蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和分离
磁性亲合分离法纯化胰蛋白酶

胰蛋 白酶 ( rp i, C3 2 .)是一种 蛋 白水解 Ty s E . 1 n 4 4 酶(rt s) Po ae,具有 蛋 白水解 酶的通性 。胰 蛋 白酶的专 e
一
能共价键 结合亲和 配基 ,还 因具有磁性 ,在 外加磁场 的作用 下,进行快速 运动或分 离, 因而 引起众 多研究 人员 的广泛 关注L 。 2 本文采用 简单、 易行 的方法,制备 出具活性 基团的 高磁性 壳聚 糖微粒 、共价 偶联抑肽 酶 ,应用于胰 蛋 白 酶的亲和纯化 , 纯化倍 数为 1 2 活 性回收率为4 . ., 7 1 2%, 实验结果表 明,高磁性壳聚糖微 粒可用作亲和 吸附剂 。
第七组 从蛋清中提取溶菌酶并分离纯化的实验方案

分子生物学实验设计方案蛋清溶菌酶的分离纯化·············蛋清溶菌酶的分子量鉴定···········组长:喻芳组员:蒙秋萍安贵杰何玉叶刘飞从蛋清中提取溶菌酶并分离纯化【实验目的】1. 掌握离子层析分离纯化溶菌酶的原理以及离子交换层析的操作方法2. 理解SDS-聚丙烯酰胺凝胶(PAGE)测定蛋白质纯度与分子量的原理3. 掌握电泳原理以及SDS-PAGE垂直板电泳分离蛋白质技术【实验原理】溶菌酶(lysozyme)是由弗莱明在1922年发现的,它是一种有效的抗菌剂,全称为1,4-β-N-溶菌酶,又称作粘肽N-乙酰基胞壁酰水解酶或胞壁质酶。
活性中心为天冬氨酸52和谷氨酸35,是一种糖苷水解酶,能催化水解粘多糖的N-乙酰氨基葡萄糖(NAG)与N-乙酰胞壁酸(NAM)间的β-1,4糖苷键,相对分子质量14700Da,由129氨基酸残基构成,由于其中含有较多碱性氨基酸残基,所以其等电点高达10.8左右,最适温度为50O C,最适PH为6~7左右。
在280nm 的消光系数[%1cm1A]为13.0。
该酶活性可被一些金属离子Cu2+、Fe2+、Zn2+(10-5~10-3M)以及N-乙酰葡萄糖胺所抑制,能被Mg2+、Ca2+(10-5~10-3M)、NaCl所激活。
溶菌酶广泛存在于动植物及微生物体内,鸡蛋(含量约为2%~4%)和哺乳动物的乳汁是溶菌酶的主要来源,目前,溶菌酶仍属于紧销的生化物质,广泛应用于医学临床,具有抗感染、消炎、消肿、增强体内免疫反应等多种药理作用。
鸡蛋的蛋清中含有丰富的上述物质,本文实验以鸡蛋蛋清为原料,对溶菌酶进行提取并分离纯化。
溶菌酶常温下在中性盐溶液中具有较高天然活性,在中性条件下溶菌酶带正电荷,因此在分离制备时,先采用等电点法粗分离,再用DE-52纤维素离子交换色谱和葡聚糖G50凝胶层析分离纯化,最后用SDS-PAGE鉴定。
鸡蛋中溶菌酶的提取

鸡蛋中溶菌酶的提取,纯化及纯度鉴定李莹姝蒋华云*(南京师范大学生命科学学院,南京 210046)摘要:从蛋清中用724弱酸性阳离子交换树脂提取溶菌酶,然后用硫酸铵溶液洗脱,盐析得到溶菌酶。
用葡聚糖凝胶层析(SephadexG-75)纯化溶菌酶,收集峰值处样品。
用SDS-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳鉴定个步骤留样及所得溶菌酶样品的纯度。
溶菌酶得率为0.0474mg/100ml(0.03g/kg);葡聚糖凝胶层析过程纯化样品得到了洗脱峰曲线,但未能收集到峰值处样品;电泳结果显示在纯化过程中溶菌酶纯度不断升高。
本实验溶菌酶得率较低,提取工艺有待改进,需进一步减少样品损失;层析过程需进一步熟练掌握,以更好达到纯化效果。
关键词:溶菌酶;离子交换树脂,凝胶层析;SDS-PAGEExtraction, purification and purity of Egg lysozymeYings Li Huay Jiang*(College of Life Science, Nanjing Normal University, Nanjing 210046, China)Abstract:From egg white, with 724 weak acid cation exchange resin extraction of lysozyme, and then eluted with ammonium sulfate, salting to be lysozyme. With dextran gel chromatography (SephadexG-75) purified lysozyme, the peak of the sample collection. By SDS-polyacrylamide gel (SDS-PAGE) electrophoresis and identified steps to stay kind of purity of the samples from lysozyme. Lysozyme yield 0.0474mg/100ml (0.03g/kg); dextran gel chromatography purified samples obtained during elution peak curve, but failed to collect samples at the peak; electrophoresis showed that the purification process of lysozyme enzyme purity rising. In this study, lysozyme was the low rate of extraction process could be improved, the need to further reduce sample losses; chromatography process needs further proficiency in order to better achieve purification.Key words:lysozyme, Ion exchange resin, Gel chromatography, SDS-PAGE溶菌酶( Lysozyme , 1,4-β-N-溶菌酶) 是一种专门作用于革兰氏阳性菌细胞壁中肽聚糖的β-1,4- 糖苷键的水解酶, 因而又称为胞壁质酶或者N- 胞壁质聚糖水解酶。
鸡蛋溶菌酶提取实验报告

一、实验目的1. 掌握鸡蛋溶菌酶的提取方法。
2. 了解溶菌酶的性质和功能。
3. 培养实验操作技能,提高实验分析能力。
二、实验原理溶菌酶(Lysozyme)是一种广泛存在于生物体内的碱性蛋白质,主要来源于鸟类的蛋清、哺乳动物的泪液、唾液等。
溶菌酶具有水解细菌细胞壁的作用,能够有效抑制细菌生长,具有抗菌、消炎、抗病毒等作用。
本实验采用鸡蛋清作为溶菌酶的提取原料,通过酶解、离心、透析等步骤提取溶菌酶。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:新鲜鸡蛋、NaCl、NaOH、丙酮、硫酸铵、蒸馏水等。
2. 实验仪器:高速离心机、恒温水浴锅、玻璃棒、烧杯、漏斗、滤纸、透析袋等。
四、实验步骤1. 酶解:将新鲜鸡蛋打破,取出蛋清,加入适量的NaCl溶液(浓度为0.5mol/L),搅拌均匀,置于恒温水浴锅中,温度控制在37℃,酶解1小时。
2. 离心分离:将酶解后的溶液以3000r/min的速度离心10分钟,收集上清液。
3. 盐析:在上清液中加入适量的硫酸铵固体,搅拌溶解,使蛋白质沉淀。
静置2小时,收集沉淀。
4. 透析:将沉淀用蒸馏水洗涤,去除杂质,然后将其放入透析袋中,置于蒸馏水中,透析24小时,去除小分子物质。
5. 浓缩:将透析后的溶液在50℃下减压浓缩,使蛋白质浓度提高。
6. 纯化:将浓缩后的溶液加入适量的丙酮,使蛋白质沉淀。
静置2小时,收集沉淀。
7. 干燥:将沉淀在50℃下真空干燥,得到溶菌酶粉末。
五、实验结果与分析1. 酶解过程中,蛋清逐渐变得透明,表明溶菌酶开始释放。
2. 离心分离后,上清液中溶菌酶浓度较高,下清液中含有其他杂质。
3. 盐析过程中,蛋白质沉淀较多,表明溶菌酶在硫酸铵溶液中具有较好的溶解性。
4. 透析过程中,透析袋中的溶液逐渐变得清澈,表明小分子物质已被去除。
5. 浓缩过程中,蛋白质浓度逐渐提高,有利于后续的纯化。
6. 纯化过程中,丙酮沉淀的蛋白质较多,表明溶菌酶在丙酮中具有较好的溶解性。
7. 干燥后,得到白色粉末,表明溶菌酶已被成功提取。
溶菌酶表面印迹磁性纳米颗粒的制备与吸附性能表征

溶菌酶表面印迹磁性纳米颗粒的制备与吸附性能表征杨戍;张鑫;姜锐;孙立权;罗爱芹【摘要】由于蛋白质分子本身的大分子体积和易变性空间结构,导致蛋白质印迹研究目前仍然面临重大挑战.本文提出一种制备磁性蛋白质表面印迹新方法.首先以溶剂热法一步合成羧基修饰的磁性内核,然后一步实现表面双键修饰,最后以改进的丙烯酰胺印迹体系实现印迹包裹.这种制备方法避免了多步修饰带来的纳米颗粒交联和包裹层过厚等问题.高的饱和磁感应强度表明磁性纳米颗粒具有非常快速的磁响应.吸附实验结果表明Ⅰ表面印迹聚合物能在10min达到吸附平衡,具有非常快的吸附动力学性能,且符合准二级吸附动力学模型.进一步吸附选择性实验结果显示印迹聚合物具有选择性吸附目标蛋白.【期刊名称】《生命科学仪器》【年(卷),期】2016(014)003【总页数】6页(P40-45)【关键词】溶菌酶;表面印迹;磁性纳米颗粒;吸附性能【作者】杨戍;张鑫;姜锐;孙立权;罗爱芹【作者单位】北京理工大学生命学院,北京 100081;北京理工大学生命学院,北京100081;北京理工大学生命学院,北京 100081;北京理工大学生命学院,北京100081;北京理工大学生命学院,北京 100081【正文语种】中文【中图分类】TQ028.1分子印迹应用于蛋白选择性识别常见的印迹体系丙烯酰胺自由基聚合印迹体系,sol-gel印迹体系,苯硼酸印迹聚合体系,多巴胺自聚合体系,壳聚糖印迹聚合体系等。
这其中基于丙烯酰胺的印迹聚合体系以其功能多样、适应性强,是蛋白印迹中最常用的[1]。
基于丙烯酰胺印迹体系制备的蛋白分子印迹聚合物在多个方面得到应用,如作为毛细管电泳基质[2],制备整体柱[3],实现目标蛋白的识别与释放控制[4],硅胶微球表面的蛋白质印迹[5],磁性纳米颗粒表面的蛋白质印迹[6,7],作为选择性识别单元应用于传感器中[8],作为重结晶晶核[9]等。
这其中基于磁性内核表面印迹的研究备受关注。
蛋壳提取溶菌酶技术

蛋壳提取溶菌酶技术
赵荒
【期刊名称】《农经》
【年(卷),期】1994(000)009
【摘要】一、家庭提取溶菌酶技术(一)抽提:1公斤蛋壳敲碎,置于玻璃缸或陶瓷盆内,加750mL1%的氢氧化钠和0.5N盐酸混合加热至40℃间隔搅拌。
使pH值保持在6左右(用pH试纸测试)。
如pH高于6,可滴加2N盐酸调节,30分钟后用尼龙窗纱过滤,滤液收集待用,蛋壳再重复用5mL溶液进行提取。
(二)去杂蛋白:合并2次的滤液,加20%醋酸调pH值至4.6,并预先准备好沸水,将滤液加热至75℃,然后用流动冷水速冷至室温,沉淀5~10小时,除去沉淀(杂蛋白)收集上清液。
(三)分离提取溶菌酶:把上述清液用氢氧化钠调pH值至6左右,滴加100%聚丙烯酸,用量为清液体积的1/4,慢慢搅拌,当凝物出现后,溶液的pH值为3左右,静置30分钟,凝聚物粘附于容器底部,倒去上层清液加入5mL蒸馏水,并滴加少量的纯碱,使凝聚物溶解,调pH值至4左
【总页数】1页(P36-36)
【作者】赵荒
【作者单位】沈阳辽中化工总厂
【正文语种】中文
【中图分类】TS253.9
【相关文献】
1.鸡蛋提取溶菌酶技术 [J], 吴峰
2.蛋清提取溶菌酶技术 [J], 王敏
3.从蛋清浓厚蛋白中提取溶菌酶技术的研究 [J], 金茜;宋美娜;仝其根
4.从蛋清浓厚蛋白中提取溶菌酶技术 [J], 金茜;宋关娜;仝其根
5.蛋清提取溶菌酶技术 [J], 齐晓岑
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
鸡蛋清溶菌酶的提取及电泳鉴定

进口溶菌酶,存在着价格较高,进口环节复杂等诸 多方面的限制。
国产溶菌酶工业刚刚起步,生产规模小,工业水平 落后,产品的质量与国际标准差距较大。存在提取 率低,处理量小和产品比活低等缺点。
我国是世界上最大的产蛋国家,原料来源丰富,目 前鲜蛋基本作为初级食品食用,深加工不足。而发 达国家的鲜蛋加工业可以加工较高,得到的溶菌酶纯度高,还能分离纯化经化学修饰 而失活的溶菌酶以及具活性的溶菌酶,亦能用于检测酶与底物相结合的 氨基酸残基。对于浓缩与精制微量的溶菌酶,区分天然溶菌酶和修饰酶, 或探索与底物结合的酶分子氨基酸残基状况等问题,这是很有效的方法。 缺点: 由于亲和吸附剂的制作较为复杂,成本高,而且操作难度大,限制了它 在工业上的大规模利用。
目前美国、加拿大、荷兰、法国、德国、丹麦、意 大利、日本等国家均生产溶菌酶,其产量与日俱增。 近年来,溶菌酶被用作天然防腐剂,极大的促进了 其市场需求,每年以10%的速率增长,现在市场规模 约为700吨。
我国的食品工业、精细化工业、医药工业对溶菌酶 具有较大的需求。我国于上世纪70年代采用离子交 换法生产溶菌酶。
(2)非酶学测定法: 电泳法使用历史较长,测定的溶菌酶含量包括有活 性及失去活性的溶菌酶总量。
免疫法技术的发展而产生的。此类方法灵敏度高, 为定性也较好。但是这类方法需要制备抗体,实验 条件较酶学法复杂,因此大大限制了该类方法的应 用。
盐析法
1878年Hammarster首次使用,是粗分离蛋白质的重 要方法之一。
价廉易得,分段效果比其他盐好,性质温和,即使浓 度很高时也不会影响蛋白质的生物学活性。
实际工作中将饱和硫酸铵溶液的饱和度定为100%或1。 盐析某种蛋白质成分所需的硫酸铵数量折算成100%或 1饱和度的百分之几,即称为为该蛋白盐析的饱和度。
蛋清溶菌酶分离实验报告

一、实验目的1. 学习和掌握溶菌酶的提取、分离纯化技术。
2. 掌握电渗析/超滤内在耦合(EDUF)技术在分离蛋白中的应用。
3. 分析实验过程中影响分离效果的因素,优化实验条件。
二、实验原理溶菌酶(Lysozyme)是一种天然碱性蛋白质,具有抗菌、消炎和抗病毒等功能。
溶菌酶广泛存在于鸡蛋清中,含量丰富。
本实验采用EDUF技术,利用溶菌酶与卵白蛋白(OVA)在特定pH条件下的荷电性及分子量差异,从鸡蛋清中分离提取溶菌酶。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:鸡蛋清、PVDF100超滤膜、氯化钠、磷酸缓冲液、溶菌酶标准品等。
2. 实验仪器:电渗析/超滤装置、电子天平、pH计、分光光度计、离心机、恒温水浴锅等。
四、实验步骤1. 预处理:将鸡蛋清用4层纱布过滤,去除杂质。
2. 调节pH值:将过滤后的鸡蛋清用1 mol/L的HCl溶液调节pH值至7.0。
3. 电渗析/超滤:将调节pH值后的鸡蛋清加入EDUF装置中,设置操作电压为5.0V,原料室和回收室料液流量均为50mL/min,进行电渗析/超滤。
4. 收集溶菌酶:将电渗析/超滤后的溶液用离心机离心,收集沉淀。
5. 纯化:将沉淀用磷酸缓冲液(pH值为8.0)溶解,通过离子交换树脂纯化溶菌酶。
6. 活性测定:采用分光光度法测定溶菌酶的活性。
五、实验结果与分析1. 溶菌酶回收率:在操作电压为5.0V,采用PVDF100超滤膜,原料室和回收室料液流量均为50mL/min的条件下,溶菌酶的回收率可达21.05%。
2. 溶菌酶纯度:经纯化处理后,溶菌酶的纯度可达100%。
3. 溶菌酶活性:通过分光光度法测定,溶菌酶的活性为2.30U/mg。
4. 影响分离效果的因素分析:(1)pH值:溶菌酶在pH值为8.0时活性最高,因此在纯化过程中将pH值调节至8.0。
(2)操作电压:操作电压越高,溶菌酶的回收率越高,但电压过高会导致溶菌酶变性,因此选择5.0V为最佳操作电压。
(3)超滤膜材料:PVDF100超滤膜对溶菌酶的截留效果较好,因此选择该膜材料。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
第26卷第4期2005年10月 华南农业大学学报Journa l o f South Chi na A gr i cultural U niversity V o.l 26,N o .4O ct .2005收稿日期:2004-11-08 作者简介:王炜军(1970-),男,副教授,博士;E -m a i:l w ang w e ij un @scau .edu .cn 基金项目:广东省教育厅科研项目资助(200008)蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和分离王炜军,方 颖,黄国林(华南农业大学生命科学学院,广东广州510642)摘要:采用包埋法制备了具有磁响应性能的几丁质凝胶亲和吸附介质,并对其颗粒表观结构、吸附特性等物化特性进行了分析.试验表明:介质中的F e 3O 4颗粒对杂蛋白存在非特异性吸附,而含醋酸铵的磷酸盐缓冲液的充分洗涤可有效消除非特异性吸附.利用此介质所建立的方法对蛋壳清洗液中的溶菌酶进行了分离.结果表明:通过外加磁场可快速地实现亲和吸附介质与粘稠清洗液及其中蛋壳碎片和泥沙等固形物杂质的分离,大大简化了操作步骤,酶活力回收可达26%,纯化酶对蛋白的比活性为50894U /m g ,经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳显示单一条酶蛋白带.关键词:溶菌酶;磁性亲和吸附;蛋壳清洗液中图分类号:Q 503 文献标识码:A 文章编号:1001-411X (2005)04-0062-05Separati ng lysozy m e fro m eggshell usi ng m agneticaffinity adsorption m ediu mWANG W e-i j u n ,FANG Y ing ,HUANG Guo -li n(Co llege o f L ife Sc i ence ,South China A gr i c .U n i v .,G uangzhou 510642,China)Abst ract :The chiti n ge l a ffi n ity adsorpti o n m ediu m w ith the m agnetic response w as prepared by e m bed -d i n g m ethod ,and its apparent structure and adsorption characteristic w ere deter m i n ed .The results sho w ed that the po w der of Fe 3O 4in the m ed i u m could non -specifica lly adsorb non -target pr o te i n wh ich cou l d be overco m e by bei n g w ashed tho r ough ly in NH 4Ac contai n i n g sod i u m-phosphate buffer ,and lysozy m e cou l d be iso lated d irectly fro m w ash i n g solution o f eggshe l.l It suggested t h at t h e a ffi n ity adsorpti o n m ediu m could be separated quick l y i n added m agnetic field fro m the so li d -particles such as p i e ces o f eggshe ll and sands ,wh ich greatly si m p lified t h e procedure o f lysozy m e purificati o n .The purifi e d lysozy m e sho w ed a si n g le prote i n band in SDS -P AGE ,the recovery rate o f its tota l acti v ity w as 26%,and the spec ific activity reached 50894U /m g .K ey w ords :lysozy m e ;m agnetic affi n ity adsorpti o n;w ash i n g so l u tion of eggshell 溶菌酶(l y sozy m e ,EC3.2.1.17)在食品、日用化工和医药上具有广泛的用途.采用几丁质衍生物亲和层析法制备溶菌酶已有不少报道[1~6],如:几丁质粉、羧甲基几丁质、几丁质包埋纤维素、脱氨几丁质粉、N-酰化壳聚糖、脱氨再生几丁质凝胶.磁性介质已被广泛用于分离细胞及核酸、蛋白质等生物大分子和激素等小分子生物活性物质.其优点在于通过外磁场的作用可快速地实现固液及磁性介质与其他固形物杂质间的分离,尤其是当待分离的液体样品含有固形物或较为粘稠时更显现其优越性.蛋壳上残留有大量的蛋清,是制备溶菌酶的潜在资源,但蛋壳清洗液中常混有泥沙、蛋壳和蛋壳膜碎片等杂质,且粘度较大,采用一般的亲和层析时易造成层析柱的堵塞.本研究在原有亲和凝胶介质的基础上进一步制备了具磁性的几丁质凝胶亲和介质,并探讨了此介质用于蛋壳清洗液中残留溶菌酶的分离.1材料与方法1.1材料与试剂鸡蛋壳(收集于华南农业大学兽药厂),Fe3O4颗粒(广东台山化工厂),壳聚糖(中国科学院广州化学研究所),考马斯亮蓝G-250(Fluka公司),溶壁微球菌M icrococcus ly so d eikticus(Sig m a公司),低相对分子质量标准蛋白(上海丽珠生化试剂公司),其余的均为国产分析纯试剂或生化试剂.环型铁氧体磁铁(d外=6.0c m,d内=3.2c m,h= 5.0c m,深圳圣磁有限公司)最大表场为0.1067T,包被圆型铁氧体磁铁的带环型条纹塑料外套(订制).1.2方法1.2.1溶菌酶磁性亲和介质的制备采用Fe3O4颗粒包埋法:将Fe3O4于烘箱干燥研细,过200目筛;取5g脱乙酰几丁质,按王炜军等[7]方法制成其醋酸-甲醇溶液,再加入10g上述Fe3O4粉末,搅拌30 m in(不可用磁力搅拌)使Fe3O4粉末分布均匀后,加入12.5mL的乙酸酐,迅速混匀,静置60m i n,待壳聚糖醋酸溶液充分凝胶化后,在高速组织捣碎机中将凝胶捣碎至一定大小的颗粒,然后用环型铁氧体磁铁作为外磁场收集并筛选具良好磁响应的颗粒,再经脱氨等处理即得亲和吸附介质[4],4e保存备用.1.2.2磁性亲和介质颗粒结构的观察凝胶整体结构采用O l y m pus SZH立体镜观察,凝胶颗粒表面结构的观察使用Phili p s XL-30ESE M环境扫描显微镜,凝胶颗粒中Fe3O4包埋状况的观察采用JE M-100CX型透射电镜(日本).1.2.3磁性亲和介质层析相关特性的分析单位干质量介质床体积和介质的吸水值的测定:取适量介质在蒸馏水中自然沉降于量筒中,静置2h,记录介质的床体积,然后抽滤除去多余的水分,称量得介质的湿质量,再全部倒入培养皿中,110e烘干至恒质量,称量得介质的干质量,重复测定3次取平均值.其中:单位干质量介质的床体积(mL/g)=介质的床体积/介质干质量;单位干质量介质的吸水值(g/g)=(介质的湿质量-介质干质量)/介质干质量.1.2.4磁性亲和介质对鸡蛋清溶菌酶特异吸附的分析对溶菌酶特异吸附进程分析:将20mL鸡蛋清用10mm o l/L Na HCO3(含0.5m ol/L N a C l)稀释20倍,离心(10000r/m in,8m in,4e),收集上清液,加入50mL床体积的已抽干并平衡好的介质,开放搅拌吸附,隔一定时间取上清液测定残留的溶菌酶活力.其中:相对吸附率=[(初始酶活性-吸附后酶活性)/初始酶活性]@100%.介质吸附容量的分析:取40mL鸡蛋清同上操作,加入20mL床体积的已抽干并平衡好的磁性亲和介质(使待吸附的溶菌酶过量),开放搅拌吸附60 m in,取上清液测定残留的溶菌酶活力.介质吸附容量(U/mL)=(吸附前酶液总活性-吸附后酶液总活性)/介质的床体积.1.2.5蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和分离取200g 的鸡蛋壳,加10mm ol/L Na HCO3溶液300mL,搅拌清洗蛋壳上的残留蛋清,纱布过滤得蛋壳清洗液,加入适量经10mm o l/L Na HCO3平衡并抽滤干的磁性亲和吸附剂,室温下开放搅拌吸附60m in,用带环型条纹塑料外套的圆型铁氧体磁铁作为外磁场收集亲和介质,此时介质被吸附于塑料外套的表面,取出塑料外套中的磁铁,此时被吸附于塑料外套表面的介质将脱落,并将悬浮于内含0.5m o l/L N a C l的10 mmo l/L N a H CO3溶液中(溶液A),缓慢搅拌,磁性回收,如此洗涤介质2次,装柱(2.0c m@22.0c m),再用pH7.8、内含0.5mo l/L NH4A c的0.1m o l/L磷酸钠盐缓冲液(溶液B)洗涤至流出液的D280nm<0.05,再用少量溶液A洗涤,以替换柱子中的溶液B,最后用0.15m o l/L HA c洗脱(4mL/管、60mL/h),收集活性部分,4e保存备用.1.2.6溶菌酶活力的测定鸡蛋清溶菌酶活力测定参照W eaver等[8]方法.测定温度为30e,在2.0 mL的底物悬浮溶液中加入50L L的酶液,迅速混匀启动反应,450nm波长下测定1m i n内的光密度变化值,以450n m波长下光密度每分钟下降0.001单位所需的酶量为一个酶活性单位(U).1.2.7蛋白含量的测定按B radford[9]法,并以牛血清白蛋白为标准蛋白质.1.2.8SDS-聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳按张龙翔等[10]方法,浓缩胶质量浓度为30g/L,分离胶质量浓度为150g/L,上样10L L(含蛋白481m g/L),电流10mA,电泳2h.脱胶后用考马斯R-250进行蛋白染色,U=20%HA c溶液脱色.标准蛋白质(相对分子质量)分别为:鸡蛋清溶菌酶(14400)、胰蛋白酶抑制剂(20100)、牛碳酸酐酶(31000)、兔肌动蛋白(43000)、牛血清白蛋白(66200)、兔磷酸化酶B(97400).2结果与分析2.1磁性亲和介质的物理化学特性2.1.1磁性亲和介质颗粒的表观结构分析选用Fe3O4粉末作为磁响应材料,采用凝胶包埋法制备得具磁响应性的溶菌酶亲和吸附介质,该介质在O ly m-63第4期王炜军等:蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和分离pus SZ H 立体镜下呈现为红褐色的无规则的凝胶颗粒,进一步经环境扫描电镜观察,显示介质颗粒表面具有多孔结构(图1-a),切片后经透射电镜观察,则清楚地显示高电子密度的Fe 3O 4颗粒被包埋在凝胶颗粒中(图1-b),这些Fe 3O 4颗粒赋予了亲和介质的磁响应能力.a :电镜下磁性亲和吸附介质颗粒的表面结构;b :电镜下磁性亲和吸附介质颗粒的内部结构a :The surface struct u re ofm agnetic affi n it y m ed i um under en v-i ronmen tal scann i ng el ectron m icroscopy ;b :The i n teri or str u cture of m agnetic affinity m ed i um under trans m ission el ectron m icroscopy图1 溶菌酶磁性亲和吸附介质颗粒的表观结构观察Fi g .1 Apparen t stru cture ofm agneti c affi n i ty m ed i um f or l ysozy m e2.1.2 磁性亲和介质层析相关特性的分析 分析表明:单位干质量介质的床体积为14.3mL /g ,吸水值约为12.3g /g .非常便于洗涤和洗脱操作.所得的介质具有良好的磁响应能力(图2),便于利用外加磁场进行固液和与其他固形物的分离,从而达到快速回收的目的.图2 磁性亲和介质的磁响应性F i g .2 M agneti c response o f the m agne ti c a ffi n it y m edi u mfor l yso zy m e2.2 磁性的吸附特性2.2.1 磁性亲和介质对溶菌酶的特异吸附作用 磁性亲和介质对溶菌酶的吸附作用是一个较为快速的过程(图3),仅开放吸附3m in 即可达约50%的相对饱和吸附率,40m in 时基本已达到饱和吸附.故确定亲和开放吸附的时间为50m i n .同时测得此介质对溶菌酶的吸附容量约为35000U /mL.图3 磁性亲和介质对溶菌酶的吸附进程曲线F ig .3 The absorption pro cedure of m agnetic affinity m ed i u mfo r lysozym e2.2.2 磁性亲和介质对杂蛋白的非特异性吸附作用 在纯化中,按文献[7]方法,采用内含0.5m o l/LN a C l 的10mm o l/L Na H CO 3溶液充分洗涤后,再用0.15m o l/L HAc 洗脱,所得的纯化溶菌酶经SDS-PAGE 蛋白染色后发现,除应有的溶菌酶外,在相对分子质量为45000左右出现一条含量很高的杂蛋白带(图4泳道3),表明此亲和介质存在非特异性吸附.进一步单独用Fe 3O 4颗粒代替亲和吸附介质来作同样的分离操作,结果发现,当Fe 3O 4颗粒经内含0.5m ol/L N a C l 的10mm o l/L Na H CO 3溶液充分洗涤后,再用0.15m o l/L 的HA c 洗脱时,会出现一个明显的蛋白吸收峰,该蛋白峰的SDS-PAGE 分析显现了多条蛋白染色带,其中,含量最高的条带与上述相对分子质量为45000的杂蛋白带对应,同时亦有溶菌酶条带,这表明介质的这种非特异吸附是由于Fe 3O 4颗粒对杂蛋白的吸附作用所造成的,而含高离子强度的0.5m ol/L NaC l 溶液的洗涤并不能除去非特异吸附的杂蛋白(图4泳道2).1:标准分子量蛋白;2:能被Fe 3O 4颗粒所吸附的蛋清蛋白;3:以内含0.5m ol/L NaC l 的10mm ol/L Na H CO 3溶液作为洗涤液时纯化所得的溶菌酶.1:protei n m arker ;2:t h e protei ns ad s orbed by Fe 3O 4po w der fro m egg w h ite ;3:the l ys oz ym e pur i fi ed from egg wh ite by affi n-i ty chro m atography us i ng 10mm ol/L Na H CO 3contai n i ng 0.5m ol/L N a C l as the w ash sol u ti on .图4 F e 3O 4颗粒对蛋清蛋白的非特异吸附F ig .4 The non -specific adso rpti on o f F e 3O 4powder for prote i nsfro m egg wh ite64 华 南 农 业 大 学 学 报 第26卷2.2.3 磁性亲和介质对杂蛋白非特异性吸附的克服 蛋白质表面的羧基、氨基和羟基严重干扰了亲和介质对溶菌酶的特异吸附,因此尝试改用含0.5m o l/L NH 4Ac 的磷酸缓冲液来进行洗涤,因为NH 4Ac 既有氨基又有羧基,应当能交换被Fe 3O 4吸附的杂蛋白而将其洗涤下来,从而消除Fe 3O 4的干扰作用.当用内含0.5m ol/L NH 4A c 的磷酸缓冲液洗涤Fe 3O 4颗粒后,再用0.15m ol/L HA c 洗脱时,不再出现蛋白吸收峰(图5),表明上述洗涤液较为彻底地洗涤了颗粒上所吸附的蛋白,而该洗涤液对溶菌酶与介质的吸附却无影响,因此,内含0.5m ol/L NH 4Ac 的磷酸缓冲液洗涤步骤是十分有效地克服非特异性吸附的方法.淋洗液:100mm ol/L p H 7.8的磷酴钠缓冲液内含0.5m ol/L NH 4A c ;洗脱液:0.15mmo l/L HAc .流速:1mL /m i n ,4mL /管w as h sol u ti on :100mm ol/L pH7.8sod i um phosphat e buff er con -tai n i ng 0.5m ol/L NH 4A c ;el uti on sol uti on:0.15m ol/L HA c ;fl ow rate ;1mL /m i n ,4mL /tub e图5 淋洗缓冲液对F e 3O 4颗粒非特异性吸附的消除作用F ig .5 The non -specific adso rpti on of F e 3O 4m i ni m ized by chan -g ing w ash so l uti on .2.3 蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和吸附根据上述实验结果,确定分离操作磁性亲和吸附、洗涤和洗脱操作的条件为:搅拌开放吸附50m i n ,磁性分离介质用内含0.5m o l/L NH 4A c 的磷酸缓冲液来进行洗涤,0.15m o l/L 的HA c 进行洗脱(图6).利用此确定的条件对蛋壳残留溶菌酶进行亲和吸附分离,所得的蛋壳清洗液略显粘稠,经纱布初步过滤后尚混有一些泥沙,因为所采用的介质具有磁响应能力,因此可省去离心步骤,经开放吸附后,介质可直接用外加磁场加以回收,解决了传统的柱上洗涤时由于蛋清样品粘稠而堵塞层析柱的问题,洗涤极为方便.洗脱所得的纯化溶菌酶对蛋白的比活性可达50894U /m g(表1),所得的纯化酶经SDS -PAGE 分析显示单一条蛋白染色带(图7),表明溶菌酶已得到了较好的纯化,酶活力回收约26%,低于采用非磁性亲和吸附介质时所得的结果,这可能是由于Fe 3O 4颗粒吸附了的部分溶菌酶在洗涤过程中却被丢失了的缘故.100mm ol/L p H 7.8PBS (含0.5m ol/L N H 4A c)洗涤后,0.15m ol/L HAc 洗脱,流速:4mL /管,1mL /m i nW as h i ng w it h 100mm ol/L p H 7.8PBS (0.5m ol/L N H 4A c),t hen el uti ng w it h 0.15m ol/L HA c ,the vel ocit y of flo w:4mL /t ub e ,1mL /m i n图6 鸡蛋清溶菌酶磁性亲和柱层析F i g .6 The a ffi n ity chro m atog raphy of m agnetic affi n itym ediu m for lysozyme fro m egg wh ite表1 蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和分离Tab .1 M agn etic aff i n ity separat i on of l ysozy m e on eggs h ell纯化步骤purificati on step V (总tota l)/mLm (总蛋白tota l prote i n)/mg总活性t o ta l ac ti v ity/U比活性spec ifi c activ ity /(U #mg -1)纯化倍数pur ifi cati on m ulti p le回收率recove ry rate/%蛋壳洗涤液w ashi ng so luti on o f eggshe ll545919.0418857002051.81.0100磁性亲和吸附separation w ith m agne ti caffinity m ed i u m209.6349028250894.024.826.065第4期 王炜军等:蛋壳残留溶菌酶的磁性亲和分离1,5:标准分子量蛋白;2,3:纯化溶菌酶;4:鸡蛋壳清洗液1,5:p rotei n m ark er;2,3:pu ri fi ed lysoz y m e;4:w as h i ng sol u tionof eggs h ell图7纯化溶菌酶的SD S-PAGE分析F ig.7SDS-PAGE o f pur ified lysozym e from wash i ng so luti on ofeggshe ll3讨论磁性亲和介质被广泛用于分离细胞及核酸、蛋白质等生物大分子和激素等小分子生物活性物质,其优点在于通过外磁场的作用可快速地实现固液及磁性介质与其他固形物间的分离,尤其是当待分离的液体样品含有固形物或较为粘稠时,利用亲和层析技术分离溶菌酶国内外已有大量的报道,本文在原有亲和层析介质[7]的基础上引入具磁响应性的Fe3O4颗粒,使得介质复合了特异亲和吸附和磁响应性的功能,但随着Fe3O4颗粒的引入同时又导致了介质对杂蛋白的非特异吸附,为克服这种非特异吸附,采用了内含0.5m o l/L NH4Ac的磷酸缓冲液进行充分洗涤,取得了较好的效果,但这种吸附最终也导致了部分活力回收的丧失.磁性分离在生物分离上已得到越来越广泛的应用,所采用的磁性颗粒均为Fe3O4,与蛋白质分子表面-NH2、-C OOH等基团存在相互作用,造成非特异性吸附,严重干扰试验结果,因此较为理想的方法是将Fe3O4颗粒的表面涂上一层惰性材料的膜以消除这种非特异吸附,笔者曾经尝试用疏水的硅烷化试剂,但未取得预期的效果.参考文献:[1]H IRNAO S,KANEKO H,K I TAGAW A M.N-lo w er-fatty-acy l der i va ti ves o f ch itosan as adsorbents for l y sozy m e andch iti nase[J].A gr B i o l Che m,1991,55(6):1683-1684.[2]I M OTO T,HAYAS H I T,FUNAT S N M.Charac teriza tiono f enzy m e-like comp l ex o f l yso zy m e[J].J B i oche m,1968,64(3):387-392.[3]I M OTO T,YAG IS H ITA K.Chiti n coated cell u l ose as anadso rbent of l y sozyme-li ke enzy m es:som e applificati ons[J].A g r B i o l Che m,1973,37(3):1191-1192. [4]I M OTO T,YAG IS H ITA K.Chiti n coated cell u l ose as anadso rbent of l ysozy m e-li ke enzy m es:preparation and prop-erties[J].A g r B i o l Che m,1973,37(3):465-470. [5]YO S H I M OTO T,HAYA S H IDA S,TOB IIS H I M,et a.lPur ifi cati on of severa l bacter i o l y ti c enzymes by affi nitychro m atography on l y sozy m e-lysate o f M icrococcus l y so-deikticus ce ll wa ll coupled w ith sepharose[J].J B ioche m(T okyo),1975,78(2):253-259.[6]YAM ADA H,FUKUMU RA T,I TO Y,et a.l Chiti n-coa-ted ce lite as an affinity adsorben t for h i gh-pe rf o r m ance li q-u i d chrom atography of lysozyme[J].A na l B i oche m,1985,146(1):71-74.[7]王炜军,徐凤彩.脱氨再生几丁质凝胶亲和层析法纯化溶菌酶[J].华南农业大学学报,1996,17(3):59-63. [8]W E AVER G L,KNOGER M,KATZ F.Deam ina ted ch-iti n affi nity chrom atography)))a m ethod for t he i so lati on,purifica ti on and concentration of l yso zy m e[J].J F oodSc,i1977,42(4):1084-1087.[9]BRADFORD M M.A rapid and sensiti v e me t hod f o r quan-titation ofm icrogra m quantities of prote i n utilizi ng the pri n-ciple of pro te i n-dye bi nding[J].A na l B i o che m,1976,72(1-2):248-254.[10]张龙翔,张庭芳,李令媛.生化实验方法和技术[M].北京:高等教育出版社,1985.116-129.【责任编辑李晓卉】66华南农业大学学报第26卷。