彩椒的离体快繁研究
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观赏植物离体快繁技术的研究现状与进展
安徽农业科学 ,Journal of Anhui Agri. Sci. 2008 ,36 (13) :5320 - 5322 ,5348 责任编辑 张彩丽 责任校对 卢瑶
观赏植物离体快繁技术的研究现状与进展
王慧霞 ,王永伟 ,何松林 3 ,李高燕 (河南农业大学林学园艺学院 ,河南郑州 450002)
摘要 对观赏植物组织培养无菌培养体系的建立、诱导培养、继代培养、生根培养、移栽驯化等一系列离体快繁的程序以及培养中光温
等培养条件进行了归纳和总结 ,并对观赏植物组织培养中常见问题和措施进行了综述。 关键词 观赏植物 ;组织培养 ;研究现状 ;存在问题 中图分类号 S336 文献标识码 A 文章编号 0517 - 6611(2008) 13 - 05320 - 03
园林植物组织培养 。 3 通讯作者 。 收稿日期 2008204218
一次用于接种的植物材料 ,通常称为外植体 ,根据植物组织 培养原理 ,植物细胞都具有全能性 ,在适宜的条件下能够再 生成完整的植株。因此 ,外植体材料几乎包括了植物的各个 部位 ,大致分为几大类型 : ①胚胎 ; ②器官及器官原基 ; ③组 织 ; ④细胞 ; ⑤原生质体。外植体是决定植物培养成功与否 的重要因素之一 。不同的植物种类 、同一植物的不同器官或 组织以及植株年龄、季节和生理状态的不同 ,其脱分化和再 分化形成植物的能力不同 ,通常木本植物与较大的草本植物 选取茎段作为外植体 。一些草本植物或缺乏明显的茎的植 物 ,可用叶片 、叶柄 、花瓣等作为外植体[4 - 7] 。在选取用于培 养的外植体时 ,应采摘具有较好品种特征且生长健壮植株的 带顶芽或腋芽的幼嫩茎段或枝条作外植体[3] 。一般处于年 幼阶段的实生苗比老龄的容易分化 ,生长的芽比休眠芽容易 分化 ,顶芽比腋芽容易分化[8] 。 1. 3 材料灭菌 由于组织培养是在无菌条件下进行的 ,所 有外植体都必须经消毒灭菌后 ,才能接种到相应的培养基上 进行培养 。不同的外植体 、不同的年龄以及不同的季节所采 取的外植体 ,应选择相应的消毒剂种类、消毒时间和消毒方 法 ,以达到最大限度杀死微生物、最小程度损伤材料的最佳 效果。目前 ,常用的消毒剂有酒精、双氧水、氯化汞、次氯酸 钙 、次氯酸钠等 。一般先用流水冲洗或用洗洁精洗去材料上 的尘土和部分细菌 ,洗时注意不要损伤和弄掉其上幼小嫩 芽 ,然后放入接种室进行消毒并用无菌水冲洗[3] 。具体消毒 方法中茎尖、茎、叶片的消毒步骤如下 : ①消毒前先用清水漂 洗干净或用软毛刷将外植体上的尘埃刷除 ,茸毛较多的用皂 液洗涤 ,然后用流动的清水洗去皂液 ,洗后用吸水纸吸干表 面水分 ; ②进入无菌的接种室 ,用 70 %酒精浸泡外植体 30～ 60 min ; ③取出后马上用 0. 1 %～0. 2 %氯化汞消毒 10～15 min ,或用 10 % 次氯酸钙饱和上清液浸泡 10～20 min ,还可以 用 2 %～10 %次氯酸钠溶液浸泡 6～15 min ; ④消毒后用无菌 水冲 洗 3 ～5 次 , 用 无 菌 纱 布 或 无 菌 滤 纸 吸 干 水 分 后 再 接种[8] 。 1. 4 培养基组成与类型选择 培养基是组织培养苗生存、 发育以致形成完整植株的营养物质 。选用适宜的培养基是 组织培养成功的关键问题之一 。不同的植物种类或同一植 物不同的采集部位 ,其正常生长所需的营养要求不同。有的 需要对培养基做一些改良 ,有的要选用专用培养基。因此应 根据不同的培养目的 (诱导愈伤组织、不定芽 ,分化 ,生根) , 所选用的培养基亦应有所不同 。
观赏植物离体快繁技术的研究现状与进展
王慧霞 ,王永伟 ,何松林 3 ,李高燕 (河南农业大学林学园艺学院 ,河南郑州 450002)
摘要 对观赏植物组织培养无菌培养体系的建立、诱导培养、继代培养、生根培养、移栽驯化等一系列离体快繁的程序以及培养中光温
等培养条件进行了归纳和总结 ,并对观赏植物组织培养中常见问题和措施进行了综述。 关键词 观赏植物 ;组织培养 ;研究现状 ;存在问题 中图分类号 S336 文献标识码 A 文章编号 0517 - 6611(2008) 13 - 05320 - 03
园林植物组织培养 。 3 通讯作者 。 收稿日期 2008204218
一次用于接种的植物材料 ,通常称为外植体 ,根据植物组织 培养原理 ,植物细胞都具有全能性 ,在适宜的条件下能够再 生成完整的植株。因此 ,外植体材料几乎包括了植物的各个 部位 ,大致分为几大类型 : ①胚胎 ; ②器官及器官原基 ; ③组 织 ; ④细胞 ; ⑤原生质体。外植体是决定植物培养成功与否 的重要因素之一 。不同的植物种类 、同一植物的不同器官或 组织以及植株年龄、季节和生理状态的不同 ,其脱分化和再 分化形成植物的能力不同 ,通常木本植物与较大的草本植物 选取茎段作为外植体 。一些草本植物或缺乏明显的茎的植 物 ,可用叶片 、叶柄 、花瓣等作为外植体[4 - 7] 。在选取用于培 养的外植体时 ,应采摘具有较好品种特征且生长健壮植株的 带顶芽或腋芽的幼嫩茎段或枝条作外植体[3] 。一般处于年 幼阶段的实生苗比老龄的容易分化 ,生长的芽比休眠芽容易 分化 ,顶芽比腋芽容易分化[8] 。 1. 3 材料灭菌 由于组织培养是在无菌条件下进行的 ,所 有外植体都必须经消毒灭菌后 ,才能接种到相应的培养基上 进行培养 。不同的外植体 、不同的年龄以及不同的季节所采 取的外植体 ,应选择相应的消毒剂种类、消毒时间和消毒方 法 ,以达到最大限度杀死微生物、最小程度损伤材料的最佳 效果。目前 ,常用的消毒剂有酒精、双氧水、氯化汞、次氯酸 钙 、次氯酸钠等 。一般先用流水冲洗或用洗洁精洗去材料上 的尘土和部分细菌 ,洗时注意不要损伤和弄掉其上幼小嫩 芽 ,然后放入接种室进行消毒并用无菌水冲洗[3] 。具体消毒 方法中茎尖、茎、叶片的消毒步骤如下 : ①消毒前先用清水漂 洗干净或用软毛刷将外植体上的尘埃刷除 ,茸毛较多的用皂 液洗涤 ,然后用流动的清水洗去皂液 ,洗后用吸水纸吸干表 面水分 ; ②进入无菌的接种室 ,用 70 %酒精浸泡外植体 30～ 60 min ; ③取出后马上用 0. 1 %～0. 2 %氯化汞消毒 10～15 min ,或用 10 % 次氯酸钙饱和上清液浸泡 10～20 min ,还可以 用 2 %～10 %次氯酸钠溶液浸泡 6～15 min ; ④消毒后用无菌 水冲 洗 3 ～5 次 , 用 无 菌 纱 布 或 无 菌 滤 纸 吸 干 水 分 后 再 接种[8] 。 1. 4 培养基组成与类型选择 培养基是组织培养苗生存、 发育以致形成完整植株的营养物质 。选用适宜的培养基是 组织培养成功的关键问题之一 。不同的植物种类或同一植 物不同的采集部位 ,其正常生长所需的营养要求不同。有的 需要对培养基做一些改良 ,有的要选用专用培养基。因此应 根据不同的培养目的 (诱导愈伤组织、不定芽 ,分化 ,生根) , 所选用的培养基亦应有所不同 。
第五章 植物离体快速培养 植物快繁
目前已有近400种植物的离体繁殖已获得成功，其中许多具有 种植物的离体繁殖已获得成功 目前已有近 种植物的离体繁殖已获得成功， 重要经济价值的花卉(如兰花、菊花、石竹 、果树(草莓 草莓、 重要经济价值的花卉 如兰花、菊花、石竹)、果树 草莓、无籽 如兰花 西瓜、葡萄 、经济作物(马铃薯 甘蔗)、林木(桉树 杨树)均 马铃薯、 桉树、 西瓜、葡萄)、经济作物 马铃薯、甘蔗 、林木 桉树、杨树 均 已在种苗生产上广泛应用，取得了巨大的经济和社会效益。 已在种苗生产上广泛应用，取得了巨大的经济和社会效益。
四、快繁的应用及局限性
1. 应用 用于加速某些难繁殖或繁殖速度很低的植物， 用于加速某些难繁殖或繁殖速度很低的植物，或某些 需要加速繁殖的特殊基因型，如名贵花卉、优良资源、 需要加速繁殖的特殊基因型，如名贵花卉、优良资源、 工程植株等等。 工程植株等等。 用于自然繁殖极易感染病毒的植物，如马铃薯、甘薯、 用于自然繁殖极易感染病毒的植物，如马铃薯、甘薯、 甘蔗、香蕉、石竹、百合等等。 甘蔗、香蕉、石竹、百合等等。 用于有性繁殖变异范围大而自然条件下又不易无性繁 殖的植物，如非洲菊、花竹、紫罗兰等。 殖的植物，如非洲菊、花竹、紫罗兰等。
2. 快繁应用的局限性
）、培养苗的玻璃化问题 （2）、培养苗的玻璃化问题 ）、培养苗的玻璃化问题(vitrification )
成因：目前没有一致的结论， 成因：目前没有一致的结论，一般认为是试管苗的 生理失调主要是水分状态不适应的症状，实验发现 生理失调主要是水分状态不适应的症状， 水分状态不适应的症状 以下因素对玻璃化有影响。 以下因素对玻璃化有影响。 材料： 材料： 培养条件：液体培养易玻璃化； 培养条件：液体培养易玻璃化；蔗糖浓度和琼脂浓度低可
2. 培养物的增殖
第三章第三节 园艺植物的离体快繁
（四）、马铃薯无病毒株的繁殖
（１） 直接块茎繁殖 （２） 扦插繁殖 （３） 组织培养切段繁殖 A：继代培养 B：低温保存
2010312
（二）茎芽增殖的途径：
1.茎芽增殖的途径
（1）侧芽增殖途径：指利用茎尖及侧芽培养直接获得芽 苗或丛生芽的方法。通过添加细胞分裂素促进侧芽萌发而 形成丛生芽。 （2）不定芽途径：除了利用顶芽和侧芽等固定芽之外， 由根、茎、叶等外植体直接或经脱分化形成愈伤组织后再 分化不定芽的过程进行增殖。
（3）体细胞胚途径：由外植体直接或间接（先形成愈伤 组织）形成胚状体的途径进行快速繁殖。如百合鳞片可 直接形成胚状体；胡萝卜、芹菜先形成愈伤组织，然后 形成胚状体。
（三）玻璃化 1. 玻璃化苗发生的原因： （1）琼脂和蔗糖浓度与玻璃化呈负相关； （2）培养温度过高；（3）生长调节剂浓度过高，如细胞 分裂素过高；（4）培养瓶乙烯浓度过高；（5）光照过 强或与高温同时作用；（6）培养基含氮量高，尤其是 銨态氮。 2. 防治玻璃化的措施： （1）提高培养基硬度；（2）提高培养基蔗糖含量或加入 渗透剂；（3）选用透气瓶盖改善通气状况；（4）降低 生长调节剂和含氮化合物的浓度；（5）适当降低温度； （6）一些添加物或抗生素可降低玻璃化，如马铃薯汁、 活性炭、PP333，CCC等。
马铃薯的脱毒与快繁
马铃薯
微型薯
马铃薯病毒的种类
危害有17种之多，如X病毒、S病毒、Y病毒、 M病毒、A病毒、花叶病毒、纺锤形块茎病毒等。 马铃薯病毒可使块茎产量减少5万公顷， 每年需合格种薯45亿公斤，脱毒原种4亿 公斤，脱毒小薯或微型薯45亿粒。
马铃薯继代培养基：
MS+2. 0 mg/L6BA+0. 2 mg/L NAA+3%蔗糖；
食品中彩椒色素的提取与稳定性研究
食品中彩椒色素的提取与稳定性研究导语：彩椒作为一种常见的蔬菜，富含维生素C和胡萝卜素等营养物质，不仅美味可口，还具有丰富的颜色。
本文将就食品中彩椒色素的提取方法以及色素的稳定性进行研究。
一、彩椒色素的提取方法彩椒的颜色主要来源于其中的胡萝卜素和叶绿素等色素物质。
提取彩椒色素的方法主要有以下几种：1. 溶剂提取法：将彩椒切碎后加入有机溶剂中，如醇类、酮类或醚类溶剂，经浸提、煎煮等操作后，得到彩椒色素的溶液。
此方法适用于一些需要高纯度的彩椒色素提取。
2. 水提取法：将彩椒加入水中，经浸泡、煮沸等操作后，得到水溶性彩椒色素提取液。
此方法适用于一些食品加工中对色素溶解度要求不高的场合。
3. 稀酸处理法：在彩椒中加入稀酸，如盐酸、硫酸等，通过酸性条件下的水解反应，将彩椒中的色素物质转化为溶于水的形式，再用溶剂进行提取。
此方法可以有效提高色素的提取效率。
二、彩椒色素的稳定性研究彩椒色素的稳定性研究对于食品行业来说至关重要，它关系到食品加工过程中色素的保持和色泽的稳定。
目前，研究人员主要关注以下几个方面：1. 光照因素：光照是彩椒色素稳定性的重要影响因素之一。
研究表明，彩椒色素容易受到紫外线的破坏，因此在食品加工中应尽量避免长时间暴露在阳光下或者使用大量的紫外线灯。
2. 温度因素：温度对彩椒色素的稳定性同样有很大影响。
一般来说，较高的温度会加快色素的降解速度。
因此，在食品加工和储存中，应控制好加热和冷藏的温度，以保持彩椒色素的稳定性。
3. 酸碱性因素：彩椒中的色素对酸碱性环境也非常敏感。
酸性条件下，色素容易受到氧化、漂白等反应的影响；碱性条件下，色素的稳定性可以得到一定的保护。
因此，在食品生产中的酸碱处理过程中，应根据彩椒色素的特点来选择合适的处理方法。
4. 氧化因素：彩椒色素的氧化是导致色素变质的重要原因之一。
因此，加工食品过程中应采取适当的防氧化措施，如添加适量的抗氧化剂、减少氧气接触以及选择合适的包装材料等。
辣椒带柄子叶由叶状体实现离体再生
３ ｍｇ ／ Ｌ ） ＋蔗糖 ３ ０ ｇ ／ Ｌ ＋琼脂 ７ ｇ ／ Ｌ培养基培养 ４周可得到伸长的 芽； ＧＡ ３ 是 获得 伸长 芽不可
缺 少的添加物质 ， 其 浓度（ １ 、 ２ 、 ３ ｍｇ ／ Ｌ ） 显著影 响平均伸长 芽数 ， 对伸 长率的影响达到 了极显著水
平； ＭＢ和 ＭＳ基础培 养基对平均伸 长芽数 和伸长 率无显 著影响 ， 但 ＭＢ基础培养基有 利于获得
化培养基 为 ＭＳ ＋Ｂ Ａ ６ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ ＋Ｉ ＡＡ １ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ ＋Ａ ｇ Ｎ０ ３ ６ ． ０ ｍｇ ／ Ｌ ＋蔗糖 ３ ０ ｇ ／ Ｉ ＋琼脂 ７ ｇ ／ Ｉ ，
分化率为 ８ ２ ； 而 叶 状 体 在 ＭＳ ／ ＭＢ＋ Ｂ Ａ ６ ． ０ ａｇ ｒ ／ Ｉ ＋Ｉ ＡＡ ０ ． ５ ａｇ ｒ ／ Ｉ ＋ ＧＡ３ （ ０ 、 １ 、 ２ 、
பைடு நூலகம்
Ｕｎ ｉ ｖ ｅ ｒ ｓ ｉ ｔ ｙ ， Ｑｉ ｎ ｇ ｄ ａ ｏ ， Ｓ ｈ ａ ｎ ｄ ｏ ｎ ｇ ２ ６ ６ １ ０ ９ ； ３ ． Ｑｉ ｎ ｇ ｄ ａ ｏ Ｋｅ ｙ Ｌ ａ ｂ ｏ ｆ Ｇｅ ｒ ｍｐ ｌ ａ ｓ ｍ Ｉ ｎ ｎ ｏ ｖ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ａ ｎ ｄ Ａｐ ｐ ｌ ｉ ｃ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｏ ｆ Ｍａ ｊ ｏ ｒ Ｃ ｒ ｏ ｐ ｓ ， Ｑｉ ｎ ｇ ｄ ａ ｏ ， Ｓ ｈ ａ ｎ ｄ ｏ ｎ ｇ
摘
要： 以“ 黔椒四号” 辣椒带柄子 叶为外植体 ， 采用正交 实验设计研 究了辣椒 离体培 养 中带
柄子叶外植体叶状体的发 生以及进一 步获得伸 长芽进 而获得 再生植株 的方 法。结 果表 明 ： Ｂ Ａ、 Ｉ Ａ Ａ和 Ａｇ Ｎ 均显著影响带柄子 叶的分化 ， 其影响作用大小依次为 ： Ｂ Ａ ＞Ａ ｇ Ｎ Ｏ ￣ ＞Ｉ ＡＡ， 最佳分
整枝有一套 彩椒产量高
整枝有一套彩椒产量高
在上口镇采访时，记者发现部分菜农因为整枝不合理致使植株形成旺了棵子不坐果的现象。
在记者看来，整枝的目的不仅是为了增加通风透光度，同时也调节了植株的生长势，使其形成壮棵，这在越冬一大茬彩椒上尤其重要。
那么当前菜农朋友们在操作上存在哪些问题呢？
这还要从菜农所熟悉的整枝方法说起，对于越冬一大茬彩椒来说，种植后棚内温湿度适宜，营养供应充足，植株长势健壮，一般留下四条主枝结果，而第一茬果采收后(此时多是第二年春天)为使植株尽快恢复生长，提早结果，这时多疏除两条生长较弱的结果主枝，留下另外两条强壮的主枝结果，以使根系吸收的营养集中供应两条结果主枝生长，减少了营养消耗，利于提高彩椒植株的生长势，培育壮棵。
有些菜农在第一批果实坐住后，就疏除主枝上的侧枝，果实下面的侧枝也全部摘除，而对于果实上部的侧枝除保留部分已经坐果的侧枝外，也全部疏除，这是不正确的。
因为前期任务是要培育壮棵，只有培育出壮棵才能保证整个生长期的产量和品质，过早疏除侧枝，不仅制造的有机营养少，而且也无法形成壮棵。
为何由四主枝结果改为两主枝结果，这样做又有何优势呢？
春节后彩椒价格高，主要原因就是上市量少，品质差，而改为两主枝后能保证植株营养集中供应，棵子健壮了才能保证连续结果，从
而避免了年后植株营养供给不足，畸形果多的情况发生。
第三章第三节园艺植物的离体快繁
2. 控制污染的措施：
（1）灭菌时充分排净锅内冷空气；（2）接种器具充分灼烧； （3）污染外植体及时挑出，灭菌后倒掉。外植体材料少 可二次处理；（4）接种时用75%乙醇擦拭双手和培养容 器，操作区不放置过多的培养容器；
(5) 接种室定期熏蒸或消毒液处理；并采用紫外灯进行空气 杀菌；（6）超净工作台定期清洗过滤网。
（4）培养基组成及激素配比: 选择适宜的基本培养基，草本 植物选用MS等，木本植物选用WPM等培养基。激素和生长 调节剂浓度比例需注意在不同培养阶段进行合理使用。
三、离体快繁中常见的问题：
（一）污染
1. 污染发生的原因：
（1）培养基和接种用具灭菌不彻底；（2）外植体灭菌不彻 底；（3）操作时人为带入；（4）接种室环境不洁净； （5）超净工作区域不洁净。
（4）原球茎途径：兰科花卉的种子萌发形成原球茎，由 茎尖、叶片等外植体可诱导形成类原球茎，并可快速增 殖。
大花蕙兰原球茎增殖与植株再生
2. 影响茎芽增殖的因素：
（1）植物种类：草本植物速度快，木本植物增殖慢。
（2）外植体的生理状态：生长旺盛组织增殖快。
（3）表面灭菌时的受伤害程度: 表面灭菌剂对外植体伤害轻， 启动快，伤害重，启动慢。
取试管苗单节切段扦插在（或平放）固体培 养基上，每瓶可插20个左右茎段，经20d左右发 育成5~10cm高小植株，继续进行切段繁殖，此 法速度快，每月可繁殖5~8倍，试管苗多节接种 在液体培养基上，进行浅层静止液体培养。
马铃薯继代培养基：
MS+2. 0 mg/L6BA+0. 2 mg/L NAA+3%蔗糖； 20-25℃，3000-4000LX，14-16hr光照； 每3周继代一次，单芽茎段约1厘米； 原则试管苗用2年—3年。
（1）灭菌时充分排净锅内冷空气；（2）接种器具充分灼烧； （3）污染外植体及时挑出，灭菌后倒掉。外植体材料少 可二次处理；（4）接种时用75%乙醇擦拭双手和培养容 器，操作区不放置过多的培养容器；
(5) 接种室定期熏蒸或消毒液处理；并采用紫外灯进行空气 杀菌；（6）超净工作台定期清洗过滤网。
（4）培养基组成及激素配比: 选择适宜的基本培养基，草本 植物选用MS等，木本植物选用WPM等培养基。激素和生长 调节剂浓度比例需注意在不同培养阶段进行合理使用。
三、离体快繁中常见的问题：
（一）污染
1. 污染发生的原因：
（1）培养基和接种用具灭菌不彻底；（2）外植体灭菌不彻 底；（3）操作时人为带入；（4）接种室环境不洁净； （5）超净工作区域不洁净。
（4）原球茎途径：兰科花卉的种子萌发形成原球茎，由 茎尖、叶片等外植体可诱导形成类原球茎，并可快速增 殖。
大花蕙兰原球茎增殖与植株再生
2. 影响茎芽增殖的因素：
（1）植物种类：草本植物速度快，木本植物增殖慢。
（2）外植体的生理状态：生长旺盛组织增殖快。
（3）表面灭菌时的受伤害程度: 表面灭菌剂对外植体伤害轻， 启动快，伤害重，启动慢。
取试管苗单节切段扦插在（或平放）固体培 养基上，每瓶可插20个左右茎段，经20d左右发 育成5~10cm高小植株，继续进行切段繁殖，此 法速度快，每月可繁殖5~8倍，试管苗多节接种 在液体培养基上，进行浅层静止液体培养。
马铃薯继代培养基：
MS+2. 0 mg/L6BA+0. 2 mg/L NAA+3%蔗糖； 20-25℃，3000-4000LX，14-16hr光照； 每3周继代一次，单芽茎段约1厘米； 原则试管苗用2年—3年。
第五章 植物离体快速培养 植物快繁
2. 培养物的增殖
增殖方式： 增殖方式：
不定芽增殖 腋芽增殖
愈伤组织 增殖
体细胞胚增殖
）、不定芽增殖 （1）、不定芽增殖 ）、
不定芽：从现存的芽以外的任何器官、 不定芽：从现存的芽以外的任何器官、组织上通过器 官发生重新形成的芽称之为不定芽。 官发生重新形成的芽称之为不定芽。 特点： 特点：繁殖系数高 遗传稳定性较好 继代次数有限 注意事项：激素浓度不能过高；避免使用 ， 注意事项：激素浓度不能过高；避免使用2，4-D等活 等活 性强的生长素，以减少变异发生。 性强的生长素，以减少变异发生。
（4）. 体细胞胚增殖 ）
特点：增长率高；双极性免去生根环节。 特点：增长率高；双极性免去生根环节。 问题：胚状体休眠的诱导和解除还难以把握； 问题：胚状体休眠的诱导和解除还难以把握； 部分物种胚状体诱导困难且成苗率仍不高。 部分物种胚状体诱导困难且成苗率仍不高。 这一途径仅适用于少量植物。 这一途径仅适用于少量植物。
引起玻璃化；还原态氨浓度高容易引起玻璃化； 引起玻璃化；还原态氨浓度高容易引起玻璃化；细胞分裂素 容易引起玻璃化 浓度过高；通气不良等。 浓度过高；通气不良等。
）、培养苗的玻璃化问题 （2）、培养苗的玻璃化问题 ）、
解决措施： 解决措施： 固体培养，提高光照强度，降低湿度。 固体培养，提高光照强度，降低湿度。 提高培养基中蔗糖和琼脂浓度，降低 4+浓度。 提高培养基中蔗糖和琼脂浓度，降低NH 浓度。 加入添加剂：如活性碳、多效锉。 加入添加剂：如活性碳、多效锉。 降低培养基中细胞分裂素含量， 降低培养基中细胞分裂素含量，可以考虑加入适量 脱落酸。 脱落酸。
快速繁殖（ 快速繁殖 （rapid clone propagation）： 也叫 离体繁 ） 也叫离体繁 殖 （ in vitro propagation ） 、 微 体 繁 殖 （ Micropropagation） ， 是指在无菌条件下 ， 将植物 ） 是指在无菌条件下， 体的器官、组织或细胞培养于人工培养基中，并辅以人 体的器官、组织或细胞培养于人工培养基中， 工控制环境，使其生长出完整植株的繁殖技术。 工控制环境，使其生长出完整植株的繁殖技术。
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分类号
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彩 椒 ；离 体 快 繁 ：组 培
￥ ６ ４ １ ． ３
Ｉ ｎ ｖ ｉ ｔ ｒ ｏ Ｐ ｒ ｏ ｐ ａ ｇ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｏ ｆ Ｓ ｗｅ ｅ ｔ Ｐ ｅ ｐ ｐ ｅ ｒ （ Ｃ ａ ｐ ｓ ｉ ｃ ｕ ｍ ａ ｎ ｎ ｕ ｕ ｍ Ｌ ． ）
ＷＵ Ｂ ｅ ｉ Ｚ ＨＯＵ Ｊ ｕ ａ ｎ Ｄ ＡＩ Ｘ ｉ ｕ ｃ ｈ ｕ ｎ ＺＯＵ Ｊ ｉ ｗｅ ｎ Ｌ ｌ Ｕ Ｓ ｈ ａ ｏ ｑ ｉ ｎ
Ｋｅ ｙ ｗｏ ｒ ｄ ｓ Ｓ ｗ ｅ ｅ ｔ ｐ ｅ ｐ ｐ ｅ ｒ（ Ｃ ｐｓ ａ ｉ ｃ ｕ ｍ ａ ｎ ｎ ｕ ｕ ｍ Ｌ ． ）；ｒ ａ ｐ ｉ ｄ ｐ ｒ ｏ ｐ ａ ｇ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｉ ｎ ｖ ｉ ｔ ｒ ｏ
ｇ ｒ ｏ ｐｅ ｄ ｏ ｎ ｔ ｈ ｅ ｃ ａ ｌ ｌ ｕ ｓ ｉ ｎｄ ｕ ｃ ｔ ｉ ｏ ｎ， ａ ｄ ｖ ｅ ｎ ｔ ｉ ｔ ｉ ｏ ｕ ｓ ｂ ｕ ｄ ｄ ｉ ｆｅ ｒ ｅ ｎ ｔ ｉ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ａ ｎ ｄ ｅ ｌ ｏ ｎ ｇ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ． Ｔｈ ｅ ｒ ｅ ｓ ｕ ｌ ｔ ｓ ｓ ｈ ｏ ｗｅ ｄ ｔ ｈ ａ ｔ ｈｅ ｔ
２ ０ １ ３年 ３月
Ｍａ ｒ ．２ ０１ ３
热 带 农 业 科 学
ＣＨＩ ＮＥＳ Ｅ Ｊ ＯＵＲＮＡＬ ＯＦ Ｔ ＲＯＰ Ｉ ＣＡＬ ＡＧＲＩ ＣＵＬ Ｔ ＵＲＥ
第 ３ ３卷 第 ３期
Ｖｏ １ ． ３ ３ ，Ｎ ｏ ． ３
彩 椒 的离 体 快 繁 研 究①
吴 蓓② 周 娟 戴 修 纯 邹 集 文 刘 绍钦
（ 广 东省 广 州市农 业科 学研 究 院 广 东广 州 ５ １ ０ ３ ０ ８ ）
摘 要 以 红 盾 彩 椒 为 试 材 ．进 行 组 培 快 繁 ，研 究 不 同激 素 类 型 与 配 比组 合 对 愈 伤 组 织诱 导 、不 定 芽 分 化 及 芽
的 伸 长 的 影 响 ．并 初 步 建 立 彩 椒 的 组 培 快 繁 体 系 。 结 果 表 明 ：子 叶 愈 伤 诱 导 最 适 培 养 基 为 ：Ｍ Ｓ ＋Ｏ ． ３ ｍ ｇ ／ Ｌ
ｍ Ｎ ＡＡ ；ｔ ｈｅ ａ ｐ ｐ ｒ ｏ ｐ ｒ ｉ ａ ｔ ｅ ｍｅ ｄ ｉ ｍ ｕ ｏｒ ｆ ｈｅ ｔ ａ ｄ ｖ ｅ ｎ ｔ ｉ ｔ ｉ ｏ ｕ ｓ ｂ ｕｄ ｓ ｆ ｏ ｒ ｍａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｗａ ｓ ＭＳ ＋３ ． ０ ｍｇ ／ Ｌ ６ － ＢＡ ＋ ０ ． ５
６ 一 Ｂ Ａ ＋１ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｎ Ａ Ａ ：不 定 芽诱 导 最 适 培 养 基 为 ：Ｍ Ｓ ＋３ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ ６ － Ｂ Ａ ＋Ｏ ． ５ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｉ 从 ＋４ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ Ａ ｇ Ｎ Ｏ ３ ；芽 伸 长 最 适 培 养 基 为 ：Ｍ Ｓ ＋２ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ ６ － Ｂ Ａ ＋Ｏ ． ２ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｉ 从 ＋２ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｚ Ｔ ＋２ ． ０ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｇ Ａ ３ ；最后在 １ ／ ２ Ｍ Ｓ ＋Ｏ ． ５ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｉ Ｂ Ａ （ 或０ ． ５ ｍ ｇ ／ Ｌ Ｎ Ａ Ａ ） 培 养 基 上 进 行 生 根 培 养 关键词
ｑ ｕ ｅ ｎ ｃ ｙ ｒ ｅ ｇ ｅ ｎ ｅ ｒ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｓ ｙ ｓ ｔ ｅ ｍ，ａ ｎ ｄ ｔ ｈｅ ｅ ｆｅ ｃ ｔ ｓ ｏ ｆ ｄ ｉ ｆｅ ｒ ｅ ｎ ｔ ｈｏ ｒ ｍｏ ｎｅ ｃ ｏ ｍｂ ｉｔ ｕ ｒ ｅ ｍｅ ｄ ｉ ｕ ｍ ｗｅ ｒ ｅ