蛋白相互作用
蛋白蛋白相互作用结合亲和力预测
蛋白质相互作用是生物学中的重要研究课题。
蛋白质之间的相互作用可以揭示细胞内各种生物学过程的机制，如代谢途径、信号传导、细胞分化和凋亡等。
而相互作用结合亲和力预测则是对蛋白质相互作用研究的重要内容之一。
1.蛋白质相互作用的重要性蛋白质是生物体内功能最为丰富的一类生物大分子，它们参与了生物体内的几乎所有生物学过程。
蛋白质之间的相互作用更是构建了细胞内复杂的信号转导网络和调控系统。
研究蛋白质相互作用不仅对于理解细胞内的生物学过程具有重要意义，对于疾病的发生与发展也具有重要的指导作用。
2.蛋白质相互作用结合亲和力的概念相互作用结合亲和力是蛋白质相互作用的重要性质之一。
在生物体内，蛋白质之间的相互作用能够通过弱相互作用力（如范德华力、氢键）或者共价键来实现。
而蛋白质之间的相互作用结合亲和力则是描述了这种相互作用的强弱程度，通常用结合常数（Ka）或者解离常数（Kd）来表示。
3.蛋白质相互作用结合亲和力的预测方法要预测蛋白质相互作用结合亲和力，通常可以通过以下几种方法来进行：（1）实验方法：通过生物物理化学实验手段来直接测定蛋白质相互作用的结合亲和力。
这种方法的优点是结果准确可靠，但是成本较高、周期较长，并且需要有一定的实验条件和技术。
（2）生物信息学方法：通过对蛋白质序列、结构、功能等特征进行分析，利用计算方法来预测蛋白质相互作用的结合亲和力。
这种方法的优点是成本低、效率高，但是受限于计算方法的复杂性和数据的准确性。
（3）机器学习方法：利用大数据和机器学习算法，通过对已知蛋白质相互作用数据的训练，来构建模型从而预测新的蛋白质相互作用结合亲和力。
这种方法的优点是能够处理大量的复杂数据，但是需要具有一定的数据处理和机器学习算法知识。
4.蛋白质相互作用结合亲和力的应用蛋白质相互作用结合亲和力的预测对于生物医学领域具有很多应用价值。
可以通过预测蛋白质相互作用结合亲和力来设计和筛选药物靶点，开发新的蛋白质相互作用抑制剂或者激活剂；还可以通过预测蛋白质相互作用结合亲和力来分析蛋白质-蛋白质相互作用网络，揭示生物学过程的调控机制。
研究蛋白质相互作用的九种方法，写标书用得上
研究蛋白质相互作用的九种方法，写标书用得上寒风凛冽，又到了一年一度写标书的季节，你开始准备了么？在分子机制的研究中，蛋白和蛋白之间的互作研究可以说是非常经典了，研究蛋白互作的方法有很多，今天我们来介绍九种。
1、免疫共沉淀（Co-Immunoprecipitation，CoIP）CoIP其实就是两个蛋白相互的IP（免疫沉淀反应）实验，在已知蛋白B和C之间有相互作用的前提下，这种前提一般需要有一个酵母双杂实验或者Pulldown实验来作为支持。
IP就是用来验证蛋白C和蛋白B之间相互作用的。
如果在Agarose珠上的Protean A/G所结合的抗体，可以结合并拉下蛋白B，那用Western Blot即可检测出蛋白C的表达，反之亦然，通过这种相互间免疫共沉淀的实验，就可以明确地验证出，B与C之间的相互作用了。
比如这份标书：PYK2促进肝癌细胞迁移的一个新的分子机制研究：结合并磷酸化E-cadherin？（百度检索题目可查到全文）2、Pull-down实验这个实验跟免疫共沉淀实验很像，不同的是免疫共沉淀是在细胞里进行的，在众多的蛋白里，拉住A蛋白的同时,把B蛋白也给拉出来了，这还不能证明是直接的结合，很有可能是A 拉住了C，而C拉住了B，这样拉住A蛋白的同时也能把B蛋白也给拉出来。
要证明直接的结合就是Pull-down实验。
提纯所要研究的两个蛋白（一般是在BL21等菌种表达提纯），这两个蛋白带上不同的标签（提纯蛋白一般带GST或者HIIS标签），然后将他们放在同一个体系里，使用GST-beads或者NI-beads,把其中一个蛋白拉下来，用WB检测另一个蛋白的存在。
比如这份标书：恶性肿瘤的发生、发展的细胞表观遗传学机制。
（同样可以百度检索到全文）3、免疫荧光（Immunofluorescence，IF）——共定位将免疫学方法(抗原抗体特异结合)与荧光标记技术结合起来研究特异蛋白抗原在细胞内分布的方法。
由于荧光素所发的荧光可在荧光显微镜下检出，从而可对抗原进行细胞定位。
蛋白质相互作用的特性及应用
蛋白质相互作用的特性及应用序言蛋白质是生物体内重要的功能分子，而蛋白质相互作用则是蛋白质发挥功能的基础。
随着生物学和化学等领域的发展，研究蛋白质相互作用的方法和技术也日益丰富和多样化。
本文将从蛋白质相互作用的特性、研究方法以及应用等角度来详细探讨蛋白质相互作用的相关内容。
第一部分蛋白质相互作用的特性蛋白质相互作用的特性是指蛋白质之间的相互作用方式、特定结构和生物功能等方面的特点和表现。
这些特性的深入研究对于我们深入了解蛋白质生物学功能和药物研究等方面都具有重要的意义。
1.1 蛋白质相互作用的基本方式蛋白质相互作用可以分为非共价相互作用和共价相互作用两种类型。
其中，非共价相互作用又可以细分为静电相互作用、氢键相互作用、范德华力作用、疏水相互作用等不同类型。
这些相互作用方式在蛋白质的折叠、分泌、转运、代谢、信号传导等生物学过程中都具有重要作用。
1.2 蛋白质相互作用的结构蛋白质相互作用的结构包括相互作用双方的结构与相互作用界面的结构。
其中，相互作用双方的结构可以根据不同类型蛋白质分为同源相互作用和异源相互作用两种。
同源相互作用是指两个结构相似的蛋白质之间的相互作用，而异源相互作用则是两个结构不同的蛋白质之间的相互作用。
相互作用界面的结构则是在蛋白质相互作用的过程中形成的，它反映谁和谁、哪些部分进行了相互作用，并且是相互作用的动力学基础。
1.3 蛋白质相互作用的生物功能蛋白质相互作用是蛋白质发挥生物功能的基础。
例如，酶和底物之间的相互作用是化学反应发生的基础；细胞膜上受体和配体之间的相互作用则是细胞信号转导的基础；抗体和抗原之间的相互作用是免疫防御系统的基础。
因此，深入了解蛋白质相互作用的生物功能对于我们认识蛋白质生物学功能的完整性和系统性具有重要的意义。
第二部分蛋白质相互作用的研究方法蛋白质相互作用的研究方法包括分子生物学方法、生物物理化学方法和计算方法等。
其中，分子生物学方法广泛使用于蛋白质相互作用的鉴定和定量分析；生物物理化学方法主要用于研究蛋白质相互作用过程中物理化学性质的变化；计算方法则是通过计算机模拟来分析和预测蛋白质相互作用的特性。
蛋白质的互补作用
蛋白质的互补作用
蛋白质是生物体内非常重要的一类大分子物质，它们广泛存在于细胞内，参与了生物体的生命活动。
蛋白质可以通过相互作用来发挥其功能，其中最重要的是互补作用。
蛋白质的互补作用可以分为两种：结构互补和功能互补。
结构互补是指蛋白质之间通过物理相互作用形成稳定的复合物。
这种相互作用可以是静电相互作用、氢键、范德华力等等。
当两个蛋白质之间的结构互补非常强烈时，它们可以形成紧密的复合物，从而发挥特定的功能。
功能互补是指蛋白质之间通过相互作用来协同完成一定的生物功能。
在细胞内，许多生物过程需要多个蛋白质相互配合才能顺利进行。
这些蛋白质之间的功能互补，可以通过多种方式实现。
例如，一个蛋白质可能提供催化活性，而另一个蛋白质则提供底物或辅助因子。
这样，它们之间的相互作用将有效地促进催化反应的进行。
蛋白质的互补作用不仅在细胞内起着重要作用，还在许多生物体外部环境中发挥重要功能。
例如，抗体与抗原之间的互补作用可以触发一系列的免疫反应，从而保护机体免受病原体的侵害。
另外，蛋白质与DNA或RNA之间的互补作用也非常重要，它们在转录和翻译过程中发挥关键的作用。
总之，蛋白质的互补作用是维持生物体正常功能的一个关键因素。
通过相互作用，蛋白质可以形成复合物，协同发挥特定的
生物功能。
这种互补作用不仅存在于细胞内，还在生物体外部环境中发挥重要作用。
蛋白质分子相互作用
蛋白质分子相互作用蛋白质分子相互作用是细胞中一种重要的现象，它在维持细胞功能、调控信号传递和执行生物学过程中起着至关重要的作用。
蛋白质相互作用通常指的是两个或多个蛋白质分子之间的非共价结合，可以形成稳定的复合物，从而影响蛋白质的结构和功能。
下面将就蛋白质分子相互作用进行详细的介绍。
蛋白质分子相互作用可以分为多种类型，其中最常见的是静电相互作用、氢键、疏水效应和范德华力等。
静电相互作用是指两个带有正负电荷的氨基酸之间的相互作用。
在蛋白质中，常见的带正电荷的氨基酸包括赖氨酸和精氨酸，而带负电荷的氨基酸则包括天冬氨酸和谷氨酸。
当两个相互作用的残基上的电荷相互吸引时，它们会结合在一起形成复合物。
氢键是一种非常常见的蛋白质相互作用，它是由带有部分正电荷的氢原子和带有部分负电荷的氮、氧或氟原子之间的相互作用形成的。
在蛋白质中，氢键主要通过氨基酸中的氨基和羧基之间形成，例如，氨基酸谷氨酸和天冬氨酸的羧基可以形成氢键和其他残基相互作用，从而促进蛋白质的折叠和稳定。
疏水效应是蛋白质相互作用中非常重要的一种方式。
它指的是在水溶液中，疏水性氨基酸残基会聚集在一起，从而减少与水分子的接触。
疏水作用是稳定蛋白质三维结构的重要力量，在蛋白质折叠和复合物形成过程中起到重要作用。
范德华力是一种比较弱的相互作用力，但在蛋白质分子相互作用中也具有重要作用。
范德华力是由于分子间互相感应而产生的力，主要包括分子之间的偶极-偶极相互作用、瞬时偶极-偶极相互作用和分子之间的色散力等。
这些相互作用力可以在蛋白质分子之间形成复合物，并稳定蛋白质的结构和功能。
除了以上介绍的力以外，蛋白质分子相互作用还受到其他因素的影响，例如溶剂、离子浓度和温度等。
溶剂可以影响蛋白质的折叠和构象，从而影响蛋白质相互作用的形成。
离子浓度可以改变电荷分布，从而影响蛋白质之间的静电相互作用。
温度则会影响蛋白质的结构稳定性，从而影响蛋白质分子相互作用的强度和性质。
总的来说，蛋白质分子相互作用是细胞内发生的一种重要现象，它能调控细胞内的生物学过程和信号传递。
检测蛋白互作的方法
检测蛋白互作的方法有多种，其中包括酵母双杂交技术、免疫共沉淀、GST-pull down实验等。
这些方法都可以用来研究蛋白之间的相互作用，并有助于进一步了解蛋白质的功能和机制。
1. 酵母双杂交技术：这是一种在酵母细胞中检测蛋白互作的方法，主要通过将两个蛋白的基因分别与报告基因的转录激活域融合，在两个蛋白相互作用时，报告基因就会被激活，从而得到蛋白互作的结果。
2. 免疫共沉淀：这是一种通过抗体和抗原之间的专一性作用来研究蛋白互作的方法。
将其中一个蛋白进行免疫沉淀后，与其互作的蛋白也会被沉淀下来，然后通过Western blot等技术检测到被沉淀的蛋白，从而确定两者之间的相互作用。
3. GST-pull down实验：这是一种体外检测蛋白互作的方法，通过将目标蛋白与谷胱甘肽亲和树脂结合，再与待检测的蛋白混合，如果两者之间有相互作用，目标蛋白就会与待检测蛋白结合并被吸附在树脂上，最后通过Western blot等技术检测到结合的蛋白，从而证明两者之间的相互作用。
蛋白质和蛋白质相互作用的技术
蛋白质和蛋白质相互作用的技术
蛋白质是生命活动中不可或缺的重要成分，它们参与了细胞代谢、信号传导、免疫应答等多种生物学过程。
蛋白质相互作用则是指不同蛋白质之间的相互结合和互动，这种相互作用可以影响蛋白质的结构、功能和活性，进而影响细胞和生物体的生理过程。
在科学研究中，研究蛋白质相互作用的技术至关重要。
其中，蛋白质相互作用的技术主要包括免疫共沉淀、亲和纯化、酵母双杂交、质谱分析等。
免疫共沉淀是一种常用的蛋白质相互作用分析技术，它利用抗体将目标蛋白质与结合的蛋白质一起沉淀下来，再通过Western blot等方法检测蛋白质间的相互作用关系。
亲和纯化则是利用亲和柱或亲和标签来富集目标蛋白质及其结合蛋白质，通过洗脱和分析来研究它们之间的相互作用。
酵母双杂交则是通过将靶蛋白质与转录激活因子结合，来检测它们之间的相互作用。
质谱分析是一种高通量、准确度高的蛋白质相互作用分析技术，它可以用来鉴定蛋白质间的直接或间接相互作用。
这些技术各自有着特点和优势，可以用来研究不同类型的蛋白质相互作用，从而揭示细胞内各种生物学过程的机制。
通过深入了解蛋白质相互作用，我们可以更好地理解细胞信号传导、疾病发生机制等重要生物学问题，为药物开发和临床治疗提供理论基础。
总的来说，蛋白质相互作用的技术在生命科学领域具有重要的应用前景，它为我们深入了解细胞生物学过程、疾病机制以及药物研发提供了有力的工具和方法。
希望未来能够有更多的技术不断涌现，为蛋白质相互作用的研究提供更多可能。
蛋白质相互作用的研究现状及其应用前景
蛋白质相互作用的研究现状及其应用前景蛋白质是生命体中的基本分子，它们负责维持细胞的正常运作、调控细胞的生长和分化、参与细胞信号传导等重要生命过程。
蛋白质相互作用是蛋白质在细胞中发挥作用的重要机制之一。
蛋白质相互作用研究的发展不仅揭示了生命过程的本质，而且为药物研究和发现提供了新的思路和方法。
一、蛋白质相互作用研究的现状蛋白质相互作用的研究是现代生命科学的重要方向之一，涉及蛋白质结构生物学、蛋白质功能化学、细胞生物学等多个学科领域。
目前，蛋白质相互作用的研究主要从以下几个方面进行：（一）蛋白质相互作用的鉴定蛋白质相互作用的鉴定是研究蛋白质相互作用的关键环节之一。
目前，常用的蛋白质相互作用鉴定技术包括双杂交技术、酵母三杂交技术、免疫共沉淀技术、表面等离子共振技术、荧光共振能量转移技术等。
（二）蛋白质相互作用的机制研究蛋白质相互作用的机制研究是揭示蛋白质相互作用本质的关键环节之一。
目前，蛋白质相互作用的机制研究主要从结构和动力学两个方面进行。
从结构方面来说，研究人员采用X射线晶体学、核磁共振等技术揭示了蛋白质相互作用的结构基础，为理解蛋白质相互作用的机制提供了直接证据。
从动力学方面来说，研究人员采用分子动力学模拟等技术研究蛋白质相互作用在时间和空间上的变化规律，揭示蛋白质相互作用的动力学机制。
（三）蛋白质相互作用的生理学功能研究蛋白质相互作用的生理学功能研究是揭示蛋白质相互作用在细胞和生物体内的作用机制和生理学效应的关键环节之一。
目前，研究人员通过对蛋白质相互作用参与的生物过程进行分析和研究，揭示了蛋白质相互作用在细胞生长、分化、凋亡、信号传导等方面的作用机制。
二、蛋白质相互作用应用前景蛋白质相互作用的研究不仅揭示了生命过程的本质，而且为药物研究和发现提供了新的思路和方法。
以下是蛋白质相互作用的应用前景：（一）疾病治疗蛋白质相互作用在疾病治疗中具有重要的作用。
例如，在癌症治疗中，通过干扰肿瘤细胞表面蛋白质相互作用来阻断肿瘤细胞的生长和分化；在感染性疾病治疗中，通过干扰病原菌与宿主相互作用来阻断病原菌感染宿主。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
蛋白相互作用一、技术简介BiFC是由Hu 等在2002 年最先报道的一种直观、快速地判断目标蛋白在活细胞中的定位和相互作用的新技术[1]. 有报道在GFP 的两个β片层之间的环结构（loop）上有许多特异位点可以插入外源蛋白而不影响GFP的荧光活性，BiFC技术正是利用该荧光蛋白家族的这一特性，将荧光蛋白分割成两个不具有荧光活性的分子片段，再分别与目标蛋白连接。
如果两个目标蛋白因为有相互作用而接近，就使得荧光蛋白的两个分子片段在空间上相互靠近，重新形成活性的荧光基因而发出荧光。
在荧光显微镜下，就能直接观察到两目标蛋白是否具有相互作用，并且在最接近活细胞生理状态的条件下观察到其相互作用发生的时间、位置、强弱、所形成蛋白复合物的稳定性，以及细胞信号分子对其相互作用的影响等，这些信息对研究蛋白质相互作用有重要意义。
其后发展出的多色荧光互补技(multicolor BiFC)，不仅能同时检测到多种蛋白质复合体的形成，还能够对不同蛋白质间产生相互作用的强弱进行比较.这项技术不需要特殊的设备，相互作用的蛋白也不需要特别的理论配比。
因此，BiFC 技术已被国际上众多实验室采用，在活细胞内证明蛋白质的相互作用。
BiFC技术以下几个特点使其对于研究蛋白质相互作用具有独特的优势：1、能在显微镜下直接观察到蛋白相互作用而且不依赖于其它次级效应；2、该相互作用可以在活细胞中进行观察，排除了由于细胞裂解或固定可能带来的假阳性结果；3、蛋白质在近似生理条件的环境下表达，表达水平及特性如翻译后修饰极大地接近于内源蛋白；4、不需要蛋白质有特别的理论配比，能检测到不同亚群蛋白质间的相互作用；5、多色BiFC技术不仅能同时检测到多种蛋白质复合体的形成，还能够对不同蛋白质间产生相互作用的强弱进行比较；6、BiFC技术除了荧光倒置显微镜外，不要求特殊的设备。
实验简单、快捷、直观，并适用于原核、真菌、植物、动物等多种组织、细胞. 该技术的完善与发展必然会为蛋白质组学、蛋白质相互作用连锁图的建立带来福音. 但是，该技术与大多检测蛋白质相互作用的技术一样，也存在着假阴性和假阳性的问题，需要在实验中仔细验证。
可参考文献：Hu, C.D., Y. Chinenov, and T.K. Kerppola, Visualization of interactions among bZIP and Rel family proteins in living cells using bimolecular fluorescence complementation. Mol Cell, 2002. 9(4): p. 789-98.Hu CD , Kerppola TK. Simultaneous visualization of multiple protein interactions in living cells using multicolor fluorescence complementation analysis[J ] . Nature Biotechnology , 2003 ,21 (5) :539 - 545.【摘要】双分子荧光互补（bimolecular fluorescence complementation，BiFC）是指两个不发光的荧光蛋白互补片段在与其融合的蛋白质的相互作用驱动下重新组装形成荧光复合物，恢复荧光特性。
基于双分子荧光互补原理的相关技术在多种不同类型的蛋白质相互作用研究中得到越来越广泛的应用。
我们对双分子荧光互补技术的原理、特性、应用现状、面临的问题及应用前景进行了概述。
【关键词】双分子荧光互补（BiFC）；互补片段；荧光复合物；蛋白质相互作用Advances of Bimolecular Fluorescence Complementation Assaysand its Application in the Study of Protein-protein InteractionsCHEN Jing(State Key Laboratory of Trauma,Burn and Combined Injury,Department of Research Instituteof Surgery, Third Military Medical University，Chongqing 400042，China)Abstract：Bimolecular fluorescence complementation (BiFC) means two non-fluorescent complementary fragments of fluorescent protein can reassemble to form fluorescent complex and restore fluorescence when theyare fused to two proteins that interact with each other. BiFC analysis has been used to study interactions among a wide range of proteins in many cell types. In this paper, the principle and characteristics of BiFC，the application advances, the limitation and future prospects of BiFC assays are described.Key words：Bimolecular fluorescence complementation(BiFC)；Complementary fragments；Fluorescent complex；Protein-protein interactions1 引言蛋白质相互作用和翻译后修饰的研究使人们对生物调控机制的认识取得了巨大的进展，蛋白质相互作用的研究方法也备受重视，出现了许多具有不同原理和应用特点的相关技术和方法［1-2］。
BiFC作为一种用于研究蛋白质间相互作用的新型方法引起了人们的关注。
利用BiFC分析能够在活细胞生理环境中原位显示蛋白质相互作用产物，尤其是能在单细胞中同时显示多个蛋白质间的相互作用。
近年来，基于BiFC原理的分析方法在蛋白质相互作用和翻译后修饰的研究中逐渐显现出其独特的应用价值。
2 BiFC概述2.1 BiFC原理GFP及其突变体作为能够在活体中表达且易于检测的报告基因［3］，通常是以完整的氨基酸序列作为标记物。
随着对其结构和功能研究的日益深入，不断发掘一些新的特点，如GFP基酸序列中的某些特定位点与氨基末端以及羧基末端之间的序列循环互换后仍然能够正确折叠形成生色团结构并保持荧光特性［4-5］。
Hu CD等通过进一步研究发现［6］，在GFP及其突变体氨基酸序列的155或173位点，将其分裂为均不具备发光性能的荧光蛋白片段，即氨基末端片段（含1-154或1-172氨基酸序列）和羧基末端片段（含155-238或173-238氨基酸序列），当某些特定的氨基末端片段与羧基末端片段组合作为标记分子分别与两个能够发生相互作用的蛋白质配偶体形成融合蛋白、并同时在活细胞中表达时，蛋白质配偶体的结合驱使氨基末端片段与羧基末端片段重新组装形成荧光复合物，恢复荧光效应［6-7］。
这一现象称为双分子荧光互补（bimolecular fluorescence complementation，BiFC），能产生BiFC效应的氨基末端片段与羧基末端片段称为互补片段。
2.2 BiFC的特性2.2.1 荧光蛋白片段的互补特性按照不同的分裂位点，每个荧光蛋白可产生两个氨基末端片段和两个羧基末端片段，分别以N155、N173和C155、C173表示。
BiFC可发生于同一荧光蛋白的氨基末端片段与羧基末端片段之间，如EYFP的N155和C155、N173和C173，也能发生于不同荧光蛋白的氨基末端片段与羧基末端片段之间，如GFP 的N173和EYFP的C173、EYFP的N173和ECFP的C155。
某些荧光蛋白片段具有多重互补特性，能够与两种以上其它片段互补，如EYFP的N173能够与EYFP的C173、C155和ECFP的C155形成荧光复合物。
但并非所有的荧光蛋白的氨基末端片段与羧基末端片段之间都能产生互补，至今尚未观察到GFP的氨基末端片段与羧基末端片段能形成荧光复合物［8］。
2.2.2 BiFC的光谱特性荧光蛋白的三肽生色团结构（65-67位氨基酸）位于氨基末端片段内，双分子荧光复合物的光谱特性主要取决于氨基末端片段。
来源于同一荧光蛋白的互补片段形成的荧光复合物的激发光谱和发射光谱与对应的完整的荧光蛋白光谱一致，在某些情况下有红移现象发生，这可能与互补片段组装过程中生色团周围的氨基酸排列产生一定改变有关［9］。
来源于不同荧光蛋白的互补片段形成的双分子荧光复合物的激发光谱和发射光谱介于其来源的两种荧光蛋白光谱之间，与氨基末端片段来源的荧光蛋白光谱接近。
总之，相对于天然荧光蛋白，双分子荧光复合物的荧光强度有不同程度的减弱。
2.3 互补片段的研究进展自BiFC发现以来，最早确认的12种互补片段组合来源于EGFP、EYFP、ECFP［7］，分属7个不同的光谱类型。
这些互补片段标记的融合蛋白载体转染细胞并稳定表达后，必须在低温下（30℃）预孵化0～24 h以促进互补片段组装形成的生色团成熟。
为克服低温引起的应激刺激的影响，科学家们不断寻找新的性能优异的荧光蛋白互补片段。
现已证实YFP的两个新的突变体Citrine和Venus以及ECFP的改进型荧光蛋白Cerulean，其氨基末端片段与羧基末端片段的所有组合均能在37℃生理培养条件下产生荧光互补［8］，这不仅明显缩短了反应时间，使形成的双分子荧光复合物的荧光强度提高2倍以上，并且需要转染的质粒数量也大大减少。
在已经发现的互补片段组合中，目前认为最有效、并推荐使用的互补片段组合及其光谱特点［10］见表1。
表1 推荐使用的互补荧光片段组合3 BiFC的应用特点基于BiFC的原理和互补片段的特性，BiFC技术的应用具有如下特点：(1)在活细胞生理环境中直接、原位显示蛋白质相互作用产物。
(2)不同的双分子荧光复合物之间的光谱差异能够满足以不同的颜色在同一细胞中同时显示多种蛋白质间相互作用的需要。
（3）BiFC分析适用于可形成二聚体或共价结合的蛋白质间的相互作用, 包括肽、核内蛋白、泛素家族蛋白、信号蛋白、酶复合物、膜蛋白、核酸结合蛋白、植物蛋白、植物病原体。