大孔吸附树脂分离纯化红花黄色素的研究
大孔树脂吸附分离红花红色素的研究

大孔树脂吸附分离红花红色素的研究红花是一种常见的植物,它的红色素也是一种重要的天然色素,在食品、药物、饰品和纺织品中广泛使用。
近年来,大孔树脂吸附分离红花红色素已成为植物红色素研究的热点,其吸附性能优越,实现了对红色素的高效提取。
大孔树脂吸附分离红花红色素的原理是,利用吸附剂的吸附性能,大孔树脂可有效地吸附红花素,以达到分离的目的。
大孔树脂吸附分离红花素可分为吸附-脱附-再吸附等三个步骤。
首先,将将大孔树脂与受提取物混合,以获得红色素吸附分离物;其次,脱附后,将大孔树脂再次混合,扩散溶剂,复原原料,达到分离目的;最后,以特定浓度的吸附剂再次进行吸附,以达到分离红花素的目的。
大孔树脂吸附分离红花素的研究按温度的不同,有高温、中温和低温三种,其中,高温吸附是以温度较高的环境进行吸附,常温吸附是以常温环境进行吸附,而低温吸附是以较低温度环境进行吸附。
高温吸附红花素可以获得较高的红花素提取率,但它的操作温度较高,操作时间偏长,不适合大规模的生产。
而中低温吸附红花素则可以获得相对较低的红花素提取率,但操作温度较低,操作时间较短,适合大规模的生产。
为了提高红花素提取率,研究者们着重研究了大孔树脂吸附分离红花素的种类、浓度、温度和时间等因素,以及相关参数优化。
研究表明,在适当浓度的大孔树脂吸附剂中,中温环境下吸附,30min-2小时不等,可以获得较高的提取率。
另外,研究者们也发现,红花素的提取率与环境pH值有关,较低的pH值会有效提高红花素的提取率。
在使用大孔树脂吸附分离红花素时,为了获得较高的提取效率,还需要考虑预处理工艺以及过滤、再活化、离子交换等其他因素。
以确保红花素提取高效、结果可靠。
综上所述,大孔树脂吸附分离红花素具有优越的吸附性能,是一种高效、安全、环保的提取方法。
通过控制吸附剂的种类、浓度、温度和时间等因素,以及考虑参数优化,可以有效提高红花素提取率,为食品、药物、饰品和纺织品的生产提供新的技术支持。
红花中红花黄色素的纯化工艺研究

红花中红花黄色素的纯化工艺研究目的:探讨大孔吸附树脂对红花黄色素的纯化条件及纯化效果。
方法:以紫外分光光度法测定红花黄色素的含量,通过红花黄色素在树脂上的吸附量和解吸率筛选树脂的种类;以红花黄色素的保留率和转移率为指标筛选纯化条件。
结果:不同大孔吸附树脂对红花黄色素的吸附率和解吸率不同;乙醇浓度对洗脱率具有较大影响。
结论:以HPD400A型大孔吸附树脂为吸附剂,50%乙醇为洗脱液对红花进行提取纯化。
标签:红花;红花黄色素;大孔吸附树脂;纯化红花(Carthamus tinctorius L.)为菊科植物红花的干燥花,性味辛温,入心、肝经,具祛瘀止痛功效,是多种活血化瘀方剂的君药[1]。
红花黄色素的含量是评价红花药效的主要指标之一[2]。
本文以乙醇为溶剂,考察了不同纯化条件、不同大孔吸附树脂对红花黄色素的纯化效果。
1、仪器与试药UV-2501型紫外分光光度计(日本岛津公司);ZFQ85A型旋转式蒸发仪(上海医械专机厂)红花(Carthamus tinctorius L.,鉴定为菊科植物红花的干燥花);红花黄色素A对照品(中国药品生物制品检定所);红花黄色素(天津红花黄色素研究所);大孔吸附树脂(D101、D201、D301型购自天津农药股份有限公司,HPD100、HPD300、HPD400、HPD400A、HPD450、HPD500、HPD6HPD700、HPD750、HPD800、D900型购自河北省沧州宝恩化工有限公司)。
2、方法与结果2.1含量测定方法的建立2.1.1对照品溶液的制备精密称取红花黄色素对照品100mg,置于100ml容量瓶中,加水溶解并稀释至刻度,摇匀即得。
2.1.2线性关系考察精密吸取红花黄色素对照品溶液0.25,0.5,1.0,2.0,4.0ml分别置于25ml容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀,在401nm波长处测定吸收度,以吸收度(A)对红花黄色素浓度(C,μg/ml)进行线性回归,结果表明,红花黄色素在10μg/ml~160μg/ml范围内线性关系良好,回归方程为A=6.966×10-3C+8.33×10-4,r=0.9999。
中压制备与大孔树脂联用快速分离羟基红花黄色素A

中压制备与大孔树脂联用快速分离羟基红花黄色素A摘要:用水超声法提取红花(Carthamus tinctorius L.)中红花黄色素A,提取液经D-101大孔吸附树脂色谱柱进行粗分,所得水及体积分数30%的乙醇洗脱物用中压制备色谱进行两次分离纯化,所得产物经高效液相色谱分析,羟基红花黄色素A 纯度为95.968%。该方法省时、简便、高效,值得推广应用。关键词:红花(Carthamus tinctorius L.);中压制备色谱;大孔吸附树脂;羟基红花黄色素ASeparation of Hydroxysafflor Yellow A from Safflower by Medium Pressure Column Chromatography with Macroporous ResinAbstract: Hydroxysafflor yellow A (HSYA) craft extract was obtained by water-ultrasonic method from safflower (Carthamus tinctorius L.) and then seperated by D-101 macroporous resin chromatography. The water and 30% ethanol elution was purified by medium pressure column chromatograph for twice. According to HPLC results, the purity of HSYA prepared could be up to 95.986%. This mechod was time saving, convenient, efficient, and propagable.Key words: safflower(Carthamus tinctorius L.); medium pressure column chromatography; macroporous resin; hydroxysafflor yellow A(HSYA)红花为菊科植物红花(Carthamus tinctorius L.)的干燥管状花,为活血化瘀的主要中药之一,用于治疗冠心病、脑血栓等心脑血管疾病[1,2]。红花的主要活性成分是红花黄色素(Safflower yellow,SY),其是一种复杂的水溶性混合物,其结构中含有特殊的醌式查尔酮的结构骨架,一直是红花化学成分研究的重点[3]。SY中含量较高的是羟基红花黄色素A(Hydroxysafflor yellow A,HSYA),占SY的50%左右。HSYA 是具有单查尔酮苷类结构的化合物,被认为是红花活血化瘀的主要效应物质[4,5]。目前分离制备HSYA通常采用大孔吸附树脂色谱法对红花提取物进行除杂后得HSYA粗品,Sephadex LH-20凝胶柱层析法制备HSYA纯品[6,7],但这些方法不适用于快速、大规模制备HSYA。中压制备色谱是一种快速制备色谱系统,具有上样量大、分离速度快、可梯度洗脱、成本低、在线检测等优势[8],本研究采用水提取和大孔吸附树脂柱色谱得到粗提物,以此粗提物直接进行中压制备色谱分离纯化,经两步分离得到纯度高于95%的HSYA,丰富了HSYA的制备技术。1 仪器与材料EZ Purifier III中压制备色谱系统及Versatiler色谱工作站(配有二元溶剂输送泵、UV检测器、自动馏分收集器,上海利穗电子科技有限公司)。色谱柱及填料:C18-AQ(GHODSB12S50,50 μm,北京绿百草科技发展有限公司),4 cm×14 cm(40 g),2根串联。Agilent 1200型高效液相色谱仪,包括Agilent G1312B二元泵,Agilent G1379B脱气机,Agilent 1313B自动进样器,Agilent 1316B柱温箱,Agilent 1315B二极管阵列检测器、Agilent Chemistation化学工作站。乙腈(HPLC级,德国Merck公司)、三氟乙酸(分析纯,南开大学精细化学实验厂)、甲醇(色谱纯,天津市大茂化学试剂厂)、纯净水(杭州娃哈哈集团有限公司,使用前经0.45μm水系滤膜过滤)、D-101大孔吸附树脂(沧州宝恩吸附材料科技有限公司)、羟基红花黄色素A对照品(中国药品生物制品检定所,批号111637-200301);红花为菊科植物红花(C. tinctorius L.)的干燥管状花。2 试验方法与结果2.1 水超声法提取HSYA2.1.1 高效液相色谱分析条件[9-11] 色谱柱:Phenomenex C18(250 mm×4.6 m m,5 μm);流动相:乙腈(A)-0.01%三氟乙酸溶液(B);洗脱程序:0~5 min:2%A(体积分数,下同);5~25 min:2%~5%A;25~35 min:5%~10%A;35~65 min:10%~20%A;65~70 min:20%A。柱温:30 ℃;流速:1.0 mL/min;检测波长:280 nm;进样体积:20 μL。2.1.2 标准曲线的绘制精确称取羟基红花黄色素A对照品15.00 mg置25 mL容量瓶中,用水溶解并稀释至刻度,得0.60 mg/mL羟基红花黄色素A对照品储备液,配制成一定浓度梯度的对照品溶液,按2.1.1所述条件进行色谱分析,以Y表示峰面积积分值,以X(mg)表示对照品进样量,绘制标准曲线,并计算回归方程。其线性回归方程为Y=26 805.00X-298.36,R2=0.999 1。2.1.3 红花水提取液制备称取红花药材900 g,加15倍质量的蒸馏水超声提取2次,每次45 min,过滤,合并滤液减压浓缩至900 mL(此时提取液含生药的浓度为1 g/mL)。加入95%的乙醇(体积分数,下同)使含醇量达到80%,醇沉24 h,滤液减压回收至900 mL,加5倍体积的蒸馏水沉淀24 h,离心,上清液减压浓缩至900 mL,备用。2.2 大孔吸附树脂柱色谱法制备粗品HSYA取上述红花水提液900 mL上直径40 mm×800 mm的D-101大孔吸附树脂色谱柱,蒸馏水洗脱的前3个体积洗脱液(3 BV)中主要是多糖、蛋白质、鞣质等水溶性杂质,弃去,然后依次用蒸馏水、30%的乙醇、60%的乙醇、95%的乙醇各3 BV洗脱,流速为1 mL/min,1 BV收集洗脱液约750 mL,共收集12份。采用HPLC法测定每份洗脱液中HSYA的含量,绘制相应的洗脱曲线(图1)。根据洗脱曲线,合并含量高于0.04 mg/mL的第1~4份洗脱液,第5~12份洗脱液由于HSYA相对含量较少而放弃。减压浓缩后得浸膏18.0 g,冰箱中冷冻保存,备用。2.3 中压制备色谱分离为降低试验成本,本试验首先采用甲醇-水体系进行各组分分离。精确称取浸膏样品2.0 g用10 mL甲醇溶解,经0.45 μm微孔滤膜过滤,注入ODS柱中。洗脱条件为柱温:室温;波长:280 nm;流速:20 mL/min;线性梯度洗脱程序:在60 min内,甲醇与水的体积比由0∶100变化为50∶50,中压系统分析色谱如图2,根据色谱峰情况收集洗脱液,进行HPLC分析。结果发现峰A中HSYA含量较高,对其减压浓缩进行二次中压制备。线性梯度洗脱程序:在28 min内,乙腈与水的体积比由0∶100变化为30∶70,中压系统分析色谱如图3,根据出峰情况精确收集。2.4 产物的纯度分析HPLC分析各洗脱液并与标准品对照,结果表明峰B为HSYA,其HPLC图谱上仅一峰(图4),由面积归一化法算得其纯度为95.968%,减压浓缩后真空干燥得137 mg HSYA黄色粉末。3 小结与讨论1)大孔树脂是一类有机高聚物吸附剂,注有致孔剂,不含交换基团,含有“空隙”结构,特别适合从水溶液中分离化合物[12,13]。本试验用大孔树脂法制备的红花粗提液采用水和乙醇洗脱效果较好。2)采用中压制备色谱对红花大孔树脂粗提液进行分离纯化,单位时间获得的化合物量大,4 h即可完成整个分离过程。分离效果好,避免了HSYA在开口柱上由于长时间暴露而导致分解;柱填料可以自行填装,根据所制备的HSYA极性较大的特点,选择C18反相填料纯化;同时2根色谱柱串联可有效提高分辨率,本试验连续两次对红花粗提液中压色谱分离制备,第一次通过中压柱层析分段,然后再次分离制备,取得了不错的效果。在中压制备色谱分离过程中,要注意以下几个问题[5]:①化合物要溶解于系统溶剂。②化合物与固定相不存在不可逆吸附。③选择适宜的洗脱方式和流动相比例。本研究中,先后选择典型溶剂系统甲醇/水和乙腈/水进行线性梯度洗脱,连续两次分离制备,从尽可能低的浓度开始梯度洗脱以确保不丢失目标物质。3)本试验采用大孔树脂柱色谱与中压制备色谱法结合,从红花中直接分离得到高纯度(95.968%)的HSYA。该方法简便、快速。从2.0 g粗提物中得到137 mg HSYA 。,水洗脱除杂时应注意在除去糖类的同时应尽可能保留较多的HSYA,至于如何提高分离纯化效率,还有待进一步研究。参考文献:[1] 施峰,刘焱文. 红花的化学成分及药理研究进展[J]. 时珍国医国药,2006,17(9):1666-1667.[2] 王艺蓉,白咸勇. 红花的作用及机制研究进展[J]. 滨州医学院学报,2009,32(6):451-453.[3] 肖文英. 红花黄色素研究进展[J]. 临床医药实践杂志,2006,15(9):646-649.[4] 金鸣,李金荣,吴伟.羟基红花黄色素A抗氧化作用的研究[J]. 中草药,2004,35(6):665-666.[5] 祝美珍,胡国恒,肖健.羟基红花黄色素A的应用研究进展[J]. 中西医结合心脑血管病杂志,2007,5(11):1108-1110.[6] 安熙强,方圣鼎. 红花中黄色素和红色素的分离鉴定[J]. 中草药,1990,21(4):44-45.[7] 杨辉,阿依吐伦·斯马义,吴桂荣,等. 羟基红花黄色素A的提取及含量测定[J].新疆医科大学学报, 2008,31(10):1358-1360.[8] 王蕾,高俊康,王英平. 中压色谱快速制备西洋参果人参皂苷的研究[J]. 特产研究,2007,29(004):39-41.[9] 赵明波,邓秀兰,王亚玲,等. 高效液相色谱法测定红花中的羟基红花黄色素A[J]. 色谱,2003,21(6):593-595.[10] 杨日丽,刘静. HPLC法测定红花中羟基红花黄色素A含量的研究[J]. 广东化工,2007,34(7):112-114.[11] FAN L, ZHAO H Y, XU M, et al. Qualitative evaluation and quantitative determination of 10 major active components in Carthamus tinctorius L. by high-performance liquid chromatography coupled with diode array detector[J]. Journal of Chromatography A,2009,1216(11):2063-2070.[12] 臧宝霞,金鸣,李金荣. 大孔树脂-凝胶柱层析法大规模制备纯品羟基红花黄色素A[J]. 心肺血管病杂志,2008,27(6):363-365.[13] 金鸣, 高子淳, 李金荣,等. 大孔树脂柱色谱法制备红花黄色素和羟基红花黄色素A[J]. 中草药,2004,35(1):25-28.。
大孔吸附树脂分离纯化黄酮类化合物的研究进展

大孔吸附树脂分离纯化黄酮类化合物的研究进展摘要:黄酮类化合物是在植物中分布非常广泛的一类天然产物, 具有多种生物活性。
大孔吸附树脂纯化是一项不需复杂设备、操作条件温和的新型分离技术。
综述了大孔吸附树脂分离纯化黄酮类化合物的研究进展。
关键词: 黄酮; 大孔吸附树脂; 分离纯化; 进展正文1 前言黄酮类化合物(Flavonoids) 是在植物中分布非常广泛的一类天然产物, 其在植物体内大部分与糖结合成苷类, 也有一部分以游离态(苷元) 形式存在, 对植物的生长、发育、开花、结果及防菌防病等起着重要的作用。
黄酮类化合物是许多中草药的有效成分, 具有抗氧化、抗肿瘤、抗炎、抗病毒、免疫调节、解毒护肝、细胞保护、防治心血管疾病、调节机体内分泌和代谢、影响细胞生长等多种生物活性, 近年来国内外学者对其颇为重视。
近十年来, 黄酮类化合物的研究倾向于其药用价值的开发, 更多地涉及提取分离纯化方法、含量测定及制剂研究等。
黄酮类化合物的分离包括黄酮类化合物与非黄酮类化合物的分离、黄酮类化合物中的单体分离。
黄酮类化合物与非黄酮类化合物的分离方法主要有提取法、色谱法、超临界萃取法、膜分离法、双水相萃取分离法等;单体分离方法主要是色谱法, 除经典的柱色谱法和薄层色谱法外,还有高效液相色谱法(HPLC)、高速逆流色谱法(HSCCC)等。
本文在此仅对大孔吸附树脂分离纯化黄酮类化合物的研究进展进行综述。
2 大孔吸附树脂分离纯化黄酮类化合物2 1 黄酮类化合物与非黄酮类化合物的分离纯化大孔吸附树脂于20世纪70年代末逐步应用于中草药有效成分的提取分离。
大孔吸附树脂的型号有HP-30、D101、DA-201、AB-8、XAD-4、XAD-16 等, 其特点是吸附容量大、再生简单、效果可靠, 尤其适用于黄酮类、皂苷类等成分的分离纯化及其大规模生产]21[、。
李兆龙]3[等用日本产非极性大孔吸附树脂(如Diaion HP-10、HP-20、HP-21) 等分离银杏叶黄酮。
大孔树脂去色素原理

大孔树脂去色素原理我们来了解一下大孔树脂的特性。
大孔树脂的孔径通常在10-1000纳米之间,这种较大的孔隙结构使得大孔树脂具有较高的吸附容量和速率。
此外,大孔树脂还具有较好的化学稳定性、热稳定性和机械强度,使其在工业领域得到广泛应用。
接下来,我们来探讨一下大孔树脂去色素的机理。
大孔树脂的色素吸附主要是通过物理吸附和化学吸附两种机制实现的。
物理吸附是指色素分子与大孔树脂表面的相互作用力,如范德华力、静电作用力等。
化学吸附则是指色素分子与大孔树脂表面的化学键结合。
这两种机制共同作用,使得大孔树脂具有较高的去除色素的效果。
大孔树脂去色素在很多领域有着广泛的应用。
例如,在食品工业中,大孔树脂可以用于去除食品中的色素,提高产品的纯净度和质量。
在制药工业中,大孔树脂可以用于去除药物中的色素杂质,提高药物的纯度和安全性。
此外,大孔树脂还可以用于水处理、环境保护等领域,去除水中的有机色素,净化环境。
除了上述应用领域,大孔树脂还可以与其他分离技术结合使用,提高色素的分离效果。
例如,可以将大孔树脂与色谱技术相结合,实现对复杂混合物中色素的高效分离。
另外,大孔树脂还可以与膜技术结合,实现色素的连续分离和回收,提高工业生产的效率。
总结一下,大孔树脂去色素是一种常用的分离技术,通过其较大的孔隙结构和吸附机理,可以有效地去除色素分子。
大孔树脂在食品工业、制药工业、水处理等领域有着广泛的应用。
此外,大孔树脂还可以与其他分离技术结合使用,提高色素的分离效果。
随着科技的不断进步,相信大孔树脂去色素技术将会在更多的领域得到应用,并为我们的生活带来更多的便利和质量保障。
红花黄色素纯化工艺研究及应用

红花黄色素纯化工艺研究及应用
张翅;赵炳祥;徐慧燕;潘德林;吴建国;朱雅宁
【期刊名称】《中国食品添加剂》
【年(卷),期】2022(33)6
【摘要】以红花注射液的副产物为原料,通过大孔树脂柱吸附技术和超滤膜分离工艺相结合的方法,优选红花黄色素的最佳纯化和精制工艺。
通过单因素考察大孔树脂型号、吸附时间、洗脱醇度、药材-树脂比、超滤膜除杂孔径、超滤膜浓缩孔径对纯化工艺的影响,并通过中试验证优选的纯化工艺。
结果表明,最佳的纯化工艺条件为:采用D101大孔树脂,吸附5h,40%乙醇四倍体积洗脱,洗脱液采用3K超滤膜精制,然后再采用1K超滤膜浓缩,浓缩液喷雾干燥即得红花黄色素粉末。
经三批中试结果验证,色价均在160以上,回收率接近50%,产率达到了10%以上,说明该工艺适用于红花注射液副产物开发红花黄色素的大批量生产。
【总页数】8页(P87-94)
【作者】张翅;赵炳祥;徐慧燕;潘德林;吴建国;朱雅宁
【作者单位】华润三九(雅安)药业有限公司;华润紫竹药业有限公司;成都中医药大学
【正文语种】中文
【中图分类】TS264.4;TS209;TS202.3
【相关文献】
1.红花黄色素的提取与纯化工艺研究
2.红花中羟基红花黄色素A的提取纯化工艺研究
3.红花中羟基红花黄色素A的纯化工艺研究
4.红花中红花黄色素的纯化工艺研究
5.红花中红花黄色素的纯化工艺研究
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大孔吸附树脂分离纯化桃花红色素的研究

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( e ate t hmir, ix n dcl nvr t, i i g 5 0 3 H n nC i ) D pr n C e syX n i g m t a Mei i s yX n a 30 , ea , hn aU e i xn4 a
桃花是 蔷薇科落 叶乔木桃树 Pu u e i ) rn s r e 的花 ps a
1 材料 与方法
朵 。它含有丰 富的红色素 ,从光谱性质及 化学性质来
看 , 花 红 色素 ( dpg e trm p ahbosm, 桃 e r i n f ec l o 以下 m o s
11 材料 、 . 试剂与仪器
的动力学特性 。D1 1 0 树脂综合性能较好 , 适合 于作为分 离纯化 R P P B的理想材料。 关键词 : 大孔吸 附树 脂 ; 桃花 ; 红色素; 离纯化 分
S ARA ON EP Ⅱ AND PURI I F CA l I0 0FRED GM ENT R0M EACH l Pl F P BLOS OM S BY MACROPOROUS RES N I
工艺 的报道。
桃 花 于 20 0 7年 4月采集 于卫 辉市 唐庄镇 ,经 除 杂 、 水简单冲淋后 于 5 ℃恒温风干 , 自来 0 粉碎后备用 。
红花中红花黄色素的提取与纯化工艺研究

红花中红花黄色素的提取与纯化工艺研究内蒙古兴安盟医院(乌兰浩特137400) 刘玉杰 年春红摘 要:目的:从红花中提取红花黄色素。
方法:以紫外分光光度法测定红花黄色素的含量,以水为溶剂进行提取,采用大孔吸附树脂法进行纯化。
结论:以水煎煮法进行提取,以ZPD400A型大孔吸附树脂为吸附剂,50%乙醇为洗脱液对红花进行提取纯化,红花黄色素的收得率为52%,纯度达85%以上。
关键词:红花;红花黄色素;大孔吸附树脂;提取;纯化中图分类号:R29 文献标识码:B 文章编号:1006-6810(2008)04-0062-011 仪器与试药1.1 仪器:UV-2501型紫外分光光度计;ZFQ85A型旋转式蒸发仪。
1.2 试药:红花;红花黄色素对照品(上海第二军医大学药学院提供,含量大于98.5%);红花黄色素;苯酚;大孔吸附树脂。
2 方法与结果2.1 含量测定方法学研究2.1.1 对照品溶液的制备:精密称取红花黄色素对照品100mg,置于10ml容量瓶中,加水溶解并稀释至刻度,摇匀即得。
2.1.2 线性关系考察:精密吸取红花黄色素对照品溶液0.25,0.5,1.0,2.0,4.0ml分别置于25ml容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀,在401nm波长处测定吸收度,以吸收度(A)对红花黄色素浓度(C,μgΠml)进行线性回归,结果表明,红花黄色素在10μgΠml~160μgΠml范围内线性关系良好,回归方程为A=6.966×10-3C+8.33×10-4,r=0.9999。
2.2 提取方法:煎煮法〔1〕。
精密称取红花药材10g,共3份,分别置锥形瓶中,各加水150ml,小火煎煮1小时,不时振摇(注意不要糊底,并不时加水至原量),用滤纸滤过,用水(80ml)分数次洗涤滤纸和残渣至洗液无色,滤液备用;残渣再分别置锥形瓶中,再各加水150ml,小火煎煮1小时,时时振摇(注意不要糊底,并不时加水至原量),用滤纸滤过,用水(80ml)分数次洗涤滤纸和残渣至洗液无色,2次的滤液合并,分别置500ml容量瓶中,加水至刻度,摇匀;各精密吸取1ml置100ml容量瓶中,照分光光度法,在401nm波长处测定吸收度。
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大孔吸附树脂分离纯化红花黄色素的研究作者:张吉祥,白晓杰,周秋香,欧来良,孔德领【摘要】目的考察ADS-17大孔吸附树脂对红花黄色素的分离纯化方法。
方法采用静态和动态吸附,考察了 ADS-17树脂的吸附性能,并采用紫外-可见分光光度法对红花黄色素含量进行了定量分析。
结果ADS-17树脂对红花黄色素具有较好的吸附选择性。
在最优化工艺条件下,即吸附流速2 BV/h, 50%乙醇作为洗脱剂,洗脱流速2BV/h,产品纯度达到85. 34%。
结论ADS-17树脂用于红花黄色素的分离纯化效果良好。
【关键词】红花黄色素大孔吸附树脂Abstract: ObjectiveTo study the method for separation and purification of the safflor yellow (SY) in Flor Cartharai with macroporous absorption resin ADS-17. MethodsADS-17 resin was systematically studied for its absorption capability by static and dynamic absorption. UV-Vis was used to measure the content ofSY. ResultsADS-17 resin could be used to produce SY with high quality. The optimal technological conditions were as follows: the flow velocity of absorption, 2 BV/h, the eluting reagent 50% ethanol, eluting velocity 2 BV/h. The purity of SY was 85. 34%. ConclusionThis method with ADS-17 macroporous absorption resin is efficient to separate the safflor yellow.Key words: Flor carthami; Safflor yellow; Marcoporousabsorption resin红花Flor carthami为菊科植物红花Carthamus tinctorius L.的干燥花,具有活血通经、化淤止痛、扩张冠脉血管、抗氧化、保扩心肌、降血压、免疫抑制和脑保护等多种药理学功效[1]。
临床应用于冠心病、血管栓塞性疾病、高血压病、高血脂、传染性肝炎有较好疗效。
红花主要含有色素、黄酮类化合物、酚酸、脂肪酸等化学成分。
色素主要指的是红花黄色素(Safflor yellow)和红花红色素(Carthamin),二者均为黄酮衍生物[2, 3]。
红花黄色素为黄色或棕黄色粉末,易溶丁•水、稀乙醇、稀丙二醇,几乎不溶于无水乙醇,不溶于乙醚、石油醚和丙酮,在红花中的含量为20%〜30%。
药理研究表明红花黄色素是红花中的主要有效成分,是多种查耳酮的混合物,利用分光光度法可以测定红花黄色素的总量[4]。
近年来,人们对水溶性的红花黄色素提取做了较多的研究,但利用大孔吸附树脂分离纯化红花黄色素的研究并不是很多[5〜7]。
本实验采用ADS系列大孔吸附树脂对红花黄色素进行分离纯化,只需经过吸附-脱附过程就可得到纯度较高的红花黄色素,并对提取物中黄色素的含量进行了定量测定。
1仪器与试剂1.1仪器UV-754分光光度计(上海第三分析仪器厂);玻璃吸附柱(2cm X 20 cm) ; RE-52A旋转蒸发器(上海亚荣生化仪器厂);HL-2恒流泵(上海沪西仪器厂);BSZ-2自动部分收集器(上海沪西仪器厂);THZ88-1台式多用恒温振荡器(江苏太仓鹿河生化仪器厂);真空干燥箱(天津实验仪器厂);DT-100A型分析天平(北京光学仪器厂)。
1.2试剂大孔吸附树脂ADS-5、ADS-7、ADS-8、ADS-17树脂(天津南开和成科技有限公司);红花,购自河北安国医药公司,经天津医科大学中药鉴定教研室吴德康教授鉴定为菊科植物红花的干燥花;羟基红花黄色素A对照品(中国药品生物制品检定所);工业乙醇;其他所用试剂均为分析纯。
2方法与结果2. 1标准曲线的绘制精密称定羟基红花黄色素A对照品20. 0 mg,置于25 ml的容量瓶中,加水溶解并稀释至刻度,摇匀。
分别精密吸取0.20,0.40,0.80,1.00,1.50 ml于50 ml的容量瓶中,加水定容至刻度,摇匀,于403 nm波长处测定吸光度值。
结果红花黄色素浓度在3. 2〜24 |J g/ml范围内与吸光度呈良好线性关系,吸光度对浓度作图得标准线性方程为:A=0.035 2C- 0.010 3,r=0. 999 4。
2. 2红花上样液的制备准确称取红花药材100 g,加入14倍体积的去离子水室温浸泡30 min,加热提取20 min [8]。
过滤后将药渣按上述方法再提取1次,合并提取液,减压浓缩、过滤得澄清液,加水定容至1 000 ml,备用。
0.3上样液红花黄色素含量的测定精密吸取样品溶液适量于100 ml容量瓶中,加水定容至刻度,于403 ran波长处测定吸光度值,根据标准曲线测定黄色素的含量。
2.4树脂的预处理ADS-5, ADS-8,ADX-17,ADS-7分别为非极性、弱极性、中极性和强极性吸附树脂,使用前先用石油醚抽提10 h,然后乙醇浸泡24 h,湿法装柱。
用乙醇洗至加水不浑浊,然后用蒸馏水洗至无醇,ADS-5,ADS-8,ADX-17即可使用,ADS-7树脂再需经酸碱处理后方可使用。
0.5静态吸附和解吸实验将1. 0 g湿树脂直接加入100 ml具塞锥形瓶中,加入10 ml样品溶液,将具塞锥形瓶放在25 t:恒温振荡器上振荡12 h,转速120次/min,吸附平衡后,取上清液测定黄色素含量。
以体积分数50%的乙醇溶液考察静态解吸率。
将吸附液滤去,向达到吸附平衡的树脂中加入10 ml上述乙醇溶液,25 °C连续振荡12 h,待充分解吸后测定所得浸提液中黄色素的质量浓度,分别按下式计算吸附量和解吸率。
结果见表1。
表1 4种大孔树脂对黄色素的静态吸附-解吸结果(略)吸附量=(上样液中黄色素的质量浓度-吸附平衡后上清液黄色素质量浓度) X溶液体积树脂质量解吸率(%)=浸提液中黄色素的质量浓度X浸提液体积吸附量X树脂质量X100%由表1中结果可以看出,静态情况下,树脂的极性和比表面积的大小对红花黄色素的吸附有一定的影响。
随着树脂极性的增高(ADS-5—ADS-8—ADS- 17),对黄色素的吸附选择性逐渐提高;但当树脂极性变至强极性(ADS-7),吸附选择性又降低。
相比之下,比表面积对吸附率的影响较小。
由静态吸附一解吸结果可以看出,ADS-17树脂的吸附率和解吸率均较高,较其他3种树脂对黄色素的吸附更具优势,故本实验选用ADS-17树脂。
2.6动态吸附与洗脱实验量取10 ml经过预处理的树脂,装入内径 2 cm 的交换柱,通入样品溶液足量,控制吸附流速为 2 BV/h,分部收集流出液,测定流出液中黄色素含量。
吸附饱和后的树脂用50%乙醇解吸,控制流速为2BV/h,分部收集解吸液,测定黄色素质量浓度,分别绘制动态吸附曲线和解吸曲线(见图1〜2)。
可以看出,吸附速率为2 BV/h时,10 ml ADS-17树脂的最大上柱体积为4 BV而不泄漏。
50%乙醇洗脱时,4BV即可完全洗脱。
2.7上样液pH值对动态吸附效果的影响取经过预处理的树脂各10 ml以湿法分别装入4支交换柱,各取样品溶液50 ml通入,用稀盐酸调节溶液的pH 值分别为1,3,5,7,控制流速为2 BV/h上样,吸附完毕后,分别用50%的乙醇脱附,收集洗脱液50 ml, 丁• 403 rnn测定吸光度,计算上样液不同pH值下上柱吸附量和解吸率(见表2)。
由表2可知,当药液pH=3时,树脂吸附量和解吸率均较高。
表2上样液pH值对黄色素动态吸附解吸效果的影响(略)2.8洗脱剂乙醇浓度对解吸效果的影响取经过预处理的树脂各10 ml 以湿法分别装入4支交换柱,分别取样品溶液各50 ml通入,溶液的pH值均调为pH=3,控制流速为 2 BV/h,吸附完毕后,分别用30%,50%, 70%, 90%的乙醇脱附,收集洗脱液50 ml,于403 mn测定吸光度,将洗脱液浓缩、真空干燥,得金黄色干膏,计算黄色素的纯度和收率。
结果见表3。
结果表明,随着乙醇体积分数的提高,产品纯度相应降低,30%乙醇作为洗脱剂,虽然能够得到纯度较高的产品,但产率较低。
综合考虑,选择50%乙醇作为适宜的洗脱溶剂。
表3洗脱剂浓度的选择(略)纯度=(%)上柱后所得黄色素的质量干燥后所得粉末质量X 100%收率(%)=上柱后所得黄色素的质量上样液相当的干花质量X 100%3讨论上述研究表明,ADS-17大孔吸附树脂对红花黄色素的吸附性能良好,其结构中所带的酯基有利于对红花黄色素的吸附。
通过对影响大孔吸附树脂吸附及解吸的各种因素的系统研究,最后确定了在最佳工艺条件下,吸附流速为2BV/h,上柱量为4倍树脂床体积;洗脱条件为50%的乙醇溶液以2 BV/h的速率脱附效果最佳。
最终分离红花黄色素的产率为27. 83%,纯度为85. 34%。
该法成本低,操作简便,易于工业化生产。
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