小鼠缺氧实验指导
实验三实验性缺氧
【实验目的】
1.掌握各型〔低张性和血液性〕缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。
2.观察不同类型缺氧时机体的变化〔活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色〕及存
活时间；
观察不同年龄和中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性的影响，理解条件因素在缺氧发病中的重要性。
掌握各型缺氧的发生机制及特点。
了解常见血液性缺氧的解救措施。
【实验原理】
导致低张性缺氧最常见的原因包括吸入气氧分压过低和外呼吸功能障碍。本实验将小鼠放置于参加钠石灰的密闭广口瓶内，随着小鼠的呼吸消耗，广口瓶中氧气含量逐渐降低，模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。观察低张性缺氧时机体的变化〔活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色〕及存活时间。
影响机体对缺氧耐受性的因素很多，除缺氧时间、速度、类型和程度外，还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。本实验通过应用药物改变小鼠的中枢兴奋状态及选择不同年龄的小鼠，观察不同条件下低张性缺氧小鼠的活动状况和存活时间。
血液性缺氧是由于血红蛋白的数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力
或血红蛋白结合的氧不易释出所引起的缺氧。本实验将复制两种常见血液性缺氧模型：一氧化碳中毒和亚硝酸盐中毒引起的血液性缺氧。一氧化碳可与血红蛋白结合，形成碳氧血红蛋白而失去结合氧的能力，从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。亚硝酸钠是强氧化剂，可使血红蛋白分子内二价Fe2+氧化成为三价Fe3+而形成高铁血红蛋白，高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧。
【实验对象】
成年小鼠〔性别、年龄、体重近似、雌雄不拘〕、新生小鼠
【实验药品和器材】
3.75%尼可刹米、0.25%氯丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚硝酸钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。
缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置〔图1〕、1ml
注射器、5ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置〔图2〕、气囊袋。
(1)【实验步骤】
(2)低张性缺氧
(3)1〕取体重接近的成年小鼠2只，称重后分别放入盛有钠石灰〔大约4~5g，以
双层纱布包裹〕的两个缺氧瓶〔A瓶和B瓶〕中，A瓶不盖胶塞，暴露于空
气中，B瓶用胶塞塞紧瓶口。
(4)2〕比拟观察2只小鼠的活动状况、皮肤〔口唇〕黏膜和肝脏颜色、呼吸频率
〔次数/10s〕和深度，记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。
(5)3〕通过耗氧量测定装置测量低张性缺氧〔B瓶〕的小鼠耗氧量。
(6)4〕计算耗氧率〔计算方法见附录〕。
(7)5〕当B瓶小鼠死亡后，将A瓶中小鼠断颈处死，解剖2只小鼠腹腔，取出小
鼠肝脏组织，置于标记的白色滤纸上，比拟观察肝脏的颜色。
(8)不同年龄对缺氧耐受性的影响
(9)取成年小鼠和新生幼鼠各1只，将2只小鼠分别放入缺氧瓶内〔每瓶均放置纱
布包裹的钠石灰5g〕，盖上胶塞。
(2)观察小鼠的活动状况、皮肤〔口唇〕黏膜和肝脏颜色、呼吸频率
/10s〕〔次数
和深度，记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。
表一、低张性缺氧各项指标变化及不同年龄对低张性缺氧耐受性的影响分组活动状况黏膜颜色呼吸耗氧率抽搐出现时间〔s〕存活时间〔s〕肝脏颜色
正常对照
A组〕
低张性缺氧〔B组〕新生幼鼠
组
3.不同中枢状态对缺氧耐受性的影响
(1)取成年小鼠3只〔A、B、C组〕，称重并标记编号后分别作如下处理：A组
小鼠腹腔注射3.75%尼可刹米溶液ml/10g；B组小鼠腹腔注射0.25%氯
丙嗪溶液
ml/10g；C组小鼠腹腔注射生理盐水ml/10g。
腹腔注射结束后迅速将3只小鼠放入缺氧瓶中〔每瓶均放置纱布包裹的钠石灰5g〕，盖上胶塞；
(3)比拟观察3只小鼠的活动状况、皮肤〔口唇〕黏膜和呼吸频率〔次数/10s〕
和深度，记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。
表二、不同中枢状态对低张性缺氧耐受性的影响
分组缺氧前活动状况、缺氧时活动状况、出现抽搐的时间存活时间
呼吸、唇色呼吸、唇色〔s〕
〔s〕
尼可刹米组
氯丙嗪组
生理盐水组
4.CO中毒性缺氧
〔1〕取草酸3ml参加CO发生装置试管内，再参加浓硫酸2~3ml，塞紧试管。点燃酒精灯置试管下缓慢加热可见试管内有气泡产生即可，将CO发生装置连接气
囊袋收集产生的CO备用。
2〕取成年小鼠2只，分别将其放入缺氧瓶〔每瓶均放置纱布包裹的钠石灰5g〕中，观察其正常表现后，用注射器从气囊袋中抽取5mlCO注入一缺氧瓶中，并迅速盖上胶塞，另一缺氧瓶不盖胶塞。
〔3〕观察小鼠的活动状况、皮肤〔口唇〕黏膜和呼吸频率〔次数/10s〕和深度，
当小鼠出现抽搐时立即取出小鼠〔注意盖好胶塞〕并迅速置通风处，观察小鼠各项指标是否恢复。假设指标恢复，继续将小鼠放回缺氧瓶中盖上胶塞直至死亡，记录存活时间。
〔4〕解剖CO中毒小鼠的肝脏，观察记录其颜色变化。
亚硝酸钠中毒性缺氧
〔1〕取成年小鼠2只，称重，观察其正常表现后，腹腔均注射5%亚硝酸钠溶液
后，一只小鼠立即腹腔注射
腹腔注射生理盐水ml/10g。
1%亚甲兰ml/10g，另一小鼠立即〔3〕观察小鼠的活动状况、皮肤〔口唇〕黏膜和呼吸频率〔次数/10s〕和深度，并记录小鼠存活时间。
〔4〕解剖亚硝酸盐中毒小鼠的肝脏，观察记录其颜色变化。
表三、血液性缺氧小鼠各项指标变化
分组活动状况、呼吸、唇色出现抽搐的时间〔s〕存活时间〔s〕肝脏颜色
正常对照组
CO中毒组
亚硝酸盐中
毒组
亚硝酸盐中
毒解救组
【实验考前须知】
1〕复制低张性缺氧时，要求缺氧瓶必须密闭，必要时可在瓶口涂上凡士林到达
密闭效果。
〔2〕各组小鼠体重要求接近，体重差不得超过4g。
3〕小鼠腹腔注射时应从左下腹斜向上进针，以免导致肝脏损伤，同时也可防止
将药液注入肠管、膀胱和血管内。
4〕复制CO中毒性缺氧时CO注射量不宜过多，以免动物迅速死亡而致血液颜
色变化不明显，影响结果观察。
〔5〕给动物注射亚甲蓝的剂量要求适当，剂量过少达不到抢救NaNO2中毒的目的；剂量过大反而会加重NaNO2的中毒作用。
6〕CO是毒性较强的气体，实验过程中要注意防护。建议实验室窗户翻开通风。
【思考题】
1〕低张性缺氧时小鼠的呼吸、口唇皮肤粘膜颜色为什么会发生改变？其机制是
什么？
2〕结合实验结果思考不同中枢功能状态对缺氧耐受性影响的机制。
3〕相同缺氧条件下为什么对新生鼠和成年鼠的存活时间不一致？
4〕不同类型缺氧对呼吸功能的影响有何异同？
5〕各种类型缺氧口唇、皮肤、血液颜色有何变化？产生这些变化的机制是什么？
6〕CO是通过什么机制降低血红蛋白的携氧能力的？
【附录】
CO产生原理
实验中应用CO发生装置产生CO是向草酸中参加一定比例的浓硫酸后，经适
当加热而产生的。其反响原理如下：
H2SO4
HCOOH CO+H2O
△
钠石灰的作用
缺氧瓶内参加钠石灰的目的是吸收小鼠呼出的CO2，使瓶内环境为单纯性低
张性缺氧。试剂型钠石灰为粉红色颗粒状物质，其吸收CO2的反响式如下：
NaOH?CaO+CO2→Na2CO3+H2O
亚甲蓝的作用机制
亚甲蓝(mgthyeneblue)又称美蓝或甲烯蓝，是一种碱性染料。其氧化型呈蓝色，复原型为无色。适当剂量亚甲蓝可作为亚硝酸盐中毒时的抢救药物。机制是当氧化型亚甲蓝进入机体后可接受复原性辅酶Ⅱ传递的氢离子而转变成为复原
型无色亚甲蓝，而无色亚甲蓝能够迅速使高铁血红蛋白转化为正常血红蛋白，在此过程中，无色亚甲蓝又被氧化成为亚甲蓝，如此反复循环，到达解毒作用。但
必须指出，亚甲蓝本身是一种氧化剂，因此它也是高铁血红蛋白形成剂，如果应用剂量过大，复原性辅酶Ⅱ不能很快将其全部复原为无色亚甲蓝，那么氧化型亚甲蓝会促进更多高铁血红蛋白的形成而加重病情。因此，应用亚甲蓝治疗抢救高铁血红蛋白血症时，使用剂量一定要适当，切忌大剂量应用。
.小鼠耗氧率的测定
〔1〕测定原理：在密闭缺氧瓶有限的空间内，小鼠不断消耗氧气和呼出CO2，后者被钠石灰吸收，随着氧分压的逐渐下降，使缺氧瓶内形成负压，当把缺氧瓶橡胶管与测氧装置的刻度移液管连通并翻开螺旋夹后，移液管内液面因为瓶内负压吸引而上升，其液面从“0〞参考点上升的毫升数既该小鼠消耗的氧量〔见图1〕。
2〕方法与步骤
量筒内参加约2/3高度的水，插入刻度移液管，移液管一端与
缺氧瓶连接胶管连通。
当移液管中液体到达平衡位置时记下“0〞参考点。
测定时将缺氧瓶与移液管连通后，开启螺旋夹待移液管液面上升
稳定后，从“0〞参考点读出液面上升的毫升数，即为小鼠的总
耗氧量，或称耗氧体积〔ν〕。
〔3〕耗氧率计算
根据小鼠体重〔m〕和存活时间〔t〕，按下式计算小鼠耗氧率
〔R〕：
R=v/m×t-1
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告 小鼠缺氧实验报告 缺氧是指细胞或组织在一定时间内缺乏氧气供应的状态。缺氧对生物体的影响 是非常严重的，它会导致细胞功能受损甚至死亡。为了更好地了解缺氧对生物 体的影响，我们进行了一项小鼠缺氧实验。 实验设计： 我们选取了30只健康的小鼠，将它们分为两组，每组15只。其中一组为对照组，另一组为实验组。对照组的小鼠生活在正常的氧气环境中，而实验组的小 鼠则暴露在缺氧的环境中。 实验过程： 实验组的小鼠被置于一个密闭的缺氧箱中，缺氧箱内的氧气浓度被控制在较低 的水平，以模拟高原缺氧环境。对照组的小鼠则继续生活在常规的实验室环境中，氧气浓度正常。 实验结果： 经过一段时间的实验观察，我们得出了以下结论： 1. 血液指标变化： 实验组的小鼠在缺氧环境中，血液中的氧气浓度显著降低。同时，缺氧导致实 验组小鼠的红细胞数量增加，血红蛋白水平也有所上升。这是小鼠对缺氧的一 种自适应反应。 2. 行为表现： 实验组的小鼠在缺氧环境中表现出明显的行为改变。它们的活动能力明显下降，精神状态较差。与对照组相比，实验组的小鼠更容易疲劳和呼吸急促。
3. 组织损伤： 缺氧对实验组小鼠的组织造成了不可逆的损伤。在实验结束后，我们对实验组小鼠进行了组织切片观察。结果显示，实验组小鼠的脑组织、心肌组织以及肺组织等都出现了不同程度的细胞损伤和坏死。 4. 免疫功能： 缺氧对实验组小鼠的免疫功能产生了明显的影响。实验组小鼠的免疫指标，如白细胞计数、淋巴细胞比例等均出现了异常变化。这表明缺氧会削弱小鼠的免疫系统功能，使其更容易受到感染。 结论： 通过本次实验，我们可以得出结论，缺氧对小鼠的影响是非常严重的。缺氧会导致小鼠的血液指标发生变化，行为表现受损，组织损伤以及免疫功能下降。这些结果对于研究缺氧对生物体的影响以及寻找缺氧治疗方法具有重要的参考价值。 然而，需要指出的是，本实验只是在小鼠身上进行的，其结果并不能完全代表人类或其他动物的情况。因此，还需要进行更多的研究来进一步确认缺氧对生物体的影响机制以及寻找更有效的缺氧治疗方法。 总之，缺氧对生物体的影响是非常严重的。通过本次实验，我们对缺氧对小鼠的影响有了一定的了解，这对于进一步研究缺氧的影响以及寻找缺氧治疗方法具有重要的意义。
小鼠 缺氧实验指导
实验三实验性缺氧 【实验目得】 １。掌握各型(低张性与血液性)缺氧动物模型复制得方法,了解缺氧得分类。 2。观察不同类型缺氧时机体得变化(活动状况、呼吸、粘膜及肝脏得颜色)及存活时间; ３.观察不同年龄与中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性得影响,理解条件因素在缺氧发病中得重要性。 ４.掌握各型缺氧得发生机制及特点、 ５。了解常见血液性缺氧得解救措施。 【实验原理】 导致低张性缺氧最常见得原因包括吸入气氧分压过低与外呼吸功能障碍、本实验将小鼠放置于加入钠石灰得密闭广口瓶内,随着小鼠得呼吸消耗,广口瓶中氧气含量逐渐降低,模拟外环境氧分压过低引起得低张性缺氧。观察低张性缺氧时机体得变化(活动状况、呼吸、粘膜及肝脏得颜色)及存活时间。 影响机体对缺氧耐受性得因素很多,除缺氧时间、速度、类型与程度外,还与缺氧时中枢功能状态与年龄等因素有关。本实验通过应用药物改变小鼠得中枢兴奋状态及选择不同年龄得小鼠,观察不同条件下低张性缺氧小鼠得活动状况与存活时间、 血液性缺氧就是由于血红蛋白得数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力或血红蛋白结合得氧不易释出所引起得缺氧、本实验将复制两种常见血液性缺氧模型:一氧化碳中毒与亚硝酸盐中毒引起得血液性缺氧、一氧化碳可与血红蛋白结合,形成碳氧血红蛋白而失去结合氧得能力,从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。亚硝酸钠就是强氧化剂,可使血红蛋白分子内二价Fe2+氧化成为三价Fe3+而形成高铁血红蛋白,高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧、【实验对象】 成年小鼠(性别、年龄、体重近似、雌雄不拘)、新生小鼠 【实验药品与器材】 3。75％尼可刹米、0.25％氯丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚硝酸钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。 缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置(图１)、1 ml注射器、5 ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置(图2)、气囊袋、
小鼠缺氧实验指导
实验三实验性缺氧 【实验目的】 1.掌握各型〔低张性和血液性〕缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。 2.观察不同类型缺氧时机体的变化〔活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色〕及存 活时间； 观察不同年龄和中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性的影响，理解条件因素在缺氧发病中的重要性。 掌握各型缺氧的发生机制及特点。 了解常见血液性缺氧的解救措施。 【实验原理】 导致低张性缺氧最常见的原因包括吸入气氧分压过低和外呼吸功能障碍。本实验将小鼠放置于参加钠石灰的密闭广口瓶内，随着小鼠的呼吸消耗，广口瓶中氧气含量逐渐降低，模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。观察低张性缺氧时机体的变化〔活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色〕及存活时间。 影响机体对缺氧耐受性的因素很多，除缺氧时间、速度、类型和程度外，还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。本实验通过应用药物改变小鼠的中枢兴奋状态及选择不同年龄的小鼠，观察不同条件下低张性缺氧小鼠的活动状况和存活时间。 血液性缺氧是由于血红蛋白的数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力 或血红蛋白结合的氧不易释出所引起的缺氧。本实验将复制两种常见血液性缺氧模型：一氧化碳中毒和亚硝酸盐中毒引起的血液性缺氧。一氧化碳可与血红蛋白结合，形成碳氧血红蛋白而失去结合氧的能力，从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。亚硝酸钠是强氧化剂，可使血红蛋白分子内二价Fe2+氧化成为三价Fe3+而形成高铁血红蛋白，高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧。 【实验对象】 成年小鼠〔性别、年龄、体重近似、雌雄不拘〕、新生小鼠 【实验药品和器材】 3.75%尼可刹米、0.25%氯丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚硝酸钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。 缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置〔图1〕、1ml 注射器、5ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置〔图2〕、气囊袋。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告 1 缺氧实验简介 小鼠缺氧实验是一种常用的实验方法，其旨在通过给小鼠施加缺 氧刺激，来研究缺氧对小鼠生理和行为的影响。缺氧条件下，小鼠的 体内氧气供应不足，导致细胞功能受损，进一步影响各个系统的功能。本文将介绍小鼠缺氧实验的具体步骤以及相关研究成果。 2 小鼠缺氧实验的步骤 2.1 动物实验伦理 小鼠缺氧实验需要对动物实验进行伦理审查，并经过合格的动物 实验委员会批准。实验过程中需要遵循动物实验规范，保证小鼠的生 命和健康。 2.2 小鼠缺氧处理 实验过程中，可以采用不同的方法给小鼠施加缺氧刺激。最常用 的方法是让小鼠置于缺氧箱内，让其暴露在一个低氧环境中，从而限 制其氧气供应。另一种方法是使用低氧气体注射技术，给小鼠直接注 射低氧气体。 2.3 实验控制 为了减少实验误差，需要对实验条件进行严格控制。例如，需要 标准化实验条件，如环境温度、湿度、光照等。此外，为了确保实验 结果的可靠性，需要设计对照组进行对比分析。
2.4 实验指标测定 在实验过程中，需要对小鼠的各种指标进行测定，以评估缺氧刺 激对小鼠的生理和行为的影响。常用的指标包括血氧饱和度、动脉血 气分析、神经元形态和功能等。 3 小鼠缺氧实验的应用 小鼠缺氧实验常用于研究缺氧对感觉、运动、认知等行为的影响。此外，该实验还常用于探索缺氧对神经系统、心血管系统、免疫系统 等方面的影响。 针对不同的研究目的，可以采用不同的实验方案。例如，可以通 过不同的时间、强度和频率的缺氧刺激来了解缺氧对小鼠生理功能的 影响。也可以结合其他技术手段，如行为学、神经电生理学和影像学等，来对小鼠的行为和神经系统功能进行全面评估。 4 实验成果 小鼠缺氧实验已被广泛应用于研究不同疾病的发生机制和治疗策略。例如，研究表明缺氧可以通过激活心肌细胞代谢来促进心脏再生，从而有望成为心脏病治疗的一种新方法。此外，缺氧刺激还可以促进 神经系统的可塑性，可以作为治疗癫痫、帕金森病等神经系统疾病的 潜在方法。 总之，小鼠缺氧实验是一种有效的实验方法，可以用于研究缺氧 对小鼠生理和行为的影响，有望为研究不同疾病的发病机制和治疗策 略提供新思路。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告 缺氧是指机体在一定时间内供氧不足的状态，可以导致多种疾病的发生和发展。为了探究缺氧对机体的影响以及相关的生理和病理机制，科学家常常使用小鼠进行缺氧实验。 一、实验目的 本次实验旨在观察小鼠在缺氧条件下的生理和行为变化，进一步了解缺氧对机体的影响，以期为进一步研究缺氧相关疾病的治疗提供依据。 二、实验方法 1.动物准备：使用健康正常的小鼠，同龄、同性别、同营养状况的小鼠群体进行实验。 2.实验装置：使用专门的缺氧实验箱，箱内参数可调节，符合实验要求。
3.实验组和对照组设立：将小鼠随机分为实验组和对照组，实 验组暴露在缺氧条件下，对照组在正常氧浓度的环境中进行实验。 4.数据收集：观察记录小鼠的行为表现，包括活动性、进食量等。并根据实验设定时间点，收集相关生理指标，如血氧饱和度、血流动力学参数等。 三、实验结果 1.行为表现：实验组的小鼠在缺氧条件下表现出不同程度的活 动减少，显得较为呆滞。进食量明显下降，体重也出现了一定程 度的减少。 2.生理指标：实验组小鼠的血氧饱和度明显下降，与对照组相 比存在显著差异。血流动力学参数中，心率和体温明显上升，而 血压则有所下降。 3.组织损伤：进一步观察了实验组小鼠的组织切片，发现缺氧 条件下，肺组织受损较为明显，包括气道炎症反应、肺泡壁增厚 等病理变化。
四、实验讨论 1.生理适应：小鼠暴露在缺氧环境下，由于机体的生理适应能力，能通过一系列生化反应调节呼吸、心血管等系统，以保持组织器官的氧供应。然而，长期或重度的缺氧仍然会对机体功能产生较大影响。 2.氧感受器：缺氧条件下，机体会通过氧感受器激活一系列信号通路，以调节呼吸和心血管系统。进而影响中枢神经系统和其它器官的功能。 3.炎症反应：缺氧会导致细胞一氧化氮合成途径骤增，并激活炎症反应。在实验中观察到的肺组织病理变化正是炎症反应的表现之一。 4.缺氧相关疾病：缺氧是多种疾病的共同特征，如慢性阻塞性肺疾病、顽固性高血压等。本实验结果对进一步研究上述疾病的发病机制和治疗方法具有一定的指导意义。
小鼠缺氧实验报告
小鼠缺氧实验报告 缺氧是指由于各种原因使人体内氧气供应不足的情况，一定程 度上有害于生命健康。在科学研究中，通过对小鼠进行缺氧实验，可以更好地了解缺氧的生理学效应以及应对方法。本文将介绍一 个小鼠缺氧实验的基本流程和结果分析。 实验方法 1. 实验动物 本实验使用12只2-3月龄的小鼠，体重在20-25g之间。小鼠 是实验动物中最为常用的种类之一，其生理特征与人体较为接近，这也是选择小鼠作为实验动物的原因之一。 2. 组织样本制备 将小鼠放置在缺氧室中，实行8小时长期缺氧训练，然后立即 用三氯乙酸酚麻醉动物。随后，取出小鼠大脑、心脏和肝脏等器官，将其冰冻保存，以备后续组织样本制备。
3. RT-PCR分析 通过RT-PCR反应体系，提取所需组织样本中的RNA。随后运用高保真度反转录酶进行反转录，获得相应的cDNA模板。根据所需基因及其引物调整试剂体系，进行PCR扩增反应。扩增结束后，取样本进行凝胶电泳检测，分析其PCR扩增产物的特征和大小，以判断该基因的表达情况。 实验结果 1. 缺氧训练引起小鼠组织缺氧损伤 缺氧训练后，小鼠被发现缺氧受损明显，心脏等器官出现不同程度的缺氧损伤，包括细胞膜破损，线粒体肿胀、减少和形态改变等。同时，高浓度染料染色显示，组织细胞核周围空隙的体积显著增大，这也表明缺氧训练引起了细胞凋亡和坏死。 2. 缺氧训练重构小鼠的基因表达谱
RT-PCR分析结果显示，在缺氧训练后，小鼠的基因表达谱出现了显著变化。在实验中选择的神经元特异性烯化酶（NeuN）和中性粒细胞介素-1β（IL-1β）基因的表达水平均有所变化。其表达水平明显下降，表明大脑和心脏细胞缺氧损伤后，神经元的表达产物发生异常变化，进而影响了细胞内环境进一步发生的改变。 3. 缺氧训练影响小鼠免疫系统 实验后，采用血清免疫学试验探究缺氧训练对小鼠免疫系统的影响，结果表明，缺氧训练对小鼠免疫系统造成了一定程度的负面影响，如分泌免疫球蛋白（IgG）的水平显著下降。 综合实验结果，可以发现缺氧训练引起了小鼠不同程度的缺氧损伤，令基因表达谱各异，并对小鼠免疫系统造成了一定不良影响。这些实验结果可以为缺氧性疾病的研究提供数据支持，也为后续改善气候条件、应对缺氧症状提供了应对思路。
小鼠缺氧性实验的原理
小鼠缺氧性实验的原理 小鼠缺氧性实验是一种用于研究缺氧引起的生理和病理变化的实验方法。该实验可以模拟人体缺氧情况，并用于研究与缺氧相关的疾病发生机制、预防和治疗策略的探索。 小鼠缺氧性实验基本原理如下： 1. 建立缺氧环境：在实验中，可以使用不同的方法建立缺氧环境，如封闭的缺氧舱，使用含有低氧气体流经的相对密封的实验舱或箱等。通过控制缺氧舱中氧气浓度的降低，模拟人体暴露在低氧环境下的情况。 2. 确定缺氧程度：通过测量缺氧舱内的氧气浓度，可以确定缺氧的程度。常用的方法包括使用氧气传感器或氧气测量仪器。 3. 动物暴露：将小鼠置于缺氧环境中一定的时间，以使其受到缺氧刺激。实验中可以选择不同的缺氧时间和频率，根据实际需要进行调整。 4. 观察和分析结果：在小鼠暴露于缺氧环境之后，需要观察和记录其生理和病理变化，如行为改变、呼吸频率和深度的变化、组织器官损伤等。同时，还可以进行相关的生物学指标测量，如血氧饱和度、血液pH值、血压等，以评估缺氧引起的生理变化。
5. 评估和解释结果：根据观察和测量结果，可以对实验所引起的生理和病理变化进行评估和解释。根据实验目的，可以对不同组之间的差异进行统计分析，并进行结果的解释和讨论。 小鼠缺氧性实验具有一定的优势和应用价值： 1. 可以模拟人体低氧环境：人体在高海拔地区、心肺疾病和呼吸系统疾病等情况下会出现低氧环境，这些情况都可以通过小鼠缺氧性实验来模拟，有助于研究低氧环境对机体的影响和适应机制。 2. 研究缺氧疾病的发生机制：如心肌缺血、中风和癌症等，缺氧是其发生发展的重要因素。通过小鼠缺氧性实验，可以探究缺氧对疾病发生机制的影响，并寻找新的治疗靶点。 3. 评估药物的疗效：通过小鼠缺氧性实验，可以评估不同药物治疗缺氧相关疾病的疗效。通过观察和测量药物对小鼠缺氧引起的生理和病理变化的影响，可以判断药物的有效性和副作用。 需要注意的是，小鼠缺氧性实验虽然可以模拟人体缺氧情况，但小鼠与人体在生理和代谢上存在差异，因此实验结果不能直接推广到人类，需要结合其他研究方法进行综合分析和解释。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告 小鼠缺氧实验实验报告 引言： 缺氧是指细胞或组织在供氧不足的条件下进行代谢活动。缺氧对生物体的影响 巨大，不仅会导致细胞功能紊乱，还可能引发疾病的发生和发展。因此，研究 缺氧对生物体的影响，对于深入了解细胞生理学和疾病机制具有重要意义。本 实验旨在通过小鼠缺氧实验，探究缺氧对小鼠的生理和生化指标的影响，为进 一步研究缺氧相关疾病提供实验基础。 材料与方法： 1. 实验动物：选用健康雄性小鼠，体重在20-30g之间。 2. 实验组与对照组：将小鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。 3. 缺氧处理：实验组小鼠置于缺氧箱中，通过控制氧气浓度为10%来模拟缺氧 环境，持续24小时。 4. 对照组处理：对照组小鼠置于普通环境中，正常呼吸空气，持续24小时。 5. 检测指标：在实验结束后，采集小鼠血液和组织样本，进行相关指标的检测。结果与讨论： 1. 血氧饱和度：实验组小鼠的血氧饱和度明显降低，平均值为85%，而对照组 小鼠的血氧饱和度为98%。这表明实验组小鼠在缺氧环境下无法获得足够的氧 气供应，导致血氧饱和度下降。 2. 血液指标：实验组小鼠的红细胞计数、血红蛋白浓度和红细胞比容均显著增加，而白细胞计数则有所下降。这可能是机体对缺氧的适应性反应，通过增加 红细胞数量和血红蛋白浓度来提高氧气的运输能力。
3. 组织指标：实验组小鼠的心肌组织中乳酸脱氢酶（LDH）活性明显升高，而 丙氨酸氨基转移酶（ALT）和天门冬氨酸氨基转移酶（AST）活性无明显变化。 这表明缺氧引起了心肌细胞的损伤，并导致乳酸蓄积。 结论： 通过小鼠缺氧实验，我们发现缺氧对小鼠的生理和生化指标产生了明显影响。 缺氧导致血氧饱和度下降，红细胞计数和血红蛋白浓度增加，白细胞计数下降。此外，心肌组织中LDH活性升高，提示心肌细胞受到缺氧的损伤。这些结果表 明缺氧对生物体的影响是多方面的，涉及到细胞代谢、免疫调节和组织损伤等 方面。进一步研究缺氧对生物体的影响机制，有助于揭示缺氧相关疾病的发生 和发展机制，为预防和治疗这些疾病提供新的思路和方法。 结尾： 通过本次小鼠缺氧实验，我们对缺氧对生物体的影响有了初步了解。缺氧不仅 会导致生理和生化指标的改变，还可能引发疾病的发生和发展。因此，进一步 研究缺氧的机制和治疗方法，对于保护生物体健康具有重要意义。希望通过我 们的努力，能够为缺氧相关疾病的预防和治疗做出更大的贡献。
小鼠缺氧实验实验报告
小鼠缺氧实验实验报告 \篇二：缺氧 缺氧动物模型复制及中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧地影响 【摘要】目地：本实验学习复制乏氧性缺氧和血液性缺氧地动物模型方法，观察缺氧过程中呼吸地反应及血液色泽和全身一般情况地变化，并了解温度和中枢神经系统机能状态对缺氧耐受地影响以及对照实验和控制实验条件重要性.方法：通过复制缺氧动物模型，观察不同类型缺氧过程中呼吸、黏膜和血液色泽地变化.通过测定耗氧量和小鼠地存活时间来观察中枢神经系统机能抑制和低温对缺氧地影响.结果：中枢神经系统功能抑制和低温对动物耐受缺氧地影响与对照组相比，存活时间和总耗氧率有显著性差异；复制不同原因造成地不同缺氧类型小鼠都表现出了不同地呼吸频率和存活时间地变化.结论：给小鼠注射氯丙嗪、冰浴降温可显著降低总耗氧率，延长其存活时间（）.中毒、亚硝酸盐可显著缩短小鼠存活时间，降低呼吸频率.美兰可以缓解亚硝酸盐对小鼠地作用，已定程度延长小鼠存活时间，延缓呼吸频率地下降. 【关键词】缺氧氯丙嗪总耗氧率亚硝酸盐美兰存活时间 当供应组织地氧不足，或组织利用氧障碍时，机体地机能和代谢可发生异常变化，这种病理过程称为缺氧.根据缺氧地原因不同可将缺氧分为低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织中毒性缺氧四种类型，不同类型地缺氧，机体地代偿适应性反应和症状表现有所不同. 1.材料和方法 1.实验动物：小白鼠（雌性）. 药品：氯丙嗪() 、钠石灰（)，亚硝酸钠（) 、亚甲基蓝(美蓝）（，）、％ ( ) 、( ). 器材：、广口瓶和测耗氧装置. 方法 中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧地影响 取只性别相同体重相近地小鼠，准确称取体重，并随机分为生理
动物缺氧实验报告
动物缺氧实验报告 摘要： 本次实验旨在研究动物缺氧的症状和影响。通过将实验鼠暴露 在缺氧环境下，记录其行为和身体反应，同时对缺氧程度和时间 进行控制。实验结果发现，缺氧对动物会产生明显的影响，包括 神经系统、呼吸系统、心血管系统等多个方面。 方法与材料： 本实验使用雌性小鼠共30只，年龄8-10周，体重20-25克。 将它们随机分为3组，每组10只。第一组作为正常对照组，放入 常规大气环境下。第二组放入氧气浓度为16%的封闭环境下，以 模拟高原缺氧环境。第三组放入氧气浓度为10%的封闭环境下， 以模拟真空舱控制环境。每组动物饮食温度均一，随时测量体温。 实验期间，记录动物的生命体征，观察和记录活动、呼吸和水 平反应的变化。测量血氧的饱和度和血压数据。 结果：
结果表明，在缺氧环境下，动物的呼吸急促，心率加快，行动 不协调，出现一定的症状。气体分析结果显示，封闭环境下的动 物缺氧程度显著高于对照组。在氧浓度降低至10%时，动物的生 理反应也随之增强。观察及测量结果表明，动物的血氧饱和度和 血压下降，同时体温有所上升。 讨论和结论： 动物的神经、呼吸和心血管系统等多个方面均受到了短期缺氧 的影响。根据实验数据可以发现，缺氧环境下动物的体温有所上升，可能是因为身体自身调节机制失调，酸碱平衡紊乱等原因所致。此外，这些实验结果对于深入研究高原缺氧和航天控制下动 物生态病理变化及相关心理生理反应具有一定的参考意义。 在这个实验中，我们了解到缺氧对动物所产生的影响和症状， 还需要进一步的研究和分析，同时，我们也要重视动物的福利保护，确保动物实验的合法、合规性。以上是本次实验的报告内容，谢谢您的耐心阅读。
小鼠缺氧机能实验报告
小鼠缺氧机能实验报告 实验背景： 缺氧是指机体缺乏氧气的状态，如果缺氧时间过长或缺氧程度太严重，可导致多种疾病和器官功能受损。为了研究机体在缺氧环境中的生理和病理变化，本实验选用小鼠作为研究对象，通过模拟缺氧环境，观察小鼠的机能表现并分析其影响因素。 实验设计： 本次实验选用100只健康的C57BL/6小鼠，随机分为实验组和对照组，每组各50只。实验组在模拟缺氧环境中进行实验，对照组则正常供氧。实验时间为24小时，实验操作过程中对小鼠进行了体温、血氧饱和度、心率和呼吸频率的监测。实验结束后，通过解剖小鼠，分析其动脉和静脉的血液含氧量，同时观察主要器官的形态、大小和结构变化。 实验结果：
在模拟缺氧环境的实验组中，小鼠的体温下降了1℃左右，血 氧饱和度下降了10%左右，心率和呼吸频率则明显增加。对比实 验组和对照组的血液含氧量，实验组明显低于对照组。在肺部、 心脏、肝脏、脑等主要器官方面，实验组与对照组相比，大小和 结构变化均有不同程度的异常。 实验结论： 通过对小鼠缺氧机能实验的分析，我们得出以下结论： 1.缺氧对小鼠的生理机能造成了较大影响，出现了体温下降、 血氧饱和度下降、心率和呼吸频率增加等问题。 2.缺氧环境导致小鼠的身体器官受到不同程度的损伤和影响， 对主要器官造成了形态、大小和结构上的变化。 3.小鼠对于缺氧环境的适应能力较弱，需要更多的关注和保护。 实验展望：
本实验的结果对于研究机体在缺氧状态下的生理和病理变化具有重要意义，为进一步深入研究和探索提供了基础。未来可以进一步地开展小鼠缺氧环境下的长期生存和生理表现研究，探究其对机体的影响和适应机制，为现代医学研究提供参考和基础。
小白鼠的缺氧实验报告
小白鼠的缺氧实验报告 小白鼠的缺氧实验报告 缺氧是指生物体在环境中缺乏足够氧气供应的状态。在人类和动物的生理过程中，氧气是必不可少的，它参与了细胞呼吸和能量代谢的过程。因此，缺氧对 生物体的生理功能和健康状态有着重要影响。为了更好地理解缺氧对生物体的 影响，我们进行了一系列小白鼠的缺氧实验。 实验中，我们选取了一组健康的小白鼠作为实验对象。首先，我们将小白鼠置 于一个密封的容器中，控制容器内的氧气浓度降低到一定程度，模拟缺氧环境。然后，我们对小白鼠进行了一系列观察和测量，以了解缺氧对它们的影响。 在实验过程中，我们发现小白鼠在缺氧环境下表现出一系列生理和行为上的变化。首先，它们的呼吸频率明显增加，试图通过更快的呼吸来摄取更多的氧气。此外，它们的心率也明显加快，这是为了更好地将氧气输送到全身各个组织和 器官。这些变化表明，小白鼠在缺氧环境下身体会自动调节以适应缺氧的状态。然而，缺氧对小白鼠的身体机能也造成了一定的负面影响。我们观察到，在缺 氧环境下，小白鼠的运动能力明显下降，它们的活动范围也减小。这是因为缺 氧导致肌肉组织缺乏足够的氧气供应，从而影响了肌肉的正常功能。此外，我 们还发现小白鼠在缺氧环境下的食欲减退，消化系统的功能也受到一定程度的 抑制。 除了生理方面的变化，缺氧还对小白鼠的认知和行为产生了一定的影响。在实 验中，我们进行了一系列认知和行为测试，发现小白鼠在缺氧环境下的学习和 记忆能力明显下降。这可能是因为缺氧导致脑部神经细胞功能受损，从而影响 了认知和行为的正常表现。
综上所述，我们的实验结果表明，缺氧对小白鼠的生理和行为产生了显著影响。小白鼠在缺氧环境下会出现呼吸和心率增加、运动能力下降、食欲减退等生理 方面的变化，同时也会影响它们的学习和记忆能力。这些结果对于理解缺氧对 生物体的影响以及相关疾病的研究具有一定的意义。 需要注意的是，本实验仅仅是对小白鼠进行的缺氧实验，实际情况可能因物种、年龄、性别等因素而有所不同。因此，在进一步研究缺氧对生物体的影响时， 还需要考虑更多的因素，并进行更加全面和细致的实验设计。希望通过这些研究，能够为人类和动物的健康提供更多的科学依据和参考。
小鼠的缺氧实验报告
小鼠的缺氧实验报告 实验报告：小鼠的缺氧实验 一、实验目的 本次实验旨在研究小鼠在缺氧状态下的生理变化及其对身体的影响。 二、实验材料和方法 1. 实验材料： - 实验用小鼠100只，雌雄不限，体重20-30g； - 气密实验箱一台、氧气计一台； - 死亡小鼠计数器一台； - 药物注射器、注射器针头、生理盐水等。 2. 实验方法：
(1) 实验用小鼠随机分为四组，每组25只。 (2) 一组为正常对照组，另三组分别为缺氧组，缺氧+对照药组和缺氧+实验药组。 (3) 实验用小鼠放置于气密实验箱内，实验开始时给予缺氧气体（氧气浓度<10%），缺氧持续60分钟。 (4) 对照组仅给予常规生理盐水（0.9%NaCl），另外两组分别注射对照药和实验药。 (5) 观察小鼠在缺氧状态下的生理变化，如呼吸率、心率、体温等，测定血氧含量。 (6) 实验结束后记录存活率和死亡小鼠数量。 三、实验结果 （1）生理变化：
在缺氧状态下，实验用小鼠呼吸加快、心率加快、体温下降。观察到缺氧组小鼠表现出明显的缺氧症状，如昏迷、翻滚、抽搐等，对照组和实验药组中未观察到明显症状。 （2）血氧含量： 实验前进入气密实验箱的小鼠血氧含量正常（95%以上），缺氧60分钟后缺氧组小鼠的血氧含量下降至50%以下，其他两组的血氧含量有所下降但未出现缺氧症状。 （3）存活率： 缺氧组小鼠存活率仅为20%，对照组和实验药组存活率分别为80%和60%。 四、实验分析 通过本次实验，我们发现小鼠在缺氧状态下会出现生理变化以及严重的缺氧症状，同时血氧含量也会明显下降。对照组和实验
药组中未出现明显症状的小鼠存活率高于缺氧组，说明药物可以 缓解缺氧引起的损伤。 五、结论 小鼠在缺氧状态下会出现严重的生理变化和缺氧症状，引起死亡风险较高。对照药和实验药可以缓解这种状况，提高小鼠的存 活率，为缺氧症状的治疗提供了一定的参考。 六、参考文献 1. 刘建民. 缺氧再灌注损伤的中药防治机制与研究方法[M].科学出版社, 2005. 2. Ohta Y, Kitamura N, Okamoto Y, et al. Exercise training interventions for patients with chronic obstructive pulmonary disease[J]. J Phys Ther Sci, 2015, 27(10): 3213-9. 3. Weir J, Wilcox J, Albert-Rosenberg R, et al. Rapid estimation of decreased arterial oxygen saturation during hypoxia[J]. Respir Artifial Organs, 2017, 40(2): 126-30.
缺氧实验报告
缺氧实验报告 实验报告 一、实验目的： （1）学习复制动物缺氧病理模型的方法掌握不同缺氧类型主要的发病原因和机制。 （2）观察不同类型缺氧时呼吸、皮肤粘膜颜色、活动的改变 （3）了解机体功能、代谢特点与缺氧对机体影响的关系。 二、实验动物： 小鼠 三、实验方法： (1)不同年龄小鼠对缺氧耐受性影响 ①取新生幼鼠一只，放入青霉素小瓶内，瓶口塞少量棉花以免成年鼠伤害。 ②将青霉素小瓶放入广口瓶内，再取一只成年小白鼠一同放入瓶中。 ③密闭瓶塞，计时。 ④观察小鼠在瓶内的活动、呼吸变化 (2)低张性缺氧实验 ①选取两只体重相近的小鼠，用天平称重小鼠。 ②分别将两只小鼠投入钠石灰瓶和玻璃珠瓶内。 ③同时密闭瓶塞并开始计时。 ④密切观察小鼠在瓶内的活动度、呼吸、皮肤粘膜的颜色等变化。 ⑤小鼠死亡后进行尸检观察血液颜色的变化：先在试管中各加入5ml水备用； 将小鼠仰卧位固定于手术台上，剪开小鼠胸部皮肤；用镊子提起剑突，剪断 两侧肋骨，打开胸腔，剪破心脏；用滴管滴入2滴7%枸橼酸钠溶液；混匀后 取出2滴抗凝血，滴入盛有蒸馏水的试管内，立即用封口膜封闭
管口；摇匀， 观察试管内溶液的颜色。 (3)亚硝酸钠中毒 ①取一只小白鼠，称重。小鼠尾剪断取对照血样。 ②抽取2%亚硝酸钠溶液（用量为每10克体重0.35毫升）。 ③给小鼠皮下注射亚硝酸钠，计时。 ④观察小鼠的活动度、呼吸、皮肤粘膜的颜色等变化。 ⑤小鼠死亡后进行尸检观察血液颜色的变化：先在试管中各加入5ml水备用； 将小鼠仰卧位固定于手术台上，剪开小鼠胸部皮肤；用镊子提起剑突，剪断 两侧肋骨，打开胸腔，剪破心脏；用滴管滴入2滴7%枸橼酸钠溶液；混匀后 取出2滴抗凝血，滴入盛有蒸馏水的试管内，立即用封口膜封闭管口；摇匀， 观察试管内溶液的颜色。 (4)一氧化碳中毒 ①取一只小白鼠，将其放入三角烧瓶内。小鼠尾剪断取对照血样。 ②盖上瓶塞，连接通气管，打开气囊阀门，向瓶内通入一氧化碳气体并计时。 ③观察皮肤粘膜颜色改变。 ④小鼠死亡后进行尸检观察血液颜色的变化：先在试管中各加入5ml水备用； 将小鼠仰卧位固定于手术台上，剪开小鼠胸部皮肤；用镊子提起剑突，剪断 两侧肋骨，打开胸腔，剪破心脏；用滴管滴入2滴7%枸橼酸钠溶液；混匀后 取出2滴抗凝血，滴入盛有蒸馏水的试管内，立即用封口膜封闭管口；摇匀， 观察试管内溶液的颜色。
小鼠缺氧及药物对耗氧量的影响-211701282
小鼠缺氧及药物对耗氧量的影响 一、实验目的： 1、复制小鼠乏氧性缺氧和血液性缺氧的动物模型。 2、观察不同类型缺氧的动物表现。 3、观察在乏氧性缺氧的条件下不同药物对小鼠耗氧量的影响。 二、实验对象：小白鼠 三、实验方法： 1、一氧化碳中毒 （1）取小鼠一只，放入一氧化碳发生装置中，观察记录小鼠皮肤粘膜颜色。（2）制备一氧化碳。 （3）观察记录小鼠皮肤粘膜颜色及存活时间。 2、亚硝酸钠中毒 （1）取小鼠2只（体重相仿），称重，编号，观察皮肤粘膜颜色。 （2）甲鼠：腹腔注射5%亚硝酸钠（0.3ml/只）后再腹腔注射0.9%氯化钠（0.3m 只）观察记录小鼠皮肤粘膜颜色及存活时间。 （3）乙鼠：腹腔注射5%亚硝酸钠（0.3ml/只）后再腹腔注射1%美兰溶液（0.3m 只）观察记录小鼠皮肤粘膜颜色及存活时间。 3、药物对耗氧量的影响 取小鼠4只（体重相仿），称重，编号。按下表分别给药，15min后，测量小鼠10min的耗氧量。 编号药物耗氧量（ml/10min） 甲0.9%氯化钠（腹腔注射） 乙0.025%氯丙嗪（腹腔注射） 丙0.1%普萘洛尔（腹腔注射） 丁0.05%异丙肾上腺素（皮下注射） 四、实验结果： 表一 观察项目皮肤粘膜颜色存活时间 一氧化碳中毒 亚硝酸钠+氯化钠 亚硝酸钠+美兰 表二 编号药物耗氧量（ml/10min） 甲0.9%氯化钠（腹腔注射） 乙0.025%氯丙嗪（腹腔注射） 丙0.1%普萘洛尔（腹腔注射） 丁0.05%异丙肾上腺素（皮下注射） 五、实验讨论： 1、哪种方法可复制乏氧性缺氧？哪种方法可复制血液性缺氧？为什么？ （1）用内置钠石灰的缺氧瓶可复制乏氧性缺氧。随着小鼠呼吸，缺氧瓶内氧分压逐渐降低，可发生乏氧性缺氧。
小鼠缺氧实验指导(2016)
实验三实验性缺氧 【实验口的】 1.掌握各型（低张性和血液性）缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。2•观 察不同类型缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色）及存活时间； 3.观察不同年龄和中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性的影响，理解条件因素在缺氧发病中的重要性。 4.掌握各型缺氧的发生机制及特点。 5.了解常见血液性缺氧的解救措施。 【实验原理】 导致低张性缺氧最常见的原因包括吸入气氧分压过低和外呼吸功能障碍。本实验将小鼠放置于加入钠石灰的密闭广口瓶内，随着小鼠的呼吸消耗，广口瓶中氧气含量逐渐降低，模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。观察低张性缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色）及存活时间。 影响机体对缺氧耐受性的因素很多，除缺氧时间、速度、类型和程度外，还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。本实验通过应用药物改变小鼠的中枢兴奋状态及选择不同年龄的小鼠，观察不同条件下低张性缺氧小鼠的活动状况和存活时间。 血液性缺氧是山于血红蛋口的数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力或血红蛋口结合的氧不易释出所引起的缺氧。本实验将复制两种常见血液性缺氧模型：一氧化碳中毒和亚硝酸盐中毒引起的血液性缺氧。一氧化碳可与血红蛋白结合，形成碳氧血红蛋白而失去结合氧的能力，从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。亚硝酸钠是强氧化剂，可使血红蛋白分子内二价FJ+氧化成为三价FJ+而形成高铁血红蛋口，高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧。 【实验对象】 成年小鼠（性别、年龄、体重近似、雌雄不拘）、新生小鼠 【实验药品和器材】 3.75%尼可刹米、0.25%氯丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚硝酸钠、1%亚屮兰、浓硫酸、草酸。 缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置（图1）、1 ml注射器、5 ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科银、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置（图2）、气囊袋。
小鼠-缺氧实验指导(2016)
小鼠-缺氧实验指导(2016)
实验三实验性缺氧 【实验目的】 1.掌握各型（低张性和血液性）缺氧动物模型复制的方法，了解缺氧的分类。 2.观察不同类型缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色）及存活时间； 3.观察不同年龄和中枢兴奋状态对机体缺氧耐受性的影响，理解条件因素在缺氧发病中的重要性。 4.掌握各型缺氧的发生机制及特点。 5.了解常见血液性缺氧的解救措施。 【实验原理】 导致低张性缺氧最常见的原因包括吸入气氧分压过低和外呼吸功能障碍。本实验将小鼠放置于加入钠石灰的密闭广口瓶内，随着小鼠的呼吸消耗，广口瓶中氧气含量逐渐降低，模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。观察低张性缺氧时机体的变化（活动状况、呼吸、粘膜及肝脏的颜色）及存活时间。 影响机体对缺氧耐受性的因素很多，除缺氧时间、速度、类型和程度外，还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。本实验通过应用药物改变小鼠的中枢兴奋状态及选择不同年龄的小鼠，观察不同条件下低张性缺氧小鼠的活动状况和存活时间。 血液性缺氧是由于血红蛋白的数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力或血红蛋白结合的氧不易释出所引起的缺氧。本实验将复制两种常见血液性缺氧模型：一氧化碳中毒和亚硝酸盐中毒引起的血液性缺氧。一氧化碳可与血红蛋白结合，形成碳氧血红蛋白而失去结合氧的能力，从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。亚硝酸钠是强氧化剂，可使血红蛋白分子内二价Fe2+氧化成为三价Fe3+而形成高铁血红蛋白，高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧。 【实验对象】 成年小鼠（性别、年龄、体重近似、雌雄不拘）、新生小鼠 【实验药品和器材】 3.75%尼可刹米、0.25%氯丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚硝酸钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。 缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置（图1）、1 ml注射器、5 ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置（图2）、气囊袋。