(优选)不同类型的缺氧对小鼠的影响实验课件
不同类型的缺氧对小鼠的影响实验ppt课件
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周五上午本室) (Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８ 平均值 (X± SD)
肾上腺素 ＋酚妥拉明组
17.50
17.93 19.50 16.74 20.00
缺氧耐受性的影响因素等打下基础。 学习掌握小鼠实验操作的基本方法。
15
二、实验项目
乏氧性缺氧 血液性缺氧
✓ CO中毒性缺氧 ✓ NaNO2中毒性缺氧 循环性缺氧 组织性缺氧 ✓ KCN中毒
16
三、实验材料 缺氧瓶和钠石灰 一氧化碳生成装置及相关试剂（浓硫酸、甲酸） 两种浓度亚硝酸钠溶液：5% 和 1% 10%硫代硫酸钠溶液、0.1%氰化钾溶液 生理盐水 天平、1ml注射器、小鼠手术用器械
肾上腺素 ＋酚妥拉明组
１８.４６
１３.３３ １３.２３ ８.００ ９.５８ ２１.３０
１２.４０
１３.４８ 13.72 ±4.34
肾上腺素+生理盐水组
１８.３３ ２４.２９ １１.８５ １０.４５ １７.１０ １７.８２ １７.２２ １６.２５
16.66 ±4.22
生理盐水组
１１.２５ １２.６３ １４.６４ ８.３３ １１.２０ １９.６２ ８.７０ １４.５
5
肾上腺素组+NS
6
肾上腺素+酚妥拉明
7
生理盐水
8
9
10
11
心 率 （ 次 /m in ）
900
Adr
800
﹡
Adr+Atrop
小白鼠实验性缺氧.pptx
（1）准备一氧化碳发生装置
将1只小鼠放入广口瓶中，观
察其正常表现后与一氧化碳发生装置连接
用刻度吸管取甲酸3
ml放于试管内，沿试管壁缓慢加入浓硫酸2 ml，塞紧瓶口（间断加热）
观察各项指标。
（2）当小白鼠出现中毒表现（痉挛、跌倒）时，立即关闭CO发生
装置，迅速将小白鼠放入通风处进行抢救。待小白鼠恢复正常后，再
2019-11-12
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2019-11-12
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2019-11-12
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分别做
红（甲）、 蓝（乙）、 无（丙）标记
分别腹腔注射 1%咖啡因、 2%乌拉坦、生理盐水
（注射剂量：0.1ml/10g）
（2）安静15分钟，放入广口瓶中（已加钠石灰少许） 观察记录小鼠
缺氧前呼吸次数、深度和粘膜颜色等指标 塞紧瓶塞，开始记录存 活时间，并每 3min重复观察其他指标1次，如有其他变化，随时记录， 直至动物死亡。
小白鼠实验性缺氧
哈尔滨医科大学机能实验学中心
2019-11-12
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1
病例
某患者，女，45岁，误将亚硝酸钠白色粉末晶体当做 食盐食入约1 g，出现呕吐、腹痛、呼吸困难，抽搐、昏迷， 呼吸频率加快且幅度显著增加。心率90次/分，律不齐，各瓣膜 听诊区闻病理性杂音，电图显示：窦性心动过缓、频发室性早搏、 完全性右束支传道阻滞，出现室颤。皮肤粘膜的颜色呈咖啡色， 血液颜色变为暗红色，动脉血氧分压PaO2为6.3kPa， 动脉血氧容量CO2max为28.8 mmol/L，动脉血氧含量CaO2为 19.93 mmol/L，动脉氧饱和度SO2为55%。 临床诊断为严重亚硝酸盐中毒性缺氧。对此患者进行紧急抢救， 给予美兰（亚甲蓝）20mg以50％葡萄糖40ml稀释后静脉缓注， 同时予高流量吸氧，大剂量维生素C，ATP，辅酶A，细胞色素C， 输葡萄糖液，速尿静脉注射，抢救成功。
缺氧鼠实验报告
缺氧是机体在氧气供应不足或组织利用氧气障碍时，出现的一系列生理、生化反应。
缺氧可以由多种原因引起，如血液携氧能力下降、呼吸系统功能障碍、组织利用氧气障碍等。
本研究旨在通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，探讨缺氧对机体生理、生化及形态学方面的变化。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，了解缺氧对小鼠的影响。
2. 观察缺氧对小鼠呼吸、循环、神经系统及形态学方面的变化。
3. 分析缺氧对小鼠生存时间的影响，探讨缺氧耐受性。
三、实验材料与方法1. 实验动物：健康昆明小白鼠20只，体重20-25g。
2. 实验设备：缺氧瓶、气体分析仪、呼吸机、显微镜、电子天平等。
3. 实验分组：将20只小鼠随机分为4组，每组5只，分别为正常对照组、低张性缺氧组、血液性缺氧组、组织中毒性缺氧组。
4. 实验方法：（1）低张性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，使氧分压降低至10mmHg，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（2）血液性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，同时向瓶内注入10%氰化钠溶液，使血液中氧合血红蛋白含量降低，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（3）组织中毒性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，同时向瓶内注入10%亚硝酸钠溶液，使组织利用氧气障碍，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（4）正常对照组：将小鼠放入正常环境中，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
5. 数据采集与处理：记录每组小鼠的生存时间、呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标，并观察小鼠的神经系统及形态学变化。
1. 低张性缺氧组：小鼠生存时间为（60±5）min，呼吸频率为（80±10）次/min，心率降低，血压降低，血氧饱和度降低，出现呼吸困难、精神萎靡、四肢无力等症状。
2. 血液性缺氧组：小鼠生存时间为（30±5）min，呼吸频率为（100±15）次/min，心率降低，血压降低，血氧饱和度降低，出现呼吸急促、口唇发绀、抽搐等症状。
不同类型缺氧小鼠观察课件
目录
• 引言 • 缺氧小鼠模型的建立 • 缺氧小鼠的生理变化 • 缺氧小鼠的组织病理学改变
目录
• 缺氧小鼠的基因表达变化 • 缺氧小鼠的治疗和干预措施 • 结论与展望
01
引言
缺氧的背景和重要性
01
缺氧是影响人类健康的重要因素 之一，特别是在高原、潜水、航 空等环境下，缺氧对人体的影响 更加显著。
血管舒缩功能异常
缺氧会影响小鼠的血管舒缩功能，导致血液循环 出现障碍。
神经系统的变化
意识状态改变
缺氧会导致小鼠的意识状态发生改变，可能出现昏迷或惊厥。
运动协调性下降
缺氧会导致小鼠的运动协调性下降，出现肢体瘫痪或颤抖等症状。
脑组织损伤
长时间缺氧会导致小鼠的脑组织损伤，影响其神经功能。
04
缺氧小鼠的组织病理学改 变
药物治疗
药物治疗是针对缺氧小鼠进行药 物治疗的方法，通过药物的作用
改善缺氧状态。
常用的药物包括血管扩张剂、抗 凝剂、抗炎药等，需要根据不同
类型的缺氧选择合适的药物。
药物治疗需要注意药物的剂量和 给药方式，避免对小鼠造成不良
反应。
其他干预措施
其他干预措施包括机械通气、吸 氧等，可以改善缺氧小鼠的呼吸
特点
模拟急性缺氧情况，如高 山、潜水等，时间较短， 对小鼠的生理影响较大。
慢性缺氧小鼠模型
原理
通过长时间逐渐降低氧气 浓度，模拟慢性缺氧状态。
方法
将小鼠置于低氧舱内，逐 渐降低氧气浓度至10%以 下，并保持数周至数月。
特点
模拟慢性缺氧情况，如高 原、慢性阻塞性肺疾病等， 时间较长，对小鼠的生理 影响较小。
02
缺氧对人体的生理功能和代谢会 产生影响，严重时会导致生命危 险。因此，研究缺氧对人体的影 响具有重要意义。
不同类型的缺氧实验报告
3)但是，从我们组得出的数据来看，小鼠的呼吸频率一直高于正常水平，呼吸加快，出现该误差的原因可能是因为：①把小鼠放入广口瓶时，小鼠受到了惊吓；②取作为正常对照的小鼠呼吸频率数值并不是我们用来做实验的该小鼠的数值，因此可能实验小鼠的本身正常的呼吸频率就是较快的。
由于血红蛋白质或量的变化而引起的缺氧，属于血液性缺氧。经注射亚甲蓝抢救后，小鼠呼吸先变快后变慢，临近死亡时呼吸频率变慢，动作迟缓，皮肤黏膜呈棕褐色。注射生理盐水抢救后，小鼠呼吸先变慢后变快，濒临死亡时呼吸频率突然变快，皮肤黏膜呈棕褐色。
3)由于吸入气氧分压逐渐减低，外周毛细血管中脱氧血红蛋白浓度增加，当其含量超过一定量时，小鼠皮肤黏膜呈现脱氧血红蛋白的暗红甚至紫绀色。
（3）一氧化碳中毒性缺氧
1)一氧化碳中毒性缺氧的小鼠在总体上来看都是狂躁好动，反应剧烈，呼吸频率变快后又逐渐减慢直至死亡，死亡时小鼠的眼睛黏膜、鼻子、尾巴、耳朵均呈樱桃红色，四肢僵直。
2)小鼠呼吸频率一开始从正常变慢可能是由于缺氧导致机体代谢降低，能量不足，所以活动缓慢；呼吸频率变快是பைடு நூலகம்死前一种类似“回光返照”的现象，血氧分压降低到一定程度可刺激化学感受器导致呼吸深快，这是机体进行的代偿性的活动，使功能暂时恢复正常；由于呼吸加强，呼吸肌所做的功和氧耗量增加，过度通气引起的呼吸性碱中毒可加重脑缺氧，因而呼吸中枢受到抑制而致呼吸减慢，小鼠临死前呼吸微弱，最后失代偿则小鼠缺氧而死亡。
因为一氧化碳中毒时，一氧化碳与氧气竞争与血红蛋白结合，一氧化碳与血红蛋白的亲和力为氧气的210倍，血红蛋白与一氧化碳结合后就不能与氧气结合，从而复制出一氧化碳中毒性缺氧的动物模型。
几种类型的小鼠缺氧实验 ppt课件
1. 存活时间，死 亡原因和机制
2. 血液颜色 3. 呼吸变化 4. FiO2变化
5. 年龄差异 6. 美蓝的作用 7. 实验一装置的
原理
（完）
氧浓度（％）
钠石灰瓶小鼠 玻璃珠瓶小鼠
时间 两瓶中氧浓度变化关系（模式图）
几种类型的小鼠缺氧实验
①结合速率= HB＋COHBCO= 1
HB＋O2 HBLeabharlann 2 10HB-Fe2+
＋
NaNO2
氧化
HB-Fe3+
＋
NaNO
－ 2
正常人MHB含量占HB总量的0.07~0.38%，相 当于0.03g%左右
NaNO2中毒时MHB含量占HB总量的10%以上， 相当于1.5g%以上
HB-Fe3+ ＋ 美蓝
还原
HB-Fe2+
几种类型的小鼠缺氧实验
Cyt aa3-Fe3+ ＋ CN－ → Cyt aa3-Fe3+-CN－
CO
NaNO2 +NS
NaNO2 +美蓝
KCN
成年
新生
存活时间 （min）
血液颜色
－－
呼吸变化
FiO2
(％)
－－ －－－－－－
几种类型的小鼠缺氧实验
1. 各组缺氧存活时间不同及死亡的原因和机 制是什么？
2. 各组血液颜色生成的原因；美蓝的作用是 什么？
3. 各组的呼吸变化有何不同，为什么？ 4. 实验一FiO2变化的原因、机制是什么？
几种类型的小 鼠缺氧实验
——几种类型的小鼠缺氧实验
几种类型的小鼠缺氧实验
通过在动物身上复制乏氧性、血 液性和组织中毒性等缺氧模型，观察 缺氧时动物的活动、呼吸、血液和粘 膜颜色等指标的改变以及动物的存活 时间，加深理解各类缺氧的发病原因 和机制。
小鼠耐缺氧实验报告
一、实验目的1. 研究不同因素对小鼠耐缺氧能力的影响。
2. 探讨缺氧对小鼠生理机能的影响。
3. 了解小鼠在缺氧环境下的生存策略。
二、实验原理本实验采用模拟缺氧环境的方法，通过观察小鼠在缺氧条件下的存活时间、生理指标变化等，评估小鼠的耐缺氧能力。
缺氧是指机体在氧气供应不足的情况下，导致细胞代谢障碍和功能受损的病理状态。
本实验通过模拟缺氧环境，研究不同因素对小鼠耐缺氧能力的影响，为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：昆明种小白鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 仪器：缺氧箱、电子天平、呼吸计数器、血压计、心电图机等。
3. 药品：生理盐水、1%咖啡因、0.25%氯丙嗪等。
四、实验方法1. 将小鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验组分为A、B、C三组，分别给予1%咖啡因、0.25%氯丙嗪和生理盐水。
3. 对照组给予生理盐水。
4. 将所有小鼠置于缺氧箱中，观察其在缺氧环境下的存活时间、生理指标变化等。
5. 记录每组小鼠的存活时间、呼吸频率、血压、心电图等数据。
五、实验结果1. 实验组小鼠在缺氧环境下的存活时间均显著高于对照组（P<0.05）。
2. 实验组小鼠的呼吸频率、血压和心电图均无明显变化。
3. 不同处理组之间，呼吸频率、血压和心电图无显著差异。
六、讨论1. 本实验结果表明，给予小鼠咖啡因和氯丙嗪可提高其耐缺氧能力。
这可能是因为咖啡因具有中枢兴奋作用，可提高小鼠的代谢水平，增加能量供应；而氯丙嗪具有中枢抑制作用，可降低小鼠的代谢水平，减少能量消耗。
2. 实验组小鼠在缺氧环境下的呼吸频率、血压和心电图无明显变化，说明小鼠在缺氧条件下具有一定的生理代偿能力。
3. 本实验结果表明，不同处理组之间，呼吸频率、血压和心电图无显著差异，说明咖啡因和氯丙嗪对小鼠耐缺氧能力的影响无显著差异。
七、结论1. 给予小鼠咖啡因和氯丙嗪可提高其耐缺氧能力。
2. 小鼠在缺氧条件下具有一定的生理代偿能力。
缺氧实验
急性重复缺氧与不同神经药物对小鼠缺氧耐受性的影响低张性缺氧（hypotonic hypoxia）指由 Pa O2 明显降低并导致组织供氧不足。
当 Pa O2 低于 8kPa （60mmHg）时，可直接导致CaO2和SaO2 明显降低，因此低张性缺氧也可以称为低张性低氧血症（ hypotonic hypoxemia ）。
2 血液性缺氧血液性缺氧（hemic hypoxia ）指Hb 量或质的改变，使CaO2减少或同时伴有氧合Hb 结合的氧不易释出所引起的组织缺氧。
由于Hb 数量减少引起的血液性缺氧，因其Pa O2 正常而CaO2减低，又称等张性缺氧（isotonic hypoxemia）3 循环性缺氧循环性缺氧（ circulatory hypoxia ）指组织血流量减少使组织氧供应减少所引起的缺氧，又称为低动力性缺氧（ hypokinetic hypoxia ）。
循环性缺氧还可以分为缺血性缺氧（ ischemic hypoxia ）和淤血性缺氧（ congestive hypoxia ）。
缺血性缺氧是由于动脉供血不足所致；淤血性缺氧是由于静脉回流受阻所致。
4 组织性缺氧组织性缺氧（histogenous hypoxia ）是指由于组织、细胞利用氧障碍所引起的缺氧。
缺氧时细胞的代谢和功能变化机体吸入氧，并通过血液运输到达组织，最终被细胞所感受和利用。
因此，缺氧的本质是细胞对低氧状态的一种反应和适应性改变。
当急性严重缺氧时细胞变化以线粒体能量代谢障碍为主（包括组织中毒性缺氧）；慢性轻度缺氧细胞以氧感受器的代偿性调节为主。
缺氧时器官的功能和代谢变化缺氧对器官的影响，取决于缺氧发生的程度、速度持续时间和机体的功能代谢状态。
慢性轻度缺氧主要引起器官代偿性反应；急性严重的缺氧，器官常出现代偿不全和功能障碍，甚至引起重要器官产生不可逆损伤，导致机体的死亡。
实验目的：研究缺氧耐受性的形成及其适应机制对临床医学、航天医学、运动医学均具有重要的理论和实际意义，过去研究发现，在高原上长期慢性缺氧能使机体的缺氧耐受性增强，而本实验的目的在于探讨短期急性重复缺氧对小鼠耐受性的影响。
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四、方法、步骤及观察指标
观察指标
每项实验前均要观察小白鼠在正常时的一般情 况、呼吸频率和深度、皮肤黏膜等的颜色。 （定量指标）
呼吸频率的观察方法：腹式呼吸。 （定量指标） 观察存活时间（min）
1. 乏氧性缺氧
将称量体重后小白鼠，取2只体重相同的 小白鼠先观察正常的呼吸和皮肤黏膜颜 色，再按0.2ml/10g体重的剂量向小鼠 腹腔注射实验试剂，即将其放入盛有定 量钠石灰的缺氧瓶内；
学习掌握小鼠实验操作的基本方法。
二、实验项目
乏氧性缺氧 血液性缺氧
✓ CO中毒性缺氧 ✓ NaNO2中毒性缺氧
循环性缺氧 组织性缺氧
✓ KCN中毒
三、实验材料
缺氧瓶和钠石灰 一氧化碳生成装置及相关试剂（浓硫酸、甲酸） 两种浓度亚硝酸钠溶液：5% 和 1% 10%硫代硫酸钠溶液、0.1%氰化钾溶液 生理盐水 天平、1ml注射器、小鼠手术用器械
肾上腺素+生理盐水组
１1.43 10.48 10.00 14.80 11.50 10.36 15.56
12.06 ±2.21
16.17 19.58 12.41 22.03 14.76 24.55 22.38
18.91 ±4.44
生理盐水组
9.09 10.00 10.36 11.85 12.38 11.25 9.58
H2SO4 HCOOH ——Δ-—→H2O+CO↑
观察呼吸变化、皮肤和黏 膜颜色；
记录存活时间。
3. NaNO2中毒性缺氧
取2只体重相近的小白鼠，观察正常表现。 将3支注射器内都抽好药物，腹腔内分别注射：
0.3ml 5%NaNO2 + 0.3ml 1% 美兰
0.3ml 5%NaNO2 + 0.3ml NS
然后塞紧瓶塞，记录时间，每隔5分钟重 复观察，直到动物死亡，记录并比较用 不同试剂后动物的存活时间及其差异。
NaOH •CaO
Wide-mouth bottle
2. CO中毒性缺氧
3ml methanoic acid (HCOOH) + 2ml concentrated sulfuric acid (H2SO4)
组别
n
X±s）
Adr+NS
8
16.8±51.1
Adr+xAt异r常o心p律次数（6源自x10.9±26.1﹡
Adr+Pu
6
Adr+Me
177.2±91.3﹡ 6
140.5±42.6﹡
﹡vs 肾上腺素与生理盐水合用组： P<0.01
缺氧
(P. 263)
14
一、实验目的
通过本实验，为学习和掌握缺氧的类型、 发病机制、机能代谢变化及缺氧耐受性 的影响因素等打下基础。
１2.00 １8.84 12.96 15.00 11.82 14.67 15.65 12.00
14.12 ±2.43
肾上腺素+生理盐水组
17.78 22.22 17.69 16.36 16.25 16.91 26.19 19.64
19.14 ±3.47
生理盐水组
10.00 9.58 12.22 10.50 8.75 10.00 11.54 9.09
肾上腺素
＋酚妥拉明组 １８.４６ １３.３３ １３.２３ ８.００ ９.５８ ２１.３０ １２.４０ １３.４８ 13.72 ±4.34
肾上腺素+生理盐水组
１８.３３ ２４.２９ １１.８５ １０.４５ １７.１０ １７.８２ １７.２２ １６.２５
16.66 ±4.22
生理盐水组
１１.２５ １２.６３ １４.６４ ８.３３ １１.２０ １９.６２ ８.７０ １４.５
10.64 ±1.22
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周五上午本室)
(Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８
平均值
( X ± SD)
肾上腺素
＋酚妥拉明组
17.50 17.93 19.50 16.74 20.00 20.43 11.00 11.30
16.80 ±3.71
肾上腺素+生理盐水组
23.75 20.91 15.61 20.40 18.50 26.11 15.91 18.64
20.00 ±3.64
生理盐水组
8.08 8.67 9.05 8.12 8.57 8.89 8.75 8.64
（优选）不同类型的 缺氧对小鼠的影响实
验课件
1
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周二本室)
(Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８
平均值
( X ± SD)
然后观察反应并记录动物存活时间。
机制:
Hb-Fe2+
NaNO2 Hb-Fe3+.OH 美兰
4. KCN中毒性缺氧
取2只体重相近的小鼠，称重，观察正常表现。 4支注射器内都抽好药物，腹腔内分别注射：
0.1%KCN （ 0.1ml /10g body weight） + 1% NaNO2 （ 0.1ml /10g body weight） + 10% Na2S2SO3 （ 0.1ml /10g body weight）
8.60 ±0.34
肾上腺素组+NS
肾上腺素+酚妥拉明
生理盐水
900
Adr
800
﹡
Adr+Atrop
﹡
700
心率（次/mi n）
600
500
400
300
200
100
0
前
1
2
3
4
5
给药前后时间（min）
图2 中毒剂量肾上腺素对小鼠心率的影响及大剂量阿托品 的干预作用( ﹡ VS 合用阿托品组：P<0.01)
12.61 ±3.67
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周三上午本室)
(Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８
平均值
( X ± SD)
肾上腺素
＋酚妥拉明组
10.21 ±1.18
表2.不同处理因素对小鼠肺系数的影响(周三下午本室)
(Table 2 Effect of different measures on the coefficient at the whole lab.）
鼠号
1 2 3 4 5 6 7 ８
平均值
( X ± SD)
肾上腺素
＋酚妥拉明组