实验1.2 培养基的配制(2016)


二.大肠杆菌的培养: ㈠制备牛肉膏蛋白胨固体培养基
㈡培养大肠杆菌:
1.接种:
划线法 2.培养:
将接种后的平板倒置放入37℃恒温箱中培养2~3d
Q:为什么划线法接种能观察到单个菌落?
划线法接种时,使接种物逐渐稀释,最后 出现单个细菌,培养后出现单个菌落。
划线
划线法优点:
可对微生物进行分离、纯化,获 得单一菌落
4、调节pH
5、分装
6、灭菌
灭菌——高压灭菌
1.05kg/cm2、121℃,15—30min
灭菌锅
高压灭菌作用:杀死所有活的微生物及芽孢
(补充:倒“平板”)
超 净 工 作 台
约50℃
倒平板
灼烧灭菌, 防止瓶口的微生物污染培养基
防止培养皿盖上的水珠滴落污染培养基
7、恒温培养(恒温培养箱)
培养基的配制
计算
加热熔化琼 脂(搅拌)
定容 调节PH至 7.2-7.4
称量
熔化
调节pH
分装
恒温培养
灭菌
倒入三角烧瓶,与 其他器具一起放入 灭菌锅 高压灭菌
(一般需要作无菌检查)
核心:保证无菌操作
超净工作台、酒精灯火焰旁操作
超净工作台
1、如何检验培养基是无菌的?
将未接种的培养基放在恒温培养箱中适宜条 件下培养2-3d,如果无菌落产生,则培养基 是无菌的。 2、常用灭菌方法有哪些?
微生物重点实验2 ——微生物的培养
•掌握划线法接种方法与作用
菌落是由单个细胞分裂形成的种群
补充:菌落 1.定义: 单个 菌体 固体培养基上
大量繁殖
子细胞群体
2.特征: 大小、形状、光泽度、 颜色、硬度、透明度等。 3.功能: 鉴定菌种的重要依据
常用工具图示
接种环
玻璃刮铲
微生物(如大肠杆菌)的培养:
用于培养基、培养皿、锥形瓶等 高压(蒸气)灭菌 灼烧灭菌 用于接种环等金属器具
3、消毒与灭菌的区别
(1)消毒(如巴氏消毒法62℃,30min、酒精 擦拭等)仅杀死活的微生物,不能杀死芽孢。
(2)灭菌(高压灭菌1.05kg/cm2、121℃、1530min;灼烧灭菌、干热灭菌等)能杀死所有微 生物及其芽孢。
大肠杆菌菌落 菌落灰白色,圆形,透明或半透 明
枯草杆菌菌落 菌落灰白色,较 大,边缘比较粗 糙
滕黄八叠球菌菌落 菌落黄色,圆形、边缘 光滑
为什么在操作的第一步以及每次划线之前都 要灼烧接种环?在划线操作结束时,仍然需要 灼烧接种环吗?为什么? 操作的第一步灼烧接种环是为了防止接种环上 的微生物污染培养物 杀死残留的菌种,保证使下一次划线时,菌种 直接来源于上次划线的末端,从而通过划线次 数的增加,使每次划线时接种物逐渐稀释,培 养后得到单个菌落。 避免接种环上的细菌污染环境和感染操作者。
㈠制备牛肉膏蛋白胨固体培养基 1.计算 2.称量 3.熔化 4.调节pH 5.分装 6.灭菌 7.恒温培养
二.大肠杆菌的培养: ㈠制备牛肉膏蛋白胨固体培养基 ㈡培养大肠杆菌: 1.接种: (超净工作台上、酒精灯火焰旁进行) 划线法 冷却后刮取菌苔 接种环
菌种
划线法接种: 使接种物逐渐 稀释,培养后 出现单个菌落 划线法接种
微生物重点实验1
——实验1.2 培养基的配制
• 学习目标:
– 掌握培养基的配制的过程 – 理解无菌操作
组内合作:
1、说出培养基配制流程;
2、讨论消毒与灭菌的区别,小结常用
NaCl H2O 琼脂 5.0g 10.0g 5.0g 1000mL 2.0g
2、称量
3、熔化
3、下列对于灭菌和消毒的理解,不正确的是( B ) A.灭菌是指杀灭环境中一切微生物的细胞、芽孢和孢子 B.消毒和灭菌实质上是相同的 C.接种环用灼烧法灭菌 D.常用的灭菌方法有灼烧灭菌、干热灭菌、高压蒸气灭 菌等
4、培养基、培养皿、接种环、实验操作者的双手、
空气、牛奶所采用的灭菌或消毒方法依次是(
①化学消毒 ④紫外线消毒 A.⑤⑤②①④⑥ ②灼烧灭菌 ⑤高压灭菌 ③干热灭菌 ⑥巴氏消毒法
A

B.①②③④⑤⑥
C.⑥②③④①⑤
D.③④②①⑥⑤
1、鉴别培养基是否被杂菌污染的方法是( A.将未接种的培养基放在实验桌上培养 B.将未接种的培养基放在窗台上培养 C.将未接种的培养基放在恒温培养箱中培养 D.将已接种的培养基放在恒温培养箱中培养
C

2、要将配制好的培养基进行灭菌,通常采用的方 法是( B ) A.灼烧灭菌 B.高压蒸气灭菌 C.干热灭菌 D.煮沸灭菌
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培养基配置

培养基配置

1000ml
自然 pH
实验器材
牛肉膏,蛋白胨,NaCl,琼脂,1mol/LNaOH, 1mol/LHCl,KNO3,K2HPO4·3H2O, MgSO4·7H2O,FeS04·7H2O,马铃薯,蔗糖等。
试管,三角瓶,烧杯,量筒,玻棒,培养基分装器,天平,牛角匙, pH 试纸(pH 5.5~9.0),
pH 值调到一定的范围。 牛肉膏蛋白胨培养基配方
牛肉膏 蛋白胨
3.0 g 10.0g
NaCl
5.0g

1000mL
pH
7.4~7.6
高氏 I 号培养基配方
可溶性淀粉 20g
NaCl 0.5g
KNO3 1g K2HPO4·3H2O MgSO4·7H2O FeSO4·7H2O 琼脂 15—25g
0.5g 0.5g 0.01g
水 1000mL
pH 7.4~7.6
马铃薯培养基配方
马铃薯(去皮)
200g
葡萄糖(或蔗糖)
20g
琼脂 水
15~25g 1000ml
自然 pH 察氏培养基配方
蔗糖
30g
NaNO3
2g
K2HPO4
1g
KCl
0.5g
MgSO4· 7H2O
0.5g
FeSO4· 7H2O 琼脂
0.01g 15~25g
蒸馏水
以上熔化成液体,而在 45℃左右开始凝固成固体。在配制培养基时,根据各类微生物的特 点,就可以配制出适合不同种类微生物生长发育所需要的培养基。
培养基除了满足微生物所必需营养物质外,还要求有一定的酸碱度和渗透压。霉菌和酵
母菌的 pH 偏酸;细菌、放线菌的 pH 为微碱性。所以每次配制培养基时,都要将培养基的

实验二.培养基的配制及灭菌

实验二.培养基的配制及灭菌

实验二培养基的配制及灭菌一、实验目的:1. 掌握常用培养基的制备方法;2. 了解培养基的成分、类型及特点;3. 学会玻璃仪器的洗涤和灭菌前的准备工作。

4.了解培养基的配制原理和方法,掌握其配制过程和分装方法。

二、实验原理人工配制的培养基是植物组织培养的营养基础,不同材料对培养基的要求不尽相同,适当地设计和选用培养基对组织培养是至关重要的,一个完整的培养基配方应包含有无机盐、有机营养、水、植物生长调节剂、琼脂及其他成分。

培养基的主要成分的详细内容见课本p26~29。

为了省时和减少多次称量的误差,一般先将药品配制成浓缩一定倍数的母液,用时稀释,储存于冰箱低温(2~4摄氏度)中待用。

基本培养基有8中母液,即大量元素母液、微量元素母液、有机物母液、钙盐母液、铁盐母液、肌醇母液、镁元母液、生长调节物质母液,基本培养基的配制方法有两种:一是可以将培养基的每种成分配成单一化合物的母液,便于配制不同种类的基本培养基时使用;二是配成几种不同的混合液,这样在大量配制同一种培养基时更省时、省力。

在配制母液时应注意防止沉淀产生。

绝大多数生长调节物质不溶于水,可以加热并不断搅拌促使溶解,必要时加入稀酸或稀碱等物质促溶。

各类植物生长调节物质的用量极小,它们对外植体愈伤组织的诱导和根、芽等器官分化起着重要和明显的调节作用。

通常使用的浓度单位是mg/L。

配制好的培养基应在24h之内完成灭菌工作,以免造成杂菌大量繁殖。

灭菌方法有:高温高压灭菌、过滤除菌、射线除菌等方法。

培养基常采取高压灭菌的方法,灭菌时间一般是在0.105MPa压力下,温度121摄氏度时,灭菌时间应根据容积的体积确定,所需最少时间见课本P32表2ˉ2。

培养基必需保证绝对无菌,否则因其营养丰富细菌、真菌极易滋生而导致植物死亡。

灭菌后的培养基不宜马上使用,以免造成培养材料的损失。

(一)、组成培养基的五类成分目前,大多数培养基的成分是由无机营养物、碳源、维生素、生长调节物质和有机附加物等五类物质组成的。

植物组织培养实验报告

植物组织培养实验报告

院(系、部) 化学与生物工程学院专业生物技术(师)年级13级学号17130208 组别第二组课程名称植物细胞工程学实验日期2016.3-6指导老师实验名称植物组织培养综合实验一、实验目的1.熟悉MS培养基的组成,掌握贮备液的配制方法2.学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法;3.掌握超净工作台上的接种方法与注意事项,了解接种室的灭菌方法;4.了解组织培养的基本程序;5.掌握接种的方法和材料的培养过程;6.掌握无菌操作技术,包括外植体除菌和接种技术;7.观察外植体的生长状况、染菌状况,剔除染菌外植体;8.了解MS培养基和1/2MS培养基的区别二、实验原理1.植物细胞的全能性一切植物都由细胞构成,细胞是构成植物体的基本结构与功能单位。

植物细胞含有全套遗传信息,具有形成完整植物的潜能。

2.植物细胞表现出全能性的条件1.离体状态;2.有一定的营养物质,激素和其他外界条件(无菌、温度、pH);3.选择性能优良、细胞全能性表达充分的基因型3.无菌条件把植物的组织、器官等,使其在人工控制的无菌条件下,使植物在人工培养基上繁殖。

用于进行组织培养的组织、器官和细胞称为外植体。

在组培中外植体都死带菌的,在接种前必须进行表面消毒,这时取得培养成功的最基本和重要的前体。

组织培养的主要过程都是在无菌条件下进行的,所以所有的器材、植物体、接种室都应是无菌的。

4.脱分化与愈伤组织已有特定结构与功能的植物组织,在一定条件下,其细胞被诱导改变原来的发育途径,逐步逆转其原有的分化形态,转变为具有分生能力的胚细胞的过程称为脱分化。

脱分化所用的化学物质与MS培养基的区别是需要激素诱导。

所以脱分化培养需在MS培养基上添加激素进行愈伤组织诱导。

5.培养基植物组织培养常用的培养基为MS培养基。

常用的凝固剂是琼脂,它的主要作用是使液体培养基凝固,琼脂本身并不提供任何营养,它只是一种高分予的碳水物从海藻中提取出来,仅溶解于热水,成为溶胶,冷却后(40℃以下)即凝固为固体状凝胶。

培养基的配制及灭菌实验报告

培养基的配制及灭菌实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除培养基的配制及灭菌实验报告篇一:培养基的制备与灭菌实验报告(详细)一、实验题目:培养基的制备与灭菌二、实验目的:1、明确培养基的配置原则,掌握配置方法。

2、了解灭菌的原理,学习掌握灭菌器的使用方法。

三、实验器材:1、药品:牛肉膏、蛋白胨、氯化钠、水、琼脂。

2、仪器:三角瓶、培养皿、试管、线绳、棉花、烧杯、报纸、移液管、试管架、铁针、量筒。

四、实验原理:1、培养基的制备包括一下几种成分:(1)水分:主要成分。

(2)n源:包括无机氮和有机氮。

(3)c源:主要是含碳有机物、碳氢化合物等。

(4)无机盐:如nacl、Kh2po4等。

微量元素:cu、K、mg、s、p、Zn。

有些还需要添加“生长因子”,通常是维生素类、某些氨基酸或核酸等。

2、培养基配置的原则根据不同的培养对象及培养目的,选用不同的培养基,但有机物总量不得超过15%,盐类一般不超过1%。

培养基有以下分类:按成分:天然培养基、合成培养基、半合成培养基按状态:固体培养基、半固体培养基、液体培养基按用途:基础培养基、营养培养基、鉴别培养基、选择培养基培养基配好后应立即灭菌,防止营养物质中的微生物富集。

3、灭菌:用理化手段杀灭一切微生物的营养体,包括芽孢和孢子,在实验中应对所有仪器、操作场所、药品及培养基灭菌或消毒。

(1)高压蒸汽灭菌:将物品放入封闭的加压灭菌器,加热使灭菌锅套间的水沸腾产生蒸汽,将冷空气排尽,压力上升,使水沸点变高,导致菌体蛋白质变性,一般0.1mpa、121℃、15~30min可以彻底灭菌,本次实验灭菌20min。

若是含糖培养基,110℃、30min。

(2)干热灭菌:微生物细胞内蛋白质因高温而凝固变性。

因高温,所以含水量小,不利于蛋白质受热变性,所以温度高,时间长。

(3)紫外灭菌:诱导胸腺嘧啶二聚体形成抑制DnA复制。

(4)过滤除菌:实验室中用微孔滤膜(孔径一般为0.22μm)。

除病菌需更小。

五、实验步骤:1、牛肉膏蛋白胨培养基的制备依次准确称取0.5g牛肉粉、1.0g蛋白胨、0.5gnacl放入烧杯,加入100mL水,用玻璃棒搅匀溶解,移入三角瓶,并加入1.5g琼脂。

培养基的配制及灭菌实验报告

培养基的配制及灭菌实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除培养基的配制及灭菌实验报告篇一:培养基的制备与灭菌实验报告(详细)一、实验题目:培养基的制备与灭菌二、实验目的:1、明确培养基的配置原则,掌握配置方法。

2、了解灭菌的原理,学习掌握灭菌器的使用方法。

三、实验器材:1、药品:牛肉膏、蛋白胨、氯化钠、水、琼脂。

2、仪器:三角瓶、培养皿、试管、线绳、棉花、烧杯、报纸、移液管、试管架、铁针、量筒。

四、实验原理:1、培养基的制备包括一下几种成分:(1)水分:主要成分。

(2)n源:包括无机氮和有机氮。

(3)c源:主要是含碳有机物、碳氢化合物等。

(4)无机盐:如nacl、Kh2po4等。

微量元素:cu、K、mg、s、p、Zn。

有些还需要添加“生长因子”,通常是维生素类、某些氨基酸或核酸等。

2、培养基配置的原则根据不同的培养对象及培养目的,选用不同的培养基,但有机物总量不得超过15%,盐类一般不超过1%。

培养基有以下分类:按成分:天然培养基、合成培养基、半合成培养基按状态:固体培养基、半固体培养基、液体培养基按用途:基础培养基、营养培养基、鉴别培养基、选择培养基培养基配好后应立即灭菌,防止营养物质中的微生物富集。

3、灭菌:用理化手段杀灭一切微生物的营养体,包括芽孢和孢子,在实验中应对所有仪器、操作场所、药品及培养基灭菌或消毒。

(1)高压蒸汽灭菌:将物品放入封闭的加压灭菌器,加热使灭菌锅套间的水沸腾产生蒸汽,将冷空气排尽,压力上升,使水沸点变高,导致菌体蛋白质变性,一般0.1mpa、121℃、15~30min可以彻底灭菌,本次实验灭菌20min。

若是含糖培养基,110℃、30min。

(2)干热灭菌:微生物细胞内蛋白质因高温而凝固变性。

因高温,所以含水量小,不利于蛋白质受热变性,所以温度高,时间长。

(3)紫外灭菌:诱导胸腺嘧啶二聚体形成抑制DnA复制。

(4)过滤除菌:实验室中用微孔滤膜(孔径一般为0.22μm)。

除病菌需更小。

五、实验步骤:1、牛肉膏蛋白胨培养基的制备依次准确称取0.5g牛肉粉、1.0g蛋白胨、0.5gnacl放入烧杯,加入100mL水,用玻璃棒搅匀溶解,移入三角瓶,并加入1.5g琼脂。

培养基的配制

培养基的配制
• 加热灭菌
• 干热灭菌 • 湿热灭菌
• 过滤除菌 • 辐射灭菌
• 放射线辐照灭菌 • 紫外线灭菌
• 化学药品灭菌
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一般培养基用0.1Mpa,121.5℃,15~ 30min可达到彻底灭菌的目的。灭菌的温 度及维持的时间随灭菌物品的性质和容量 等具体情况而有所改变。
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过滤除菌
定无菌生长,方可使用。
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几种常用培养基配方
牛肉膏蛋白胨培养基的配方如下:
牛肉膏 3.0g 蛋白胨 10.0g
NaCl 水 pH
5.0g 1000ml 7.4~7.6。
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高氏Ⅰ号培养基配方如下:
可溶性淀粉
20g
NaCl
0.5g
KNO3 K2HPO4·3H2O MgSO4·7H2O FeSO4·7H2O
• 碳源:提供微生物繁殖所需碳元素的营养物质。用途:糖、 蛋白质、核酸合成。
• 氮源:提供微生物繁殖所需氮元素的营养物质。用途:蛋 白质、核酸合成。
• 能源:提供微生物生命活动最初能量来源的营养物或辐射 能。
• 生长素:微生物生长必需,但又不能自行合成的有机物。 • 无机盐:提供微生物繁殖所需各种重要元素。 • 水分:水是保证生命活动重要的介质。
• 称量:按照配方正确称取各种原料放于搪瓷杯中。 • 溶化:在搪瓷杯中加入所需水量,玻棒搅匀,加热溶解。 • 调pH值:用1MNaOH或1MHCl调pH,用pH试纸对照。 • 加琼脂溶化:加热过程中要不断搅拌,可适当补水。 • 分装:注意不要污染棉塞。 • 包扎成捆,挂上标签(必须用铅笔写),注明何种培养基。 • 灭菌备用:培养基灭菌后必须在370C下恒温培养24h,确
琼脂

菌株培养操作规程

菌株培养操作规程1.菌株培养1.1仪器的灭菌将养菌所需的所有仪器放在高压锅内灭菌,然后放入烘箱烘干,在实验操作前30min放入无菌操作台,打开紫外灯,待用。

1.2培养基的配制按照配方配置肉汤固体培养基250ml,肉汤液体培养基250ml,120度高压灭菌,放置于冰箱4℃备用。

(培养基的配制参照《微生物学实验》,徐威主编,中国医药科技出版社,第172页,微生物实验常用培养基配方)1.3菌株传代将高压灭菌完的固体培养基在酒精灯上融化,待温度降到45℃左右,取无菌培养皿,打开,沿着培养皿一侧倒入固体培养基,倒入的量是培养皿体积的1/3时停止,将培养皿盖好盖子,放在无菌操作台上,待培养基凝固。

取出从医院拿回的菌株(标记为F0代,一直储存在4℃,在操作前半个小时放在室温下适应),用接种环取一环接种于凝固好的固体培养基上,放入37℃细菌培养箱中培养18h。

培养18h后,得到F1代菌,将其保存于冰箱4℃(从医院取回的菌株数量有限,并且不能长期保存,为了后面的实验有足量的菌株完成实验,所以大量传代得到F1代菌,保存于冰箱,以后的实验都是从F1代菌开始进行)。

2.菌株保存2.1菌株短期保存从医院取回的菌株(F0代),通过传代得到F1代菌,用胶带将培养皿封存好,放置于冰箱4℃保存,称为短期保存。

短期保存的时间一般为20天到一个月。

2.2菌株的长期保存取无菌培养皿,倒入融化的固体培养基,待培养基凝固后,用接种环取一环F1代菌接种于培养皿上,放入37℃细菌培养箱培养18h得到F2代菌。

用移液枪取2ml无菌液体培养基于试管中,用接种环取一环F2代菌接种于试管中,放入细菌培养箱培养8h。

取100ml无菌锥形瓶,倒入50ml液体培养基,用移液枪从试管中取0.5ml菌液于100ml锥形瓶中,37℃摇床培养16h得到F3代菌。

将买回的甘油配成80%浓度,然后将甘油和F3代菌液按体积比1:1混合,再用移液枪将混合液吸入冻存管中,1ml/管,在冻存管上用记号笔标记冻存菌液的名称,代数,日期,放入冰箱-20℃保存,保存年限为1-2年,此保存法称为“甘油管冻存法”。

培养基配方及配置

培养基配方及配置
一般来说,培养基的配方包含基础培养基、添加剂和调节剂。

基础培养基是指提供生物体基本生长必需的基本成分,包括能源物质、有机和无机原料、氮源、矿质元素和缓冲物质等。

常用的基础培养基有
LB培养基、MS培养基等。

添加剂是指用于满足特定实验需求的成分,如抗生素、抗菌剂、激素、维生素等。

添加剂的种类和浓度根据实验目的的不同而有所差异。

调节剂是指用于调节培养基pH值、渗透压、表面张力等物理化学性
质的成分,如缓冲液、pH调节剂等。

以下是一个常用的细菌培养基LB的配方及配置:
1.基础培养基成分:
- 水:900ml
-蛋白胨:10g
-酵母提取物:5g
-NaCl:5g
2.添加剂:(可根据实验需求进行必要的添加)
- 抗生素(如氨苄青霉素):100μg/ml
- 抗菌剂(如氯霉素):25μg/ml
3.配制方法:
-将蛋白胨、酵母提取物和NaCl加入水中,并搅拌混合均匀。

- 将培养基溶液倒入容量瓶中,加水至1000ml,并混合均匀。

-调节pH值至7.0-7.2(一般使用缓冲液进行调节)。

-用自制滤纸过滤器滤过,将溶液分装至培养皿或试管中。

-如需添加抗生素或抗菌剂,将相应的药物加入培养基中,并充分溶解。

-培养基装瓶后可以高温高压灭菌,或使用滤器过滤进行无菌处理。

以上是一个简单的LB培养基的配方和配置流程,不同实验需要可能
会有所调整和变化。

在设计培养基配方时,需要结合具体实验目的和生物
体的特性来确定合适的成分和浓度,并注意配制和保管过程中的无菌操作,以确保培养基的质量和有效性。

培养基的配制方法

培养基的配制方法培养基是微生物学、生物学等实验中将微生物培养的一种物质基质,它提供了微生物生长所必需的营养和环境条件。

培养基的配制方法主要包括选择基质、添加营养成分、调节pH值、灭菌和包装等步骤。

以下是一般的培养基配制方法及注意事项。

1.选择基质培养基的基质可以选择为水或含有必要营养成分的溶液。

一般情况下,使用蒸馏水或双蒸馏水作为基质是比较常见的选择。

2.添加营养成分培养基中必须添加适当的营养成分,以满足微生物的生长需求。

常用的营养成分有碳源、氮源、无机盐、维生素和生长因子等。

常用的碳源有葡萄糖、蔗糖、麦芽糖等,常用的氮源有氨基酸、酵母浸出物、肉浸出物等。

此外,还可以根据微生物的特殊要求增加一些其他的营养成分。

3.调节pH值pH值对于微生物的生长十分重要,大多数微生物的最适生长pH在6.5-7.5之间。

因此,培养基在配制过程中需要进行pH值的调节。

可以使用酸碱溶液(如HCl和NaOH)进行pH调节,并通过使用pH试纸或pH计监测pH值。

4.灭菌培养基的灭菌工作非常重要,它可以防止杂菌的污染。

常用的灭菌方法有高压灭菌、干热灭菌和滤过灭菌等。

高压灭菌是指将配制好的培养基放置在高压锅中,经过高温高压的处理。

干热灭菌是将配制好的培养基放置在烘箱中进行加热处理。

滤过灭菌是将培养基通过0.22um的无菌滤膜过滤,以去除微生物。

灭菌后,需要用无菌操作将培养基倒装入无菌培养器皿中。

5.包装灭菌后的培养基需要进行包装保存,以防止污染。

常用的包装方式有试管包装、琼脂平板包装和瓶装包装等。

试管包装是将培养基倒入试管中,用苏打棒打破试管口,并通过注封的方法密封试管。

琼脂平板包装是将培养基倒入无菌琼脂平板中,并使用无菌的平板封口膜密封。

瓶装包装是将培养基倒入无菌玻璃瓶中,用无菌胶塞封闭瓶口。

在配制培养基的过程中,还需要注意以下几点:1.保持操作环境无菌,使用无菌操作台、无菌器具和无菌操作方法。

2.注意各种添加物的浓度,不可过量或过少。

珂字棉312组织培养体系的建立

珂字棉312组织培养体系的建立作者:邹甜郑顺利匡琛周仲华来源:《棉花科学》2016年第04期摘要:以珂字棉312为试验材料,以无菌苗的下胚轴为外植体诱导愈伤,并将愈伤组织置于不同培养基下诱导分化,初步建立棉花组织培养体系。

结果表明:一是对珂字棉312组织培养体系建立较好的各阶段培养基分别是愈伤组织诱导培养基为MS+0.1 mg/L 2,4-D+0.5 mg/L KT+30 g/L 葡萄糖+8 g/L琼脂,胚性愈伤组织的诱导培养基为MS +30 g/L葡萄糖+2.5 g/L phytagell,分化培养基为MS+0.1 mg/L IAA +30 g/L葡萄糖+2.5 g/L phytagell,生根培养基为MSB5 (双倍KNO3,无NH4NO3)+0.1 mg/L GA3 +30 g/L葡萄糖+2.5 g/L phytagell;二是各培养基调节pH值为5.8,培养温度为28℃时能够获得植株再生体系。

关键词:棉花;珂字棉312;组织培养中图分类号: S562. 文献标识码: A 文章编号:2095-3143(2016)04-0003-05Abstract: Using the Coker 312 cotton cultivar as experimental material, We took its aseptic seedling’s hypocotyl as explant for callus induction, then took the callus into different culture medium for inducing differentiation and preliminarily built cotton tissue culture system. The results showed: first, the better culture mediums for the estabishment of the tissue culture system of Coker 312 in each stage were respectively that the callus-inducing medium was MS+0.1 mg/L 2,4-D+0.5 mg/L KT+30 g/L glucose+8 g/L agar, Induction medium of embryogenic callus was MS+30 g/L glucose +2.5 g/L phytagel, differential medium was MS+0.1 mg/L IAA +30 g/L glucose +2.5 g/L phytagel, rooting medium was MSB5 (double KNO3, without NH4NO3)+0.1 mg/L GA3 +30 g/L glucose +2.5 g/L phytagel; second, the suitable pH value and culture temperature of culture medium for obtaining plant regeneration system were respectively 5.8 and 28 ℃.Key words: Cotton; Coker 312; Tissue culture0 引言棉花组织培养技术自Price和Smith在1979年第一次报道以来发展较快,目前已经建立了多个不同棉花品种的再生培养体系,例如谢德意,等[1]在2007年建立了鄂抗棉3号、鄂抗棉5号、鄂棉20、鄂棉23、豫棉9号、豫早73、豫棉12、豫棉1221等8个品种植株再生体系;孙京燕,等[2]在2009年建立了一套简便高效的低酚陆地棉直接体细胞胚胎发生和植株再生组织培养体系;罗晓丽,等[3]建立了晋棉5号、中棉所27和辽棉10号等3个早熟棉品种的再生组织培养体系;周晶,等[4]建立了新陆早19号和新陆早23号的再生组织培养体系;刘丽,等[5]通过对新陆早32号和新陆早33号的诱导研究,建立了它们的再生组织培养体系。

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