套管气囊压迫对兔气管组织形态结构的作用

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家兔实验中气管插管的应用体会

家兔实验中气管插管的应用体会
气管插管是一种常用的手术技术，它可以使呼吸道通畅，保证氧气充足供应，有效预防呼吸道阻塞和窒息等症状。

在家兔实验中，气管插管也是一项重要的技术，能够保证实验的顺利进行，提高实验的可信度和准确性。

在家兔实验中，气管插管的应用主要是为了进行呼吸系统相关实验，如肺功能检测、呼吸机模拟等。

首先需要准备好气管插管所需的器材，包括气管插管管道、喉镜、吸痰器、氧气气瓶等。

家兔实验中，选择适当的气管插管管道是非常重要的，一般情况下，我们会根据家兔的体型和实验要求来选择合适的管道。

在插管前，需要先进行家兔的麻醉和消毒处理，以免感染和疼痛。

插管过程需要耐心和细心，因为家兔的气管比较细小，插管时需要精准地掌握插管方向和深度，以免误入食管或引起气道损伤。

在插管过程中，使用喉镜可以清晰地观察到气管和插管的位置，同时可以利用吸痰器清除气管内的分泌物，保证通畅。

在实验过程中，气管插管的应用可以有效地控制家兔的呼吸，使其呼吸节律稳定，同时可以通过氧气气瓶控制家兔的吸氧量，保证实验的可靠性和准确性。

同时，气管插管还可以避免家兔在实验过程中因窒息或呼吸困难而引起的生理反应，减轻家兔的痛苦和压力，保护其生命安全。

在实验结束后，需要及时拔除气管插管，并进行口腔和气管的消毒处理，以免感染和炎症。

同时，还需要对家兔进行观察和护理，保
证其恢复正常的呼吸和生命体征。

总之，气管插管在家兔实验中的应用是非常重要的，它可以保证实验的顺利进行，提高实验的可信度和准确性，同时也可以保护家兔的生命安全和减轻其痛苦和压力。

因此，在进行家兔实验时，我们需要认真掌握气管插管的技术和注意事项，确保实验的科学性和伦理性。

家兔呼吸运动调节解读

家兔呼吸运动调节解读家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。

2.掌握气管插管术和神经血管分离术。

实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T 型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。

实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。

待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。

2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。

在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。

在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。

将T 型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。

手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。

3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。

打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。

4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。

（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。

（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。

记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。

家兔气管插管实验报告

家兔气管插管实验报告
本实验旨在探究家兔气管插管的操作方法及其对家兔呼吸系统的影响，以期为
临床医学提供参考依据。

实验中，我们选取了健康的家兔作为实验对象，通过对其进行气管插管操作，并观察其呼吸情况，记录实验数据，最终得出结论。

首先，我们对家兔进行了术前准备工作，包括测量体温、体重，观察呼吸情况等，确保家兔处于良好的生理状态。

随后，我们进行了麻醉操作，选择合适的麻醉药物，控制麻醉深度，保证家兔在实验过程中不会感到疼痛。

在家兔完全麻醉后，我们进行了气管插管操作，通过专业的插管技术，成功将气管插管置入家兔气管内，并固定好插管位置，以确保插管的稳定性和安全性。

随后，我们观察了家兔的呼吸情况，记录了插管后家兔的呼吸频率、潮气量等
呼吸参数，并与插管前进行了对比分析。

实验结果显示，家兔在插管后呼吸频率略有下降，但潮气量有所增加，呈现出一定的生理变化。

此外，我们还观察到家兔在插管后出现了轻度的咳嗽反应，但并未影响呼吸功能。

在实验过程中，我们严格遵守了实验操作规范，确保了实验的准确性和可靠性。

同时，我们也对家兔进行了良好的术后护理，观察了其恢复情况，并及时处理了可能出现的并发症。

综合以上实验结果，我们得出结论，家兔气管插管操作对家兔呼吸系统产生了
一定的影响，但并未引起严重的生理异常，插管后的家兔呼吸功能基本正常。

因此，家兔气管插管是一种安全有效的操作方法，可用于临床医学的相关研究和治疗实践中。

总之，本实验为我们提供了关于家兔气管插管操作及其对呼吸系统影响的重要
实验数据，为临床医学研究提供了有益的参考依据。

我们将继续深入探究气管插管技术及其临床应用，为医学领域的发展贡献我们的力量。

单纯加大气管插管导管套囊压力能导致兔气管狭窄吗?

㊃论著㊃D O I :10.3760/c m a .j.i s s n .1673-436X.2014.23.006作者单位:510120广州呼吸疾病研究所呼吸疾病国家重点实验室广州医科大学附属第一医院呼吸内科(苏柱泉㊁李时悦㊁钟长镐);510120广州医科大学附属第四医院超声科(何玮华);510120广州医科大学附属第一医院超声科(汤庆)通信作者:李时悦,E m a i l :l i s h i yu e @188.c o m 单纯加大气管插管导管套囊压力能导致兔气管狭窄吗?苏柱泉李时悦钟长镐何玮华汤庆ʌ摘要ɔ 目的探讨单纯加大气管插管导管套囊压力能否导致兔气管狭窄㊂方法对10只新西兰兔行气管插管并持续6h ,通过体外颈部超声和组织病理学检查,观察不同的套囊充气压力(25mmH g ,50mmH g ,100mmH g ,150mmH g ,200mmH g)于气管插管后12周气管腔的形态㊁内径及组织学变化㊂结果所有实验兔在插管期间无出现气管破裂或窒息等并发症,拔管后均无出现喘息㊁呼吸困难或意外死亡等情况㊂体外高频超声和游标卡尺测量气管左右径㊁气管前壁厚度均具有良好的相关性(分别r =0.884,P <0.01和r =0.923,P <0.01);体外颈部超声测量实验兔插管前和拔管后12周气管左右径分别为(5.18ʃ0.29)mm 和(4.93ʃ0.47)mm ,差异无统计学意义(t =2.041,P >0.05);气管前壁厚度分别为(0.69ʃ0.11)mm 和(0.75ʃ0.12)mm ,差异无统计学意义(t =-1.049,P >0.05)㊂12周后压迫段气管壁炎症反应与套囊压力之间呈明显正相关(r =0.978,P <0.01)㊂组织病理学检查表明增大套囊压力气管插管,拔管12周后气管腔无塌陷,软骨膜完整㊁软骨无破坏,未见瘢痕(肉芽)组织增生㊂结论在一定的导管型号和留置插管时间条件下,单纯加大气管插管导管套囊压力并不能导致兔气管狭窄,套囊内充气压力并非为插管后并发气管狭窄的唯一危险因素,因此有必要进一步综合研究其他相关因素㊂ʌ关键词ɔ 气管插管;气管狭窄;套囊压力;超声检查O n l y i n c r e a s i n g cu f f e d p r e s s u r e c a n l e a d t o p o s t i n t u b a t i o nt r a c h e a l s t e n o s i s i nr a b b i t ? S uZ h u q u a n *,L i S h i y u e ,Z h o n g C h a n g h a o ,H e W e i h u a ,T a n g Q i n g .*S a t e K e y L a b o r a t o r y o f R e s p i r a t o r y Di s e a s e ,G u a n g z h o uI n s t i t u t eo f R e s p i r a t o r y D i s e a s e ,t h e F i r s t A f f i l i a t e d H o s p i t a lo f G u a n g z h o u M e d i c a l U n v e r s i t y ,G u a n g z h o u 510120,C h i n a C o r r e s p o n d i n g a u t h o r :L i S h i y u e ,E m a i l :l i s h i yu e @188.c o m ʌA b s t r a c t ɔ O b je c t i v e T oi n v e s t i g a t ew e a t h e ro n l y i n c r e a s i n g c uf f e d p r e s s u r ec o u l dc a u s et r a c e a l s t e n o s i s i n r a b b i t .M e t h o d s T e nN e w Z e a l a n dr a b b i t sw e r e r e c e i v e de n d o t r a c h e a l i n t u b a t i o nf o r 6h o u r s w i t h d i f f e r e n tc u f f p r e s s u r e (25,50,100,150,200mmHg ),th e c h a n g e o ft r a c h e a ldi a m e t e r a n d m o r p h o l o g y w e r e d e t e c t e d 12w e e k s a f t e r e x t u b a t i o nb y u l t r a s o u n d a n dh i s t o l o gi c a l e x a m i n a t i o n .R e s u l t s T r a c h e a l f r a c t u r e o r a p n e a d i dn o t o c c u r d u r i n g i n t u b a t i o n ,n o r a b b i t a p p e a r e dw h e e z e ,d y s pn e a o r e v e nd i e a f t e r e x t u b a t i o n .W e f o u n da s i g n i f i c a n t c o r r e l a t i o nb e t w e e nu l t r a s o u n da n dv e r n i e r c a l i p e r t om e a s u r e t h e t r a c h e a l d i a m e t e r a n d t h e t h i c k n e s s o f i n t e r i o r t r a c h e a lw a l l (r =0.884,P <0.01a n d r =0.923,P <0.01,r e s p e c t i v e l y ).T h et r a c h e a ld i a m e t e r m e a s u r e d b y u l t r a s o u n d p r e -i n t u b a t i o na n d12w e e k sa f t e r e x t u b a t i o nw e r e (5.18ʃ0.29)mma n d (4.93ʃ0.47)mm ,r e s p e c t i v e l y (t =2.041,P >0.05).W h i l e t h e t h i c k n e s s o f i n t e r i o rt r a c h e a lw a l lw e r e (0.69ʃ0.11)m m a n d (0.75ʃ0.12)m m ,r e s p e c t i v e l y (t =-1.049,P >0.05).S i g n i f i c a n t c o r r e l a t i o nw a s f o u n d b e t w e e n c u f f pr e s s u r e a n d g r a d e o f i n f l a m m a t i o n (r =0.978,P <0.01).H i s t o l o g i c a le x a m i n a t i o ns h o w e dn oe v i d e n c eo fc a r t i l a g ed a m a ge da n d g r a n u l a t i o n t i s s u e o v e r g r e w.C o n c l u s i o n s I n t h e c o n d i t i o nof f i x e d e n d o t r a c h e a l t u b e a n d t h e i n t u b a t i o nd u r a t i o n ,o n l yi n c r e a s i n g th e c u f f e d p r e s s u r e c o u l dn o t c a u s e t r a c h e a l s t e n o s i s i n r a b b i t ,a n d t h e c u f f e d p r e s s u r e i s n o t t h e o n l y r i s k f a c t o r o f p o s t i n t u b a t i o n t r a c h e a l s t e n o s i s ,t h u s i t i s n e c e s s a r y t o e x pl o r e f u r t h e r t h e o t h e r r e l e v a n t ㊃8771㊃国际呼吸杂志2014年12月第34卷第23期 I n t JR e s pi r ,D e c e m b e r 2014,V o l .34,N o .23f a c t o r s.ʌK e y w o r d sɔ E n d o t r a c h e a l i n t u b a t i o n;T r a c h e a l s t e n o s i s;C u f f e d p r e s s u r e;U l t r a s o u n d气管插管是抢救呼吸衰竭危重症患者和手术行全身麻醉时的重要手段,气管插管导管套囊内充气可防止机械通气期间气管内漏气,保证有效通气量㊂文献[1]报道危重病患者拔管后出现不同程度气管狭窄的比例高达19%,目前认为其与气管插管导管套囊压力过高㊁未定时放气等因素有关[2],而且气管插管局部气管黏膜的缺血性损伤与导管套囊的压力成正比[3]㊂但是,是否插管后并发气管狭窄均与套囊压力过高有关?或者过高的套囊压力必然导致气管狭窄?这值得我们深思和研究㊂近年关于体外超声对气管测量的研究[4-6]已有报道,气管超声可清楚显示环形的气管环及气管前的软组织,通过超声检查可观察气管形态并测量气管腔的内外径参数㊂因此,本研究通过对实验动物行气管插管㊁加大导管套囊充气压力,利用体外颈部高频超声进行定期监测,结合组织病理学检查判断拔管后是否发生气管狭窄,旨在对以上提出的问题作一解答,并对有关插管后并发气管狭窄的原因的争议点进行讨论㊂1材料与方法1.1实验对象健康新西兰兔10只(由广东省实验动物中心提供),年龄4~6个月,雌雄不拘,体质量2.3~2.8k g㊂套囊压力分别为25mmH g㊁50mmH g㊁100mmH g㊁150mmH g和200mmH g 压力各2只㊂1.2麻醉及术前准备术前8h禁食水,采用3%戊巴比妥钠1m l/k g耳缘静脉麻醉,保持自主呼吸㊂麻醉后仰卧位固定于实验台上,将舌头拉至口侧防止舌根后坠㊂1.3气管插管通过体外气管超声(迈瑞-M a y l a b30型超声诊断仪,深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司)测量各实验兔的气管左右径[4]㊂综合实验兔的体质量和测得的气管内径选择I D3.5型号导管[4,7](W e l l l e a d,广州维力医疗器械股份有限公司),采用经口盲探方法对实验兔行气管插管,调整导管置入深度(门齿至导管末端距离为13c m[7]),向球囊注入空气,利用三通连接管监测气囊压力:其一端连接套囊,一端连接标化的医用水银血压计,一端接注射器,注入套囊内的气压表示单位为mmH g㊂留置插管期间每2小时复测导管套囊充气压力,以维持稳定的囊内压㊂1.4拔管后观察持续气管插管6h后拔管,复查B超测量气管内径以及观察软骨形态和回声变化㊂拔管后每天观察实验兔有无出现哮鸣喘息㊁呼吸困难等症状,以及监测食欲㊁体质量㊁活动等一般情况㊂拔管后每周行颈部超声检查,测量气管内径和观察气管形态㊁黏膜厚度以及软骨回声,以判断受损气管段的水肿情况及有无肉芽组织生长,并截取图像资料㊂1.5标本制备所有实验兔于拔管后12周处以安乐死,游离气管,大体观察套囊压迫气管段情况㊂切取气管压迫段,利用游标卡尺(555牌,中国杭州工具量具有限公司)测量压迫段气管左右径㊂气管组织用10%甲醛固定,24h后脱水㊁透明,石蜡包埋,连续横切,厚4μm,H E染色㊁封片,显微镜观察并截取图片㊂1.6统计分析所有实验数据均应用S P S S13.0统计软件分析处理,测量数据以x-ʃs表示,两种测量方法结果以及套囊压力与炎症评分的相关性采用P e a r s o n相关分析,各实验兔插管前后气管内径和气管前壁厚度的比较采用配对t检验,P<0.05为差异有统计学意义㊂2结果2.1一般情况所有实验兔在气管插管期间均未出现气管破裂或窒息等并发症,在拔管后1~2d均出现食欲下降㊁活动减少的表现;3只(3/10)实验兔在拔管后2周内体质量不增加或减轻,2周后食欲和活动增加,所有实验兔在拔管后第12周体质量均较插管前增加,差异具有统计学意义(P<0.01,表1)㊂所有兔在拔管后观察期间均无出现喘息或呼吸困难等症状㊁无发生意外死亡㊂2.2体外超声和卡尺测量当增大套囊充气压力(ȡ50mmH g),实验兔体外颈部气管超声测量气管左右径[6]和气管前壁厚度[8],气管插管前和拔管后12周比较,差异无统计学意义(P>0.05);观察气管软骨形态和测量软骨厚度(P>0.05)均无明显改变(表1)㊂所有实验兔经体外高频超声测量拔管后12周气管左右径㊁气管前壁厚度分别为(5.16ʃ0.32)mm和(0.71ʃ0.12)mm,游标卡尺测量气管左右径㊁气管前壁厚度分别为(5.07ʃ0.24)mm 和(0.72ʃ0.09)mm,两种方法的测量结果差异均无统计学意义(分别t=0.688,P>0.05和t= -0.106,P>0.05),且具有良好的相关性(分别r= 0.884,P<0.01和r=0.923,P<0.01,图1)㊂㊃9771㊃国际呼吸杂志2014年12月第34卷第23期I n t JR e s p i r,D e c e m b e r2014,V o l.34,N o.23表1 增大套囊压力插管前和拔管后12周超声测量值的比较(x -ʃs)观察时间只数体质量(k g )气管左右径(mm )软骨厚度(mm )气管前壁厚度(mm )气管插管前82.51ʃ0.175.18ʃ0.290.30ʃ0.050.69ʃ0.11拔管后12周83.57ʃ0.184.93ʃ0.470.33ʃ0.070.75ʃ0.12t 值-12.2452.0411.000-1.049P 值<0.0010.0810.3510.329图2 A :实验兔经口气管插管;B :切开实验兔颈前皮肤,游离颈段气管;C :同一实验兔正常段(左)和压迫段(右)气管横截面图3 A :气管正常段(压迫段3个软骨环以外的气管环作为正常段);B :套囊压力25mmH g(拔管12周后);C :套囊压力200mmH g(拔管12周后) H E ˑ200图1 体外超声和游标卡尺对气管左右径㊁气管前壁厚度测量值明显相关(分别r =0.884,P <0.01和r =0.923,P <0.01)2.3 组织病理学检查实验兔均经口气管插管(图2A ),增大套囊压力气管插管后压迫段气管外壁完整,无断裂或塌陷(图2B ),气管腔通畅㊁无狭窄,气管软骨完整㊁无变形(图2C )㊂病理结果显示,对比气管正常段(图3A ),正常套囊压力下(25mmH g )压迫段气管黏膜上皮完整,黏膜下层轻度水肿,软骨和软骨膜结构完整(图3B );增大套囊压力后,可见气管黏膜上皮脱落(细箭头)㊁局部再上皮化(粗箭头),黏膜下层水肿㊁充血,伴大量淋巴细胞和浆细胞浸润,套囊压力与炎症反应呈正相关(r =0.978,P <0.01,表2㊁图4),而软骨和软骨膜无断裂或炎性细胞浸润,未见肉芽组织生长(图3C )㊂3 讨论体外颈部气管超声检查是一种安全有效的非侵入性手段,研究表明超声检查测量气管腔直径与C T 扫描测量[9]㊁核磁共振成像测量[10]和支气管镜测量[4]之间均具有很强的相关性;而本研究结果显示,气管超声与实体测量(解剖后游标卡尺测量)气管左右径和气管前壁厚度之间差异均无统计学意义,且两种测量方法具有良好的相关性,进一步证实㊃0871㊃国际呼吸杂志2014年12月第34卷第23期 I n t JR e s pi r ,D e c e m b e r 2014,V o l .34,N o .23表2 各实验兔拔管后12周气管壁炎症反应情况编号压力(mmH g)评分炎症反应评分毛细血管扩张a 数目b 充血c炎性细胞浸润d 数目e125511111225511111350621111450511111510082121261008211227150921123815092112392001121233102001021223注:评分标准[8]:a :1-轻度,2-明显;b :1-连续5个高倍镜下(ˑ200)血管总数<150,2-血管总数ȡ150;c :1-轻度,2-明显;d :1-炎性细胞浸润局部组织,2-炎性细胞浸润部分组织,3-炎性细胞浸润整个组织;e :1-连续5个高倍镜下(ˑ400)炎性细胞<50个,2-连续5个高倍镜下(ˑ400)炎性细胞50~100个,3-连续5个高倍镜下(ˑ400)炎性细胞>100个图4 12周后压迫段气管壁炎症反应与套囊压力之间明显正相关(r =0.978,P <0.01)高频超声对气管左右径和气管前壁厚度的测量结果是可靠的㊂由于超声检查操作简便㊁价格低廉,对气管环分辨率高等优点,因此认为其可作为常规支气管镜检查的补充,并且对明确管壁黏膜水肿和拔管后远期并发症(如气管狭窄㊁气管软化等)的监测随访具有独特的优势㊂气管壁的血流供应主要来自黏膜下层的血管丛[11-12],正常气管黏膜的毛细血管能耐受20~30mmH g (1mmH g =0.133k P a =1.36c mH 2O )压力,过高的气管插管导管套囊压力可导致气管环断裂或气管狭窄等并发症[13-14],后者是由于套囊对气管壁造成压迫性损伤,阻断气管黏膜血流,引起气管黏膜或合并气管软骨缺血坏死,局部炎性细胞浸润可刺激成纤维细胞及血管内皮细胞增生,继而肉芽组织过度生长甚至侵入至软骨[15]导致气管塌陷,最终形成气管狭窄㊂因此,临床上对长期机械通气的患者,建议监测并维持套囊内充气压力低于毛细血管充盈压水平(<25mmH g)[16]㊂当导管套囊压力22mmH g 持续时间超过4h 以上可导致气管壁纤维素样渗出㊁黏膜坏死脱落㊁黏膜下充血水肿㊁炎性细胞浸润[17];套囊对气管壁压力达到88mmH g时可阻断气管黏膜和软骨的血流而造成气管壁穿孔㊁破裂等严重的并发症[18-19]㊂L e i gh 等[20]研究发现套囊压力达到100mmH g 维持15m i n ,基膜开始分离㊁黏膜基质暴露,4h 后损伤和炎症逐渐侵入渗透至气管软骨㊂本研究结果表明,套囊压力与插管后气管壁局部炎症反应呈正相关:套囊压力为25mmH g持续6h ,12周后可见黏膜上皮完整,黏膜下水肿和炎症细胞浸润不明显;当压力增加至100mmH g以上,12周后可见黏膜上皮脱落,局部鳞状上皮化生,黏膜下水肿明显,大量炎症细胞浸润,水肿及炎症反应程度随套囊压力的增加而明显,但均未见软骨破坏㊁气管软骨/软骨膜炎或肉芽组织增生等㊂我们注意到,以往的研究中没有考虑实验动物的气管内径参数及统一插管导管的型号(直径),且并未见对气管插管后实验动物发生的气管壁损伤和气道并发症等情况作远期观察的研究报道,而本研究根据实验动物的气管内径和体质量综合考虑,统一气管插管导管的型号以及其他气管插管的参数(导管插入深度和留置插管时间),以减少多种不同参数的影响,而单纯观察气管插管套囊压力这一因素与气管插管后发生气管狭窄等远期并发症的关系㊂通过对实验兔经口气管插管,加大导管套囊充气压力至25mmH g 以上(最高达200mmH g )并留置气管插管6h ,插管期间及拔管后所有实验兔均无发生气管断裂或意外死亡,远期并无出现呼吸困难症状或并发气管狭窄;压迫段气管组织病理学结果显示气管软骨膜和软骨结构完整㊁无炎性细胞浸润或缺血坏死,未见肉芽组织形成,实验结果与以上㊃1871㊃国际呼吸杂志2014年12月第34卷第23期 I n t JR e s pi r ,D e c e m b e r 2014,V o l .34,N o .23学者的结论和推断并不相符㊂对此,笔者有以下几方面的思考:①气管插管导管套囊内充气压力并非导致插管后气管狭窄的唯一危险因素,单纯过高的套囊压力未必一定导致气管狭窄的发生,插管后并发气管狭窄可能是多种因素共同作用的结果;②有研究表明仅损伤黏膜和黏膜下层,创伤能正常愈合而不发生气管狭窄[21],而创伤累及软骨膜才是发生气管狭窄的关键[22]㊂于此则认为在合适的导管型号和留置插管时间条件下,气管插管后单纯加大套囊充气压力,仅造成气管黏膜和黏膜下层压迫性损伤,但气管软骨膜和软骨无发生缺血坏死,并未形成触发气管狭窄的条件;③导管套囊内的充气压力并不能直接反映套囊对气管壁的压力[23-24],套囊对气管管壁的压力与套囊内充气压力㊁套囊的形状和大小㊁气管和套囊本身的弹性回缩力等因素有关,但目前并未有一种对气管壁压力准确测量的方法[25],因此认为即使同一套囊充气压力下,不同的气管内径和导管型号因素的影响,可出现不同预后或并发症,但尚需要进一步的研究证实㊂以上因素可能是本实验与以前的研究结果[17-18,20]不一致的原因,因此推测气管插管导管型号直径的选择㊁气管内径的测量以及套囊内的充气压力是气管插管前需综合考虑的重要因素,而且是插管后是否发生气管狭窄等并发症的关键㊂由此可见,气管插管后并发气管狭窄是多因素影响的结果,而其相关危险因素和发病机制尚需进一步的研究探讨㊂综上所述,在一定的导管型号和留置插管时间条件下,单纯加大套囊压力行气管插管,拔管后并不发生气管狭窄㊂气管插管后并发气管狭窄可能是多因素影响的结果,导管套囊内充气压力并非其唯一的危险因素,因此有必要进一步综合研究其他相关因素㊂参考文献[1] S t a u f f e r J L,O l s o n D E,P e t t y T L.C o m p l i c a t i o n s a n dc o n s e q u e n c e s o f e nd o t r a c he a l i n t u b a t i o na n dt r a c h e o t o m y.Ap r o s p e c t i v e s t u d y o f150c r i t i c a l l y i l l a d u l t p a t i e 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套管气囊内压与兔气管损伤的关系

４ｈ）、Ｄ组（１０只兔子为对照组）。结果与对照组相比较，Ａ１组（给予１５ａｉｒｎＨｇ压力，维持２ｈ），Ｂ２组（给予１５ｉｌｌｔｎＨｇ压力，维持
２ｈ，放气２０ｍｉｎ，再充气，反复３次）和Ｂ３组（给予１５ｎｌｌＴｌＨｇ压力，维持２ｈ，放气３０ｍｉｎ，再充气，反复３次），拔管２４ｈ后气管壁
胞渗出及炎性细胞浸润，软骨受损（ＨＥ染色光镜下）；２１ｄ后，气管上皮细胞缺失，未被正常的黏膜上皮所修复，黏膜下可见炎性细胞及红细胞，软骨受损。病变程度随气囊内压的增大及充气放置时间的延长而加重。结论对小儿行气管插管术或气管切开术后，套囊内压维
科大学附属盛京医院耳鼻喉科，辽宁沈阳１１０００４）
【摘要】目的研究套管气囊内压与小儿气管损伤的关系。方法选择４－５月龄的大耳白兔８０只，按照套管气囊内压以及放置时间的不同，以随机分组的方式，分为Ａ组（２Ｏ只兔子。给予气囊内压１５ｉｎｌｎＨｇ分别持续充气２、４ｈ）、Ｂ组（３０只兔子。给予气囊内压１５ｌｎｍＨｇ持续充气２ｈ再分别给予气囊放气１０、２Ｏ、３０ｍｉｎ后再次充气２ｈ，反复３次）、ｃ组（２０只兔子。给予气囊内压２５ｍｎｌＨｇ分别持续充气２、

[知识]生理因素及药物对兔呼吸运动的影响

生理因素及药物对兔呼吸运动的影响生理因素及药物对兔呼吸运动的影响【目的和原理】在呼吸运动中，胸内压、肺内压随胸廓的运动而变化，因此气道内压也随之发生相应变化。

故气道内压的变化基本上反映了呼吸运动的变化。

本实验通过气管内插管并连接呼吸传感装置，使气道内压变化在记录装置上以呼吸曲线形式表现出来，本实验目的是观察不同因素对呼吸运动的影响。

【实验对象】兔，体重2.0～3.0Kg。

【实验器材和药品】哺乳类手术器械一套、兔手术台、气管插管、注射器（1 ml、5 ml、20 ml）、50cm长胶管、气袋或球胆螺旋夹、二道生理记录仪（或计算机实时分析系统）、呼吸传感器或张力换能器、保护电极、铁支架等。

20％乌拉坦、1％盐酸吗啡、2.5％尼可刹米、3％乳酸、0.9％氯化钠、二氧化碳、氮气。

【实验步骤】1．准备描记装置二道生理记录仪参考参数：灵敏度2mv/cm，滤波30Hz，时间常数DC，基线中线。

2．手术（1）麻醉固定家兔称重后，用20％乌拉坦5ml/Kg由耳缘静脉缓慢注入，麻醉后仰卧固定于手术台上。

（2）颈部手术颈部剪毛，在喉头下缘至胸骨上凹作正中切口，钝性分离肌肉至气管，作气管插管，在气管插管一侧管置呼吸传感器，通过计算机实时分析系统记录呼吸；也可用弯缝针在兔的剑突上皮肤穿一条线并固定，线的另一端连张力换能器，通过记录仪器记录呼吸。

分离出两侧迷走神经穿线备用。

3．观察项目（1）吸入增加CO2的气体将装有CO2的气袋（可用呼出气体）的管口对准气管插管的一侧开口（中间留有间隙），并作标记，观察描记呼吸曲线的变化。

（2）缺氧待呼吸恢复正常后，将氮气气袋的管口对准气管插管的一侧开口（中间留有间隙），并作标记，观察描记呼吸曲线的变化。

（3）增大无效腔待呼吸恢复正常后，将一根50cm长胶管接在气管插管侧管上，并作标记，观察描记呼吸曲线的变化。

（4）乳酸酸中毒待呼吸平稳后，由耳缘静脉注射3％乳酸2ml/Kg，并作标记，观察描记呼吸曲线的变化。

家兔气管狭窄实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 观察家兔气管狭窄模型的建立及病理变化；2. 探讨气管狭窄对家兔呼吸功能的影响；3. 分析气管狭窄模型的临床特征及治疗策略。

二、实验材料1. 实验动物：家兔6只，体重2.5-3.0kg，雌雄不限；2. 实验试剂：0.9%氯化钠溶液、2%利多卡因、0.5%戊巴比妥钠；3. 实验器材：气管插管、手术器械、电子秤、呼吸监测仪、麻醉机、显微镜等。

三、实验方法1. 实验动物分组：将6只家兔随机分为两组，每组3只，分别为实验组与对照组。

2. 模型建立：（1）实验组：采用气管插管，将气管插管插入家兔气管，向气管内注入0.9%氯化钠溶液0.5ml，使气管内壁形成狭窄；（2）对照组：仅进行气管插管操作，不注入氯化钠溶液。

3. 实验过程：（1）实验组：观察气管狭窄家兔的临床表现，包括呼吸频率、节律、呼吸幅度等；（2）对照组：观察正常家兔的临床表现，作为对照。

4. 数据采集与分析：（1）记录实验组与对照组家兔的呼吸频率、节律、呼吸幅度等数据；（2）对实验数据进行统计分析，比较两组家兔的呼吸功能差异。

5. 组织学观察：（1）实验组：处死实验组家兔，取出气管组织，进行石蜡包埋、切片、染色；（2）对照组：处死对照组家兔，取出气管组织，进行石蜡包埋、切片、染色；（3）观察气管组织病理变化，包括气管壁厚度、黏膜层、平滑肌层等。

四、实验结果1. 实验组家兔气管狭窄后，呼吸频率明显增加，呼吸幅度减小，呼吸节律紊乱，表现为呼吸困难；2. 对照组家兔呼吸功能正常，呼吸频率、节律、呼吸幅度等指标无显著差异；3. 组织学观察结果显示，实验组家兔气管壁厚度明显增加，黏膜层及平滑肌层出现增生、肥大等病理变化。

五、讨论1. 气管狭窄是临床常见的呼吸系统疾病，本实验通过建立家兔气管狭窄模型，观察了气管狭窄对家兔呼吸功能的影响；2. 实验结果显示，气管狭窄会导致家兔呼吸频率增加、呼吸幅度减小、呼吸节律紊乱，表现为呼吸困难；3. 组织学观察结果显示，气管狭窄会导致气管壁厚度增加、黏膜层及平滑肌层增生、肥大等病理变化；4. 本实验为气管狭窄的临床诊断及治疗提供了实验依据。

兔子胸膜腔的观察实验结果

兔子胸膜腔的观察实验结果篇一（1）平静呼吸:记录呼吸运动和胸膜腔内压曲线，观察正常平静呼吸运动与曲线的关系，并区分心搏波、呼气波、吸气波和梅耶氏波。

比较吸气和呼气时的胸膜腔内压，读出其数值。

(2)用力呼吸:夹闭气管插管套管的1/2~2/3，持续10~20秒，观察和记录呼吸运动和胸膜腔内压曲线的最大幅度，注意用力呼气时胸膜腔内压是否高于大气压。

(3)增加吸入气中CO浓度: 将充满CO的球胆开口对准气管插管一侧管，松开球肥夹子，缓慢增加吸入气中 CO浓度，呼吸运动发生明显变化后，夹闭球胆，观察呼吸运动和胸膜腔内压曲线的变化。

(4)缺氧:将一侧气管套管夹闭，呼吸平稳后，另一侧套管通过一只钠石灰瓶与盛有空气的球胆相连，使动物呼吸球胆中的空气。

经过一段时间后，球胆中的氧气明显减少，但呼出的 CO2被钠石灰吸收，但 CO，含量并没有增多，观察呼吸运动和胸膜腔内压的变化情况。

(5)增大无效腔: 夹闭一侧气管套管，呼吸平稳后，另一侧套管接一段约50的管，物此皮管呼吸，观察呼吸运动和胸膜腔内压的变化，结果明显后去掉橡皮管恢复正常呼吸。

(6)牵张反射: 将事先装有空气(约20ml)的注射器(或用洗耳球)经橡皮管与气管套管的一侧相连，在吸气相之末堵塞另一侧管，同时立即向肺内打气，可见呼吸运动暂时停止在呼气状态。

当呼吸运动出现后，开放堵塞口，待呼吸运动平稳后再于呼气相之末，堵塞另一侧管，同时立即抽取肺内气体，可见呼吸暂时停止于吸气状态，分析变化产生的机理。

(7)迷走神经的作用:①切断一侧迷走神经，呼吸运动和胸膜腔内压有何变化?再将另一侧迷走神经结扎后在离中端剪断，呼吸运动和胸膜腔内压又有何变化?②重复第6项实验，比较呼吸和胸膜腔内压变化有什么区别。

③以中等强度重复脉冲刺激迷走神经向中端，观察在刺激期间呼吸运动和胸膜腔内的变化情况。

(10)增加血液中H+浓度:经耳缘静脉快速注入3%乳酸1~2ml，观察呼吸运动和胸膜腔内压的变化情况。

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ｏｎ
ＭｏｒｐｈｏｌｏｇｙｉｎＲａｂｂｉｔ
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Ｔｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｉｎｆｌａｔｉｎｇｔｈｅｃｕｆｆｏｆｅｎｄｏｔｒａｃｈｅａｌｔｕｂｅ
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ｔｒａｃｈｅａｌ
ｍｕｃｏｓａｉｎｃｈｉｌｄ．
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ｈ），ＩＩ（２５ｍｍＨｇｆｏｒ
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ｈ），ＩＩＩ（２ｈｂｙ
１５ｍｍＨｇｄｉｓｉｎｆａｔ１０，２０，３０ｒａｉｎａｆｔｅｒｒｅｉｎｆｌａｔｌｙｆｏｌｌｏｗｅｄｂｙ２
浸润，甚至会使气管黏膜血流中断、气管狭窄、穿孔、破裂等严重的并发症。ｄ，Ｊｈ因其气管较细，软骨柔软，在气管切开术后气管易被套管压迫而塌陷，如果套囊压力过大，软骨缺血易感染，容易造成软骨坏死和吸收、瘢痕化而致狭窄，且正处于生长发育阶段治疗更加困难，愈后较差。但目前对于小儿尚无明确安全的气囊压力和放置时间，因此，寻找一个，ＳＪＬ适当的气囊压力和放置时间以保证
呼吸道的通畅及防止气管壁的损伤成为广大耳鼻喉科医生所关注的问题。
材料和方法
健康大耳白兔（４－５月）６４只（中国医科大学盛京医院实验动物中心提供），雌雄不限，体重（２．０—２．５）千克，随机分２组：
ＡＭ：２４只，又分为４组：ＡＩ组：气囊压力１５ｍｍＨｇ（１ｍｍＨｇ＝０．１３３ｋＰａ），按气囊充气时间（２、４小时）分两个亚组，各３只：ＡＩＩ组：气囊压力２５ｍｍＨｇ，分（２、４ｄ，时）两
就越大，但压力过小放置时间过短将会出现漏气和呕吐物、血液、分泌物等流入下呼吸道导致严重后果。曾有报道，成人由于套管气囊对气管壁的压力过大及／或放置时间过长所引起的气管壁的损伤，轻者可以造成气管黏膜水肿，黏膜纤毛运
动受限，气管黏膜基底膜的损伤；重者可引起气管壁均有纤维素样渗出，其内混杂有大量的嗜异染细胞，黏膜坏死脱落、黏膜下充血水肿、出血、炎性细胞显著
红细胞渗出，软骨受损。病变程度随气囊压力的增大及压迫时间的延长而加重。
结论
对兔气管切开后，套管气囊压力以１５ｍｍＨｇ对气管组织形态结构的损伤最小；气囊充气２小时，放气时间＞１２０分钟再充气２小时，如此反复３次，可以减轻对
气管组织结构的损伤。
关键词
气囊：套囊压力：压迫时间：光镜
２
・英文论著摘要・Ｅｆ．ｆｅｃｔｏｆＩｎｆｌａｔｅｄＥｎｄｏｔｒａｃｈｅａｌＴｕｂｅｔｈｅＴｒａｃｈｅａｌ
ｈｏｕｒｓ’ｒｅｉｎｆｌａｔｉｏｎ）ａｎｄ
ＩＶ（ｃｏｎｔｒ０１）．
Ｂ：４０ｈｅａｌｔｈｙ
ｒａｂｂｉｔｓ：Ｉ（１５ｍｍＨｇｆｏｒ
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ｈ），ＩＩＩ（２ｈｂｙ
１５ｍｍＨｇ Байду номын сангаасｉｓｉｎｆｌａｔ１０，２０，３０ｍｉｎａｆｔｅｒｒｅｉｎｆｌａｔｌｙｆｏｌｌｏｗｅｄ
出，软骨基本完整；２１天后，气管组织结构未见异常。（２）气囊压力１５ｍｍＨｇ维持４小时及气囊压力２５ｍｍＨｇ维持２小时ＨＥ染色光镜下观察拔管后２４小时气管广泛的上皮细胞坏死脱落，基底细胞部分破坏，黏膜
下水肿，有炎性细胞浸润，黏膜下有红细胞渗出，软骨受损；２ｌ天后，气管上皮
细胞缺失，未被正常的假复层纤毛柱状上皮所修复，有炎性细胞浸润，黏膜下有
个亚组，各５只：ＢＩｌｌ组：气囊压力１５ｍｍＨｇ，又分为气囊充气２ｄ，时后将气囊放气１０、２０、３０分钟再充气２小时，如此反复３次，分三个亚组，各５只：ＢⅣ组：对照组，５只。
结
果
（１）气囊压力１５ｍｍＨｇ维持２小时及气囊压力１５ｍｍＨｇ维持２小时气囊放气２０、３０分钟再充气２小时，如此反复３次，ＨＥ染色光镜下观察拔管后２４小时少部分假复层纤毛柱状上皮细胞脱离，基细胞基本完整，黏膜下有少量红细胞渗
个亚组，各３只；ＡＩＩＩ组：气囊压力１５ｍｍＨｇ，又分为气囊充气２小时后将气囊放气１０、
２０、３０分钟再充气２小时，如此反复３次，分三个亚组，各３只：ＡＮ组：对照组，３只。
Ｂ组：４０只，又分为４组：ＢＩ组：气囊压力１５ｍｍＨｇ（ＩｍｍＨｇ＝０．１３３ｋＰａ），按气囊充
气时间（２、４小时）分两个亚组，各５只：ＢＩＩ组：气囊压力２５ｍｍＨｇ，分（２、４ｄ＇时）两
・中文论著摘要・
套管气囊压迫对兔气管组织形态结构的影响
刖
吾
经口插管和气管切开术是临床常见的急救手术，此方法可以快速有效的重建呼吸通道。置入带有套囊的气管套管，给套囊内注入一定量的气体，不仅可以为实施控制呼吸或辅助呼吸时提供不漏气的条件，而且可以在术中术后防止呕吐物、
血液、分泌物等沿导管壁与气管壁之间的空隙流入下呼吸道。使用带气囊的气管套管时，气囊充气的压力和放置时间应适宜。压力过大时间过长对气管壁的损伤