血培养采样、送检、检验方法

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血样采集及送检操作技术规范

血样采集及送检操作技术规范

内蒙古优然牧业有限责任公司血样采集及送检操作技术规范文件编号:YR/GF/XM/10版号:[A/0]编制:畜牧单元审核:秦学森审批:高杰日期: 2016年8月12日1 目的规范牧场检疫类牛只血液样品采集工作流程及相关操作,确保血液样品在采集、传递、送检过程中的人员及样品安全。

2 适用范围优然牧业畜牧单元隶属牧场及相关职能部门。

3职责及分工3.1 牧场保健经理负责采血及送检工作的总体安排和协调,牧场保健部负责采血及送检工作的具体实施及操作。

3.2实施采血时,每个采血小组至少包括3名工作人员,具体分工如下:记录人员1名——负责进行采血记录。

采血操作1名以上——负责对牛只尾根部位进行消毒、采血等操作。

样品收集1名——负责样品归集、编号、整理、冷藏及送样等工作。

4 操作流程4.1 物品准备4.1.1采血管普通管:无抗凝剂,可用于K病抗体效价检测、B病检疫、H病复检等。

抗凝管:含有抗凝剂的真空负压采血管,可用于H病复检等。

4.1.2其它物品离心机、离心管、防水记号笔(用于样品编号)、酒精棉球、保鲜膜、垃圾袋、样品保温冷藏箱、冰袋、胶带等。

4.2人员防护血样采集人员应穿戴手套、口罩、胶靴、工作服等,做好个人防护工作。

4.3 血液样品采集流程4.3.1 采血方式采用牛只尾根部采血方式。

4.3.2抽检要求K病抗体检测采血操作时,应遵循随机抽检原则。

牛只并列保定后,一次性连续抽检数量不得超过3头。

4.3.3采血量标准检测单项——采血量为4~5ml/牛。

检测多项——采血量为8~10ml/牛。

4.3.4血样采集4.3.4.1采血操作人员单手抬起牛尾,对采血部位消毒。

4.3.4.2采血操作人员持针由下向上,于尾根腹侧中间垂直刺入牛尾血管,见有回血,迅速将采血针粗头插入一次性真空采血管内,采集足量血液。

4.3.4.3将采集完毕的样品交给样品收集人员,样品收集人员使用防水记号笔将牛号直接编写在采血管上,并对采血管按照用途进行保存。

血标本采集与送检制度

血标本采集与送检制度
血标本采集流程
血标本采集与送 检质量控制
血标本采集与送 检相关法律法规 与标准
血标本送检规定
血标本采集与送 检安全防护
采集前准备
确认患者身份信息,核对医嘱和检验项目 告知患者采血的目的、注意事项和配合方法 准备采血器具,如试管、注射器等,检查是否符合无菌要求 采血前应让患者休息一段时间,避免剧烈运动或情绪激动
采集后的血标 本应按规定进 行标识、分类 和保存,确保 信息准确无误。
送检时应使用 专用容器,确 保容器密封、 无破损,并按 照规定时间、 路线及时送达
检验机构。
安全事故处理与预防
血标本采集与送检过程中可能出现的安全事故类型 安全事故发生的原因及案例分析 安全事故的预防措施和注意事项 安全事故发生后的处理流程和责任追究
法律法规与标准 在血标本送检过 程中的实践案例
法律法规与标准 在血标本采集与 送检制度中的重 要性及未来发展
采集质量控制
采集人员的资质和培训:确保采集人员具备相应的资质和专业技能,定期进行培训和考核。
采集设备的校准和维护:确保采集设备准确可靠,定期进行校准和维护,及时更换损坏 的部件。
采集流程的规范和优化:制定规范的采集流程,确保采集过程中的每一步都符合标准要 求,不断优化流程提高采集效率和质量。
采集环境的质量控制:确保采集环境符合相关标准和规定,避免环境因素对采集结果的影响。
采集方法与注意事项
采集方法:根据不同检测项目,选择合适的采血管和采集量,按照标准 流程进行采集
注意事项:采集前需核对患者身份,确保信息准确;采集过程中要避 免溶血、污染等不良情况;采集后要及时送检,避免长时间放置。
采集后处理
血标本采集后应立即进行初步处理,如分离血清或血浆 采集后的血标本应标记清楚,包括患者信息、采集时间和送检目的 血标本应保存在适当的温度和湿度条件下,以避免变质或污染 在送检前应对血标本进行核对,确保与检验申请单一致

血培养标本采集 (2)精选全文

血培养标本采集 (2)精选全文

可编辑修改精选全文完整版血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程1.目的标准血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程,确保检验结果精确可靠。

2. 范围微生物实验室受理血培养瓶。

3. 职责3.1 医护人员正确采集血培养标本送检。

3.2 临床科室标本运输人员负责及时将血培养标本送至检验科微生物室。

2血培养指证2.1患者出现寒战,发热〔≥38℃〕或低温〔≤36℃〕.2.2白细胞增多〔>10×109/L,特别有“核左移〞未成熟的或带状的白细胞增多〕皮肤粘膜出血;血液病患者出现粒细胞减少〔成熟的多形核白细胞<1×109/L〕,血小板减少等.2.3疑心血流感染时,医院内肺炎.2.4留置中心静脉导管超过72h.2.5感染性心内膜炎、骨髓炎、昏迷。

2.6有严峻根底疾病、免疫缺陷伴全身感染病症、多器官衰竭。

2.7临床医生疑心有血流感染可能的其他情况.〔血压降低,CRP 升高及呼吸快〕。

2.8新生儿菌血症,应同时做尿液和脑脊液培养。

3血培养采集3.1采集血量:采血量以培养基的 1/10 为宜,成人每瓶采集:5~10ml,婴儿每瓶采集:1~2ml。

儿童每瓶采集:2~5 ml。

婴幼儿病人,一般只抽一瓶需氧瓶进行培养,无需常规做厌氧瓶。

3.2血培养份数和采血时间对疑心菌血症的成人患者,推举同时采集2-3套〔不同部位〕血培养标本。

婴幼儿患者,推举同时采集2次〔不同部位〕血培养标本。

一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。

屡次采血不应在同一部位进行,应更换部位。

对于间歇性寒颤或发热应在寒颤或体温顶峰到来之前0.5-1小时采集血液。

对于某些全身性和局部感染患者采血培养的建议:〔一瓶需氧瓶,一瓶厌氧瓶为一套,或者两套需氧瓶为一套〕急性发热疑心菌血症者,应尽量在抗菌药使用之前,在10分钟内于不同部位采集两套血培养标本。

对于非急性感染,疑心有菌血症者,应在24h内于不同部位采集2-3份血标本,每次采血的间隔不应小于3h,并应于抗菌给药前采血。

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:医院内肺炎;留置中心静脉导管超过72h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。

二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后,以寒战、发热时采集为宜。

三、采血流程(一)消毒1、培养瓶消毒程序:用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。

2、皮肤消毒程序:用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5cm以上,待消毒液挥发干燥后(常需30s以上)穿刺采血。

(二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内的空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注入厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。

近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。

(三)注意事项1、检验单需要注明抗菌药物使用的情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。

2、采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。

除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。

3、采血次数:对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。

4、细菌性心内膜炎:在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。

5、采血量:以培养基与血液之比10:1为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

采血量过少会明显降低阳性率。

成人每次每培养瓶采血8~10ml,婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。

四、运送要求1、所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2h内。

血液标本的采集方法及注意事项

血液标本的采集方法及注意事项

血液标本的采集方法及注意事项第一篇:血液标本的采集方法及注意事项血液标本的采集方法及注意事项生化检验用的血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。

静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。

毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血。

(一)静脉采血法1.采血步骤采血前要核对病人姓名、年龄、性别、编号及检验项目等,按试验项目要求,准备好相应的容器,如空白试管、抗凝管或促凝管等。

病人应取坐位或卧位,采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。

若用普通采血法,采血后应取下针头,将血液沿管壁缓慢注入试管内。

2.注意事项(1)很多生化成分受膳食影响,因此,采血前要确认病人是否空腹。

(2)避免充血和血液浓缩:采血时应动作迅速,尽可能缩短止血带使用时间。

用止血带压迫时间最好不超过半分钟,否则将使生化结果升高或下降。

(3)若病人正在进行静脉输液,不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。

(4)采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。

一般采取直立位采血,其二标本的测定值比卧位高5%~15%。

因此,采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。

(5)采血时只能向外抽,决不能向静脉内推,以免注入空气,形成气栓而造成严重后果。

(6)防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁;穿刺不顺利,组织损伤过多;淤血时间过长;抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫;震荡过于剧烈等。

若用普通注射器采血后,未取针头直接将血注入真空管内,也易造成溶血。

体内溶血属合格标本,但应在报告单上注明。

(二)动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点,但多选择肱动脉和桡动脉。

在摸到明显搏动处,按常规消毒,左手固定搏动处,右手持注射器,针头成60°角刺入,血液将自动进入注射器内。

(三)真空采血法双向针一端插入真空试管内,另一端在持针器的帮助下刺入静脉,血液在负压作用下自动流入试管内。

血培养标本的采集

血培养标本的采集

血培养标本的采集
1.容器:根据不同血培养的目的,选用不同的培养液,另备酒精灯及火柴。

2.采血环境:要求室内清洁、无尘土飞扬,防污染。

3.采血时,应严格遵守无菌技术操作原则。

并嘱患者头偏向一侧。

4.严格消毒穿刺部位。

用2.5%碘酒消毒一遍待干后,再用75%酒精消毒二遍或用0.5%络合碘消毒二遍。

5.标本宜在患者寒颤、高热时(体温超过38.5℃以上)或使用抗生素前采集,以提高细菌培养的阳性率。

6.血培养取血量为5ml,感染心内膜炎患者,为提高培养阳性率采血量5—10ml。

7.血液注入培养液瓶前后用火焰消毒瓶口和及瓶塞。

8.如患者已用抗生素应在化验单上注明。

9.立即送检。

血培养采集流程标准操作

血培养采集流程标准操作

血培养采集流程标准操作
一、采集指征
当患者出现以下症状时,应考虑进行血培养:
1.高烧:体温超过38℃或低体温。

2.寒战。

3.白细胞计数异常:白细胞数量显著增加或减少。

4.疑似感染性心内膜炎患者。

5.疑似血液感染,如败血症、脓毒血症等。

二、采集时机
血培养的最佳采集时机是在患者发热或寒战发作时,或者在未使用抗生素前。

如果已经使用抗生素,应在下次用药前采集血培养。

在成人中,血培养应在发病后72小时内采集。

三、采集方法
1.准备:准备好所需器材,包括血培养瓶、注射器、消毒剂等。

2.消毒:对采血部位进行消毒,确保采血过程的无菌操作。

3.采集:从患者不同部位采集两套血培养,分别用于需氧菌和厌氧菌的培养。

每套血培养应抽取8-10ml血液,儿童为1-5ml。

4.轻摇:采血后轻轻摇动血培养瓶,确保血液与培养基充分混合。

5.送检:将血培养瓶及时送至实验室进行培养和鉴定。

四、运输和储存
血培养瓶应在室温下运输,并避免阳光直射。

在储存期间,应保持血培养瓶直立,避免剧烈震动,以确保细菌的正常生长。

以上是血培养采集流程的标准操作,遵循这些步骤可以提高血培养的阳性率,为临床诊断和治疗提供准确依据。

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程

血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战,体温超过38°C或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养:1.医院内肺炎2.留臵中心静脉导管大于72小时3.感染性心内膜炎4.骨髓炎5.有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状6.临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后,以寒战、发热时采集为宜。

三、采血标准流程1.采集容器:根据检验申请单到检验科标本接受室领取血培养瓶。

2.采集时间及频率(1)急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎细菌性肺炎和肾盂肾炎发热患者,应在抗生素治疗或更换前,从不同部位采集血液标本,做2次血液培养(应在抗生素治疗前完成)。

(2)疑似心内膜炎患者:急性病例,在抗生素治疗或改变前1~2小时,从各个不同部位采血3次做血培养培养;亚急性病例,第一天24小时内,相隔1小时连续采集3次血标本培养,若24~48小时全部阴性,再采集2~3次血标本培养;若已经抗生素治疗患者,连续3天,每天取2次血液标本。

3.采集方法(1)选择合适的采血部位,严格无菌操作用双针采血系统(或注射器)直接穿刺静脉,去除培养瓶上的封盖帽,用75%乙醇棉球消毒橡皮塞,待干。

(2)以双针采血管另一端的针头穿刺血培养瓶,使血液定量流入厌氧瓶,将针头从厌氧瓶内拔出,插进需氧瓶中再注入定量的血标本。

用注射器抽血时,将一定量的血先注入厌氧瓶后再注入需氧瓶。

(3)标本采集后,用无菌棉球压迫穿刺点,叮嘱病人压紧穿刺点5分钟,用75%乙醇去除血培养瓶上的血液并进行消毒,在血培养瓶上表明采血部位(左/右)。

(4)骨髓标本的采集:穿刺采集的骨髓标本注入儿童培养瓶内送检(血培养瓶瓶盖的消毒同上),如标本量太少,可同时接种于血琼脂平板送检。

(5)中心静脉留臵导管血标本的采集:用75%乙醇消毒导管及周围皮肤,在用碘伏按同样的方法消毒,待干,拔去导管盖,消毒针心,先插入无菌注射器抽取至少0.5~1ml血液废弃(以消除干扰因素和导管末端的污染),另取一无菌注射器抽取0.5~1ml血液注入儿童血培养瓶内送检,然后在导管内注入肝素或无菌生理盐水。

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血培养的规范化操作血培养检测采血指征:对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前,应及时进行血液培养,患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征:1.发热(≥38℃)或低温(≤36℃)。

2.寒战。

3.白细胞增多(>10×10 9/L,特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多。

4.粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×10 9/L)。

5.血小板减少。

6.皮肤粘膜出血。

7.昏迷。

8.多器官衰竭。

或同时具备上述几种体征时应采血培养。

在评估可疑新生儿败血症时,除发热或低烧外,很少培养出细菌,应该补充尿液和脑脊液培养。

肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿(特别是2岁以下的幼儿)一般多见于门诊,常伴有明显发热(≥38.5℃)和白细胞增多(≥20×109/L)。

老年菌血症患者,可能不发热或不低热,如伴有身体不适,肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要指征。

血培养检测皮肤消毒程序:血培养为防止皮肤寄生菌污染,可使用消毒剂(碘酊或碘伏)对皮肤进行严格仔细的消毒处理,最大限度地减低皮肤污染。

感染性心内膜炎,特别是心脏瓣膜修复术的感染,可能由皮肤寄生的微生物引起(例如:表皮葡萄球菌或棒杆菌属)。

因此,在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度。

用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取,除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。

如果抽取了导管血,也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。

皮肤消毒严格按以下步骤进行:1.首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。

2.然后用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤(1%-2%碘酊30秒或10%碘伏消毒60秒),从穿刺点向外以1.5cm~2cm直径画圈进行消毒。

3.最后用70%酒精脱碘。

严格执行三步消毒后,可行静脉穿刺采血。

注意对碘过敏的患者,只能用70%酒精消毒,消毒60秒钟,待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。

血培养检测培养瓶消毒程序:1.用70%酒精或碘溶液(不要使用碘)消毒血培养瓶橡皮塞子。

2.酒精作用待60秒。

3.在血液注入血培养瓶之前,用无菌纱布清除橡皮塞子表面剩余的酒精,然后注入血液。

要点:血培养的关键是防止皮肤寄生菌或环境引起的污染,由污染菌引起的假阳性增加了患者抗生素的使用量,延长了住院日,延误病情诊断并增加了经济负担等。

然而,在理想的消毒条件下,仍有3%~5%血培养中混有污染菌,它们来源于皮肤(表皮葡萄球菌,痤疮丙酸杆菌,梭杆菌属,类白喉群)或来源于环境(革兰阳性芽孢杆菌属,不动杆菌属),这些微生物有时有致病作用。

对两次不同部位血培养生长同一种微生物,不同类无菌部位标本培养中生长同一种微生物,微生物快速生长(48h内)。

上述情况下,应考虑是真正的感染。

临床实验室工作人员和医生之间应经常讨论血培养结果,建立良好的交流关系对各方面都有益处。

例如查病例回顾性调查分析:1995~1999年血中分离的70例凝固酶阴性葡萄球菌,入院48h内检出者,39.3%(24例)为污染菌,48h后检出者(9例)100%为污染菌,污染菌检出时间显著长于病原菌。

提示血培养中凝固酶阴性葡萄球菌污染率较高。

因此,采血前严格执行皮肤消毒程序非常重要。

血培养检测采血量:对从菌血症或真菌菌血症患者血培养中获得微生物,每个培养瓶抽取的血量是唯一重要的变量。

当培养的血量从2ml增加到20ml时,血培养的阳性率增加30%~50%,因为培养的血液量增加1ml,阳性率增加3%~5%。

用静脉穿刺获得的血量,成人和儿童不同。

儿童,特别是新生儿很难获得大量的血液,对婴幼儿和儿童,一般静脉采血1ml~5ml用于血培养,当细菌浓度足够高时,血液少于1ml也足以检测菌血症。

标本量大于1ml,细菌量也增加,对于感染的儿童没毫升血液比成人有更多的微生物。

对于成人血培养的标本量少于10 ml不易培养出细菌,每瓶最低限量应是10ml血液,20ml~30ml最合适,血液和肉汤的比一般推荐为1:5至1:10。

几乎所有现代的血培养系统假如血液量均在10ml以上。

虽然静脉采血30ml可增加细菌量,但这不太切合实际,这很容易造成医院获得性贫血。

血培养的数量和采血时间:血培养的数量和采血时间关系到菌血症的病理生理学,一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单次血培养。

研究已经证实,采集适量的血液注入2~3瓶血培养瓶中足以检测所有的菌血症和真菌菌血症。

对间歇性菌血症,用于培养的血液应在估计寒战或体温高峰到来之前采集,因为细菌流入血液与寒战发作通常间隔1h,在发烧时血液可能没有细菌,实际上,血培养通常是在寒战或发烧后进行。

由于细菌很快会从血液中清除,因此,在寒战或发烧后应尽快抽取血培养。

正是由于这个原因,我们一般不推荐在任意时间抽取静脉血进行培养,研究资料表明任意时间采血并不能提高微生物的检出率。

实际上已经证明在24h内同一时间或任意时间抽血培养发现微生物的结果相似。

无论何时,采集血培养应该在使用抗生素之前进行,推荐同时采集2~3瓶,每瓶20ml~30ml血样进行培养来做最初的平谷,这也更切合实际。

先前饿抗生素治疗可能导致血培养结果阴性,微生物延迟生长更为常见。

有研究证实,对链球菌心内膜炎患者,在做血培养的前两周内患者接受了抗生素治疗,血培养的阳性率从97%下降到91%。

由于有很好的血培养技术,对感染性心内膜炎患者血培养的阳性率应该达到95%以上。

对特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议:1.怀疑记性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎的患者:应立即采集2或3份血培养瓶,快速进行血培养。

2.不明病源的发热,如隐性脓肿,伤寒热和波浪热:发热开始采集2或3份血培养。

24h至36h后,估计温度升高之前(通常在下午)立即采集2份以上血培养。

3.怀疑菌血症或真菌菌血症,血培养结果持续阴性,应改变学培养方法,以便获得罕见的或苛养的微生物。

4.感染性心内膜炎,对急性心内膜炎患者1h(2h内)采集3份血培养,如果所有结果24h后阴性,再采集3份血培养瓶。

入院前两周内接受抗生素治疗的患者,连续三天采集血培养,每天2份。

要点:大部分临床医生对成年患者采集血量不足,采集血培养份数不够,采血时机不合适,通常在患者体温高热时,24h内采集一瓶血培养,降低了血培养的阳性率,不符合才学的基本规程,实验室应该做大量宣传沟通工作。

血培养检测运输标准:采血后血培养瓶或采集管应立即送到临床微生物实验室。

血培养瓶和采集管短期内置于室温不影响细菌检出,不要冷藏,如果血培养瓶在送往实验室培养或自动化仪器检测之前不得已需放置一段时间,应置于35℃~37℃孵箱中。

但含血液的采集管不应置于孵箱中,若有细菌生长会释放出一些气体,采集管有破裂或渗漏的危险。

实验室收到血培养瓶后立即进行肉眼观察微生物生长情况。

采用自动化连续检测血培养系统,有一点很让人忧虑,那就是标本运送有时被延误,这样会导致微生物检测延迟(尽管微生物生长不受影响),目前很少有人注重这一点。

尽管自动化连续检测系统有允许延迟上瓶检测微生物生长的原理,培养瓶在运送过程中还应尽量减少延迟。

血培养检测接受标准:实验室收到血培养后,应按以下步骤操作:1.检查培养瓶确保它们被安全地放置。

2.用肉眼观查微生物生长的情况,注意血液层上面是否有絮状沉淀、均匀的或表面下的浑浊、溶血、液体培养基凝固、有一层表面薄膜、产生气体、血层表面或深层有白色颗粒等,如有上述情况产生提示有微生物生长。

3.检查瓶子上的标签,确认资料是否齐全,与申请单上的患者资料是否一致。

4.保证获得适量的血液。

5.检查血液是否超过要求的基线。

6.放置在孵箱中或上机进行检测。

由于菌血症和真菌菌血症的检测对临床感染性基本的诊断十分重要,实验室工作人员应认真接收血标本,对儿童和承认,不管抽血量多少,均应该进行培养并在报告单上注明血量,有可能延误菌血症或真菌菌血症的检测。

血培养检测不规范处理方法:送到实验室的血标本应认真处理,减少标本错误和标本污染。

标本处理不当及不正确采集,医院及实验室工作人员本身携带的病菌均可能造成标本污染。

因此,建议发生下列不规范的血培养时应该及时处理。

1. 血培养或培养管无标签或贴错标签、培养瓶或培养管有渗漏、破裂或明显的污染、血标本采集后放置12h以上、用不适当的培养瓶或培养管收集标本。

处理方法:立即与临床医师联系,报告:“标本不规范的具体理由”。

2. 用失效的培养瓶或培养管收集标本。

]处理方法:与医生联系,报告:“用过期培养瓶收集血标本,请用效期内的培养瓶收集标本并送检。

3. 送交血标本的量不足或只送一瓶血培养。

处理方法:与医生联系,报告:“送交的血培养标本量不足,请补送足量血液培养瓶”。

4. 未送推荐的培养瓶数或类型处理方法:与医生联系,报告:如“只送需氧瓶不符合规程,血培养的基本规程推荐送两种培养瓶:需氧瓶和厌氧瓶”。

要点:每位临床医师都应该对患者负责任,实验室工作人员发现不规范的血标本后,应该即使同志临床医生以便重复采集血培养进行补救。

血培养检测微生物室处理血培养预防感染的安全程序:1.细菌室工作人员,在所有的血培养处理过程中都应戴乳胶手套。

2.拒收不符合安全标准的血培养瓶或培养管。

3.在生物安全柜内打开或穿刺培养瓶或家一个胶膜防护装置(如:把培养瓶置于丙烯酸酯膜后或戴上口面罩)。

4.在生物安全柜内操作肉眼观察有微生物生长迹象的培养瓶。

5.操作产生的气溶胶,可能含有高浓度的致病菌或真菌,利用实验室的方法和技术采取正确的自我保护措施。

6.用于培养基的塞子和胶带可能含有高浓度的致病菌,应防止接触。

7.正确处理与血培养有关的污染物。

8.立即报告血培养结果及抗生素敏感试验结果。

血培养检测——阳性结果的处理:传统手工法血培养应该每天至少检查一次,对48h~72h未生长的培养瓶至少应进行需氧传种培养一次。

对培养瓶进行肉眼检查,注意下列几点提示有微生物生长:1.血与肉汤混合物出现浑浊。

2.在血液层上有絮状沉淀,某些链球菌在沉积的红细胞表面上,会有小的“棉球样”生长。

3.肉汤内出现浑浊生长。

4.肉汤表面有薄膜生长。

5.出现溶血。

6.产生气体,许多发酵菌可产气,梭菌属会产生大量的气体,出现明显的溶血现象。

7.血液层表面或深层有白色颗粒。

8.液体培养基凝固。

如果怀疑血培养阳性,应立即进行革兰染色,以无菌手续从培养瓶中取肉汤2~3滴涂片,自然干燥,加热固定并染色。

染色结果应尽快报告,如革兰阳性球菌为成对或成堆或成链,革兰阴性杆菌为小杆菌或球杆菌等。

革兰染色结果可指导医生为患者经验选择抗生素治疗,并作为实验室进行细菌鉴定补充试验的参考依据,它对于鉴别葡萄球菌和链球菌非常有用。

如果血培养阳性革兰染色未发现细菌,应做吖啶橙染色进行二次镜检,这对检测弯曲菌菌血症和布鲁菌菌血症很有帮助,而革兰染色很少发现这些细菌。

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