临床微生物检验标本采集与运送PPT课件
5. 运送要求 要求：（1）采集后的血培养瓶应立即送往实验室，室温放置不要超过2小时。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和冷冻。 说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
2020/7/16
PART
02
痰液标本采集
与运送
.
11
PART
02 痰液标本采集与运送
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
4. 采集次数 要求：对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时采集2~3套（不同部位）血培养标 本。（即双瓶双臂同时采集血培养标本）。 婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培养标本。 说明：在采集血培养后的2-5天内，无需重复采集血培养。只有在怀疑感染性心内膜炎或 其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔多次采集血培养。
√ 在分抗泌生物素。应用前采集痰标本; √ 标本采集后1～2h内必须立即进行实验室处理； √ 取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口; √ 深咳，采集标本过程中要有专业的医务人员指导; √ 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天；不建议24小时内多次 采集，除非痰液外观性状改变； √ 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
PART
02 痰液标本采集与运送
（二）、采集方法
1. 自然咳痰法 以清晨第一口痰为好。用清水反复漱口后，用力咳出呼吸道深部的痰（或可 轻拍背部），直接置于无菌容器中（采集量≥1ml），尽快送检。痰量极少 或痰浓不易咳出者者可用45℃10%氯化钠液雾化吸入导痰。不能及时送检 的标本，室温保存≤2小时。要求采到肺深部的痰液，切勿混入唾液及鼻咽
（一）、痰液检测采集指征
1. 凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性，并伴有胸痛、气急， 肺部闻及湿罗音，外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查 提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭等患 者，应采集痰液或下呼吸道标本。 2.对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等）患者采集检 验标本时必须注意生物安全防护。
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
2.采集部位 要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血培养。必要时从
下肢静脉采血做第三套血培养。 说明：不建议采集：
（1）动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大； （2）静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管 内采血（如怀疑导管相关性感染等），也应同时从外周静脉采集另 外一个血培养标本，以帮助阳性结果的判读。 ü 所谓“双瓶双侧”，是指从一个部位采血接种一套培养瓶，再从 另一部位采血接种另一套培养瓶。（通常是双臂） ü一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单个血培养。
3. 白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷、休克 8．多器官衰竭 9. CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及时采集血培养。
PART
01 血液标本采集与运送
（二）、血培养检测消毒程序
1. 皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位30秒以上，待干； （2）然后10%碘伏作用60秒，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上，待干； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60秒，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2. 血培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精，然后注入血液。
临床微生物检验标本采集与运送
徐州市第六人民医院检验科 许峰
2020/7/16
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1
“正确的微生物学检验始于正确的标
本采集。临床医师、护士及检验技师 都必须通晓其要领。”
——著名的临床微生物检验专著《Manual of Clinical Microbiology 》主编 Patrick Murray
2020DIRECTORY
PART
01 血液标本采集
与运送
PART
02 痰液标本采集
与运送
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03 尿液标本采集
与运送
PART
04 其它标本采集
与运送
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01
血液标本采集
与运送
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01 血液标本采集与运送
（一）、血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者： 1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 、 2. 寒战
要求： ü 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按压静脉，除非带有无菌手套。 ü 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，采用真空采血装置能降低污染率。 说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受的污染率通常是≤3%。
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
1.采集时间 要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用 抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或 间隔短时间内采集2套以上血培养标本。 说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发烧 开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行病原菌 培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有在以下情 况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他血管内（如 导管相关性感染）感染患者的连续性菌血症。
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
3. 采血量 要求： 成年患者推荐的采血量为每瓶8-10ml，儿童患者推荐 的采血量为每瓶1-5ml，新生儿0.5ml，但不应超过患儿总血 量的1%。 说明：血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。成人血 培养采血量在2~30ml之间，病原菌检出率与采血量成正比例 增长。每增加1ml的血液，病原菌的检出率增加3.2%。儿童 患者因为血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。 对血液病患者或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减 少血液的采集量增加病原菌的检出率。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和冷冻。 说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
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痰液标本采集
与运送
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02 痰液标本采集与运送
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01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
4. 采集次数 要求：对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时采集2~3套（不同部位）血培养标 本。（即双瓶双臂同时采集血培养标本）。 婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培养标本。 说明：在采集血培养后的2-5天内，无需重复采集血培养。只有在怀疑感染性心内膜炎或 其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔多次采集血培养。
√ 在分抗泌生物素。应用前采集痰标本; √ 标本采集后1～2h内必须立即进行实验室处理； √ 取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口; √ 深咳，采集标本过程中要有专业的医务人员指导; √ 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天；不建议24小时内多次 采集，除非痰液外观性状改变； √ 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
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02 痰液标本采集与运送
（二）、采集方法
1. 自然咳痰法 以清晨第一口痰为好。用清水反复漱口后，用力咳出呼吸道深部的痰（或可 轻拍背部），直接置于无菌容器中（采集量≥1ml），尽快送检。痰量极少 或痰浓不易咳出者者可用45℃10%氯化钠液雾化吸入导痰。不能及时送检 的标本，室温保存≤2小时。要求采到肺深部的痰液，切勿混入唾液及鼻咽
（一）、痰液检测采集指征
1. 凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性，并伴有胸痛、气急， 肺部闻及湿罗音，外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查 提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭等患 者，应采集痰液或下呼吸道标本。 2.对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等）患者采集检 验标本时必须注意生物安全防护。
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01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
2.采集部位 要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血培养。必要时从
下肢静脉采血做第三套血培养。 说明：不建议采集：
（1）动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大； （2）静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管 内采血（如怀疑导管相关性感染等），也应同时从外周静脉采集另 外一个血培养标本，以帮助阳性结果的判读。 ü 所谓“双瓶双侧”，是指从一个部位采血接种一套培养瓶，再从 另一部位采血接种另一套培养瓶。（通常是双臂） ü一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单个血培养。
3. 白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷、休克 8．多器官衰竭 9. CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及时采集血培养。
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01 血液标本采集与运送
（二）、血培养检测消毒程序
1. 皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位30秒以上，待干； （2）然后10%碘伏作用60秒，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上，待干； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60秒，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2. 血培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精，然后注入血液。
临床微生物检验标本采集与运送
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本采集。临床医师、护士及检验技师 都必须通晓其要领。”
——著名的临床微生物检验专著《Manual of Clinical Microbiology 》主编 Patrick Murray
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01 血液标本采集
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03 尿液标本采集
与运送
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04 其它标本采集
与运送
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01
血液标本采集
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01 血液标本采集与运送
（一）、血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者： 1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 、 2. 寒战
要求： ü 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按压静脉，除非带有无菌手套。 ü 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，采用真空采血装置能降低污染率。 说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受的污染率通常是≤3%。
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
1.采集时间 要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用 抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或 间隔短时间内采集2套以上血培养标本。 说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发烧 开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行病原菌 培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有在以下情 况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他血管内（如 导管相关性感染）感染患者的连续性菌血症。
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
3. 采血量 要求： 成年患者推荐的采血量为每瓶8-10ml，儿童患者推荐 的采血量为每瓶1-5ml，新生儿0.5ml，但不应超过患儿总血 量的1%。 说明：血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。成人血 培养采血量在2~30ml之间，病原菌检出率与采血量成正比例 增长。每增加1ml的血液，病原菌的检出率增加3.2%。儿童 患者因为血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。 对血液病患者或者血容量相对较低的患者建议使用儿童瓶来减 少血液的采集量增加病原菌的检出率。
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临床微生物标本采集及运送医学PPT课件
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大便标本的运送
标本采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。 •粪便标本：室温 1 小时内送至。 •直肠拭子（procto swab）：室温 1 小时内送至。 •高度怀疑霍乱弧菌感染的标本室温 1 小时内送至，运送必须符合特 殊标本的安全要求。 •碱性蛋白胨水：霍乱弧菌增菌培养
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脓性分泌物
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标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。 •1. 女性（female）：成年女性外阴部以肥皂水清洗，再用无菌水洗净，用无菌 纱布擦拭，然后排尿弃去前段尿，留取中段尿 3 毫升，置于无菌容器内。
•2. 男性（male）：用肥皂水清洗尿道口，后用清水洗后取中段尿。包皮过长者 为防止包皮内细菌污染，可将包皮翻开冲洗后再取中段尿。
•3. 儿童（children）：采集中段尿较困难。如尿中细菌明显增多，可高度怀疑 尿路感染，无细菌则可否定，细菌数中度增加时，有必要用膀胱穿刺术 （vesicopuncture）或导尿（urethral catheterization）采集尿液。
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留取中段尿
• 简单易行，又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。尿液在膀 胱内停留6-8h以上（给细菌足够的繁殖时间） • 尿标本必须用无菌带螺帽的容器采集，否则为拒收标本。 痰培养容器？NO。。。
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标本质量
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合格标本的判断标准
• 外观：观察颜色、粘度、有无血丝
或脓。若标本为水状且很明显是唾
液，则应拒收。 • 为了判定是否来自下呼吸道的痰，
需检查是否为合格的痰标本：
WBC>25个/低倍视野，鳞状上皮细 胞<10个/低倍视野为合格标本。采
集合格标本对细菌的诊断极为重要。
微生物标本检验的采集(共77张PPT)
【标本采集注意事项】
• ①采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3份血培养（一次静脉采血注 入到多个培养瓶中应视为单份血培养），每次2瓶。因为研究已证实，2～3份血培养足以 检测所有的菌血症和真菌血症。
• ②入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采集2份。
• ③对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒 战或发热后1h采集。因为发热时血液中可能没有细菌。
•
皮肤消毒程序
• 严格按以下三步法进行：
• ①75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
•
②用一根碘酊或聚维酮碘（碘伏）棉签消毒皮肤，1～2%碘酊作用30s或碘伏作用
60s，从穿刺点向外以1.5～3cm直径画圈进行消毒
• ③75％酒精脱碘。
•
对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺
支气管刷直接取得标本。 • 3.胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽，
有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。
• 4.管穿刺法：主要用于厌氧菌培养 • * 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿受到
刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
【标本采集注意事项】
【标本的送检地点】 • 检验科微生物室，非正常上班时间送检验
科急诊化验室。
* 标本运送过程中必须保证其安全，防止溢 出，避免细菌污染。
上呼吸道标本的微生物检验
一、检验项目 • 上呼吸道标本的细菌培养、真菌培养、真
菌涂片、结核菌涂片。 二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
• 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本 ，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应 用前采集。
临床检验标本的正确采集和运送 ppt课件
分类
ppt课件
37
五. 生殖道标本
• 1.男性患者:
• (1)尿道标本: 清洗龟头后,用碘伏等消毒后, 挤出 分泌物或以专用细拭子插入尿道口 1~2mm旋转，采取分泌物送检。 • (2)前列腺标本: 应由医师按摩前列腺,以无 菌手 续自尿道口采取前列腺液送检。
ppt课件 38
标本采集
(1) 男性 尿道炎患者，先以无菌生理盐水清洗尿 道口，采集尿道脓性分泌物。 前列腺炎患者则从直肠侧对前列腺进行 按摩，待分泌物排出后采集
ppt课件
25
血中细菌浓度与患者体温曲线图
血培养
体温
细菌浓度
30 0 时间 (min)
ppt课件 26
60
2.采血次数与间隔
• (1)急性感染患者: 从两臂分别采2份血样。 • (2)感染性心内膜炎患者: 24h内采血3次, 每次间隔不少于30分 钟。 • (3)发热原因不明患者: 24~48h后可再采血2次,间隔不少于60 分钟。
ppt课件
39
(2)女性
• 尿道炎患者，先以无菌生理盐水清洗尿道口，从 阴道后壁由后向前压迫尿道， • 使分泌物排出，然后用无菌拭子或接种环采集； 对于宫颈炎患者，先无菌生理盐水 • 清洗宫颈口和阴道壁，再用阴道窥镜压迫子宫阴 道部，使分泌物排出，然后用无菌 • 拭子或接种环采集标本；合并肠炎的患者可在直 肠镜下，用无菌绵拭子采集直肠窝 • 粘膜的粘液进行送检。
16
体液标本的采集注意事项
• 体液种类繁多，包括尿液，胸腹水，脑脊 液，精液，前列腺液，穿刺液等，化验的 项目也很多。标本的采集和运送对于结果 的准确性影响很大。
ppt课件
17
体液标本一
• 尿液标本 1.尿常规，采集10ml清洁尿，不得混入精液或阴道 分泌物，粪便等 • 尿细菌培养， 1.用无菌尿杯采集，清晨中段尿，未使用抗生素前 2.尿查抗酸杆菌，收集12小时尿液于清洁容器中， 将沉淀采集到无菌尿杯中送检 • 尿查24小时蛋白定量，采集24小时尿液于清洁容 器中，准确量取尿液总量，二日将采集的尿液混 匀，取5-10送检，并在申请单上标明尿液总量。 夏季需要用防腐剂（二甲苯），从化验室领取。
临床微生物检验标本的采集、运送及接种要点42页PPT
▪
29、勇猛、大胆和坚定的决心能够抵得上武器的精良。——达·芬奇
▪
30、意志是一个强壮的盲人，倚靠在明眼的跛子肩上。——叔本华
谢谢！
42
临床微生物检验标本的采集、 运送及接种要点
26、机遇对于有准备的头脑有特别的 亲和力 。 27、自信是人格的核心。
28、目标的坚定是性格中最必要的力 量泉源 之一， 也是成 功的利 器之一 。没有 它，天 才也会 在矛盾 无定的 迷径中 ，徒劳 无功。- -查士 德斐尔 爵士。 29、困难就是机遇。--温斯顿．丘吉 尔。 30、我奋斗，所以我快乐。--格林斯 潘。
▪
26、要使整个人生都过得舒适、愉快，这是不可能的，因为人类必须具备一种能应付逆境的态度。——卢梭
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27、只有把抱怨环境的心情，化为上进的力量，者不如乐之者。——孔子