PRIMARY STUDY OF REPAIRING PERIPHERAL NERVE GAP WITH PORCINE SMALL INTESTINAL SUBMUCOSA
鞘内注射瞬时受体电位通道A1 shRNA对部分坐骨神经结扎小鼠神经病理性疼痛的作用及其机制
第47卷第6期2021年11月吉林大学学报（医学版）Journal of Jilin University（Medicine Edition）Vol.47No.6Nov.2021DOI：10.13481/j.1671‑587X.20210619鞘内注射瞬时受体电位通道A1shRNA对部分坐骨神经结扎小鼠神经病理性疼痛的作用及其机制赵峰1,樊少卿1,程晓燕1,李小娜1,李长生2,马浩杰1（1.河南省中医院麻醉科，河南郑州450002；2.河南省肿瘤医院麻醉与围术期医学科，河南郑州450003）［摘要］目的目的：探讨瞬时受体电位通道A1（TRPA1）在部分坐骨神经结扎（pSNL）小鼠神经病理性疼痛模型中的作用，阐明其作用机制。
方法方法：30只SPF级雄性C57BL/6小鼠随机分为对照组（n=6）、假手术组（n=6）和pSNL组（n=18）。
pSNL组小鼠鞘内置管成功后随机分为pSNL组、pSNL+NC shRNA组（于术后第7天鞘内注射NC shRNA）和pSNL+TRPA1shRNA组（于术后第7天鞘内注射TRPA1shRNA）。
检测注射前和注射后l、7、12和24h各组小鼠后肢机械缩足反射阈值（MWT）和热阈值（TWL）。
最后一次检测后2h处死小鼠，采用Western blotting法检测各组小鼠术侧背根神经节（DRG）中TRPA1蛋白激酶Cε型（Prkce）和星形胶质细胞激活标记物胶质纤维酸性蛋白（GFAP）的表达，ELISA法检测各组小鼠细胞上清和血清中肿瘤坏死因子α（TNF-α）和单核细胞趋化蛋白1（MCP-1）水平。
分离培养pSNL模型小鼠的原代星形胶质细胞，过表达或敲低TRPA1，检测星形胶质细胞中TRPA1、Prkce和GFAP蛋白表达水平以及细胞上清中TNF-α和MCP-1水平。
采用STRING数据库和免疫共沉淀（Co-IP）法预测并验证TRPA1和Prkce相互作用。
检测过表达或敲低TRPA1后空质粒组、Ad-TRPA1、sh-NC组和sh-TRPA1组星形胶质细胞中Prkce 和GFAP蛋白表达水平以及细胞上清中TNF-α和MCP-1水平。
壳聚糖导管复合自体骨髓间充质干细胞修复大鼠13mm坐骨神经缺损
大， 排列更为规则。 透射电镜观察 ： 实验组和细胞 外基质凝胶组均 见再 生的有髓神经纤维 。⑦再 生神经 纤维图像分析 ： 术后
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’ 河 北 大 学 髓间充质干细胞修复大鼠 １ ３ ｍｍ 坐骨神经缺损
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高于细胞 外基 质凝胶组【 分别为 （ － ７ ２ ． １ ８ ＋ ３ ． １ １ ） ％， （ － ７ ６ ． ８ ５ ￣ ２ ． ７ ６ ） ％； （ － ６ ２ ． ９ １ ± ２ ． ８ ７ ） ％， （ － ６ ９ ． ６ ３ ￣ ２ ． ５ ２ ） ％】 ， 差 异有显著性意 义 （ Ｆ＝ ７ ． ８ ５， Ｐ＜０ ． ０ １ ） 。⑧ 电生 理 检 查 ： 术后 １ ２周 实 验 组 运 动 神 经 传 导 速 度 及 波 幅 明 显 高 于 细 胞 外 基 质 凝 胶 组 【 分别 为（ ４ １ ． ２ ９ ￣ ３ ． ８ ３ ） ， （ ３ ２ ． ６ ４ ± ３ ． ５ ２） ｍ／ ｓ ； （ ３ ． ２ １ ± Ｏ ． ３ ４） ， （ ２ ． ８ ５ ￣ ０ ． ２ ２ ） ｍ、 ， 】 ， 差 异有 显 著性 意 义 （ Ｆ＝ ６ ． ３ ９， Ｐ ＜０． ０ １ ） 。实 验组 、 细 胞 外 基 质 凝胶 组 腓肠肌肌 电图呈部分失神经电位表现 ， 生理盐水对照组则为完全失神经电位。④ 腓肠肌湿质量恢 复率 ： 实验组 、 细胞外基质凝 胶组腓肠肌湿质量恢复率明显高于生理盐水对照组【 分别 为（ ６ ９ ． ３ ２ ￣ ２ ． ６ ５） ％， （ ６ ６ ． ７ ２ ￣ １ ． ７ ５ ） ％， （ ５ ３ ． ４１ ± １ ． ９ ７ ） ％】 ， 差 异 有 非 常 显 著性意义 （ Ｆ＝ ９ ． ３ ２ ， Ｐ＜０ ． ０ １ ） ， 实验组与细胞外基质凝胶组比较差异有显著性 意义（ Ｆ＝ ６ ＿ ２ ５ ， Ｐ＜０ ． ０ ５ ） 。⑤ 组织学检查 ： 术后
小间隙缝合联合神经碎片对大鼠坐骨神经缺损修复的实验研究
（ １ ． 内蒙古 大学 生命 科 学 学院 ， 内蒙古 呼和 浩特
２ ．内蒙 古 包钢 医院骨科 ， 内蒙古 包头
０ １ ４ ０ １ ０ ）
［ 摘 要 ］目的 ： 研 究神 经碎 片联 合神 经外 膜 小 间 隙缝 合在 周 围神 经损 伤修 复 中的 作 用。 方 法 ： ① 实验动 物 随机 分 为对 照组 、 单纯 小 间隙缝合 组 、 小间 隙缝 合 ＋神 经碎 片组 ； ② 术后 ２周观 察神 经 吻合 口大体 形 态 ； ③ 术后 ８周组 织观 察神 经 纤维再 生情 况 ； ④ 术后 ８周检 测腓肠 肌 湿重 比 ； ⑤病 理切 片图像分 析各 组再 生神 经纤 维数 目、 直径 、 髓鞘 厚 度 。结果 ： ① 术后 ２周 ， 传统 缝合 吻合 口处黏 连 ， 疤 痕组 织形 成 ； 单 纯 小 间隙缝 合 ， 无 明 显 粘连 。 小 间隙缝合 ＋神 经碎 片组 ， 吻合 口处无 明显 粘连 ， 小 间隙外 膜 处 变细 ； ② 小 间 隙缝合 组 与 正 常对 照
组相比， 湿 重 比明显 增加 ， 小间 隙加 神 经碎 片组 与 小间隙组 相 比 ， 湿 重 比明显增 加 ； ③ 小间隙缝 合 ＋神 经碎 片
组、 单纯小间隙缝合组与对照组相比， 有髓神经纤维总数、 直径及髓鞘厚度均明显增加 ， 小间隙＋神经碎片组 神 经 纤维数 、 直径及 髓鞘厚 度 与单 纯 小 间隙缝 合 组相 比 明显增加 。④ 组 织学 显示 ， 小 间隙加 神 经碎 片组 与单 纯小 间 隙组相 比 ， 神 经 纤维 密集度增 加 ， 排 列整 齐 。结论 ： 神 经碎 片联 合 神 经外 膜 小 间 隙缝合 在 周 围神 经损
ｗ ｅ ｅ ｋ ｓ ． ③ｔ ｅ ｓ ｔ ｉ ｎ ｇ ｎ ｅ ｒ ｖ ｅ ｆ ｉ ｂ ｅ ｒ ｒ ｅ ｇ ｅ ｎ ｅ ｒ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ａ ｆ ｔ ｅ ｒ ｅ ｉ ｇ ｈ ｔ ｗｅ ｅ ｋ ｓ ． ④ｔ ｅ ｓ ｔ ｉ ｎ ｇ ｇ ａ ｓ ｔ ｒ ｏ ｃ ｎ ｅ ｍｉ ｕ ｓ ｗｅ ｔ ｗｅ ｉ ｇ ｈ ｔ ｒ ａ ｔ ｉ ｏ ａ ｆ 蔷 ｅ ｉ ｇ ｈ ｔ
魔芋甘露低聚糖增强肠道屏障功能改善酒精性中枢神经损伤的实验研究
网络出版时间：２０２４－０３－０７１０：４６：１８ 网络出版地址：ｈｔｔｐｓ：／／ｌｉｎｋ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｕｒｌｉｄ／３４．１０８６．Ｒ．２０２４０３０６．１７２５．０１８魔芋甘露低聚糖增强肠道屏障功能改善酒精性中枢神经损伤的实验研究陈晶晶１，钟文艳１，２，沈文卓１，肖 莉１，２，袁成福１，２（三峡大学１．基础医学院、２．肿瘤微环境与免疫治疗湖北省重点实验室，湖北宜昌 ４４３００２）收稿日期：２０２３－１２－２０，修回日期：２０２４－０１－２６基金项目：国家自然青年科学基金资助项目（Ｎｏ８１９０３９１６）；三峡大学湖北肿瘤微环境与免疫治疗重点实验室开放基金项目（Ｎｏ２０２３ＫＺＬ０３５）作者介绍：陈晶晶（１９９８－），女，硕士，研究方向：代谢性疾病及药物干预，Ｅ ｍａｉｌ：ｊｉｎｇｊｉｎｇｃｈｅｎ０９２４＠１６３．ｃｏｍ；肖 莉（１９７９－），女，博士，副教授，硕士生导师，研究方向：代谢性疾病及药物干预，通信作者，Ｅ ｍａｉｌ：ｘｉａｏｌｉ ｃｎ＠１６３．ｃｏｍ；袁成福（１９７６－），男，博士，教授，硕士生导师，研究方向：代谢性疾病及药物干预，通信作者，Ｅ ｍａｉｌ：ｙｕａｎｃｆ４６＠ｃｔ ｇｕ．ｅｄｕ．ｃｎｄｏｉ：１０．１２３６０／ＣＰＢ２０２３１００７９文献标识码：Ａ文章编号：１００１－１９７８（２０２４）０３－０４４７－０８中国图书分类号：Ｒ ３３２；Ｒ３２２ ４５；Ｒ３２２ ８１；Ｒ３６４ ５；Ｒ５９５ ６摘要：目的 慢性酒精摄入导致的大脑过度神经炎症是中枢神经损伤的重要危险因素。
本实验主要研究魔芋甘露低聚糖（Ｋｏｎｊａｃｍａｎｎａｎｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ，ＫＭＯＳ）保护酒精喂养小鼠中枢神经炎症的作用及其机制。
方法 Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ小鼠采用Ｇａｏ ｂｉｎｇｅ法制备慢性酒精喂养小鼠模型，同时使用不同剂量的ＫＭＯＳ灌胃干预，喂养６周。
评估脑组织皮层和海马区域神经元损伤和小胶质细胞活化情况，观察结肠组织损伤情况和炎症反应，检测血清ＬＰＳ浓度。
鞘内注射2R，_6R-HNK_缓解雌性小鼠的神经病理性疼痛
第 44卷第4期2023 年7月Vol.44 No.4July 2023中山大学学报（医学科学版）JOURNAL OF SUN YAT⁃SEN UNIVERSITY（MEDICAL SCIENCES）鞘内注射2R， 6R-HNK缓解雌性小鼠的神经病理性疼痛刘安然1，林震嘉2，彭湘格2，李莹2，郑钰凡2，谈智2，周利君2，冯霞1（1. 中山大学附属第一医院麻醉疼痛科，广东广州 510080； 2. 中山大学中山医学院生理教研室//中山大学疼痛研究中心，广东广州 510080）摘要：【目的】 初步探究鞘内注射2R， 6R-羟化去甲氯胺酮（2R， 6R-HNK）对慢性神经病理性疼痛（CNP）的镇痛作用及其机制。
【方法】 采用坐骨神经选择性损伤（SNI）诱导的CNP模型。
将雌性小鼠随机分不同组：假手术或SNI术后3 周或术前30 min/1 d给予溶剂、2R， 6R-HNK、S-ketamine（10 mg/kg腹腔注射或7、21 μmol/L鞘内注射）（每组3 ~ 7只）。
采用机械缩足阈值（PWT）和镇痛效率评估2R， 6R-HNK的治疗或预防效果。
再用免疫荧光和RT-PCR方法检测背根神经节（DRG）和脊髓背角中蛋白转录及表达水平，并探讨其可能的作用机制。
【结果】 鞘内注射2R， 6R-HNK剂量依赖地缓解雌性小鼠SNI建模3 周的双侧机械痛敏；其中21 μmol/L 2R， 6R-HNK的镇痛效率达峰时间为2 d，峰值为（75.32±7.69）%。
预先鞘内2R， 6R-HNK还能延迟SNI诱导双侧机械痛敏产生2 ~ 3 d。
机制上，2R， 6R-HNK预处理不仅显著抑制SNI引起的双侧DRG和脊髓背角浅层神经元异常兴奋，还下调DRG内降钙素基因相关肽（CGRP）及脑源性神经生长因子（BDNF）的高表达。
【结论】 鞘内注射2R， 6R-HNK通过抑制上行痛觉通路神经元异常兴奋并下调DRG神经元CGRP和BDNF表达从而对CNP产生镇痛作用。
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ｊｏ ｎｌ ｏｆＳｈａｎｇｈａｉ Ｓｅｃｏｎｄ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ２００７ Ｖｏｌ・ｌ９ Ｎｏ・２ ＰＲＩＭＡＲＹ ＳＴＵＤＹ ＯＦ ＲＥＰＡＩＲＩＮＧ ＰＥＲＩＰＨＥＲＡＬ ＮＥＲＶＥ ＧＡＰ ＷＩＴＨ ＰＯＲＣＩＮＥ ＳＭＡＬＬ ＩＮＴＥＳＴＩＮＡＬ ＳＵＢＭＵＣＯＳＡ
ｓｕ Ｙａｎ（苏琰），ＺＨＡＮＧ Ｃｈａｎｇ—ｑｉｎｇ（张长青）， ＺＨＡＮＧ Ｋａｉ—ｇａｎｇ（张开刚）， ＺＥＮＧ Ｂｉｎｇ－ｆａｎｇ（曾炳芳） Ｄｅｐａ 撇 ｏｆＯｒｔｈｏｐ伽ｄｉｃｓ．ｔｈｅ Ｓｉｘｔｈ Ｐｅｏｐｌｅ＇ｓ ＨｏｓｐｉｔⅡｌ，ＳｈⅡｎｇｈⅡｉ Ｊｉａｏｔ。ｎｇ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ＳｈⅡｎｇｈⅡｉ ２００２刀， №
Ａｂｓｔｒａｃｔ Ｏｂｊｅｃｔｉｒｅ Ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆｐｏｒｃｉｎｅ ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｓｕｂｍｕｃｏｓａ（ＳＩＳ）ｃｏｎｄｕｉｔ ｉｎ ａｘ’ ｏｎａｌ 譬明８ｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｒａｔ ｓｃｉａｔｉｃ ｎｅｒｖｅ ｗｉｔｈ ａ １０ ｍｌｎ ｇａｐ． Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｆｏｒｔｙ ｅｉｇｈｔ ｒａｔｓ ｗｅｒｅ ｒａｎｄｏｍｌｙ ｄｉＶｉｄｅｄ ，ｌ ｔｈｒｅ８譬加工‘ｐ （，ｌ＝１６）．Ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｎ １０ ｍｌｎ ｇａｐ ｗａｓ ｍａｄｅ ｉｎ ｏｎｅ ｓｉｄｅ ｏｆｔｈｅ ｓｃｉａｔｉｃ ｎｅｒｖｅ ｏｆ ｅａｃｈ ｒａｔ；ｐｒｅＶｉｏｕｓｌｙ ｐｒｅｐｎｒｅｄ ＳＩＳ ｎｎｄ ｎ王‘ｔｏ．，ｌ８，ｖ８ ｇ， ｗｅｒｅ ｉｎｔｅｒｐｏｓｅｄ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｇａｐ ｔｏ ｒｅｃｏｎｎｅｃｔ ｔｈｅ ｐｒｏｘｉｍａｌ ａｎｄ ｄｉｓｔａｌ ｅｎｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｎｅ ｅ．ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｇｒｏｕｐ。ｔｈｅ ｎｅｒｖｅ ｇａｐ ｒｅｍａｉｎｅｄ ｕｎｃｏｎｎｅｃｔｅｄ．Ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｏｆｔｈｅ ＳＩＳ，ｇｒａｆｔ，ａｎｄ ｄｉｓｔａｌ，ｌ８ ８ ｉｎ ｇｒｏｕｐ ａｎｄ ｇｒｏｕｐ ２ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ａｔ ６ ｗｅｅｋｓ ａｎｄ １０ ｗｅｅｋｓ ａｆｔｅｒ ｏｐｅｒａｔｉｏｎ，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ・Ａｘｏｎａｌ ｒｅ’ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｗａｓ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｂｙ ｈｉｓｔｏｌｏｇｙ， ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ， ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｔａｔｅｄ ｂｙ ｕｓｉｎｇ ｃｏｍｐｕｔｅｒ ａｎａｌｙｚｅｄ ｔｍａｇ８・ Ｒｅｓｕｌｔｓ Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ ｎｅｒｖｅｆｉｂｅｒｓ ｗｅｒｅ ｅｖｉｄｅｎｔ ｗｈｉｃｈ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｍｕｃｈ ｍｙｅｌｉｎａｔｅｄ ａｘｏｎｓ ａｎｄ ｇｒｅｗ ｏｖｅｒ ｔｈｅ ｇａｐ ｉｎ ｔｈｅ ＳＩＳ ｃｏｎｄｕｉｔｓ ａｔ １０ ｗｅｅｋｓ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈ），ｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｅｘａｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｏｍｐｕｔｅｒ—ａｎａ ｚｅｄ ｉｍａｇｅ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ａｘｏｎａｌ ｒｅ一 譬８，ｌ８ｒａｔｉｏ，ｌ ｉｎ ｔｈｅ ＳＩＳ ｇｒｏｕｐ ｗａｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈａｔ ｉｎ ｔｈｅ ａｕｔｏ．ｎｅｒｖｅ ｇｒａｆｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐ ａｔ １０ ｗｅｅｋｓ． Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ ＳＩＳ ａｓ ｎ ｃｏｎｄｕｉｔｐｏｓｓｅｓｓｅｓ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙｆｏｒａｘｏｎａｌ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｏｆｔｈｅ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｎｅｒｖｅ，ｔｈｅｒｅｂｙ ｈａｖｉｎｇ ａｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｔｏ ｂｅ ａｎ ａｌ— ｔｅｒｎａｔｉｖｅ ｂｉｏ．．ｍａｔｅｒｉａｌ ｉｎｓｔｅａｄ ｏｆｔｈｅ ａｕｔｏｇｒａｆｔ ｔｏ ｒｅｐａｉｒ ｔｈｅ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｎｅｒｖｅ ｇａｐ． Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ ｓｃｉａｔｉｃ ｎｅｒｖｅ
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ｔｉｖｅ ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ ｔｏ ｉｎｓｔｅａｄ ｏｆ ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ ｎｅｒｖｅ ｇｒａｆｔｓ， ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，ｉｓ ｗｅｌｌ ｍｏｔｉｖａｔｅｄ． Ａ ｖａｒｉｅｔｙ ｏｆ ｍａｔｅｒｉａｌｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｓｔｕｄｉｅｄ ｔｏ ｂｒｉｄｇｅ ｎｅｒｖｅ ｇａｐｓ．Ｈｏｗｅｖｅｒ，ｕｐ ｔｏ ｄａｔｅ，ａｘｏｎａｌ ｒｅ— ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ｎｅｉｔｈｅｒ ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｎｏｒ ｎａｔｕｒａｌ ｍａｔｅｒｉ— ａｌｓ ｈａｓ ｒｅａｃｈｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｔｈｅ ｕｓｅ ｏｆ ｆｕｒｔｈｅｒ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ ｔｏ ｓｅａｒｃｈ ａｌ— ｔｅｍａｔｉｖｅ ｎｅｒｖｅ ｃｏｎｄｕｉｔ ｉｓ ｄｅｍａｎｄｅｄ． Ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ ｓｕｂｍｕｃｏｓａ（ＳＩＳ）ｉｓ ａ ｍｕｌｔｉｌａｍ— ｉｎａｒ ｐｏｒｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ ａｎｄ ｈａｓ ｂｅｅｎ印一 ｐｌｉｅｄ ａｓ ａ ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌ ｓｃａｆｆｏｌｄ ｆｏｒ ｔｉｓｓｕｅ ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ［。一 ．Ｅｎｃｏｕｒａｇｉｎｇ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｉｔｈ ａｐｐｒｏｐｒｉ— ａｔｅ ｔｉｓｓｕｅ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｉｎ ｅａｃｈ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．Ｔｈｅｒｅ— ｆｏｒｅ，ＳＩＳ ａｐｐｅａｒｓ ｔｏ ｈａｖｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｔｏ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ ｈｏｓｔ ｔｉｓｓｕｅ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｏｕｔ ｃｏｎｃｕｒｒｅｎｔ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ ｒｅｊｅｃｔｉｏｎ ｏｒ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎ ．Ｕｓｉｎｇ ｐｏｒｃｉｎｅ ＳＩＳ ａｓ ａ ｎｅｒｖｅ ｃｏｎｄｕｉｔ，ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ａｘｏｎａｌ ｒｅｇｅｎｅｒａ— ｔｉｏｎ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｂｒｉｄｇｉｎｇ ａ ｓｃｉａｔｉｃ ｎｅｒｖｅ ｇａｐ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｔ． ＭＡＴＥＲＩＡＬＳ ＡＮＤⅣⅡ ＴＨｏＤＳ ＳＩＳ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｒｃｉｎｅ ＳＩＳ ｗａｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｄｅｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ｂｙ ｏｔｈｅｒｓ ．Ｂｒｉｅ— ｆｌｙ，ｓｅｇｍｅｎｔ ｏｆ ｆｒｅｓｈ ｊｅｊｕｎｕｍ ｗａｓ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ｆｒｏｍ ｈｅａｌｔｈｙ ｓｗｉｎｅ（ｗｅｉｇｈｔｉｎｇ ｏｖｅｒ ２００ ｋｇ）ｐｕｒｃｈａｓｅｄ ｆｒｏｍ Ｑｉｘｉｎｇ Ｆａｒｍ，Ｓｈａｎｇｈａｉ．Ａｆｔｅｒ ｇｅｎｔｌｙ ｃｌｅａｎｉｎｇ ｉｎ ｗａｔｅｒ．ｔｈｅ ｓｅｇｍｅｎｔ ｗａｓ ｅｖｅｒｔｅｄ ｉｎ ０．９％ｓａｌｉｎｅ ｓｏｌｕ— ｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｕｎｉｃａ ｍｕｃｏｓａ ｗａｓ ａｂｒａｄｅｄ ｕｓｉｎｇ ｌｏｎｇｉ— ｔｕｄｉｎａｌ ｗｉｐｉｎｇ ｍｏｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ａ ｓｃａｌｐｅｌ ｈａｎｄｌｅ ｗｒａｐｐｅｄ ｗｉｔｈ ｍｏｉｓｔｅｎｅｄ ｇａｕｚｅ．Ｔｈｅ ｔｒｅａｔｅｄ ｊｅｊｕｎａｌ ｓｅｇｍｅｎｔ
‘Ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｂｙ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ（３０３７１４４４）． Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ａｕｔｈｏｒ：ＺＥＮＧ Ｂｉｎｇ－ｆａｎｇ（曾炳芳）ｙａｎｓｕ２００４＠ｙｈａｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ
维普资讯 http://www.cqvip.com 维普资讯 http://www.cqvip.com 维普资讯 http://www.cqvip.com 维普资讯 http://www.cqvip.com Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆＳｈａｎｇｈａｉ ＳｅｃｏｎｄＭｅｄｉｃａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ２００７ Ｖｏ１．１９Ｎｏ．２ ｑｕｅｎｔｌｙ，ＳＩＳ ｉｓ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅｌｙ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｄ ｆｏｒ ｔｉｓｓｕｅ ｒｅｐａｉｒｉｎｇ ａｔ ｖａｒｉｅｄ ｔｉｓｓｕｅｓ ａｎｄ ｏｒｇａｎｓ ａｎｄ ｈａｓ ｇａｉｎｅｄ ｅｎｃｏｕｒａｇｉｎｇ ｒｅｓｕｌｔｓ［。一 ．Ｒｅｃｅｎｔｌｙ．ｓｅｖｅｒａｌ Ｓｕｃｃｅｓｓ－ ｆｕｌｌｙ ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ［。一 。。． Ｔａｋｅｎ ｔｏｇｅｔｈｅｒ，ｔｈｅ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｏｆ ＳＩＳ ａｐｐｅａｒ ｔｏ ｂｅ￣（￣）ｓｕｒｖｉｖｉｎｇ ｉｎ ａ ｘｅｎｏｇｅｎｉｃ ｈｏｓｔ ｗｉｔｈｏｕｔ ｏｂｖｉｏｕｓｌｙ ａｄｖｅｒｓｅ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ ｃｏｎｓｅｑｕｅｎｃｅｓ；②ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ｔｏ ｌｏｃａｌ ｂｉｏｍｅｃｈａｎｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ａｎｄ ｍｉｅｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， ａｎｄ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｎｇ ｔｏ ｔｉｓｓｕｅ ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ；③ａｃｃｅｌｅｒａｔｉｎｇ ｃｅｌｌ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｓｐｅｃｉａｌ ｔｉｓ－ ｓｕｅｓ；（￣）ｉｎｄｕｅｉｎｇ ａ ｂｏｄｙ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｒｅｓｉｓｔ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ； ａｎｄ（￣）ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ｅａｓｉｌｙ 。一 ＇ ＇ ¨． Ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙ，ａ ｓｉｎｇｌｅ ｌａｙｅｒ ｏｆ ｐｏｒｃｉｎｅ ＳＩＳ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｏｆｆｅｒ ａ ｔｕｂｕｌａｒ ｃｏｎｄｕｉｔ ｆｏｒ ａｘｏｎａｌ ｓｐｕｒ ａｎｄ ｇｒｏｗｔｈ．Ａｓ ａ ｓｃａｆｆｏｌｄ，ｐｏｒｃｉｎｅ ＳＩＳ ｉｓ ｔｈｉｃｋｅｒ ａｎｄ ｈａｓ ｇｒｅａｔｅｒ ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ ｓｔｒｅｎｇｔｈ ｔｈａｎ ｒａｔ ＳＩＳ．Ｈｉｓｔｏ－ ｌｏｇｉｃａｌ ｅｘａｍｉｎａｔｉｏｎ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ ａｘｏｎｓ ｗｉｔｈ ｗｅｌｌ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｄ ｍｙｅｌｉｎ ｗｅｒｅ ａｂｌｅ ｔｏ ＣｒｏＳＳ ＳＩＳ ａｎｄ ｍｉｇｒａｔｅ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｄｉｓｔａｌ ｎｅｒｖｅ．Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｅａｌ ｒｅｓｕｌｔｓ ｆｕｒ－ ｔｈｅｒ ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ ｔｈａｔ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｅｄ ａｘｏｎｓ ｉｎ ｔｈｅ ＳＩＳ ｇｒｏｕｐ ｒｅｇａｉｎｅｄ ｃｅｒｔａｉｎ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｅ ａｕｔｏ－ｇｒａｆｔｉｎｇ ｇｒｏｕｐ．Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｃｏｎｃｕｒｒｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈａｔ ｉｎ ａ ｒｅｃｅｎｔ ｓｔｕｄｙ＿ｌ２ｊ．Ｉｎ ａｎｏｔｈｅｒ ｓｔｕｄｙ，ｈｏｗｅｖｅｒ， ａ ｒｏｌｌｅｄ ｒａｔ ＳＩＳ ｗｉｔｈ ｍｏｎｏｌａｙｅｒ Ｓｃｈｗａｎｎ ｃｅｌｌ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｒｅｐａｉｒ ｒａｔ ｓｃｉａｔｉｃ ｎｅｒｖｅ ｄｅｆｅｃｔ．Ａｌｔｈｏｕｇｈ ａｘ－ ｏｎａｌ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｉｎｄｅｅｄ ｈａｐｐｅｎｅｄ，ｔｈｅ ｒｏｌｌｅｄ ＳＩＳ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｔｈｉｃｋ ｌａｍｅｌｌａｅ ｏｆ ｂａｃｋｂｏｎｅ ｍａｔｅｒｉａｌ ａｎｄ ｎ０ ｓｐａｃｅｒｓ ｌａｐｓｉｎｇ ｔｏ ｋｅｅｐ ｔｈｅ ａｒｅａ ｂｅｔｗｅｅｎ ｌａｍｅｌｌａｅ ｆｒｏｍ ｃｏｌ－ ｏｎｔｏ ｏｎｅ ａｎｏｔｈｅｒ，ｔｈｅｒｅｂｙ ｐｒｅｙｅｎｔｉｎｇ ｆｕｒｔｈｅｒ ａｘｏｎａｌ ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ［ ． Ｔｈｅ ｅｘａｃｔ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ｈｏｗ ＳＩＳ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｓ ｔｏ ｎｅｒｖｅ ｒｅｐａｉｒ ａｒｅ ｕｎｃｌｅａｒ．Ｈｏｗｅｖｅｒ， ＳＩＳ－ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｐｒｏｔｅｏｇｌｙｃａｎ ａｎｄ ｃｅｌｌｕｌａｒ ｆａｃｔｏｒｓ ｍａｙ ｐｌａｙ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｒｏｌｅｓ．Ｉｔ ｉｓ ｋｎｏｗｎ ｔｈａｔ ｍａｎｙ ｃｅｌｌｕｌａｒ ｆａｃｔｏｒｓ，ｓｕｃｈ ａｓ ｎｅｒｖｅ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ（ＮＧＦ）ａｎｄ ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃ— ｔｏｒ－２（ＦＧＦ－２）ｄｅｍａｎｄ ｓｐｅｃｉａｌ ｐｒｏｔｅｏｇｌｙｃａｎ ｔｏ ＣＯＢ－ ｂｉｎｅ ｔｈｅｉｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｂｅｆｏｒｅ ｔｈｅｙ ｃａｎ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｔｏ ｔｈｅ ｎｅｒｖｅ［１４］．Ｔｈｕｓ．ｐｒｏｔｅｏｇｌｙｅａｎ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ ｉｎ ＳＩＳ ｍａｙ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ ｃｅｌｌｕｌａｒ ｆａｃｔｏｒｓ ｔｏ ｐｒｏｍｏｔｅ ａｘｏｎａｌ ｓｐｒｏｕ－ ｔｉｎｇ ａｎｄ ｇｒｏｗｔｈ．Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅ，ｅｘｔｒａｃｔａｂｌｅ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒｓ ｆｒｏｍ ＳＩＳ ｉｎｃｌｕｄｅ ＦＧＦ－２，ＴＧＦ－Ｂ，ａｎｄ ＶａｓＣＵ－ ｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ（ＶＥＧＦ）［７ｊ．Ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｓｈｏｗｎ ｔｈａｔ ＦＧＦ－２ ｉｓ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｉｎ ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ