PCR和RT-PCR(11-12章)
rtpcr原理

rtpcr原理RT-PCR原理。
RT-PCR(Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)是一种将RNA转录成cDNA,然后再进行PCR扩增的技术。
它是PCR技术的一个变种,常用于检测RNA病毒、研究基因表达等领域。
下面将详细介绍RT-PCR的原理。
首先,RT-PCR的第一步是将RNA转录成cDNA。
这一步需要使用逆转录酶(Reverse Transcriptase)来完成。
逆转录酶能够将RNA模板上的核糖核酸序列转录成互补的DNA序列。
在这一步中,需要加入一条引物(primer),它会与RNA模板上的特定序列结合,作为逆转录酶合成cDNA的起始点。
接下来,转录生成的cDNA会作为PCR的模板进行扩增。
PCR扩增是通过DNA聚合酶(DNA Polymerase)在不断变换的温度下进行的。
首先是变性,将双链DNA变性为两条单链DNA。
然后是退火,引物与模板DNA结合。
最后是延伸,DNA聚合酶在引物的引导下合成新的DNA链。
这样,经过多轮循环,就可以将少量的RNA扩增成大量的DNA。
RT-PCR的原理可以通过以下几个关键步骤来概括,首先是逆转录,将RNA转录成cDNA。
然后是PCR扩增,通过多轮循环将cDNA扩增成大量的DNA。
最终,可以通过凝胶电泳、实时荧光定量PCR等方法来检测扩增产物。
RT-PCR的原理在实际应用中有着广泛的意义。
例如,在病毒检测中,可以通过RT-PCR来检测病毒RNA,从而进行病毒的早期诊断和监测。
在基因表达研究中,可以通过RT-PCR来检测特定基因的mRNA水平,从而了解基因的表达情况。
此外,RT-PCR还可以用于克隆特定基因、分析基因多态性等领域。
总的来说,RT-PCR是一种重要的分子生物学技术,其原理简单清晰,应用广泛。
通过将RNA转录成cDNA,然后再进行PCR扩增,可以快速、准确地检测目标RNA的存在,从而在医学诊断、基因表达研究等领域发挥重要作用。
pcr种类和原理

PCR种类和原理引言聚合酶链反应(PCR)是一种基因分析技术,广泛应用于分子生物学领域。
通过PCR,可以在短时间内扩增一小段DNA序列,从而方便进行基因检测、DNA测序等相关操作。
本文将介绍PCR的种类和原理。
PCR的种类PCR根据特定的用途和反应条件的不同,可以分为以下几种不同类型:标准PCR标准PCR是PCR的最基本形式,包括三个步骤:变性、退火和延伸。
在变性步骤中,将PCR反应体系中的DNA序列加热至高温,使其两个链解开。
然后,降温至一定温度,使引物(寡核苷酸)与DNA序列的两个链的末端结合。
最后,在合适的温度下,通过DNA聚合酶,使DNA序列的两个链延伸。
逆转录PCR逆转录PCR(RT-PCR)是一种将RNA转录成DNA的反应。
通过使用逆转录酶将RNA转录成cDNA,然后进行PCR扩增,可以更方便地研究RNA的表达和变化。
定量PCR定量PCR(qPCR)是一种用于测量DNA序列数量的PCR技术。
通过引入荧光探针或染料,可以实时监测PCR反应的进行,并据此计算目标DNA序列的起始数量。
数字PCR数字PCR是一种通过将反应体系分成多个小区域,并进行单分子级别的PCR扩增,实现对DNA序列的精确计数的方法。
长PCR长PCR用于扩增较长的DNA序列。
通常,标准PCR技术在扩增1000个碱基以上的DNA序列时表现不佳,而长PCR通过优化反应条件,可以扩增数千个碱基以上的DNA 序列。
PCR的原理PCR的原理基于DNA的复制过程。
PCR反应体系主要包括DNA模板、引物、DNA 聚合酶和反应缓冲液。
下面是PCR反应的基本步骤:1.变性:将反应体系加热至95°C,使DNA模板的双链解开。
此步骤中,DNA模板上的两个链会分离开,形成两个单链模板。
2.退火:降温至较低的温度,使引物与模板DNA的单链序列互补结合。
每个引物在目标区域的两端结合。
3.延伸:在适当温度下,DNA聚合酶开始将引物作为起始点,向外延伸合成新的DNA链,形成与模板DNA互补的两条新的DNA链。
PCR技术原理ppt

PCR基本原理
PCR(Polymerase Chain Reaction,聚合酶链反应)是一种选择性 体外扩增DNA或RNA的方法.它包括三个基本步骤: (1) 变性 (Denature):目的双链DNA片段在94℃下解链; (2) 退火(Anneal):两种 寡核苷酸引物在适当温度(50℃左右)下与模板上的目的序列通过氢键 配对;(3) 延伸(Extension): DNA模板—引物结合物在TaqDNA聚合酶 的作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保 留复制原理,合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链重复 循环变性--退火--延伸三过程,就可获得更多的“半保留复制链”,而 且这种新链又可成为下次循环的模板。每完成一个循环需2~4分钟, 2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。(Plateau)。 到达 平台期所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。 。
聚合酶链式反应也可以当作一项极其重要的酶促合成 DNA技术。PCR又称为无细胞克隆系统或特异性DNA序列体 外引物定向酶促扩增法,是基因扩增技术的一次重大革新,它 可将极微量的靶DNA特异地扩增上百万倍。
70年代初,Kleppe等人就提出了PCR的工作原理。Saiki (1985)和Mullis(1986)两家研究室分别用改进的Kleppe 法获得了大量染色体DNA单拷贝基因。当时的PCR技术须在 每次变性和退火后,扩增反应前重新加入DNA聚合酶。1988 年,由于在PCR系统引入了热稳定的TaqDNA聚合酶,这是从 水生栖热菌(Thermusaquaticus)中提取的耐热DNA聚合酶, 简称Taq DNA聚合酶。多次循环后的Taq DNA聚合酶仍然具 有活性,因此反应体系自动往复多次地进行对所需的DNA的 片段的酶促合成,使反应产物按指数增长,所以命名为聚合酶 链式反应。
自己总结:透彻易懂pcr rt-pcr原理【最新】

自己总结:透彻易懂pcr rt-pcr原理【最新】PCR原理聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction),简称PCR,是一种分子生物学技术,用于放大特定的DNA片段。
可看作生物体外的特殊DNA复制。
PCR这项技术,被广泛地运用在医学和生物学的实验室,例如用于判断检体中是否会表现某遗传疾病的图谱、传染病的诊断、基因复制以及亲子鉴定。
DNA 变性DNA denaturation : 加热或用碱处理双链DNA,使氢链断裂,结果DNA变成为单链,此称为DNA的变性。
发生这种变化时的温度称为融解温度,鸟嘌呤和胞嘧啶含量高的DNA融解温度也高。
由于变性的结果DNA的紫外线吸收增加,比旋光度和粘度降低,密度也增加。
如果在加热后慢慢冷却,则DNA可以再次恢复成双螺旋结构。
另外,外部压力也能使DNA变性.PCR(聚合酶链式反应)是利用DNA在体外摄氏95?高温时变性会变成单链,低温(经常是60?C左右)时引物与单链按碱基互补配对的原则结合,再调温度至DNA聚合酶最适反应温度(72?C左右),DNA聚合酶沿着磷酸到五碳糖(5'-3')的方向合成互补链。
基于聚合酶制造的PCR仪实际就是一个温控设备,能在变性温度,复性温度,延伸温度之间很好地进行控制。
引物(primer),是一小段单链DNA或RNA,作为DNA复制的起始点,在核酸合成反应时,作为每个多核苷酸链进行延伸的出发点而起作用的多核苷酸链,在引物的3′-OH上,核苷酸以二酯链形式进行合成,因此引物的3′-OH,必须是游离的。
DNA聚合酶(DNApolymerase)是细胞复制DNA的重要作用酶。
DNA聚合酶,以DNA为复制模板,从将DNA由5'端点开始复制到3'端的酶。
DNA聚合酶的主要活性是催化DNA的合成(在具备模板、引物、dNTP等的情况下)及其相辅的活性。
dNTP: deoxy-ribonucleoside triphosphate(三磷酸脱氧核糖核苷)的缩写。
rt-pcr原理

rt-pcr原理RT-PCR(Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)是一种常用的核酸检测技术,广泛应用于病毒检测、基因表达分析等领域。
本文将介绍RT-PCR的原理及其在实验室中的应用。
RT-PCR的原理主要包括逆转录(Reverse Transcription)和聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction)两个步骤。
首先是逆转录,即将RNA转录成cDNA。
在这一步骤中,首先需要一种特殊的酶——逆转录酶,它能够将RNA模板上的信息转录成相应的cDNA。
逆转录过程中需要一段RNA引物(primer)作为起始序列,使逆转录酶能够在该位置开始合成cDNA链。
经过逆转录反应后,RNA被转录成了cDNA,为后续的PCR反应提供了模板。
接下来是聚合酶链式反应,即利用DNA聚合酶在适当的温度下,将cDNA模板进行扩增。
PCR反应需要两段DNA引物,它们分别位于所需扩增片段的起始和终止位置。
在PCR反应的循环中,先是将DNA双链解旋,然后引物与模板结合,随后DNA聚合酶开始在引物的引导下合成新的DNA链。
通过多次循环,可以在较短的时间内扩增出大量的目标DNA片段。
RT-PCR技术具有高灵敏度和高特异性的特点,适用于检测病毒、细菌等微生物的核酸。
在病毒检测中,RT-PCR能够对病毒RNA进行逆转录合成cDNA,然后通过PCR反应扩增出目标病毒基因片段,从而实现对病毒的快速检测。
此外,RT-PCR还可以用于分析基因的表达水平,通过检测特定基因的mRNA水平,可以了解该基因在不同组织、不同生理状态下的表达情况,为基因功能研究提供重要信息。
除了基本的RT-PCR技术外,还有一些衍生技术,如实时荧光定量PCR (qPCR)。
qPCR在PCR反应中加入荧光探针,可以实时监测PCR产物的扩增过程,从而获得准确的定量信息。
这种技术在基因表达分析、病毒定量检测等领域有着广泛的应用。
PCR及RT-PCR概述

PCR及RT-PCR一、目的掌握聚合酶链式反应(PCR) 及逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)的基本方法二、原理PCR用于扩增位于两段已知序列之间的DNA区段。
在由Taq DNA聚合酶催化的一系列合成反应中,使用两段寡核苷酸作为反应的引物。
一般情况下,这两段寡核苷酸引物的序列互不相同,并分别与模板DNA 两条链上的各一段序列互补,而这两段模板序列又分别位于待扩增的两侧。
反应时它包括三个基本步骤: (1) 变性(Denature):目的双链DNA 片段在94℃下解链; (2) 退火(Anneal):两种寡核苷酸引物在适当温度(50℃左右)下与模板上的目的序列通过氢键配对;(3) 延伸(Extension):在Taq DNA 聚合酶合成DNA 的最适温度下,以目的DNA 为模板进行合成.由这三个基本步骤组成一轮循环,理论上每一轮循环将使目的DNA 扩增一倍(图4),这些经合成产生的DNA 又可作为下一轮循环的模板,所以经25-35 轮循环就可使DNA 扩增达106倍。
RNA的多聚酶链式反应(RT-PCR)是以RNA为模板,联合逆转录反应(reverse transcrip-tion, RT)与PCR,可用于检测单个细胞或少数细胞中少于10个拷贝的特异DNA,为RNA病毒检测提供了方便;并为获得与扩增特定的RNA互补的cDNA提供了一条极为有利和有效的途径。
RNA扩增包括两个步骤:①在单引物的介导下和逆转录酶的催化下,合成RNA的互补链cDNA;②加热后cDNA与RNA链解离,然后与另一引物退火,并由DNA聚合酶催化引物延伸生成双链靶DNA,最后扩增靶DNA。
在RT-PCR中关键步骤是RNA的逆转录,cDNA的PCR与一般PCR条件一样。
由于引物的高度选择性,细胞总RNA无需进行分级分离,即可直接用于RNA的PCR。
但RT-PCR对RNA制品的要求极为严格,作为模板的RNA分子必须是完整的,并且不含DNA、蛋白质和其它杂质。
PCRqPCRRT-PCR的原理及应用

PCRqPCRRT-PCR的原理及应⽤⽣物的东西必须要主动去了解,否则视野容易受到限制,尤其是分⼦⽣物学的核⼼技术。
PCR - 聚合酶链式反应- YouTube⽬的:从DNA双链中扩增出感兴趣的区段,⽤于后续的研究。
原理:DNA结构,双螺旋,AT、GC配对;DNA双链在临界温度会解链,退⽕后⼜会恢复;引物,DNA复制的起点,之所以需要引物是因为在DNA合成中DNA聚合酶只能把新的核苷酸加到已有的DNA链上。
操作核⼼:1. 引物设计,会考虑GC含量,决定退⽕温度;2. 变性、退⽕和延伸;PCR的应⽤ -1. Gene expression2. Genotyping (detection)3. Cloning4. Mutagenesis5. Methylation analysis6. Sequencing7. Medical, forensic, and applied sciences问题:1.真核⽣物的组蛋⽩会影响PCR吗?2.为什么需要前后引物,前后引物是如何p出指定区段的?3.PCR、qPCR和RT-PCR之间的区别和联系?PCR - 任何核酸序列RT-PCR 逆转录聚合酶链式反应 - 分析的是RNA,⼤部分是基因表达逆转录PCR,就是PCR的⼀个常规应⽤,我也跑过,见过庞⼤的机器,也是先设计引物,然后提cDNA,定量。
⼀条RNA链被逆转录成为互补DNA,再以此为模板透过PCR进⾏DNA复制。
PCA我们是扩增DNA序列,⽽RT-PCR我们扩增的是反转录出来的cDNA序列,然后再做PCR,把量做上去来检测,通常会配上⼀些管家基因作为对照。
RT-PCR的数据分析可以参照Y数微信公众号,代码很详细。
qPCR (Quantitative Real-time PCR) 实时荧光定量PCR - 分析的是DNA实时荧光定量PCR (Quantitative Real-time PCR)是⼀种在DNA扩增反应中,以荧光化学物质测每次聚合酶链式反应(PCR)循环后产物总量的⽅法。
RT-PCR及其产物电泳分析ppt课件

④ 循环次数 PCR循环次数取决于模板DNA的浓度,一般为25-35次,PCR产物可达最大值 。
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PCR体系的优化
➢ PCR反应成分浓度的优化 ① Taq DNA聚合酶:1~2.5U/100μL反应液。 ② dNTP浓度:20~200μmol/L,且四种底物浓度相等,以减少错误掺入的机
3
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RT反应试剂 (1)引物: Oligo(dT)16,寡聚胸甘酸16个,要求mRNA有poly(A)尾巴(mRNA 1-4%) (2)逆转录酶 : 鼠白血病病毒莫洛尼株 (MMLV)、鸟类成髓细胞瘤病毒(AMV ) (3)RT反应缓冲液:常用5×浓度。 (4)底物:即四种dNTP的混合物溶液,常用10×浓度(2 mmol/L或2.5 mmol/L)。 (5)模板 (6)RNasin
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实验原理
RT反应:在逆转录酶作用下,以mRNA为模板合成cDNA(complementary DNA)分子 的过程。 PCR反应:PCR扩增是模拟天然DNA复制过程,利用DNA聚合酶在体外扩增一对引物 之间特异性DNA片段的方法。其主要热循环过程可分为三个步骤:(1)变性;(2)退 火;(3)延伸 。 RT-PCR: 以RT反应产物cDNA分子为模板进行特异性PCR扩增的过程,是检测基因表 达最常用的方法。
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结果分析
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观察结果: ① 是否有扩增产物。 ②如有拖尾或有几条区带,说明有非特异性扩增 。 ③分子量标准电泳后区带是否分开。 ④与分子量标准比较,PCR产物的长度是否正确 。 ⑤PCR产物的产量。 ⑥引物二聚体。
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性没有影响。 Enzyme Mutation Frequency(%) Template Doubling(for 25 cycles) Eorror Rate(×10^(-6)) Relative Fidelity Taq DNA Ploymerase 4.00±0.09 11 42±19 1 Platinum Taq DNA Polymerase 3.4±0.5 10 38±5 1.1 Pfu DNA Polymerase 0.3±0.1 10 3±1 14 Pfu Turbo DNA Polymerase 0.27±0.07 11 2.4±0.4 17 Platinum Pfx Polymerase 0.14±0.04 12 1.6±0.5 26 表 1:用 rpsL 分析测定 DNA 聚合酶的保真性。 结果是 5 次独立的 rpsL 分析 (2 次 25 个循环和 3 次 15 个循环) 结果的平均值±SD。 对不同酶的突变克隆和总克隆数分列如下,Taq DNA 聚合酶(1,892/56,455) , PLATINUMTM Taq DNA 聚 合 酶 ( 2,043/57,695 ), pfu DNA 聚 合 酶 (1,033/395,469) , pfu TurboTM DNA 聚合酶 (1,068/395,468) , PLATINUMTM pfx DNA 聚合酶(960/584,230) 。 用 LacZ 保真性分析获得了相同的保真性数据(表 2) 。在所研究的几种 DNA 聚 合酶中,PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶有最低的错误率。 Enzyme Mutation Frequency(%) Template Doubling(for 25 cycles) Eorror Rate(×10^(-6)) Relative Fidelity Taq DNA Ploymerase 3.1±0.3 14 19±3 1 Pfu DNA Polymerase 0.18±0.03 11 1.1±0.4 15 Platinum Pfx Polymerase 0.09±0.01 11 0.67±0.06 29 表 2:用 LacZ 分析测定 DNA 聚合酶的保真性。 结果是 2 次独立的 LacZ 分析 (1 次 25 个循环和 1 次 15 个循环) 结果的平均值±SD。 对不同酶的突变克隆和总克隆数分列如下, Taq DNA 聚合酶 (2,975/93,688) , pfu DNA 聚合酶(185/109,289) ,PLATINUMTM pfx DNA 聚合酶(96/107,655) 。所 有突变克隆都重新涂布并在 37℃培养过夜以进行第二次真正突变体确定。 酶的 保真性会被缓冲液或其附加物所影响。PCRx 增强溶液,它是针对高 GC 含量的 模板的 PCR 反应的共溶剂,也在 rpsL 分析中进行了评价。PCRx 增强剂能提高 Taq DNA 聚合酶的保真性 2 倍(图 2) 。PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶的保真性 不被 PCRx 增强剂所影响 (数据未显示) 。 另外, 在扩增反应中, 当多种不同 PCR 缓冲液应用于 pfu DNA 聚合酶或 PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶时保真性没有明 显变化(数据未显示) 。
第十二章 疑难解答
问 题 可能原因 建议解决方法 RT-PCR 灵敏度:在琼脂糖凝胶分析中看到少量或没有 RT-PCR 产物 RNA 被降 解 在用来验证完整性之前先在变性胶上分析 RNA 使用良好的无污染技术分离 RNA 在将组织从动物体取出后立刻处理 在 100%甲酰胺中储存 RNA 如果使用胎盘 RNase 抑制剂,不要加热超过 45℃或 pH 超过 8.0,否则抑制剂或释放所有结合的 RNase。而且,在≥0.8mM DTT 时加 入 RNase 抑制剂,一定要存在 DTT。 RNA 中包含逆转录抑制剂 通过乙醇沉淀 RNA 除去抑制剂。 用 70% (v/v) 乙醇对 RNA 沉淀进行清洗。 可以加入糖元 (0.25μg 到 0.4μg/μl)以帮助小量样品 RNA 的恢复。 逆转录抑制剂包括:SDS,EDTA,甘油,焦磷酸钠,亚精胺,甲酰胺和胍盐。 将对照 RNA 同样品混合,同对照 RNA 反应比较产量以检验抑制剂。 多糖同 RNA 共沉淀 使用氯化锂沉淀 RNA 以除去多糖。 用于合成 cDNA 第一链合成的引物没有很好退火 确定退火温度适合您的引物。 对于随机六聚体,建议在反应温度保温之前先在 25℃保温 10 分钟。 对于基因特异性引物(GSP) ,可以试一下其他 GSP,或换用 oligo(dT)或随机六 聚体确定 GSP 是反义序列。 起始 RNA 量不够 增加 RNA 量。 对于<50ng 的 RNA 样品,可以在第一链 cDNA 合成中使用 0.1μg 到 0.5μg 乙酰 BSA。 RNA 模板二级结构太多 将 RNA 和引物在不含盐及缓冲液条件下变性/退火 提高逆转录反应温度,对 SuperScriptⅡ可以到 50℃,对 ThermoScript 可以到 65 ℃。 注意: 不要在>60℃时使用 oligo(dT)引物, 选择一个在反应温度可以退火的 GSP。
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图 2. PCRx 增强溶液对 Taq DNA 聚合酶的保真性的影响。 用 rpsL 分析来确定在扩增反应中含有或不含 PCRx 增强液时 Taq DNA 聚合酶的 错误率。数值是平均值±SD(N=2) 。 附录C 使用一步法RT-PCR从单一细胞中检测基因 方法: 分离单一细胞 在去除了细胞培养基后,COS-7 细胞用不含钙镁的 DPBS(0.20g/L KCl, 0.20g/L KH2PO4, 8.00g/L NaCl, 2.16g/L Na2HPO4·7H2O ) 清 洗 一 次 。 加 入 Trypsin-EDTA(0.25% tryspsin,1mM EDTA·4Na)到细胞中(3ml/75cm2 培养瓶)并 保温至最多 5 分钟。加入 20ml 生长培养基以终止胰蛋白酶的活性。离心收集细 胞。将细胞悬浮到 DPBS 中至大约 1000 个细胞/ml。取 10μl 悬浮液(大约 10 个 细胞)点到清洁的盖玻片表面。用微量移液管在相差显微镜(Nikon Diaphot 倒 置显微镜,200 倍放大)下收集细胞。分离的细胞(在少于 1μl 的 DPBS 中)转 移到 0.2ml 薄壁 PCR 管中。
图 1. 在显微镜下分离单个细胞 一步法 RT-PCR 使用 INVITROGEN 的 SUPERSCRIPT™ One-Step RT-PCR with PLATINUM® Taq System 进行 RT-PCR。
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图 2. 源自 COS-7 细胞的一步法 RT-PCR 产物。 1-3 泳道分别是从 1 个,2 个和 5 个细胞中扩增的人类肌动蛋白,使用的是有意 义引物(CCT CGC CTT TGC CGA TCC)和反义引物(GGA TCT TCA TGA GGT AGT CAG TC) 。C 泳道则是没有加入反转录酶的扩增结果。