Real time PCR 从原理到实验方法及数据分析

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RealtimePCR原理及其定量方法

RealtimePCR原理及其定量方法

定量PCR技术: 通过对PCR扩增反应中每一 个循环产物荧光信号的实 时检测从而实现对起始模 板定量及定性的分析
2、荧光定量PCR常用的三个概念
扩增曲线、阈值、CT值
plateau phase Liner phase
Exponential phase
Normalised reporter Fluorescence (Rn)
另一种思路
由于PCR反应体系中荧光物质的荧光强度与PCR产物的量成 正比,所以可以用荧光强度来代替PCR产物的量,同时考虑 荧光本底值,则:
Rn= RB+ X0(1+ Ex) Rs
总荧光信号强度=本底信号+分子数量×单位信号强度
Rn:第n个循环时的总信号 RB:本底 RS:单位信号强度 X0:起始DNA数目 Ex:PCR扩增效率
线性关系、扩增效率确认
相关系数(R2):大于0.98 标准曲线斜率: -3 到 -3.5 PCR扩增效率(Ex): 0.9到1.2
扩增效率
106 105 104 103 102 10
荧光强度---循环数曲线
初始模板量对数---C(T)循环数标准曲线
扩增效率理论值为1,即每增加一个循环PCR产物加倍。
实时荧光定量PCR原理和定量方法 一、荧光定量PCR的原理
在PCR反应体系中加入荧 光基团,利用荧光信号累积 实现了实时监测整个PCR进程, 对起始模板进行定量分析的 方法。
三个关键词: 实时,定量,荧光
1、定量与常规PCR的差别
常规PCR技术: 对 PCR 扩 增 反 应 的 终产物进行定量及 定性分析
非理想的PCR反应:
Xn=X0 ×(1+Ex)n
n:扩增循环数 X0:起始模板数量 Xn:第n次循环后扩增产物数量 Ex:PCR扩增效率

real-time PCR 数据分析

real-time PCR 数据分析

real-time PCR 数据分析无论所使用的real-time PCR是何种型号,正确的数据分析对于获得有效的实验结果都是至关重要的。

这里介绍有关real-time PCR数据分析的知识。

在讨论基本分析过程之前,先介绍如何设计一个好的实验。

如果你是自己设计的引物和探针,那有助于下一步的工作。

但是在有些情况下,人们使用出版文献上的序列会更方便。

记住,即便是出版物提供的序列也不能保证会得到优化的实验结果。

而且排版错误的可能性也需要考虑在内。

所以进入实验室之前使用BLAST对全部序列进行核实确保他们是正确的。

下订单前先检察引物和探针的序列和Tm值是实验设计的基本要求。

标准曲线是判断实验质量的重要手段。

使用一个已知的模板,PCR产物,合成的寡核苷酸或转录的RNA做个标准曲线能够确定PCR的效率,敏感性,动态范围和其他的参数。

建立标准曲线时使用OD260的模板样本。

模板的总量以DNA分子的数量来描述,把质量转化为DNA含量的公式如下:(质量(克)*阿伏伽德罗常数)每个碱基的平均质量*模板的长度。

例如,合成70-mer的单链DNA,样本质量为0.8*10ˆ-11gm。

代入公式得:(0.8*10ˆ-11*6.023*10ˆ23molecules/mole)330gm/mole/base*70 base。

如果使用双链的模板,则碱基的平均质量为660gm/mole/base。

标准曲线使用的模板含量从1*10ˆ7开始连续稀释7次每次稀释10倍,最终得到10个模板拷贝。

这样的浓度有助于得到最高的ΔRn和最低的Ct。

用Excel画曲线时以模板数量的对数值为X,Ct(cycle threshold)值为Y轴。

标准曲线的计算公式如下:y=mx+b。

y就是Ct,m是斜率,x=log10template amount,b=y-intercept。

用斜率计算出实验效率Efficiency【10ˆ(-1/斜率)】-1。

实验效率告诉我们PCR反应的执行情况。

RealtimePCR原理及应用

RealtimePCR原理及应用
特征:可以使用96孔板,样品量大,
也可以使用8连管
PCR扩增原理
Real-time PCR探针工作原理
谢 谢!
RealtimePCR原理及应用
提纲
实时荧光定量PCR原理
实时荧光定量PCR的定量方法
平台定量PCR仪器介绍
实时荧光定量PCR的定义
定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信
号累积实现了实时监测整个PCR进程,对起始模板进
行定量分析的方法
与普通PCR的区别
普通PCR技术:

探针完整,R所发射的荧光能量被Q基团吸收,无荧
光,R与Q分开,则发出荧光

Taq酶有5’→3’外切核酸酶活性,可水解探针

TaqMan探针法工作原理
TaqMan探针法工作原理



每产生一条DNA链,就切断一条探针
每切断一条探针,就产生一个单位信号
信号强度与结合探针的DNA分子数成正比
TaqMan探针法的优缺点
优点:1、对目标序列的高特异性
2、引物设计相对简单
3、重复性比较好
缺点:1、只适合一个特定的目标
2、价格昂贵
如何对未知拷贝数的模板进行定量
平台PCR仪介绍
Rotor-Gene 6000
特征:36孔(0.2mlPCR管)或者72
孔(特殊0.1mlPCR管),离心式
检测
平台PCR仪介绍
Applied Biosystems 7500
线性图谱Βιβλιοθήκη 一些主要概念什么是基线?
基线就是扩增曲线中的水平部分
线性图谱
对数图谱
一些主要概念
荧光阈值:是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,

real time RT-PCR

real time RT-PCR

Molecular Beacons
发夹型杂交探针
Molecular Beacons
原理:荧光谐振能量传递( 原理:荧光谐振能量传递(FRET) )

环与目标序列完全配对

荧光素
茎由互补配对的序列组成
淬灭剂
Molecular Beacons 优点
对目标序列有很高的特异性 ——SNP检测最灵敏试剂之一 SNP检测最灵敏试剂之一 SNP 荧光背景低
朱红 空白 87.3
HC 、HSC 2d 1 HSC 4d 、 HSC 2d 2 88.3
63度20s 度
HSC 2d 1 、 HSC 4d 88.3
65度20s 度
标准曲线制备
体外转录RNA 体外转录 体外合成ssDNA 体外合成 纯化的质粒dsDNA 纯化的质粒 cDNA PCR产物 产物 将待测基因的PCR产物用胶回收试剂盒进 将待测基因的 产物用胶回收试剂盒进 行纯化,然后按10倍梯度稀释即可得到标 行纯化,然后按 倍梯度稀释即可得到标 准品,用于做标准曲线。 准品,用于做标准曲线。
Molecular Beacons 缺点
设计困难
只能用于一个特定的目标 价格较高
TaqMan
TaqMan
荧光素 淬灭剂
探针
水解型杂交探针
TaqMan
目标特异性探针 5’ 为荧光素, 3’ 为淬灭剂
5’ 荧光素 3’淬灭剂
与目标序列互补
TaqMan
R F Q R
工作原理
报告基团被淬灭
R 报告基团 Q 淬灭基团
Ct值的概念 Ct值的概念
Ct值的定义是 值的定义是PCR扩增过程中 , 扩增产物 扩增过程中, 值的定义是 扩增过程中 (荧光信号)到达阈值时(进入指数增长期) 荧光信号) 荧光信号 到达阈值时(进入指数增长期) 所经过的扩增循环次数 所经过的扩增循环次数

实时定量PCR技术(real-time PCR)

实时定量PCR技术(real-time PCR)


样品重复


重复次数请遵循统计学的要求 小样本统计,n>6(n>3) 未知样品和标准品都要重复 所有复管在同样条件下完成PCR

2.2 技术方法及数据

绝对定量与相对定量

绝对定量:绝对标准曲线法



标准品拷贝数的计算 待测样本浓度(ng/ul)=OD260×40×稀释 倍数 样本分子量=碱基数×324 待测样本拷贝数(copies/ul)=待测样本浓 度/样本分子量×6×1014




扩增效率 扩增效率与标准曲线的斜率相关,计算方程为: 扩增效率(E)=10-1/斜率。理论上,在每个指 数扩增循环中,PCR产物的量加倍,即PCR产 物2倍增加,反应效率为2,扩增效率就为2, 就可得2=10-1/斜率,标准曲线得斜率就为-3.32, 斜率得绝对值与荧光曲线间距相同。 如果将扩增效率用百分率来表示,即: E%=(E-1)×100%,对于理想的PCR反应, E=2,即:扩增效率E%=(2-1)×100%=100% 如果E=1.92,带入方程(1.92-1)×100%=92%, 表示每个循环的终点,扩增产物的拷贝数增加 1.92倍,或每次循环有92%的模板被扩增。

TaqMan探针

TaqMan定量原理
荧光共振能量转移(FRET)

当某个荧光基团的发射谱与另一个荧光基团的吸 收光谱重叠,且两个基团距离足够近时,能量可 以从短波长(高能量)的荧光基团传递到长波长 (低能量)的荧光基团,这个过程称为荧光共振 能量转移(FRET),实际相当于短波长荧光基团释放 的荧光被屏蔽。


PCR效率对定量结果的影响

Real-timePCR实验原理与技术

Real-timePCR实验原理与技术

实时荧光定量PCR技术原理
01
在实时荧光定量PCR反应中, DNA模板被扩增时,与荧光探 针结合,产生荧光信号。
02
随着DNA的扩增,荧光信号逐 渐增强,通过对荧光信号的实 时监测和分析,可以计算出 DNA的起始浓度。
03
通过标准曲线或内参基因的校 准,可以将起始浓度转化为目 标基因的表达量或基因拷贝数 。
实时监测荧光信号
实时监测荧光信号,确保PCR产物在指数扩增阶段被检测到。
标准化实验流程
建立标准化实验流程,确保实验结果的可靠性和可重复性。
未来展望
新技术应用
01
随着新技术的不断发展,如数字PCR、微流控PCR等,Real-
time PCR技术将得到进一步优化。
高通量检测
02
通过多重PCR和高通量检测平台,实现大规模样本的快速检测。
03
Real-time PCR 实验数 据分析
数据收集与整理
数据收集
在实时PCR实验中,数据收集通常涉 及记录每个循环的荧光信号强度。这 些数据通常以图表形式表示,其中横 轴表示循环数,纵轴表示荧光信号强 度。
数据整理
收集到的原始数据需要经过整理,包 括去噪、去除异常值和标准化等步骤, 以确保数据分析的准确性。
自动化与智能化
03
实现Real-time PCR的自动化和智能化,提高实验效率,减少人
为误差。
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real-timepcr实验原 理与技术
contents
目录
• Real-time PCR 实验原理 • Real-time PCR 实验技术 • Real-time PCR 实验数据分析 • Real-time PCR 实验应用 • Real-time PCR 实验注意事项与优化建

Real-time_PCR(从原理到实验方法及数据分析)

Real-time_PCR(从原理到实验方法及数据分析)

total RNA total RNA
cDNA
cDNA
cDNA
cDNA
相对定量:内对照 Endogenous Control
用以标准化样品操作
time t =0 t=12 t=24 t=48
total RNA total RNA
total RNA total RNA
cDNA
cDNA
cDNA
cDNA
线性图谱
对数图谱
基线
阈值
Ct值
[DNA]0
什么是阈值?
1. 基线(空白)信号的产生是由于测量的偶然误差引起的。 2. 偶然误差的结果满足对数分布。 3. 阈值 = 基线(背景)信号标准偏差 x 10。 4. 由于测量的偶然误差而导致测得的荧光信号大于阈值的概率小于10-5。 5. 当荧光信号大于阈值时,可以肯定是由于PCR的扩增使得荧光强度得以测量。
突变的存在形式
目标序列的有无
等位基因分型
• 定义:等位基因分型(AD)分析是一种多重(每个反应包括一个以上的 引物和探针对)、终点(在PCR过程的终点收集数据)分析实验,用 于检测某个核酸序列的变异。 每个反应中包括两个引物和探针对,允许在一个目标模板序列的单核 苷酸多态性(SNP)位点上出现两个可能的变异基因型。 目标序列的实际量不确定。
1. 2. 3. 4. 5. 6. Transcription Hairpin release in the nucleus Export to cytoplasm Dicer processing Strand selection by RISC Translational repression
*mature active strand
等位基因自动识别软件

Real_Time_PCR

Real_Time_PCR
R
核糖核苷酸
Q
Cycling Probe法基本原理
热变性 退火 酶切 延伸
SYBR Green I法vs Probe法
SYBR Green I 法
◆优点:价栺便宜、使用方便、无需合成特异性探针。 ◆缺点:引物要求高(要求特异性扩增)、不能进行多重PCR。
Probe法
◆优点:特异性强,能进行多重PCR。 ◆缺点:需要设计特异性探针,成本高、有时设计困难。
实时荧光定量PCR
(Real Time PCR)
主要内容
Real Time PCR 基础知识 Real Time PCR 实验方法
Real Time PCR 解析方法
Real Time PCR 应用实例
Real Time PCR 基础知识
Real Time PCR 的用途及原理
Real Time PCR 检测方法
互补性
特异性
★★★
★★★
RT-PCR用引物 ★★
★号表示重要程度,★号越多,表示该参数越重要,设计时要优先考虑
Real Time PCR引物及探针设计
好的引物 需要寻找好的参照序列
目的基因 目的基因序列获得 引物设计 分析序列
RefSeq序列
特异性确认
基因组序列确认 Real Time RT-PCR 引物
Real Time PCR 检测系统
Real Time PCR 用途
定性分析
病毒和病原菌检测 生物品种鉴定
绝对定量
病毒和病原菌定量分析 导入基因拷贝数解析
相对定量
差异显示结果验证 基因芯片结果验证 siRNA效果确认 mRNA表达量分析
SNP解析
GMO定量检测
操作简单,无需电泳,检测快速,降低污染几率, 适用于大量样品检测,检测灵敏度高; 可以在宽广范围内进行准确定量。
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• 什么是IPC?IPC是一种阳性内对照,它被用在阳性/阴性实验中,用 于监测PCR过程并确定阴性结果不是因为PCR失败而造成。,IPC包 括一个模板、一组引物和一个荧光标记(VIC)的探针,被加到反应 板的每一个孔中。
阴性结果示例
阳性结果示例
microRNA
• MicroRNA(miRNA)是一种 22个碱基左右的内源性单链 小分子RNA
正常与突变探针在同一管里反应的点突变检测
基因分型检测
FAM
VIC Homozygote for FAM-specific allele
VIC
FAM Homozygote for VIC-specific allele
FAM VIC
Heterozygote for both alleles
等位基因自动识别软件
• 由带茎环结构的双链RNA前 体剪切而成
• 具有高度保守性、时序性和 组织特异性
• 通过与特异mRNA结合,抑 制目标基因表达或降解 mRNA
miRNA Expression
1. Transcription 2. Hairpin release in
the nucleus 3. Export to
T=24hr
IL-2 18S ΔCt 24 9 15 24 10 14 23 11 12
28 10 18
ΔΔCt 0 -1 -3
3
2-ΔΔCt 1.0 2.0 8.0
0.1
Relative Quantity of Expression
10
8.0
8
6
4
2.0
2
1
0.1
0
t=0 t=1h t=6h t = 24 h
• 加速数据分析 • 等位基因分组识别 • 每一个孔的质量评分 • 用户自定义的质量评分
标准 • 基于每一个标记的识别 • 限制用户的主观干扰
阴性阳性鉴定
• 定义:阳性/阴性实验是一种终点分析,它可以确定某个样本中是(阳 性,用加号表示)否(阴性,用减号表示)存在一个特异性目标序列。 在终点分析中,数据是在PCR过程结束时获得的。
cDNA cDNA
cDNA cDNA
相对定量:内对照 Endogenous Control
用以标准化样品操作
time
t =0
t=12
t=24
t=48
total RNA total RNA total RNA total RNA
cDNA cDNA
cDNA cDNA
T=0 (calibrator) T=1hr T=6hr
• However, how to design a TaqMan real-time PCR assay on a ~22 base polynucleotide fragment? (但是, 如何设计这样一个靶物只有22个碱基 TaqMan real-time PCR?)
Solution: TaqMan® MicroRNA PCR Assays
为何研究miRNA?
• miRNA已被确认为一类新的基因调控因子,参 与了细胞的发育、分化和联络
• 对miRNA功能的研究将有助于设计siRNA干扰 实验
• miRNA有可能成为新的生物分子标记 • 有重要的临床应用价值
miRNA 分析的技术挑战
Northern Blot (杂交法) • Homegrown technology and easy to access (易于操作) • Large sample amount requirement (ug scale) (需大量样品) • Low dynamic range (two orders of magnitude) (可测范围低) • Mismatch hybridization often cannot distinguish well between miRNAs
Workflow
mirVana™ miRNA Isolation Kit
TaqMan® MicroRNA RT kit TaqMan® MicroRNA Assays
TaqMan® Universal Master Mix,No UNG
Five Fully Integrated Systems for Real-Time PCR
Real-time PCR
Xiao Jin Applied Specialist Molecular & Cellular Biology
Real-time PCR 原理
数学原理 化学原理
Real-time PCR 应用
绝对定量 相对定量 等位基因分型 阴阳性判定 microRNA
荧光定量PCR数学原理
• 定义:等位基因分型(AD)分析是一种多重(每个反应包括一个以上的 引物和探针对)、终点(在PCR过程的终点收集数据)分析实验,用 于检测某个核酸序列的变异。
• 每个反应中包括两个引物和探针对,允许在一个目标模板序列的单核 苷酸多态性(SNP)位点上出现两个可能的变异基因型。
• 目标序列的实际量不确定。
CT
= − log X O log(1 + E X )
+
log(RT − RB ) − log RS log(1 + EX )
即 CT = - k lg X0 + b (线性方程)
标准曲线:CT值对[DNA]0作图
CT值
CT = - k lgX0 + b
lg [起始DNA]
成功的定量PCR
荧光定量PCR化学原理
TaqMan 探针
R
Q
5’
3’
下游引物
R
Q
5’
3’
1. 每产生一条DNA链,就切断一条探针
2. 每切断一条探针,就产生一个单位信号
3. 信号强度与结合探针的DNA分子数成正比
Real-time PCR 应用
• 绝对定量(Absolute Quantification,AQ)
• 病原体检测 • 转基因食品检测 • 基因表达研究
• 相对定量(Relative Quantification,RQ)
• 基因在不同组织中的表达差异 • 药物疗效考核 • 耐药性研究
• 等位基因分型(Allelic Discrimination,AD)
• 基因突变分析 • SNP研究 • 物种鉴定、菌株鉴定
• 阴性阳性鉴定(Plus/Minus with IPC,+/-)
基线 阈值 Ct值 [DNA]0
由于PCR扩增效率的差异使得相同的样品 扩增结果存在很大的差异
同时扩增96的相同样品的结果
线性图谱
扩增曲线:四个阶段
平台期
线性增长期 指数增长期 基线期
平台期 线性增长期 指数增长期
基线期
对数图谱
基线 阈值 Ct值
什么是基线?
基线就是扩增曲线中的水平部分。
[A]0
cytoplasm 4. Dicer processing 5. Strand selection
by RISC 6. Translational
repression
*mature active strand
Mechanisms of Small RNA-Induced Gene Regulation
线性图谱
对数图谱
基线 阈值 Ct值 [DNA]0
什么是阈值?
1. 基线(空白)信号的产生是由于测量的偶然误差引起的。 2. 偶然误差的结果满足对数分布。 3. 阈值 = 基线(背景)信号标准偏差 x 10。 4. 由于测量的偶然误差而导致测得的荧光信号大于阈值的概率小于10-5。 5. 当荧光信号大于阈值时,可以肯定是由于PCR的扩增使得荧光强度得以测量。
Applied Biosystems 7300 Real-Time PCR System
mirVana™ miRNA Isolation Kit
• 专业高效回收小分子RNA • 富集小于200 nt RNA,提高下游试验灵敏度 • 方便快捷,30分钟完成整个过程 • 理想的 miRNA, siRNA, shRNA, and snRNA 分析
基线 阈值 Ct值 [DNA]0
什么是CT值?
从基线到指数增长的拐点所对应的循环次数
线性图谱
对数图谱
CT值
CT值
为什么CT值 ∝ [DNA]0 ?
N = N0 x (1+e)n
N:产物分子数;N0:起始分子数 e: 扩增效率; n: 循环次数
PCR理论方程只在指数期成立
线性期
lg [DNA]
指数期 y = x(1+e)n
Quantitative Real-Time PCR (实时定量PCR) • Dramatically less sample requirement (只需微量样品) • Significantly wide dynamic range (7 logs) (非常宽的可测范围) • High sensitivity and specificity (高灵敏度, 高特异性)
Applied Biosystems 7900HT Fast Real-Time PCR System
Applied Biosystems 7500 Fast Real-Time PCR System
Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR System
Applied Biosystems StepOne™ Real-Time PCR System
绝对定量:从荧光到拷贝数
The well contains 400 target copies
Y= mx+b
Ct‘s
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