或20g/L 时,细胞将会停止生长,当培养液中乙酸浓度大于12g/L 后外源蛋白的表达完全被抑制。
高密度发酵概述

5、培养温度
• 培养温度是影响细菌生长和调控细胞代谢 的重要因素。较高的温度有利于细菌的高 密度发酵, 低温培养能提高重组产物的表达 量。一般大肠杆菌的最适生长温度是37 ℃, 而质粒稳定温度和目标蛋白的诱导温度大 多为30℃。
• 对于采用温度调控基因表达或质粒复制的 重组菌, 发酵过程一般分为生长和表达两个 阶段, 在不同培养阶段采用不同的培养温度
3、溶氧浓度
• 溶解氧浓度对菌体的生长和产物生成的影响很 大,溶解氧的浓度过高或过低都会影响细菌的代 谢。
• 在高密度发酵过程中提高溶氧量的方法主要有: 增大搅拌转速;增加空气流量以增加溶氧量; 通 入纯氧来提高氧的传递水平;培养基中添加H2O2, 利用宿主菌的过氧化氢酶分解产生O2; 提高氧的 分压。
二、实现高密度发酵方法
• 主要有:(1)适宜宿主的选择;(2)重组蛋白 积累位点(如可溶的胞内积累、胞内聚合积 累、周质积累或胞外积累)的确定;(3)重组 基因最大表达的分子策略;(4)细胞生长和 生产环境的优化;(5)发酵条件的优化;(6) 后处理过程的优化。
一、影响因素
• 1、培养基的选择 培养基分为天然、组合和半组合培养基3
种。高密度发酵要获得高生物量和高浓度 表达产物, 一般使用的培养基为半组合培养 基。培养基各组分的浓度和比例要恰当, 过 量的营养物质反而会抑制菌体的生长, 特别 是碳源和氮源的比例。
2、接种量
• 接种量的大小直接影响发酵周期。接种 量小( 0.5 %~4 %) 时, 比生长速率大, 对数 生长期持续时间长; 接种量大( >8 %) 时, 细 菌较快地达到了稳定期, 持续生长时间短, 自溶也较快, 所以接种量一般选择在4 %以 下。
• 诱导时间的选择也是影响外源蛋白表达的 一个重要因素。一般控制在菌体的对数生 长期或对数中后期 。
重组大肠杆菌高密度发酵过程中乙酸的控制

别是那些涉及大肠杆 菌转 录及翻 译机 制 、 一般应 激
反应和调节 的蛋 白和基 因 。而且 , ] 乙酸对产 重组 蛋 白的细胞抑 制作 用 l x 野生 型 的细胞 抑 制作 刚 : , g- j
度 以及 比产率 ( 即单 位 时 间单 位 细胞 质 量 形成 的 产 物的 量) 正 比 , 此 , 成 因 重组 大 肠 杆菌 的培 养 多 采用 高 密度培 养技 术[ 。高密度 培养技 术不 仅可 2 ]
并 干扰 甲硫 氨 酸 的合 成L 。应 该注意 到 , 养 时 6 ] 培
p H越 低 , 乙酸 未解 离形式含量越高 , 乙酸抑 制作用 就越强[8。 _ l 此外 , 究表明 , 研 乙酸 影响数种蛋 白和基 , 特
・ 6・ 4
陕
西
农O l6
重 组 大 肠 杆 菌 高 密 度发 酵 过 程 中 乙酸 的控 制
薛 文 娇 侯 文 洁 。
( . 西省微 生物研 究所 , 西 西安 1陕 陕
摘
7 0 4 ;. 10 3 2 西北农 林科技 大学 , 西 杨 凌 陕
72 0 ) 1 1 0
乙酸 的培 养基 的设 计和培 养条 件的优 化 。而 基 因 工程 的方 法是 通过 改变微 生物 自身 的基 因以减少 乙酸 的生 化合 成 。本文将 主要 介绍过 程控制 方 面
杆菌培养体系 中达到高细胞密度非 常重要 。
2 重 组 大肠 杆 菌高 密度 发 酵过 程 乙 酸 的控 制
高密度发酵
2.6 代谢副产物
(以大肠杆菌为例)
大肠杆菌高密度培养最关键的问题是代谢 副产物乙酸积累所引起的抑制和毒害作用。 针对这个问题,可以从以下几方面予以考 虑: 发酵过程调控:指数流加;pH、DO在线监 测反馈调节;透析发酵偶联。 代谢工程调控:代谢工程以提高细胞产量、 生产效率及细胞综合生理功能,降低或避 免副产物为目的。与DNA重组技术结合有 目的地改进代谢流流向及中间代谢物。
温度的பைடு நூலகம்控
目前主要的控温策略是手动调节冷却水的 流量 针对不同的发酵过程,罐温控制方式也不 相同。大致分为两类(据发酵过程中最适 温度是否变化):
定值控制 程序设定控制(例如:自适应PID等)
2.3 pH
发酵体系pH值是发酵液成分与细胞代谢综 合作用的结果。C源消耗而产生的有机酸, CO2的溶解,补料的流加,次级代谢产物的 积累,菌体自溶裂解等都可导致pH的变化。
(2) 定性调控方法(许多公司采用) 集成分析 模式识别 Knowledge-based systems(KBS) Expert systems(专家系统)
pH不仅是反映细胞生长代谢的指标,也是 调控高密度培养的手段
pH调节
pH的调节需要从发酵初始培养基开始,初 始pH不同,最终发酵效果可能也会有很大 差异。发酵过程中pH的调节,可分为两种: 内源性调节:过程中通过补加C、N源调节 (C源经代谢产酸使pH降低;供能不足时, N源的C骨架作为能源参与代谢,产生NH+4, 使pH升高) 调外节源。性氨调水节还:可流以加作酸为(NH源3P。O4)碱(氨水)
3. 补料策略
培养基营养成分过高会抑制细胞的生长, 采用流加补料是提高细胞浓度和外源蛋白 产量的有效方式,高密度培养通过调节限 制性底物的流加速率来调控细胞生长。 目前报道的最高生物量(Methylobacterium extorquens)已达到233 g(DCW/L);已报 道的高密度培养大肠杆菌最高生物量为 190g(DCW/L),非常接近大肠杆菌在液体 培养基中可能达到的理论最高生物量水平 200 g(DCW/L)。
重组大肠杆菌高密度培养的进展
Xmax (g/ L) 55 63 30 45 110 65 51 190
参考文献
[ 13 ] [ 14 ] [ 15 ] [ 16 ] [ 17 ] [ 18 ] [ 19 ] [ 20 ]
3 GMM : 葡萄糖最小培养基
3 培养方式
分批补料培养的特点是在分批培养的前提下连续地 或按一定规律地向系统内补入营养物 ,使发酵系统中保持 低的营养物浓度 。其优点在于 : 可消除快速利用碳源后造 成的阻遏效应 ; 避免培养过程中产生的抑制性副产物积累 造成的毒害 ; 避免由于菌体快速生长而发生的质粒不稳定 问题 。由于现在普遍采用限定培养基或半限定培养基作 为发酵的基础培养基 ,所以分批补料培养通常是以葡萄糖 作为限制性碳源来补充 , 氨水则兼负补充碳源和调节 p H
0135/ h 时就会产生乙酸盐 。 4. 2 pH
存在着最佳速率 。Bentley 的理论则为 ,对构建的表达系统 来说 ,细胞只有以低的比生长速率生长时才能获得高的蛋 白产率
[ 21 ]
。从基因的剂量角度看 , 每个细胞中质粒拷贝
[ 22 ]
数越多 ,产生的蛋白也越多 。细胞以低速生长时 , 质粒的 复制有更充裕的时间 关的几个方面 。 。以下阐述与控制比生长速率有
。
不同大肠杆菌菌株及所含质粒载体表达外源基因的
质粒
pM T G3 pLAR2P GH pBB210 pB GL T10 p TT Y2 pUC118 p ET3d
外源蛋白
C3 双体分子 Porcine somatotropin ( PST)
启动子
pL pL p lac p lac p
tac
参考 资料
L uria brot h 和 Terrible brot h 是以蛋白胨和酵母粉提取物作
大肠杆菌工程菌高密度发酵生产L-抗坏血酸-2-葡糖苷酶
大肠杆菌工程菌高密度发酵生产L-抗坏血酸-2-葡糖苷酶余玉奎;桂馨;李平;李敏【摘要】为提高大肠杆菌基因工程菌E.coli-pET21a高密度培养生产L-抗坏血酸-2-葡糖苷酶产量,采用摇瓶培养的方法,通过考察培养液菌体量和酶产量,筛选适用于E.coli-pET21a液体深层发酵的培养基.50 L发酵罐采用适用于工业化大生产的搅拌、供氧、pH控制和过程补料方式,进行液体深层发酵放大培养,大幅度提高酶产量.通过优化发酵过程控制pH和诱导温度,发酵液酶活提高至88 U/mL,达到摇瓶培养的10.1倍.研究结果对大肠杆菌基因工程菌高密度培养,高效表达生物酶有重要的参考价值.【期刊名称】《工业微生物》【年(卷),期】2018(048)002【总页数】6页(P29-34)【关键词】L-抗坏血酸-2-葡糖苷;维生素C;大肠杆菌;液体深层发酵;诱导剂【作者】余玉奎;桂馨;李平;李敏【作者单位】同济大学生命科学与技术学院,上海200092;同济大学生命科学与技术学院,上海200092;同济大学生命科学与技术学院,上海200092;同济大学生命科学与技术学院,上海200092【正文语种】中文维生素C(英语:Vitamin C,又称L-抗坏血酸)作为酸性药剂、还原剂、抗氧化剂、漂白剂以及化学反应物、食品和饮料中的稳定剂[1],广泛应用于化妆、保健、医药、食品行业。
在医疗卫生方面,维生素C参与许多新陈代谢过程,具有提高人体免疫力、抗衰老、预防心血管、增加对感冒抵抗力、促进胶原蛋白的合成[2]、抑制癌细胞增殖[3],防治坏血病和传染病、促进创伤愈合等作用,是辅助治疗的保健药品[4]。
在化妆品中,维生素C可作为还原剂、紫外线吸收剂和黑色素形成抑制剂来使用[2]。
具有美白皮肤、预防色斑、抗氧化功效。
由于人体内缺乏古洛糖酸内酯氧化酶,不能自身合成维生素C,必须靠体外摄取[5]。
因此,维生素C被列为人体的必需营养元素,在保护人类健康和生长过程中起到不可替代的重要作用[1]。
强化工业大肠杆菌生长特性的研究
C a t ) , 北 京军 事 医 学科 学 院王 芄 老 师 惠赠 。p C D F . D u e t 一1 ( 已改造 , 链 霉素抗 性 ) 本实验 室保存 。
1 . 2 引物
从质粒 p K D 3上 扩 增 敲 除 所 用 的 氯 霉 素 抗 性 基 因 的引 物 由两 部 分 组 成 ,引 物 5’ 端 序 列 为 靶 基 因( p t s G / i c d ) 编 码 区两 端 3 0 _5 0 b p的 同 源 序 列 , 3 ’ 端2 0 b p与 质 粒 p K D 3上 氯 霉 素抗 性 基 因 两 侧 序 列 互 补 。 同 时 在 大 肠 杆 菌 染 色 体 上 靶 基 因 积累 , 从 而 改善来自大肠 杆 菌 的生 长 特性 。
有机 酸 产 量 过 多 , 菌 体 生 长 缓 慢 等 不 良代 谢 后
果¨ J 。同 时 大 肠 杆 菌 菌 株 的 菌 体 浓 度 一 般 比 较 低, 不 利 于 工 业 生 产 中 的 大 规 模 高 密 度 发 酵 。 因
( p t s G / i c d ) 同 源 区外 侧 , 设 计 引 物 用 于 检 测 重 组 菌
表达 p p c基 因 , 对 大 肠 杆 菌 中 心 代 谢 途 径 进 行 改
2 0 1 2 年 9月 1 1日收到 第一作者简介 : 刘 国家大学生创新性实验计划资助
株 。实验 中基 因敲 除所 用引物 如表 1 。下划线部
分为与质粒 p K D 3上氯霉 素抗 性基 因两侧序列互
补 的部 分 。
宁, 女 。博士 。E — m a i l : b y a x d @1 2 6 . t o m 。
科
表1 i c d a n dp t s G 基 因 敲 除 引 物
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动物科学与动物医学 2001年1月第l8卷第1期(总第73期) 27 个体很大,仍有部分难产现象。产羔61只,其中活羔 59只,产羔率96.82 ,活羔占96.72 羔羊平均出 生重4.36 kg。
寰2超蠡摊卵检胚莓果统计寰 供悻羊编号 A B C 束受精 合计
3讨论与分析 本次研究超排供体波尔山羊获卵枚数,胚胎可用 率及其移植成功率,均达到目前国内较好水平,具有 很大推广应用价值 每只受体母羊移植一枚胚胎,是出于准备受体羊 较多和考虑到以后若因事故流产只损失一枚胚胎。在 以后推广应用过程中应根据羊的繁殖生理性能适当 增加移植胚胎枚数。 供体波尔山羊在冲胚后经使用PG催情,均陆续 发情配种,未影响其正常繁殖 为了使波尔山羊迅速 繁殖扩群,可考虑每年2扶超排移植。 在受体羊选择过程中,虽经挑选,但由于羔羊出 生重过大,难产现象很多。建议各地在开展胚胎移植 和杂交改良过程中对受体或母本品种和个体应慎重 考虑。 (收稿日期:2000—11—30)
大肠杆菌高密度发酵研究 刘文波,柴同杰 (山东农业大学动物科技学院,山东泰安271018)
摘要:高密度发酵走现代发酵工程的一项新技术,拒显著提高太脯杆茵茵俸和基因工程产品的产量。 我们就影响大脑杆茵高密度发酵的玛素置其拉制、发酵方式的选择和发酵蚌点判断置异常发酵趾理进 行7蔫要计话,井时太脯杆茸的高密度发酵进行了展望 美■词:太两杆茸f高密度发酵f溶氧采度 中圈分羹号;TQ920.1 文■标识码:B 文章编号:1 008 9381(2001)01 0027--03 致病性大肠杆菌是畜禽最常见的病原菌之一,可 1 高密度发酵的影响因素和控制 引起畜禽的严重腹酱、家禽的败血症及卵黄性腹膜炎 1.1 培养基 等一系列疾病,是影响畜禽业的一个重要因素 对该 高密度发酵的生物量达150~200 g/L,为满足 病多以疫苗预防为主,效果也较好。但目前大肠杆菌 细菌快速生长及大量表达基因产物的需要,常需投人 的生产多用普通琼脂或营养内汤进行培养,抗原产量 2~5倍于生物量的基质,加上利用率,实际量远高于 低且生产成本高,难以大批量生产 而用一般发酵工 此值。大肠杆菌高密度发酵使用的培养基多为半合成 艺生产,发酵液中的菌体浓度仍较低。难以获得理想 培养基,其各组分的浓度和比例对发酵影响很大。如 效果。近几年,人们又对高密度发酵进行了研究并取 硪源和氮源比例偏小,会导致菌体生长旺盛,造成菌 得了较大进展。实现高密度、高产率和高浓度培养是 体提前衰老白溶;而其比例偏大.则菌体繁殖数量少, 当前发酵工业的目标和方向 对于大肠杆菌,尤其 细菌代谢不平衡,不利于产物积累 由于优化碳源是 是重组大肠杆菌,实现高密度发酵不仅可相应减少反 太肠杆菌发酵的关键因素,人们就碳源对高密度发酵 应物体积,降低生物量的分离费用,还可缩短生产周 的影响傲了大量研究。葡萄糖是目前最常用的碳源物 期、减少设备投资,从而达到降低成本,提高生产效率 质。通过对重组大肠杆菌生产谷胱甘肽(GSH)发酵 的目的。 条件的研究表明;初糖浓度为10 g/L时,重组大肠杆
n 0如 ¨n m n 1 1 2 1 1 1 3 5 5 2 5 7 2 7 5 3 n 1 4 8 5 1 6 4 5 3蚰2 7 。。。 。 。如n ¨H耕 维普资讯 http://www.cqvip.com Animal Science&Veterinary Medicine VoI 18 No.1(Total No.73) 菌WSH—KE发酵24 h,细胞干重达最大,细胞内 GSH含量也高于其它糖浓度 。对高密度发酵大肠 杆菌生产重组人骨形成蛋白一2A的研究也表明;基质 中初糖浓度为10 g/L时细胞浓度和产物表达量均获 得了较好的效果 。上述研究表明:当培养基中糖初 始浓度为10 g/L时,可获得理想的发酵效果。如果培 养基中糖浓度过高,超过菌体生长需要量,则会导致 乙酸生成。糖浓度超过50 g/l 时大肠杆菌的生长将 受到抑制 ] 以甘油代替葡萄糖作为碳源则可减少代 谢剐产物——乙酸的积累,而且更易达到重组菌的高 密度和外源蛋白的表达 ]。 除碳源外,培养基中的氮源、微量元素和各种无 机盐含量对大肠杆菌发酵也有较大影响。一般而言. 大肠杆菌培养时营养的抑制浓度为:葡萄糖(50 g/ L)、氮(3 g/L)、Fe“(1.15 g/L)、Mg (8.7 g/L)、 PO ”。(10 g/L)、Zn”(O.038 g/L) -。此外.致病性大 肠杆菌和基因工程大肠杆菌发酵所需营养条件也不 完全一样。 1.2接种量 接种量是指移人的种子液和培养液体积的比例。 它的大小决定了菌种在发酵罐中的生长速度。采用大 接种量,由于种子液中含有大量体外水解酶类,有利 于对基质的利用,缩短生长延迟期,并使生产菌迅速 占领整个培养环境。但过高的接种量也会使菌体生长 过快,消耗大量营养物质,反而影响后期的生长。在一 定范围内增加接种量有利于菌体的生长(1 、2 、 5 接种量分别为1O 的95.4 、96.6 和98 )【6一。 因此,接种时应根据实际情况确定接种量。一般多采 用4 ~5 。 1.3生长押制性物质 大肠杆菌在发酵过程中,会产生一些有害代谢产 物。如有机酸、CO 等。这些物质的积累可抑制细菌生 长的外源蛋白的表达。此外,由于供氧不足,比生长率 过大或碳源供给量高于大肠杆菌所能同化速度,也会 产生乙酸等代谢产物,对菌体生长产生抑制。再就是 CO。的影响也不容忽视。若发酵液中的CO 超过一 定浓度,也能抑制菌体生长,而且还会降低发酵液的 pH值。 为降低培养过程中代谢剐产物浓度,可通过调整 培养基组成,特别是碳源含量来防止乙酸产生。另外, 在维持高溶氧的同时,采用流加措施。以初糖浓度10 g/L、12 h补加10 g/L的补糖方式,使得GSH的总 量比不补糖提高了5倍 。在培养基中加人某些氨基 酸(甘氨酸、甲硫氨酸),减轻了乙酸的抑制作用,提高 了菌体的生长速度和重组蛋白的产率 ] 1.4溶氧浓度 溶氧浓度是影响高密度发酵的一个重要参数。大 肠杆菌菌群在扩增过程中,需大量氧气参与代谢.因 而,饱和氧的供给很重要。溶氧浓度过高或过低,都会 影响菌体的生长和产物的生成。特别是在发酵后期, 由于菌体密度的急副扩增,耗氧量极大,发酵罐的各 项物理参数均不能满足对氧的供给,使菌体生长变得 极为缓慢,外源蛋白表达水平也很差。所以维持较高 水平的溶氧浓度,不但有利于菌体生长,还有利于外 源蛋白产物的生成。 要使发酵过程中保持适宜溶氧浓度.必需确定发 酵罐的通气量和搅拌速度。在一定范围内,通气量越 大,溶氧浓度越高。但不能单纯依靠提高通气量来获 得充足氧气。如果气流速度过大,再提高通气量,会使 发酵液产生大量气泡,使罐的有效利用率降低。最近 已开发了多种提高供氧的方法,如通过提高发酵罐的 压力来提高氧分压,ICI公司的压力循环罐已实验成 功 ]。另外,在发酵液中添加H。O。,在细胞过氧化酶 的作用下.也可释放出氧气,供茵体利用。 1.5温度 培养温度对细菌的生长发育具有很大影响。若培 养温度适宜,则会明显促进细菌生长。随着温度的升 高,细菌代谢加快.但其生长过程中的代谢副产物也 会随着增加,它们会对菌体生长产生一定抑制作用 此外,温度还通过改变发酵液的物理性质间接影响细 菌的生长。 对于一般细菌的发酵温度,在其最适培养温度范 围内是比较合适的 而对于基因工程菌,在不同发酵 阶段,其最适温度要综台考虑。在发酵初期,当其目的 产物还未表达时,就应优先促进菌体生长。到了目的 产物表达分泌期,菌体也已长到一定浓度,此时,就应 将目的产物表达的最适温度放在首位 1.6 pH值 细菌的生长发育及各种能量代谢都要受其环境 pH值影响。特别是在发酵过程中,pH值的改变会直 接影响菌体的产量和目的产物的表达 因此,一定要 充分考虑细菌的最适pH值范围,并在发酵过程中保 持一定的pH值。但在发酵过程中,由于大肠杆菌可 利用葡萄糖产酸产气,特别是产生大量乙酸和cO , 从而使pH降低。因此,在产生发酵过程中,必须及时 调节pH值,以避免pH值激烈变化对细菌生长代谢
维普资讯 http://www.cqvip.com 动物科学与动物医学 2001年1月第18卷第1期(总第73期) 29 和目的产物表达的不利影响。 1.7其它因素 对于重组大肠杆菌,要达到重组产物的最大产 率,还要考虑合适的诱导时间和诱导强度 一般在对 数生长中期进行升温诱导表达 在利用温度诱导型的 重组质粒生成BMP一2A时,细菌对教中期诱导比后 期诱导产率提高32 n]。另外,在生产中,由于发酵 液中含大量蛋白质、多糖等物质 因此,搅拌时会产生 大量气泡。如果泡沫持续过久,除了会降低发酵罐的 有效容积外,还会防碍菌体呼吸,造成代谢异常而使 菌体早期白溶。对此,在生产中,要适当减轻搅拌剧烈 程度,同时少加或缓加一些易起泡原料;要用天然油 脂和台成消沫剂等消除已生成的泡沫。 2发酵方式选择 补料分批发酵是近几年兴起的一项新技术,已被 广泛地应用于各种微生物的高密度发酵。它是指在微 生物分批发酵中以某种方式连续补加一定物料的培 养技术,主要包括非反馈补料和反馈补料两种类型。 前者包括恒速补料、变速补料和指数补料三种方法; 后者包括恒pH值法、恒溶氧法 菌体浓度反馈法、 CER法和DO stat法 由于流加方式的不同,它们对 菌体生长及外源蛋白表达的影响也不同。因指数流加 法比较简单,不需复杂设备,采用这一方法培养大肠 杆菌可将细胞比生长率控翩在不产生副产物(如乙 酸)范围之内,所以颇受重视。该技术已广泛用于重组 大肠杆菌高密度培养生产外源蛋白 另外,它还可作 为独特动力学研究手段代替连续培养来考查培养过 程中的重要动力学参数特性。研究发现指数流加不仅 在提高菌体密度、生产强度和产物表达总量方面有显 著的优势,而且实际过程的比生产速率平均值与设定 值非常接近口]。 3发酵终点判断爰异常发酵处理 3.1发酵终点判断 发酵终点的判断对提高菌体和外源蛋白的产量 及质量,以及缩短生产周期是很重要的 发酵初期,菌 体数量增加较快。但到了后期,大部分细菌已停止生 长,甚至死亡 此时,若继续发酵,则既浪费时间和财 力,又影响产物质量。溶氧规律性变化反映了大肠杆 菌生长的规律,因此将溶氧作为终止发酵的信号。在 发酵初期,由于菌体密度急剧增加,耗氧量较大,溶氧 曲线迅速下降,在对数生长期降到最低;随后进入细 菌生长的稳定期,曲线趋于平稳;到达衰老期后,细菌 生长基本停止,氧气捎耗量又下降,表现为溶氧曲线 略有上升趋于平稳,这时可终止发酵 。 3.2异常发酵处理 3.2.1发酵液转稀发酵尚未进入放罐阶段发酵液 异常地变稀。其产生原因,除了噬苗体侵袭以外,往往 还由其它一些未知因素造成。首先表现在粘度降低, 继而泡沫上升,消沫油的效果减弱 通常在刷开始变 稀时,及时补充适当的氨源可促使新菌体繁殖,使发 酵恢复正常。有些品种,补入碳源也可以防止变稀。由 于氮源或碳源可改变发酵液的表面张力,泡沫上升的 情况也有所改善。 3.2.2发酵液过浓 发酵液过浓是发酵液中氨源过 多,造成菌体浓度大大增加,降低了发酵液中的溶氧 浓度,影响发酵的正常进行。对此,可补人大量的水, 除了使菌体浓度稍加稀释外,还可降低发酵液粘度, 从而改善发酵条件。补水量不少于发酵液体积的 5 ,才能显示效果,一般控制在10 左右 3.2.3糖耗缓慢糖耗缓慢的原因很多,如种子质 量不好、培养基中磷酸盐浓度下降等。对此,可以补充 适量合适氮源或部分磷酸盐。一般发酵液的培养龄愈 长,对磷酸盐愈不敏感。此外,还可用提高发酵温度的 办法来促进糖耗加快。