甘薯茎叶的妙用(木泰华,孙红男 编著)思维导图
《奇妙的克隆》精品课件
克 隆 羊 诞 生 图 示
世界克隆史
1938 汉斯· 斯皮曼建议用成年的细胞核植入卵子的办法进行哺乳 年 动物克隆（提出设想）
1962 约翰· 格登宣布他用一个成年细胞克隆出一只蝌蚪（爪蟾）， 年 从而引发了关于克隆的第一轮辩论
1984 斯蒂恩· 威拉德森用胚胎细胞克隆出一只羊。这是第一例得 年 到证实的克隆哺乳动物 1995 第一个用成年哺乳动物细胞克隆出的个体----克隆羊多利出 年 世了 2000 美国科学家用无性繁殖技术成功地克隆出一只猴子"泰特拉 年 " ，这意味着克隆人本身已没有技术障碍 2001 美、意科学家联手展开克隆人的工作 年
1、为了说明“克隆是什么”，作者运 用了哪些说明方法？
举例子：列举人们熟悉的生物现象来说明， 把艰深的科学知识说得简明易懂。
释义：对克隆一词溯源并解释。
引用：引《西游记》中拔毛变猴的故事，生动 形象说明。
2、这节是否按时间的先后来说明“克隆试验” 呢？这样安排有何好处？
“克隆试验”按两条线索说明：
智取芭蕉扇——纳米与战争
自从世界上有了纳米这个词语， 这标志着人类在科技应用领域创 造了最“微”的奇迹。此技术打 造出了未来型“微武器”，各种 导弹等甚至能装进孩子们的口袋 里。 有人预言：届时，未来微战场 的纳米型“微战争”将悄然拉开 帷幕。 其实发明这一技术的现代人， 千万不要沾沾自喜，纳米技术的 应用，很早以前就出现在西游记 的记载中了。 在孙悟空三借芭蕉扇的故事中， 孙悟空就曾化作小小飞虫钻入铁 扇公主肚子里，智取了扑灭火焰 山大火的芭蕉扇，得以顺利护送 唐僧去西天取经…… 这就是最早的纳米战争战例。
克隆的基本过程是先将含有遗传物质的供 体细胞的核移植到去除了细胞核的卵细胞中， 利用微电流刺激等使两者融合为一体，然后促 使这一新细胞分裂繁殖发育成胚胎，当胚胎发 育到一定程度后，再被植入动物子宫中使动物 怀孕，便可产下与提供细胞者基因相同的动物。 这一过程中如果对供体细胞进行基因改造，那 么无性繁殖的动物后代基因就会发生相同的变 化。
甘薯茎叶生长与块根产量有什么关系
甘薯茎叶生长与块根产量有什么关系甘薯地上部茎叶的生长，与薯块产量关系密切。
因为甘薯的干物质90%一95%都是光合作物产物，绿色叶片是制造光合物质的主要器官，其生长好坏直接影响光合产物的多少；同时地上部茎叶生长状况，也影响薯块的发育和植株体内干物质的分配与积累。
现以广东秋植甘薯为例，分述甘薯地上部与地下部关系所出现的几种情况。
(1)正常情况。
地上部茎叶从还苗后直至茎叶盛长期，逐渐加速生长，形成繁茂的最适叶面积，每亩2 000~2 600米2，即叶面积指数植株绿叶面积与土地面积之比3~4。
以后转入薯块迅速膨大期，保持稳定的最适叶面积，直至生育末期，叶面积缓慢降低，叶面积指数维持2左右至收获。
地上部鲜茎叶重量与地下部鲜薯重量的比值为l的交叉转折点出现在植后70一80天。
这种生育情况是秋薯正常生长的表现，地上部与地下部生育较协调，既能保持较稳定的最适叶面积，利于制造大量光合产物，又利于结薯，并能顺利地把大量干物质转运积累到块根中，薯块迅速膨大，薯数足，薯大，产量高。
(2)徒长。
地上部茎叶生长很快，繁茂旺盛，提早封垄，叶面积发展过量，植后90天，叶面积指数超过5，至块根膨大期，茎叶仍继续旺长。
这种长相，薯块产量较低。
由于茎叶徒长，大量养分消耗在茎叶的生长和呼吸作用中，同时植株氮素代谢作用占优势，碳水化合物的产生和积累少，不利于块根的形成，易发生粗根。
一般种植在肥沃的水田、密度过大、偏施氮肥或高温多雨多肥、排水不良等情况下易出现徒长。
(3)早衰。
地上部茎叶生长前中期长得有一定基础，绿叶面积也达到适宜面积，结薯正常。
但在结薯后，茎叶生势缓慢，或叶面积达到高峰后，未能保持稳定的最适叶面积，黄落叶过多过早出现。
这种情况往往是因为生育中、后期缺肥，或遇旱所致。
一般种植在旱坡地的田块易出现。
由于结薯正常，有一定的薯数和薯重，仍有一定的产量，但薯块较小。
因为薯块膨大阶段时，叶面积不大，光合产物少，影响薯块膨大与干物质积累。
甘薯茎叶生物活性成分及其保健功效
江苏农业学报(ＪｉａｎｇｓｕＪ.ｏｆＡｇｒ.Ｓｃｉ.)ꎬ２０２２ꎬ３８(６):１７０２￣１７０８ｈｔｔｐ://ｊｓｎｙｘｂ.ｊａａｓ.ａｃ.ｃｎ毕洪娟ꎬ靳晓杰ꎬ雷㊀剑ꎬ等.甘薯茎叶生物活性成分及其保健功效研究进展[Ｊ].江苏农业学报ꎬ２０２２ꎬ３８(６):１７０２￣１７０８.ｄｏｉ:１０.３９６９/ｊ.ｉｓｓｎ.１０００￣４４４０.２０２２.０６.０２９甘薯茎叶生物活性成分及其保健功效研究进展毕洪娟１ꎬ２ꎬ㊀靳晓杰１ꎬ㊀雷㊀剑１ꎬ㊀王连军１ꎬ㊀柴莎莎１ꎬ㊀杨新笋１(１.湖北省农业科学院粮食作物研究所ꎬ湖北武汉４３００６４ꎻ２.华中农业大学植物科学技术学院ꎬ湖北武汉４３００７０)收稿日期:２０２２￣０３￣０７基金项目:国家重点研发计划项目(２０１９ＹＦＤ１００１３００㊁２０１９ＹＦＤ１００￣１３０５)ꎻ财政部和农业农村部国家现代农业产业技术体系项目(ＣＡＲＳ￣１０ꎬ甘薯)作者简介:毕洪娟(１９９９－)ꎬ女ꎬ河北沧州人ꎬ硕士研究生ꎬ主要从事甘薯遗传育种研究ꎮ(Ｅ￣ｍａｉｌ)Ｂｉｈｊｕａｎ１２３＠１６３.ｃｏｍ通讯作者:杨新笋ꎬ(Ｅ￣ｍａｉｌ)ｙａｎｇｘｉｎｓ０１３＠１６３.ｃｏｍ㊀㊀摘要:㊀中国是甘薯生产大国ꎬ栽培面积和产量均居世界首位ꎮ甘薯茎叶常被视为甘薯的附加产品用作动物饲料或直接丢弃ꎮ近年来ꎬ研究发现甘薯茎叶富含多糖㊁类胡萝卜素㊁绿原酸㊁黄酮和花青素等多种生物活性成分ꎬ具有抗氧化㊁抗肿瘤㊁降血糖㊁降血脂和抑菌抗炎等作用ꎮ本文综述了甘薯茎叶的主要生物活性成分㊁保健功效及其体内外活性之间的联系ꎬ旨在为深入研究甘薯茎叶生物活性成分㊁提高甘薯茎叶资源的市场利用价值提供参考ꎮ关键词:㊀甘薯茎叶ꎻ生物活性成分ꎻ保健功效中图分类号:㊀Ｓ５３１.０１㊀㊀㊀文献标识码:㊀Ａ㊀㊀㊀文章编号:㊀１０００￣４４４０(２０２２)０６￣１７０２￣０７ＰｒｏｇｒｅｓｓｏｆｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓａｎｄｔｈｅｉｒｈｅａｌｔｈｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓＢＩＨｏｎｇ￣ｊｕａｎ１ꎬ２ꎬ㊀ＪＩＮＸｉａｏ￣ｊｉｅ１ꎬ㊀ＬＥＩＪｉａｎ１ꎬ㊀ＷＡＮＧＬｉａｎ￣ｊｕｎ１ꎬ㊀ＣＨＡＩＳｈａ￣ｓｈａ１ꎬ㊀ＹＡＮＧＸｉｎ￣ｓｕｎ１(１.ＦｏｏｄＣｒｏｐｓＩｎｓｔｉｔｕｔｅꎬＨｕｂｅｉＡｃａｄｅｍｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＷｕｈａｎ４３００６４ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅ＆ＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬＨｕａｚｈｏｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒ￣ａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＷｕｈａｎ４３００７０ꎬＣｈｉｎａ)㊀㊀Ａｂｓｔｒａｃｔ:㊀Ｃｈｉｎａｉｓｔｈｅｍａｊｏｒｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｐｒｏｄｕｃｉｎｇｃｏｕｎｔｒｙｉｎｔｈｅｗｏｒｌｄꎬｗｉｔｈｔｈｅｌａｒｇｅｓｔｃｕｌｔｉｖａｔｅｄａｒｅａａｎｄｈｉｇｈｅｓｔｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ.Ａｓａｄｄｉｔｉｏｎａｌｐｒｏｄｕｃｔｓꎬｔｈｅｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏａｒｅｏｆｔｅｎｕｓｅｄａｓｆｅｅｄｏｒｄｉｓｃａｒｄｅｄｄｉｒｅｃｔｌｙ.Ｒｅ￣ｃｅｎｔｌｙꎬｍａｎｙｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｕｎｄｓꎬｓｕｃｈａｓｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓꎬｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｓꎬｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃａｃｉｄꎬｆｌａｖｏｎｏｉｄｓａｎｄａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓꎬｗｅｒｅｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄａｎｄｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓ.Ａｎｄｔｈｅｓｅｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｕｎｄｓｏｆｆｅｒｎｕｍｅｒｏｕｓｈｅａｌｔｈｂｅｎｅ￣ｆｉｔｓｉｎｃｌｕｄｉｎｇａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔꎬａｎｔｉｔｕｍｏｒꎬｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃꎬｈｙｐｏｌｉｐｉｄｅｍｉｃꎬａｎｔｉ￣ｂａｃｔｅｒｉａｌａｎｄａｎｔｉ￣ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ.Ｔｈｉｓｐａｐｅｒｒｅ￣ｖｉｅｗｅｄｔｈｅｍａｉｎｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓꎬｈｅａｌｔｈｆｕｎｃｔｉｏｎꎬｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｂｅｔｗｅｅｎａｃｔｉｖｉｔｉｅｓｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏꎬａｉｍｉｎｇｔｏｐｒｏ￣ｖｉｄｅａｒｅｆｅｒｅｎｃｅｆｏｒｆｕｒｔｈｅｒｓｔｕｄｙｏｆｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓａｎｄｉｍｐｒｏｖｉｎｇｔｈｅｍａｒｋｅｔｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎｖａｌｕｅｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:㊀ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓꎻｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓꎻｈｅａｌｔｈｆｕｎｃｔｉｏｎ㊀㊀甘薯(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａＬ.)为旋花科(Ｃｏｎｖｏｌｖｕ￣ｌａｃｅａｅ)一年生植物ꎬ起源于南美洲ꎬ于１６世纪后期经菲律宾传入中国并成为中国重要的粮食㊁饲料㊁工业原料和生物能源作物[１]ꎮ在传统习俗中ꎬ仅甘薯的块根部分作为粮食ꎬ茎叶部分多用作牲畜饲料或直接丢弃ꎮ然而研究发现甘薯茎叶中除含有丰富的营养成分外ꎬ还富含大量生物活性物质ꎬ如多糖㊁类胡萝卜素㊁绿原酸㊁黄酮类化合物和花青素等ꎬ具有抗氧化㊁抑菌抗炎㊁抗肿瘤㊁降血糖和血脂等多种药用价值和保健功效ꎬ在预防和辅助治疗疾病方面具有重要作用ꎬ可作为保健品甚至是药品的开发原２０７１料[２]ꎮ因此ꎬ鉴定㊁分离㊁开发甘薯茎叶生物活性成分可以有效提高甘薯茎叶资源的市场利用价值ꎬ缓解资源浪费问题ꎮ本文针对甘薯茎叶的主要生物活性成分㊁保健功效及其体内外活性的联系进行综述ꎬ旨在为增加甘薯的经济附加值ꎬ促进甘薯茎叶的进一步研究与利用提供参考ꎮ１㊀甘薯茎叶主要生物活性成分１.１㊀多糖多糖又称多聚糖ꎬ是由数个单糖分子聚集而成的一类天然高分子聚合物ꎬ是支持生命活动正常运作的基本物质之一[３]ꎮ研究发现甘薯茎叶中的多糖主要是由葡萄糖㊁木糖㊁甘露糖等单糖组成的吡喃型多糖[４]ꎮ赵珊等[５]对烘干后菜用型甘薯和鲜食型甘薯地上部分的多糖含量进行测定ꎬ发现２种类型甘薯均以叶片多糖含量为最高(３.００％~４ ６９％)ꎬ其次为叶柄(２.３４％~４ ２１％)ꎬ茎中含量最低(１.９８％~３ ６３％)ꎮ张小贝等[６]测定了甘薯品种徐菜薯１号㊁鄂菜薯１号和莆薯５３的新鲜叶片中的多糖含量ꎬ结果表明３个品种的甘薯叶片中多糖含量分别达到１ ２６％㊁１ ３５％和１ ８５％ꎮ李松昂等[７]运用超声波辅助酶法提取甘薯叶中多糖并利用响应面设计对提取工艺进行优化ꎬ获得甘薯叶中纯化多糖ＳＰＬ￣Ⅰ㊁ＳＰＬ￣Ⅱ２种组分ꎮ１.２㊀类胡萝卜素类胡萝卜素是体内维生素Ａ的主要来源ꎬ广泛存在于甘薯根部及茎叶组织中ꎬ主要包括β￣胡萝卜素㊁叶黄素㊁玉米黄素等[８]ꎮ其中ꎬ甘薯叶片是叶黄素的极佳来源ꎬ烘干的叶片中叶黄素含量可高达０.３４~０ ６８ｍｇ/ｇ[９]ꎮＰｈａｈｌａｎｅ等[１０]比较了６个品种的甘薯叶片中类胡萝卜素成分ꎬ结果表明ꎬ甘薯品种Ｂｌｅｓｂｏｋ烘干的叶片中β￣胡萝卜素和玉米黄素含量最高ꎬ分别为１０ ２７ｍｇ/ｋｇ和５ ０２ｍｇ/ｋｇꎻ品种Ｂｏｐｈｅｌｏ和Ｂｌｅｓｂｏｋ的烘干叶片中叶黄素含量最高ꎬ分别为９ ５０ｍｇ/ｋｇ和７ １９ｍｇ/ｋｇꎮ石晋[８]对８个不同品种的烘干甘薯叶片中叶黄素和总胡萝卜素含量进行测定ꎬ结果表明ꎬ苏薯８号的总胡萝卜素和叶黄素含量均为最高ꎬ且甘薯茎叶中类胡萝卜素含量与光照强度具有相关性ꎬ在一定范围内光照强度越弱ꎬ类胡萝卜素含量越高ꎮ１.３㊀绿原酸甘薯茎叶中的绿原酸类化合物主要是指咖啡酰奎宁酸(ＣＱＡ)衍生物ꎬ包括３ꎬ５￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(３ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ)㊁４ꎬ５￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(４ꎬ５￣ｄｉＣ￣ＱＡ)㊁３￣Ｏ￣咖啡酰奎尼酸(３￣ＣＱＡ)㊁３ꎬ４￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(３ꎬ４￣ｄｉＣＱＡ)和３ꎬ４ꎬ５￣Ｏ￣三咖啡酰奎尼酸(３ꎬ４ꎬ５￣ｔｒｉＣＱＡ)等[１１￣１２](表１)ꎮ其中３ꎬ４￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸和３ꎬ４ꎬ５￣Ｏ￣三咖啡酰奎尼酸已经被证明能够抑制艾滋病病毒的复制ꎬ３ꎬ４ꎬ５￣Ｏ￣三咖啡酰奎尼酸还可以抑制脱氧核糖核酸(ＤＮＡ)聚合酶[１１]ꎮＴａｉｒａ等[１３]的研究结果表明１１种甘薯叶片提取物中绿原酸的主要成分均为４ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ和３ꎬ５￣ｄｉＣ￣ＱＡꎮＺｈｅｎｇ等[１４]利用液相色谱￣质谱联用技术对甘薯茎叶绿原酸进行鉴定ꎬ结果表明ꎬ甘薯茎叶中除含有ＣＱＡ之外ꎬ还含有３种阿魏酰奎尼酸ꎬ３ꎬ５￣二咖啡酰奎尼酸和４ꎬ５￣二咖啡酰奎尼酸ꎬ以及少量４种以上咖啡酰阿魏酰奎尼酸ꎮＫｒｏｃｈｍａｌ￣Ｍａｒｃｚａｋ等[１５]鉴定９个甘薯品种的茎叶生物活性成分ꎬ共发现５种绿原酸:新绿原酸(５￣ＣＱＡ)㊁绿原酸(３￣ＣＱＡ)㊁隐绿原酸(４￣ＣＱＡ)㊁３ꎬ４￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(３ꎬ４￣ｄｉＣ￣ＱＡ)㊁３ꎬ５￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(３ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ)ꎮ表１㊀甘薯茎叶绿原酸类化合物Ｔａｂｌｅ１㊀Ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃａｃｉｄｃｏｍｐｏｕｎｄｓｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓ化合物名称㊀㊀㊀参考文献３ꎬ５￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(３ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ)[１１]~[２３]４ꎬ５￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(４ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ)[１１]~[２３]３￣Ｏ￣咖啡酰奎尼酸(３￣ＣＱＡ)[１１]~[２３]３ꎬ４￣Ｏ￣二咖啡酰奎尼酸(３ꎬ４￣ｄｉＣＱＡ)[１１]~[２３]３ꎬ４ꎬ５￣Ｏ￣三咖啡酰奎尼酸(３ꎬ４ꎬ５￣ｔｒｉＣＱＡ)[１１]㊁[１２]㊁[１６]㊁[１７]㊁[２０]㊁[２３]阿魏酰奎尼酸(Ｆｅｒｕｌｏｙｌｑｕｉｎｉｃａｃｉｄ)[１４]３￣咖啡酰￣４￣阿魏奎尼酸[１８]新绿原酸(５￣ＣＱＡ)[１６]㊁[２０]~[２２]隐绿原酸(４￣ＣＱＡ)[１５]㊁[１６]１.４㊀黄酮类化合物甘薯茎叶中常见黄酮类化合物分别为槲皮素㊁木樨草素㊁杨梅素和山柰酚ꎬ其中檞皮素含量最高[２４]ꎮ邹耀洪[２５]利用高效液相色谱技术分离并鉴定甘薯叶中黄酮类物质ꎬ共发现檞皮素￣３￣Ｏ￣β￣Ｄ￣葡萄糖￣(６ң１)￣Ｏ￣ａ￣Ｌ￣鼠李糖甙㊁４ᶄꎬ７￣二甲氧基山柰酚㊁檞皮素￣３￣Ｏ￣β￣Ｄ￣葡萄糖甙和檞皮素４种黄酮类化合物ꎮＬｉｕ等[２６]采用超声波￣微波协同法从甘薯３０７１毕洪娟等:甘薯茎叶生物活性成分及其保健功效研究进展叶中提取到１１种黄酮类化合物ꎬ包括黄芪素㊁杨梅素㊁槲皮素㊁异槲皮素等ꎮ罗建光等[２７]对巴西甘薯叶中黄酮类成分进行分离和鉴定ꎬ发现其中包含椴树苷㊁鼠李素㊁黄芪素和山柰酚等黄酮类化合物ꎮＣａｒｖａｌｈｏ等[２８]利用极管阵列检测器液相色谱技术从甘薯叶片中分离出檞皮素㊁杨梅素和山柰酚等黄酮类化合物ꎬ并发现适当延长光照时间有助于类黄酮类化合物的积累ꎮ目前ꎬ甘薯茎叶中已鉴定到的主要黄酮类化合物见表２ꎮ表２㊀甘薯茎叶黄酮类化合物Ｔａｂｌｅ２㊀Ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｓｔｅｍｓａｎｄｌｅａｖｅｓ化合物名称㊀㊀㊀㊀㊀参考文献檞皮素(Ｑｕｅｒｃｅｔｉｎ)[１５]㊁[１６]㊁[１９]㊁[２０]㊁[２４]~[２６]㊁[２８]~[３０]杨梅素(Ｍｙｒｉｃｅｔｉｎ)[２４]㊁[２６]㊁[２８]山柰酚(Ｋａｅｍｐｆｅｒｏｌ)[１６]㊁[１９]㊁[２４]~[３０]鼠李素(Ｒｈａｍｎｅｔｉｎ)[１９]㊁[２５]~[２７]芦丁(Ｒｕｔｉｎｕｍ)[１６]㊁[１９]㊁[３０]金丝桃苷(Ｈｙｐｅｒｏｓｉｄｅ)[１５]㊁[１６]㊁[１９]㊁[３０]异檞皮素(Ｉｓｏｑｕｅｒｃｉｔｒｉｎ)[１５]㊁[１６]㊁[１９]㊁[２０]㊁[２５]㊁[２６]㊁[３０]黄芪素(Ａｓｔｒａｇａｌｉｎ)[１６]㊁[２６]㊁[２７]椴树苷(Ｔｉｌｉｒｏｓｉｄｅ)[２６]㊁[２７]木樨草素(Ｌｕｔｅｏｌｉｎ)[２４]㊁[３０]柳穿鱼黄素(Ｐｅｃｔｏｌｉｎａｒｉｇｅ￣ｎｉｎ)[１６]香叶木素(Ｄｉｏｓｍｅｔｉｎ)[１６]棕矢车菊素(Ｊａｃｅｏｓｉｄｉｎ)[１６]白杨素(Ｃｈｒｙｓｉｎ)[１６]１.５㊀花青素花青素是一类水溶性天然食用色素ꎬ基本结构为Ｃ６￣Ｃ３￣Ｃ６ꎬ主要用于花朵㊁果实和叶片的着色ꎬ与甘薯块根相比ꎬ有关甘薯茎叶花青素的研究较少[３１]ꎮＩｓｌａｍ等[３２]利用反相高效液相色谱技术从甘薯品种ＳｉｍｏｎＮｏ.１㊁ＫｙｕｓｈｕＮｏ.１１９和ＥｌｅｇａｎｔＳｕｍｍｅｒ的叶片中共鉴定到１５种花青素ꎬ分为矢车菊素类和芍药素类ꎬ主要包括矢车菊素３￣(６ꎬ６ᶄ￣咖啡酰对羟基苯甲酰槐糖苷)￣５￣葡萄糖苷㊁芍药素３￣(６ꎬ６ᶄ￣二咖啡酰槐糖苷)￣５￣葡萄糖苷㊁芍药素３￣(６ꎬ６ᶄ￣咖啡酰对羟基苯甲酰槐糖苷)￣５￣葡萄糖苷㊁矢车菊素３￣(６ꎬ６ᶄ￣二咖啡酰槐糖苷)￣５￣葡萄糖苷ꎮ矢车菊素类衍生物在抗突变和抗氧化活性方面优于芍药素类衍生物ꎮＶｉｓｈｎｕ等[３３]对甘薯品种ＢｈｕＫｒｉｓｈｎａ的块根以及甘薯品种Ｓ￣１４６７的叶片中花青素含量进行研究ꎬ结果表明ꎬ甘薯块根和叶片均由９种经酰化修饰的花青素组成ꎬ并且甘薯鲜叶中花青素含量远高于块根ꎮＬｉ等[３４]首次在甘薯品种福薯２３和福薯３１７的叶片提取物中鉴定出３种花青素化合物:矢车菊素３￣ｐ￣香豆素￣５￣葡萄糖苷㊁芍药素３￣ｐ￣香豆素￣５￣葡萄糖苷㊁矢车菊素３￣咖啡酰￣ｐ￣香豆素￣５￣葡萄糖苷ꎮＳｕ等[３５]利用高效液相色谱与质谱联用技术从Ｂｏｎｉｔａ㊁Ｂｅａｓｕｒｅｇａｒｄ和Ｐ４０３个品种的甘薯叶片中鉴定出１４种花青素ꎬ其中包括一种新的花青素:芍药素３￣咖啡酰￣ｐ￣香豆素￣５￣葡萄糖苷ꎮ１.６㊀其他甘薯茎叶组织中还存在激活剂㊁抑制剂㊁凝集素和挥发性物质ꎬ如:胰蛋白酶抑制剂和激活剂㊁胰凝乳蛋白酶抑制剂㊁甘薯凝集素㊁棕榈酸和亚麻油酸[３６￣３９]ꎮ２㊀保健功效２.１㊀抗氧化具有抗氧化活性是作为保健食品的要求之一ꎬ研究发现甘薯茎叶抗氧化能力与其体内丰富的咖啡酰奎尼酸衍生物㊁黄芪素和矢车菊素类化合物具有相关性ꎬ其中与咖啡酰奎尼酸衍生物的相关性最高[４０￣４２]ꎮＸｕ等[４３]对抗氧化能力较强的菜用甘薯品种莆薯５３与其体内富含的生物活性物质进行相关性分析ꎬ结果表明ꎬ影响抗氧化能力的生物活性化合物主要包括５￣ＣＱＡ㊁３ꎬ４￣ｄｉＣＱＡ㊁３ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ和４ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ等咖啡酰奎尼酸衍生物ꎮ甘薯茎叶中多糖含量也是影响抗氧化能力的物质之一ꎬ杨汝凭[４４]研究发现甘薯茎叶多糖组分与黄酮均具有较高的抗氧化活性ꎬ可作为潜在的天然抗氧化剂ꎮ此外ꎬ甘薯茎叶抗氧化活性的研究主要集中在水溶性抗氧化剂的抗氧化能力上ꎬ有关脂溶性物质的抗氧化特性的研究却一直被忽视ꎮ顾东东[４５]发现甘薯茎尖脂溶性提取物的ＡＢＴＳ 清除率在品种间存在显著差异ꎬ且与β￣胡萝卜素含量呈正相关ꎬ品种渝苏１６２的ＡＢＴＳ 清除率最高ꎬ达到８５ ７８％ꎮ２.２㊀抑菌抗炎病菌入侵会使机体产生炎症反应ꎬ影响受体的正常代谢ꎬ生物活性成分能够产生抗菌作用ꎬ消除炎症ꎬ维持机体的正常代谢[４６]ꎮ王世宽等[４７]研究发现甘薯叶绿原酸对植物乳杆菌㊁汉逊酵母㊁葡萄球４０７１江苏农业学报㊀２０２２年第３８卷第６期菌㊁金黄色葡萄球菌㊁大肠杆菌均有抑制作用ꎬ并且对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌有高度抑制作用ꎮ延永等[４８]的研究结果表明ꎬ甘薯叶黄酮类提取物对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的抑菌率分别最高可达１０８ ６６％㊁１１５ ８９％ꎬ最小抑菌浓度分别为５ ０２ｍｇ/ｍｌ㊁１０ ０５ｍｇ/ｍｌꎮ紫甘薯的叶片提取物能够增加ｃｌｅａｖｅｄ钙蛋白酶Ｉ和聚腺苷二磷酸核糖聚合酶(ＰＡＲＰ)的表达并诱导分化的小鼠前脂肪(３Ｔ３￣Ｌ１)细胞的炎症基因表达下调ꎬ通过抑制一氧化氮(ＮＯ)㊁一氧化氮合酶(ＮＯＳ)㊁环氧合酶(ＣＯＸ)和肿瘤坏死因子￣α(ＴＮＦα)等促炎介质的过度产生ꎬ减弱脂多糖刺激的ＢＶ￣２小胶质细胞的神经炎症反应[４９￣５０]ꎮＣｈａｏ等[５１]研究发现紫甘薯的叶片提取物及其成分(花青素和槲皮素)通过调节核因子κＢ(ＮＦκＢ)和丝裂原活化蛋白激酶(ＭＡＰＫ)信号通路从而对人主动脉内皮细胞(ＨＡＥＣｓ)炎症产生抵抗作用ꎮ２.３㊀抗肿瘤Ｋａｒｎａ等[５２]的研究结果表明ꎬ甘薯品种Ｗｈａｔ￣ｌｅｙ/Ｌｏｒｅｔａｎ(ＴＵ￣１５５)的绿叶提取物在半抑制浓度(ＩＣ５０)值为１４５~３１５μｇ/ｍｌ时ꎬ通过调节细胞周期㊁诱导细胞凋亡和降低克隆生存能力ꎬ从而抑制所有前列腺癌(ＰＲＡＤ)细胞的增殖ꎮＧｕｎｄａｌａ等[５３]研究发现甘薯Ｗｈａｔｌｅｙ/Ｌｏｒｅｔａｎ(ＴＵ￣１５５)茎叶提取物能够显著抑制并诱导ＰＲＡＤ细胞凋亡的生物活性成分包括３ꎬ４￣ｄｉＣＱＡ㊁３ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ㊁４ꎬ５￣ｄｉＣＱＡ和异绿原酸等ꎮ罗丽萍等[５４]分析徐薯１８薯蔓黄酮提取物对于瘤株和Ｓ１８０荷瘤小鼠的抑瘤作用ꎬ结果表明:黄酮提取物在最佳浓度条件下ꎬ高度抑制人早幼粒白血病细胞(ＨＬ￣６０Ｃｅｌｌ)㊁人低分化胃腺癌细胞(ＢＧＣ￣８２３)㊁人肝癌细胞(ＳＭＭＣ￣７７２１)和人肺癌细胞(Ａ５４９)ꎬ甘薯薯蔓黄酮对Ｓ１８０肿瘤生长也有明显的抑制作用ꎮＮａｋａｃｈｉ等[５５]研究结果表明日本Ｏｋｉ￣ｎａｗａｎ甘薯叶片提取物有可能防止小鼠结肠致癌模型中肿瘤的发生和发展ꎮ２.４㊀降血糖和血脂甘薯茎叶中所富含的黄酮㊁花青素㊁咖啡酸衍生物等化合物可能是抗糖尿病作用的重要成分[５６]ꎮＬｕｏ等[５７]研究发现患２型糖尿病(Ｔ２ＤＭ)小鼠口服甘薯ＳｉｍｏｎＮｏ.１叶片提取物后体质量下降速度和空腹血糖(ＦＢＧ)值降低ꎬ空腹血清胰岛素(ＦＩＮＳ)含量水平升高ꎬ胰岛素抵抗㊁肝糖原和肌糖原都得到改善ꎮＡｌｍｏｒａｉｅ[５８]用甘薯叶提取物治疗链脲佐菌素(ＳＴＺ)所导致的大鼠糖尿病ꎬ经治疗后患病大鼠血糖(ＢＧ)值㊁丙二醛(ＭＤＡ)和抗炎细胞因子(ＩＬ￣１β和ＴＮＦ￣α)活性显著降低ꎬ胰岛素(ＩＮＳ)含量㊁谷胱甘肽(ＧＳＨ)和超氧化物歧化酶(ＳＯＤ)活性显著升高ꎬ胰腺细胞结构也有明显改善ꎮＩｓｈｉｉ等[５９]研究甘薯Ｃｈｕｒａｋｏｉ的叶片提取物对人骨髓间充质干细胞(ＭＳＣ)脂肪生成分化的影响ꎬ结果表明ꎬ紫甘薯叶提取物能够抑制未分化的ＭＳＣ向脂肪细胞系的分化ꎬ并抑制前脂肪细胞向成熟脂肪细胞的最终分化ꎮ甘薯叶提取物还可以逆转血脂异常ꎬ降低总胆固醇(ＴＣ)㊁甘油三酯(ＴＧ)㊁低密度脂蛋白胆固醇(ＬＤＬ)含量ꎬ增加高密度脂蛋白胆固醇(ＨＤＬ)含量[１６ꎬ６０]ꎮ２.５㊀其他Ｋｕｓｕｍａ等[６１]的研究结果表明ꎬ甘薯叶提取物可以帮助母乳喂养的母亲增加母乳产量和催乳素水平ꎮ杨敏等[６２]的研究结果表明ꎬ甘薯叶总黄酮对脑缺血模型小鼠的功能具有一定的维持作用ꎬ能够显著提高模型小鼠脑组织中ＳＯＤ的活性ꎬ降低ＭＤＡ的含量ꎬ减轻在急性脑缺血和脑缺氧的情况下造成的脑组织水肿ꎮＩｓｈｉｇｕｒｏ等[６３]分析口服日本甘薯品种すいおう茎尖可以对高血压大鼠起到降压作用的一部分原因是ＣＱＡ对血管紧张素转化酶(ＡＣＥ)的高度抑制ꎮ陈彤等[６４]研究发现龙薯２４号叶片提取物对ＣＣ１４诱导的肝损伤小鼠的肝脏组织具有明显保护作用ꎬ在一定程度上增强了肝脏的抗氧化活性ꎬ缩小病灶面积ꎬ缓解细胞肿胀ꎬ减轻肝脏组织的病理损伤程度ꎮ３㊀甘薯茎叶的生物活性成分的体内外作用及相关性㊀㊀目前已经有大量研究结果证明ꎬ甘薯茎叶的生物活性成分具有多种保健功能ꎬ但有关甘薯茎叶生物活性成分体内㊁体外作用及相关性的研究却少见报道ꎮＫａｒｎａ等[５２]研究结果ꎬ表明甘薯叶片提取物对前列腺癌ＰＣ￣３细胞(体外)以及前列腺肿瘤模型小鼠(体内)均有良好的抗癌活性ꎬ能够扰乱细胞周期进程ꎬ降低克隆形成存活率ꎬ调节细胞周期和细胞凋亡调节分子诱导细胞凋亡ꎮＮａｇａｉ等[６５]研究结果表明ꎬ甘薯Ｓｕｉｏｈ叶片提取物在体外和体内都可以延长低密度脂蛋白(ＬＤＬ)氧化滞后时间ꎮＳｕｎ等[６６]研究了徐紫薯８号叶片提取物对高尿酸血症肾损伤５０７１毕洪娟等:甘薯茎叶生物活性成分及其保健功效研究进展及相关炎症的体内外改善作用ꎬ结果表明:在体外ꎬ叶片提取物能够抑制单钠尿酸盐诱导的促炎细胞因子(ＩＬ￣１β㊁ＩＬ￣６和ＴＮＦ￣α)的活性ꎻ在体内ꎬ叶片提取物显著降低高尿酸血症小鼠的尿酸㊁血清肌酐和尿素氮的含量ꎬ干扰肝脏中黄嘌呤氧化酶(ＸＯＤ)和腺苷脱氨酶(ＡＤＡ)的活性ꎬ保护肾脏组织ꎮ然而ꎬＣｈｅｎ等[６７]研究发现甘薯叶提取物对人脐血管内皮细胞(体外)与受试人血清(体内)血管生成的抑制效果的影响之间没有相关性ꎬ甘薯叶提取物在体外具有降低基质金属蛋白酶(ＭＭＰ)活性ꎬ抑制血管生成的作用ꎬ在体内却增加ＭＭＰ活性ꎬ促进血管的生成ꎬ这可能是由于甘薯叶提取物和受试人血清中叶代谢物之间化学成分的差异ꎮ４㊀存在问题及展望甘薯茎叶含有丰富的多糖㊁类胡萝卜素㊁绿原酸㊁黄酮和花青素等生物活性成分[６８]ꎬ能够在预防和辅助治疗癌症㊁高血糖㊁高血脂等多种疾病方面发挥重要作用ꎬ拥有广阔的市场前景ꎮ但不同甘薯品种茎叶富含的生物活性成分存在差异ꎬ其保健功效可能会因品种差异受到影响ꎮ此外ꎬ有关甘薯茎叶生物活性成分的研究多停留在体外活性或体内动物模型ꎬ且描述体内外作用及相关性的研究较少ꎮ考虑到品种间的差异性以及生物体的复杂性ꎬ应加强甘薯茎叶中具体生物活性成分的研究ꎬ同时建立能够描述体内和体外研究结果相关性的数学模型ꎬ充分了解甘薯茎叶生物活性成分在各种生理条件下相互作用的机制ꎬ这对于进一步研究甘薯茎叶提取物的保健功能至关重要ꎮ参考文献:[１]㊀曹清河ꎬ刘义峰ꎬ李㊀强ꎬ等.菜用甘薯国内外研究现状及展望[Ｊ].中国蔬菜ꎬ２００７(１０):４１￣４３.[２]㊀国㊀鸽ꎬ张靖杰ꎬ李鹏高.甘薯中主要生物活性成分研究进展[Ｊ].食品安全质量检测学报ꎬ２０１７ꎬ８(２):５３３￣５３８. [３]㊀王秋亚ꎬ薛㊀航.红薯叶有效成分的提取及开发应用研究进展[Ｊ].食品工业ꎬ２０１８ꎬ３９(７):２６０￣２６３.[４]㊀谢克英ꎬ杨庆莹ꎬ孙瑞琳ꎬ等.红薯叶的营养研究[Ｊ].河南农业ꎬ２０１５ꎬ７(１４):３７￣３８.[５]㊀赵㊀珊ꎬ冯俊彦ꎬ李㊀曦ꎬ等.不同甘薯品种茎叶中多糖含量的测定分析[Ｊ].山西农业科学ꎬ２０１８ꎬ４６(２):１８２￣１８６ꎬ２０６. [６]㊀张小贝ꎬ朱国鹏ꎬ祝志欣ꎬ等.利用３ꎬ５￣二硝基水杨酸法测定菜用甘薯叶中的多糖含量[Ｊ].热带生物学报ꎬ２０１７ꎬ８(３):３５９￣３６３ꎬ３７７.[７]㊀李松昂ꎬ吴章毅ꎬ陈㊀红ꎬ等.超声辅助酶法提取红薯叶多糖㊁结构及抗氧化研究[Ｊ].粮食与油脂ꎬ２０２１ꎬ３４(１１):８３￣８９ꎬ９３.[８]㊀石㊀晋.甘薯叶类胡萝卜素分析[Ｄ].大连:大连理工大学ꎬ２００８.[９]㊀ＷＡＮＧＳＮꎬＮＩＥＳＤꎬＺＨＵＦ.Ｃｈｅｍｉｃａｌｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓａｎｄｈｅａｌｔｈｅｆｆｅｃｔｓｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ[Ｊ].ＦｏｏｄＲｅｓｅａｒｃｈＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌꎬ２０１６ꎬ８９(１):９０￣１１６.[１０]ＰＨＡＨＬＡＮＥＣＪꎬＬＡＵＲＩＥＳＭꎬＳＨＯＫＯＴꎬｅｔａｌ.ＡｎｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｍｐｏｕｎｄｓꎬｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｓꎬａｎｄａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｉｎｌｅａｖｅｓｏｆＳｏｕｔｈＡｆｒｉｃａｎｃｕｌｔｉｖａｒｓꎬＰｅｒｕｖｉａｎ１９９０６２.１ａｎｄＵＳＡᶄｓＢｅａｕｒｅｇａｒｄ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＮｕｔｒｉｔｉｏｎꎬ２０２１ꎬ８.ｄｏｉ.ｏｒｇ/１０.３３８９/ｆｎｕｔ.２０２１.７７３５５０.[１１]ＩＳＬＡＭＭＳꎬＹＯＳＨＩＭＯＴＯＭꎬＹＡＨＡＲＡＳꎬｅｔａｌ.Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｆｏｌｉａｒｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｉｎｓｗｅｅｔｐｏ￣ｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ＆ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２００２ꎬ５０(１３):３７１８￣３７２２.[１２]ＬＩＵＹꎬＳＵＷＪꎬＷＡＮＧＬＪꎬｅｔａｌ.ＩｎｔｅｇｒａｔｅｄｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅꎬｓｍａｌｌＲＮＡａｎｄｄｅｇｒａｄｏｍｅｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇａｐｐｒｏａｃｈｅｓｐｒｏｆｆｅｒｉｎｓｉｇｈｔｓｉｎｔｏｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｉｎｌｅａｆｙｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ[Ｊ].ＰＬｏＳＯｎｅꎬ２０２１ꎬ１６(１):ｅ０２４５２６６.[１３]ＴＡＩＲＡＪꎬＯＨＭＩＮＥＷ.ＣｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓｏｆｃａｆｆｅｉｃａｃｉｄｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓｉｎＯｋｉｎａｗａｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｖｅｓａｎｄｔｈｅａｎ￣ｔｉ￣ＬＤＬｏｘｉｄａｔｉｏｎａｃｔｉｖｉｔｙ[Ｊ].ＮｉｐｐｏｎＳｈｏｋｕｈｉｎＫａｇａｋｕＫｏｇａｋｕＫａｉｓｈｉꎬ２０１１ꎬ５８(１):１６￣２０.[１４]ＺＨＥＮＧＷꎬＣＬＩＦＦＯＲＤＭＭＮ.Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇｔｈｅｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃａｃｉｄｓｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(Ｉｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓ)ｆｒｏｍＣｈｉｎａ[Ｊ].ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２００８ꎬ１０６(１):１４７￣１５２.[１５]ＫＲＯＣＨＭＡＬ￣ＭＡＲＣＺＡＫＢꎬＣＥＢＵＬＡＫＴꎬＫＡＰＵＳＴＡＩꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆｐｈｅｎｏｌｉｃａｃｉｄｓａｎｄｆｌａｖｏｎｏｌｓｉｎｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆｎｉｎｅｖａｒｉｅｔｉｅｓｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｅｓ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｄｅｐｅｎｄｉｎｇｏｎｔｈｅｉｒｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｇｒｏｗｎｉｎｃｅｎｔｒａｌＥｕｒｏｐｅ[Ｊ].Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓꎬ２０２０ꎬ２５(１５).ｄｏｉ.ｏｒｇ/１０.３３９０/ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ２５１５３４７３.[１６]ＬＵＯＤꎬＭＵＴＨꎬＳＵＮＨＮ.Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇｏｆｐｈｅｎｏｌｉｃａｃｉｄｓａｎｄｆｌａ￣ｖｏｎｏｉｄｓｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｖｅｓａｎｄｅｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｉｒａｎｔｉ￣ｏｘｉｄａｎｔａｎｄｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ[Ｊ].ＦｏｏｄＢｉｏｓｃｉ￣ｅｎｃｅꎬ２０２０ꎬ３９(４４):ｅ１００８０１.[１７]ＩＳＨＩＧＵＲＯＫꎬＹＡＨＡＲＡＳꎬＹＯＳＨＩＭＯＴＯＭ.Ｃｈａｎｇｅｓｉｎｐｏｌｙ￣ｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｒａｄｉｃａｌ￣ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇａｃｔｉｖｉｔｙｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｄｕｒｉｎｇｓｔｏｒａｇｅａｔｏｐｔｉｍａｌａｎｄｌｏｗｔｅｍｐｅｒａ￣ｔｕｒｅｓ[Ｊ].ＪＡｇｒｉｃＦｏｏｄＣｈｅｍꎬ２００７ꎬ５５(２６):１０７７３￣１０７７８. [１８]ＪＡＮＧＹꎬＫＯＨＥ.Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｃｏｎｔｅｎｔａｎｄａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｌｅａｖｅｓａｎｄｐｅｔｉｏｌｅｓｏｆｓｉｘｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ａｎｄａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆｂｌａｎｃｈｅｄｌｅａｖｅｓ[Ｊ].ＦｏｏｄＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ￣ｇｙꎬ２０１９ꎬ２８(２):３３７￣３４５.[１９]ＺＨＡＮＧＬꎬＴＵＺＣꎬＷＡＮＧＨꎬｅｔａｌ.ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｍｅｔｈｏｄｓｆｏｒｅｘｔｒａｃｔｉｎｇｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓｆｒｏｍＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓｌｅａｖｅｓꎬａｎｄｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓｂｙＨＰＬＣ￣ＱＴＯＥ￣ＭＳ２[Ｊ].ＦｏｏｄＲｅｓｅａｒｃｈＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌꎬ２０１５ꎬ７０:１０１￣１０９. [２０]ＳＡＮＴＩＡＧＯＳꎬＴＡＩＨＵＡＭꎬＨＯＮＧＮＡＮＳꎬｅｔａｌ.Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔａｃ￣６０７１江苏农业学报㊀２０２２年第３８卷第６期ｔｉｖｉｔｙꎬｎｕｔｒｉｔｉｏｎａｌꎬａｎｄｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓａｓａｆｆｅｃｔｅｄｂｙｈａｒｖｅｓｔｉｎｇｐｅｒｉｏｄ[Ｊ].ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＰｒｏｐｅｒｔｉｅｓꎬ２０２０ꎬ２３(１):１７８￣１８８.[２１]ＴＡＩＲＡＪꎬＵＥＨＡＲＡＭꎬＴＳＵＣＨＩＤＡＥꎬｅｔａｌ.Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎｏｆｔｈｅβ￣ｃａｔｅｎｉｎ/ＴｃｆｓｉｇｎａｌｉｎｇｂｙｃａｆｆｅｏｙｌｑｕｉｎｉｃａｃｉｄｓｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｆｔｈｒｏｕｇｈｄｏｗｎｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆｔｈｅＴｃｆ￣４ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ＆ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０１４ꎬ６２(１):１６７￣１７２. [２２]ＸＵＷＱꎬＬＩＵＬＸꎬＨＵＢꎬｅｔａｌ.ＴＰＣｉｎｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆ１１６ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｖａｒｉｅｔｉｅｓａｎｄＰｕｓｈｕ５３ｌｅａｆｅｘｔｒａｃｔｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＣｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｎｄＡｎａｌｙｓｉｓꎬ２０１０ꎬ２３(６):５９９￣６０４.[２３]ＹＯＳＨＩＭＯＴＯＭꎬＹＺＨＡＲＡＳꎬＯＫＵＮＯＳꎬｅｔａｌ.Ａｎｔｉｍｕｔａｇｅｎｉｃｉｔｙｏｆｍｏｎｏ￣ꎬｄｉ￣ꎬａｎｄｔｒｉｃａｆｆｅｏｙｌｑｕｉｎｉｃａｃｉｄｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｆ[Ｊ].ＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ￣ｏｇｙ＆Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２００２ꎬ６６(１１):２３３６￣２３４１.[２４]ＯＪＯＮＧＰＢꎬＮＪＩＴＩＶꎬＧＵＯＺＢꎬｅｔａｌ.Ｖａｒｉａｔｉｏｎｏｆｆｌａｖｏｎｏｉｄｃｏｎｔｅｎｔａｍｏｎｇｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏａｃｃｅｓｓｉｏｎｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆｔｈｅＡｍｅｒｉｃａｎＳｏｃｉｅｔｙｆｏｒＨｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅＡｍｅｒｉｃａｎＳｏｃｉｅｔｙｆｏｒＨｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅꎬ２００８ꎬ１３３(６):８１９￣８２４.[２５]邹耀洪.国产甘薯叶黄酮类成分研究[Ｊ].分析测试学报ꎬ１９９６ꎬ１５(１):７１￣７４.[２６]ＬＩＵＪꎬＭＵＴＨꎬＳＵＮＨＮꎬｅｔａｌ.Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎｏｆｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ￣ｍｉ￣ｃｒｏｗａｖｅｓｙｎｅｒｇｉｓｔｉｃｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｏｆｆｌａｖｏｎｏｉｄｓｆｒｏｍｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓｂｙｒｅｓｐｏｎｓｅｓｕｒｆａｃｅｍｅｔｈｏｄｏｌｏｇｙ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＰｒｏｃｅｓｓｉｎｇａｎｄＰｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎꎬ２０１９ꎬ４３(５):１￣１０.[２７]罗建光ꎬ孔令义.巴西甘薯叶黄酮类成分的研究[Ｊ].中国中药杂志ꎬ２００５ꎬ３０(７):５１６￣５１８.[２８]ＣＡＲＶＡＬＨＯＩＳꎬＣＡＶＡＣＯＴꎬＣＡＲＶＡＬＨＯＬＭꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｏｆｐｈｏｔｏｐｅｒｉｏｄｏｎｆｌａｖｏｎｏｉｄｐａｔｈｗａｙａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｖｅｓ[Ｊ].ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０１０ꎬ１１８(２):３８４￣３９０. [２９]ＨＵＡＮＧＺＬꎬＷＡＮＧＢＷꎬＥＡＶＥＳＤＨꎬｅｔａｌ.Ｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｍ￣ｐｏｕｎｄｐｒｏｆｉｌｅｏｆｓｅｌｅｃｔｅｄｖｅｇｅｔａｂｌｅｓｆｒｅｑｕｅｎｔｌｙｃｏｎｓｕｍｅｄｂｙＡｆｒｉ￣ｃａｎＡｍｅｒｉｃａｎｓｉｎｔｈｅｓｏｕｔｈｅａｓｔＵｎｉｔｅｄＳｔａｔｅｓ[Ｊ].ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２００７ꎬ１０３(４):１３９５￣１４０２.[３０]ＬＵＯＣＹꎬＷＡＮＧＸＸꎬＧＥＧꎬｅｔａｌ.Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｑｕａｎｔｉｆｉ￣ｃａｔｉｏｎｏｆｆｒｅｅꎬｃｏｎｊｕｇａｔｅａｎｄｔｏｔａｌｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｍｐｏｕｎｄｓｉｎｌｅａｖｅｓｏｆ２０ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｃｕｌｔｉｖａｒｓｂｙＨＰＬＣ￣ＤＡＤａｎｄＨＰＬＣ￣ＥＳＩ￣ＭＳ/ＭＳ[Ｊ].ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０１３ꎬ１４１(３):２６９７￣２７０６.[３１]ＴＩＡＮＱＧꎬＫＯＮＣＺＡＫＩꎬＳＣＨＷＡＲＴＺＳＪ.Ｐｒｏｂｉｎｇａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｐｒｏｆｉｌｅｓｉｎｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｃｅｌｌｌｉｎｅ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.ｃｖ.Ａｙａｍｕｒａｓａｋｉ)ｂｙｈｉｇｈ￣ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅｌｉｑｕｉｄｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙａｎｄｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙｉｏｎｉｚａｔｉｏｎｔａｎｄｅｍｍａｓｓｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ＆ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２００５ꎬ５３(１６):６５０３￣６５０９. [３２]ＩＳＬＡＭＭＳꎬＹＯＳＨＩＭＯＴＯＭꎬＴＥＲＡＨＡＲＡＮꎬｅｔａｌ.Ａｎｔｈｏｃｙａ￣ｎｉｎｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓ[Ｊ].ＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ￣ｏｇｙ＆Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０１４ꎬ６６(１１):２４８３￣２４８６.[３３]ＶＩＳＨＮＵＶＲꎬＲＥＮＪＩＴＨＲＳꎬＭＵＫＨＥＲＪＥＥＡꎬｅｔａｌ.Ｃｏｍｐａｒａ￣ｔｉｖｅｓｔｕｄｙｏｎｔｈｅｃｈｅｍｉｃａｌｓｔｒｕｃｔｕｒｅａｎｄｉｎｖｉｔｒｏａｎｔｉｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅａｃｔｉｖｉｔｙｏｆａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓｉｎｐｕｒｐｌｅｒｏｏｔｔｕｂｅｒｓａｎｄｌｅａｖｅｓｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(Ｉｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓ)[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌａｎｄＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０１９ꎬ６７(９):２４６７￣２４７５.[３４]ＬＩＧＬꎬＬＩＮＺＭꎬＺＨＡＮＧＨꎬｅｔａｌ.Ａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｉｎｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆｔｈｅｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｃｕｌｔｉ￣ｖａｒｓ[Ｊ].Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓꎬ２０１９ꎬ２４(２０).ｄｏｉ.ｏｒｇ/１０.３３９０/ｍｏｌｅ￣ｃｕｌｅｓ２４２０３７４３.[３５]ＳＵＸＹꎬＧＲＩＦＦＩＮＪꎬＸＵＪＷꎬｅｔａｌ.Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｑｕａｎｔｉｆｉ￣ｃａｔｉｏｎｏｆａｎｔｈｏｃｙａｎｉｎｓｉｎｐｕｒｐｌｅ￣ｆｌｅｓｈｅｄｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓ[Ｊ].Ｈｅｌｉｙｏｎꎬ２０１９ꎬ５(６):ｅ０１９６４.[３６]韩㊀英ꎬ向仁德.甘薯叶的挥发性化学成分的研究[Ｊ].天然产物研究与开发ꎬ１９９２ꎬ４(３):３９￣４１.[３７]ＷＡＮＧＨＹꎬＹＥＨＫＷ.Ｃｕｌｔｉｖａｒｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓｉｎｔｒｙｐｓｉｎｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙａｃｔｉｖｉｔｉｅｓｏｆｓｗｅｅｔ[Ｊ].Ｔａｉｗａｎｉａꎬ１９９６ꎬ４１(１):２７￣３４. [３８]王永徐.甘薯茎叶主要抗氧化功能成分的提取及其品种间差异研究[Ｄ].杭州:浙江农林大学ꎬ２０１９.[３９]余㊀萍ꎬ杨㊀帆ꎬ陈凤翔.从甘薯品种中筛选凝集素[Ｊ].福建师范大学学报ꎬ２００１ꎬ１７(４):７０￣７３ꎬ７８.[４０]ＭＡＫＯＲＩＳＩꎬＭＵＴＨꎬＳＵＮＨＮ.Ｔｏｔａｌｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｃｏｎｔｅｎｔꎬａｎ￣ｔｉｏｘｉｄａｎｔａｃｔｉｖｉｔｙꎬａｎｄｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｐｈｅｎｏｌｉｃｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｅｄｉｂｌｅｐａｒｔｓｏｆ４ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｃｕｌｔｉｖａｒｓ[Ｊ].ＮａｔｕｒａｌＰｒｏｄｕｃｔＣｏｍ￣ｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓꎬ２０２０ꎬ１５(７):１￣１２.[４１]ＸＩＬꎬＭＵＴＨꎬＳＵＮＨＮ.Ｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓｆｒｏｍｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｖｅｓｂｙＡＢ￣８ｍａｃｒｏ￣ｐｏｒｏｕｓｒｅｓｉｎｓ[Ｊ].ＦｏｏｄＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０１５ꎬ１７２:１６６￣１７４. [４２]ＪＥＮＧＴＬꎬＬＡＩＣＣꎬＬＩＡＯＴＣꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｒｙｉｎｇｏｎｃａｆ￣ｆｅｏｙｌｑｕｉｎｉｃａｃｉｄｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｃａｐａｃｉｔｙｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄ＆ＤｒｕｇＡｎａｌｙｓｉｓꎬ２０１５ꎬ２３(４):７０１￣７０８.[４３]ＸＵＷꎬＬＩＵＬＸꎬＨＵＢꎬｅｔａｌ.ＴＰＣｉｎｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆ１１６ｓｗｅｅｔｐｏ￣ｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｖａｒｉｅｔｉｅｓａｎｄＰｕｓｈｕ５３ｌｅａｆｅｘｔｒａｃｔｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＣｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｎｄＡｎａｌｙｓｉｓꎬ２０１０ꎬ２３(６):５９９￣６０４.[４４]杨汝凭.红薯茎叶中活性成分提取及抗氧化活性研究[Ｄ].长春:长春师范大学ꎬ２０２１.[４５]顾东东.甘薯茎尖色泽㊁脂溶性提取物抗氧化能力及其与β￣胡萝卜素含量的关系[Ｄ].重庆:西南大学ꎬ２０１６.[４６]邢㊀颖ꎬ薛文婧ꎬ徐怀德ꎬ等.薯类茎叶化学成分与生物活性研究进展[Ｊ].食品工业科技ꎬ２０２２ꎬ４３(７):４５７￣４６６. [４７]王世宽ꎬ谢仁有ꎬ洪玉程.甘薯叶绿原酸的抑菌作用及其复配型防腐剂对发酵香肠的影响[Ｊ].四川理工学院学报ꎬ２０１２ꎬ２５(４):２１￣２５.[４８]延㊀永ꎬ李玉萌ꎬ张亦琳ꎬ等.红薯叶总黄酮的提取工艺优化及其抑菌㊁抗氧化活性研究[Ｊ].广西林业科学ꎬ２０１８ꎬ４７(３):３１１￣３１５.[４９]ＫＡＮＧＨꎬＫＷＡＫＹꎬＫＯＰＰＵＬＡＳ.Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅｅｆｆｅｃｔｏｆｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.ꎬＣｏｎｖｏｌｖｕｌａｃｅａｅ)ｏｎｎｅｕｒｏｉｎ￣ｆｌａｍｍａｔｏｒｙｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ￣ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄｍｉｃｒｏｇｌｉａｌｃｅｌｌｓ[Ｊ].ＴｒｏｐｉｃａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＲｅｓｅａｒｃｈꎬ２０１４ꎬ１４(８):５５￣６１.[５０]ＬＥＥＳＬꎬＣＨＩＮＴＹꎬＴＵＳＣꎬｅｔａｌ.Ｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｆｅｘ￣ｔｒａｃｔｉｎｄｕｃｅｓａｐｏｐｔｏｓｉｓａｎｄｒｅｄｕｃｅｓｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙａｄｉｐｏｋｉｎｅｅｘｐｒｅｓ￣７０７１毕洪娟等:甘薯茎叶生物活性成分及其保健功效研究进展ｓｉｏｎｉｎ３Ｔ３￣Ｌ１ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｄａｄｉｐｏｃｙｔｅｓ[Ｊ].Ｅｖｉｄｅｎｃｅ￣ｂａｓｅｄＣｏｍ￣ｐｌｅｍｅｎｔａｒｙａｎｄＡｌｔｅｒｎａｔｉｖｅＭｅｄｉｃｉｎｅꎬ２０１５ꎬ２０１５(１２６３０２).ｄｏｉ.ｏｒｇ/１０.１１５５/２０１５/１２６３０２.[５１]ＣＨＡＯＰＹꎬＨＵＡＮＧＹＰꎬＨＳＩＥＨＷＢ.Ｉｎｈｉｂｉｔｉｖｅｅｆｆｅｃｔｏｆｐｕｒ￣ｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｆｅｘｔｒａｃｔａｎｄｉｔｓｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓｏｎｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎａｎｄｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙｒｅｓｐｏｎｓｅｉｎｈｕｍａｎａｏｒｔｉｃｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓ[Ｊ].ＣｅｌｌＡｄｈｅｓｉｏｎ＆Ｍｉｇｒａｔｉｏｎꎬ２０１３ꎬ７(２):２３７￣２４５.[５２]ＫＡＲＮＡＰꎬＧＵＮＤＡＬＡＳＲꎬＧＵＰＴＡＭＶꎬｅｔａｌ.Ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌ￣ｒｉｃｈｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｇｒｅｅｎｓｅｘｔｒａｃｔｉｎｈｉｂｉｔｓｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎａｎｄｉｎｄｕｃｅｓａｐｏｐ￣ｔｏｓｉｓｉｎｐｒｏｓｔａｔｅｃａｎｃｅｒｃｅｌｌｓｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏ[Ｊ].Ｃａｒｃｉｎｏｇｅｎｅ￣ｓｉｓꎬ２０１１ꎬ３２(１２):１８７２￣１８８０.[５３]ＧＵＮＤＡＬＡＳＲꎬＹＡＮＧＣＨꎬＬＡＫＳＨＭＩＮＡＲＡＹＡＮＡＮꎬｅｔａｌ.Ｐｏｌａｒｂｉｏｐｈｅｎｏｌｉｃｓｉｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｇｒｅｅｎｓｅｘｔｒａｃｔｓｙｎｅｒｇｉｚｅｔｏｉｎｈｉｂ￣ｉｔｐｒｏｓｔａｔｅｃａｎｃｅｒｃｅｌｌｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎａｎｄｉｎｖｉｖｏｔｕｍｏｒｇｒｏｗｔｈ[Ｊ].Ｃａｒｃｉｎｏｇｅｎｅｓｉｓꎬ２０１３(９):２０３９￣２０４９.[５４]罗丽萍ꎬ高荫榆ꎬ洪雪娥ꎬ等.甘薯叶柄藤类黄酮的抗肿瘤作用研究[Ｊ].食品科学ꎬ２００６(８):２４８￣２５０.[５５]ＮＡＫＡＣＨＩＳꎬＡＩＴꎬＴＡＫＡＭＡＴＳＵＲꎬｅｔａｌ.Ａｂｓｔｒａｃｔ８４０:ｔｈｅｍｏｄｉｆｙｉｎｇｅｆｆｅｃｔｓｏｆｔｈｅｅｘｔｒａｃｔｆｒｏｍＯｋｉｎａｗａｎｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓｉｎｍｏｕｓｅｃｏｌｏｎｃａｒｃｉｎｏｇｅｎｅｓｉｓ[Ｊ].ＣａｎｃｅｒＲｅｓｅａｒｃｈꎬ２０１６ꎬ７６(１４):８４０.[５６]ＬＥＥＣＬꎬＬＥＥＳＬꎬＣＨＥＮＣＪꎬｅｔａｌ.Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｓｅｃｏｎｄ￣ａｒｙｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓｆｒｏｍｐｕｒｐｌｅＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓｌｅａｖｅｓａｎｄｔｈｅｉｒｅｆｆｅｃｔｓｏｎｇｌｕｃｏｓｅｕｐｔａｋｅ[Ｊ].Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓꎬ２０１６ꎬ２１(６).ｄｏｉ.ｏｒｇ/１０.３３９０/ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ２１０６０７４５.[５７]ＬＵＯＤꎬＭＵＴＨꎬＳＵＮＨＮ.Ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(ＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｆｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓａｍｅｌｉｏｒａｔｅｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉａｉｎｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｅｓｍｅｌｌｉ￣ｔｕｓｍｉｃｅ[Ｊ].Ｆｏｏｄ＆Ｆｕｎｃｔｉｏｎꎬ２０２１ꎬ１２(９):４１１７￣４１３１. [５８]ＡＬＭＯＲＡＩＥＮＭ.ＴｈｅｒｏｌｅｏｆＩｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓｌｅａｖｅｓｅｘｔｒａｃｔｏｎｔｈｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｏｆｄｉａｂｅｔｅｓｉｎｄｕｃｅｄｂｙｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ[Ｊ].Ｐｈａｒｍａｃｏｐｈ￣ｏｒｅꎬ２０１９ꎬ１０(３):１４￣２０.[５９]ＩＳＨＩＩＭꎬＩＫＥＤＡＮꎬＭＩＹＡＴＡＨꎬｅｔａｌ.Ｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｆｅｘｔｒａｃｔｓｓｕｐｐｒｅｓｓａｄｉｐｏｇｅｎｉｃｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｂｏｎｅｍａｒｒｏｗ￣ｄｅｒｉｖｅｄｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０２２ꎬ４６(２):ｅ１４０５７.[６０]ＨＥＲＩＷＩＪＡＹＡＩＰＰＤꎬＪＡＷＩＭꎬＳＡＴＲＩＹＡＳＡＢＫ.Ｕｊｉｅｆｅｋｔｉｖｉ￣ｔａｓｅｋｓｔｒａｋａｉｒｄａｕｎｕｂｉｊａｌａｒｕｎｇｕ(Ｉｐｏｍｏｅａｂａｔａｔａｓ)ｔｅｒｈａｄａｐｐｒｏｆｉｌｌｉｐｉｄｔｉｋｕｓｐｕｔｉｈｊａｎｔａｎｇａｌｕｒｗｉｓｔａｒｙａｎｇｄｉｉｎｄｕｋｓｉｐａｋａｎｄｉｓｌｉｐｉｄｅｍｉａ[Ｊ].ＩｎｔｉｓａｒｉＳａｉｎｓＭｅｄｉｓꎬ２０２０ꎬ１１(２):４５２￣４５６. [６１]ＫＵＳＵＭＡＩＣꎬＳＥＴＩＡＮＩＯꎬＵＭＡＲＯＨＵꎬｅｔａｌ.Ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(Ｉｐ￣ｏｍｏｅａＢａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｆ:ｉｔｓｅｆｆｅｃｔｏｎｐｒｏｌａｃｔｉｎａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎｏｆｂｒｅａｓｔｍｉｌｋｉｎｐｏｓｔｐａｒｔｕｍｍｏｔｈｅｒｓ[Ｊ].ＢｅｌｉｔｕｎｇＮｕｒｓｉｎｇＪｏｕｒｎａｌꎬ２０１７ꎬ３(２):９５￣１０１.[６２]杨㊀敏ꎬ杨立轩ꎬ韦㊀妮ꎬ等.红薯叶总黄酮对小鼠脑缺血缺氧保护作用的研究[Ｊ].右江医学ꎬ２０１８ꎬ４６(６):６２８￣６３２. [６３]ＩＳＨＩＧＵＲＯＫꎬＹＯＳＨＩＭＯＴＯＭꎬＴＳＵＢＡＴＡＭꎬｅｔａｌ.Ｈｙｐｏｔｅｎｓｉｖｅｅｆｆｅｃｔｏｆｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｔｏｐｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆｔｈｅＪａｐａｎｅｓｅＳｏｃｉｅｔｙｆｏｒＦｏｏｄＳｃｉｅｎｃｅ＆Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ２００７ꎬ５４(１):４５￣４９.[６４]陈㊀彤ꎬ李丽洪ꎬ陈小河ꎬ等. 龙薯２４号 叶提取物对ＣＣｌ４肝损伤小鼠的保护作用[Ｊ].龙岩学院学报ꎬ２０１７ꎬ３５(２):１１５￣１２０.[６５]ＮＡＧＡＩＭꎬＴＡＮＩＭꎬＫＩＳＨＩＭＯＴＯＹꎬｅｔａｌ.Ｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏ(Ｉｐｏ￣ｍｏｅａｂａｔａｔａｓＬ.)ｌｅａｖｅｓｓｕｐｐｒｅｓｓｅｄｏｘｉｄａｔｉｏｎｏｆｌｏｗｄｅｎｓｉｔｙｌｉｐｏ￣ｐｒｏｔｅｉｎ(ＬＤＬ)ｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｈｕｍａｎｓｕｂｊｅｃｔｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｌｉｎ￣ｉｃａｌＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙａｎｄＮｕｔｒｉｔｉｏｎꎬ２０１１ꎬ４８(３):２０３￣２０８. [６６]ＳＵＮＲꎬＫＡＮＪꎬＣＡＩＨＨꎬｅｔａｌ.Ｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏａｍｅｌｉｏｒａｔｉｖｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓｆｒｏｍｐｕｒｐｌｅｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓｏｎｒｅｎａｌｉｎｊｕｒｙａｎｄａｓｓｏｃｉａｔｅｄｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎｉｎｄｕｃｅｄｂｙｈｙｐｅｒｕｒｉｃｅｍｉａ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＦｏｏｄＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ２０２２ꎬ４６(２):ｅ１４０４９.[６７]ＣＨＥＮＣＭꎬＬＩＳＣꎬＣＨＥＮＣＹＯꎬｅｔａｌ.Ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓｉｎｐｕｒｐｌｅｓｗｅｅｔｐｏｔａｔｏｌｅａｖｅｓｉｎｈｉｂｉｔｉｎｖｉｔｒｏａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓｗｉｔｈｏｐｐｏｓｉｔｅｅｆｆｅｃｔｓｅｘｖｉｖｏ[Ｊ].Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎꎬ２０１１ꎬ２７(１１/１２):１１７７￣１１８２. [６８]王永徐ꎬ邱天越ꎬ李㊀臣ꎬ等.甘薯叶黄酮的基因型差异及磷酸氢二钾乙醇双水相提取工艺的响应面优化[Ｊ].江苏农业科学ꎬ２０１９ꎬ４７(２３):２２７￣２３１.(责任编辑:张震林)８０７１江苏农业学报㊀２０２２年第３８卷第６期。
甘薯（红薯）茎尖菜用栽培技术
甘薯（红薯）茎尖菜用栽培技术1 茎尖菜用甘薯的特点1．1 营养价值高茎尖菜用甘薯具有茎叶生长快、再生能力强，抗病虫害，适应性强，耐肥水等特点。
茎尖茸毛少，食味清香，无普通甘薯品种的苦涩味，质地鲜嫩，口感嫩滑，熟化之后有较好的适口性。
甘薯茎尖富含蛋白质、胡萝卜素、食用纤维和丰富的维生素B1、B2、B6、VC、多酚及钙、铁、磷、镁、锌、硒等矿物质。
也有研究发现，甘薯叶中含有高浓度的维生素K1，并证实了具有较强的抗光分解能力，在临床实验具有非常重要的意义。
与块根相比，茎尖和叶片的蛋白质、膳食纤维、钙铁等含量要高出许多。
有报道称，其蛋白质含量是储藏根的2．7倍，膳食纤维含量、铁含量为储藏根的近3倍，茎尖的粗蛋白含量为干重的12．1%～25．1%，与猪牛肉相当。
据中国预防医学科学院检测，甘薯叶与菠菜、胡萝卜、芹菜、韭菜、南瓜、番茄等14种常用蔬菜相比较，在14种主要营养成分中，蛋白质、脂肪、碳水化合物、纤维素、胡萝卜素、维生素B1、B2、VC、钙、磷、铁、烟酸及热量等 13 项，薯叶均居首位，亚洲蔬菜研究中心已将其列为高营养蔬菜品种，具有非常广阔的发展前景。
甘薯的茎叶中含有丰富的黏液蛋白，具有提高机体免疫力，增强免疫功能、促进新陈代谢、延缓衰老的作用。
茎叶中丰富的多酚能清除体内有害的自由基，预防细胞癌变。
茎叶中含有丰富的叶绿素，经常食用能净化血液并帮助排毒。
茎叶中丰富的膳食纤维和果胶可促进肠胃蠕动，对改善便秘和肠癌有一定的作用。
另外，富含的钾、铁元素及VA、VC、VE，可增强和保护视力，稳定血压及预防高血压，降低人体内的胆固醇和血糖，预防心血管疾病的发生。
1．2 生长量大、生长期长甘薯为无性繁殖的作物，耐旱、耐湿性强，具有较强的再生能力，适应性广，容易栽培。
湖北省属于长江中下游薯区，平均气温较高，无霜期较长，温光资源丰富，年降雨量充沛，非常适合甘薯的生长。
若采用大棚种植，4～10月每7～10 d即可采摘一次，可采收薯叶75 000 kg／hm2，既能在夏季补充淡季的叶菜供应，又能增加市场的蔬菜种类。
红薯茎叶功能性成分分析及其饮料的研制
红薯茎叶功能性成分分析及其饮料的研制红薯茎叶是红薯作物生产中的主要副产品,是众多红薯主产省份大量生产的农副产品,资源丰富,年产红薯茎叶一亿吨以上,但目前一般多用作禽畜饲料或作为废弃物被抛弃,其经济价值得不到充分的体现。
红薯茎叶含有大量的有益化学成分,所含的生物活性成分黄酮类化合物具有免疫调节、抗癌、抗炎等功能,利用红薯茎叶浸提液加工功能性饮料,不仅具有医疗保健作用,而且对于充分利用废弃资源、提高红薯茎叶经济价值,带动红薯产区经济发展,丰富饮料市场具有重要的经济价值和现实意义。
本研究以红薯茎叶为材料,对其功能性成分进行提取,对提取物中的黄酮类物质、固形物含量、抗氧化能力进行分析,研究黄酮类物质的生物活性,研制红薯茎叶功能性饮料。
以红薯茎叶为原料,选择水和95%的乙醇分别进行浸提,采用95%乙醇对红薯茎叶中总黄酮进行提取,提取率为0.83%;采用水对红薯茎叶中总黄酮进行提取,提取率为0.33%。
红薯茎叶提取物具有生物活性,考虑溶剂的来源途径以及实际生产成本和可操作性,最终确定采用水作为溶剂对红薯茎叶进行提取。
对饮料质量影响的单因素试验结果表明,白砂糖加量、柠檬酸加量以及浸提液用量对红薯茎叶饮料质量有影响。
随着白砂糖加量的增大,饮料评分总体呈增大趋势,而柠檬酸添加量的增加,饮料色泽由浅变深,酸度增加,透明度减小;随着浸提液用量的增大,饮料的颜色由黄褐色变成褐色,透明度降低,感官评分下降。
0.05%的β-环糊精可以掩盖红薯茎叶饮料的苦涩味;0.09%的枣香精可以有效地改善饮料的风味;添加0.06%的黄原胶可以提高饮料稳定性。
在单因素试验的基础上,对红薯茎叶提取物饮料配方进行优化,结果表明,提取液加量对饮料感官评分影响最大,白砂糖加量影响次之,β-环糊精加量影响较小。
饮料中浸提液加量为13.8 %、白砂糖加量为6%、β-环糊精加量为0.10%,柠檬酸0.078%、黄原胶0.06 %、麦芽酚0.002%、枣香精0.09%时,饮料的感官评定最高,为79分。
红薯叶的活性成分研究进展
2.多糖
多糖又称多聚糖( Polysaccharide) ，是由醛糖或酮糖通过甙 键聚合在一起的一类天然大分子化合物广泛存在于植物、动物 和微生物中并含有多重生物活性。 杨岩涛等通单因素和正交试验优选出红薯叶中粗多糖最佳提 取条件，采用600W 微波辅助提取在料液比1:40 提取20min 的 条件下，红薯叶中多糖的得率可达9. 51%。研究实验结果显示， 红薯叶多糖为吡喃型多糖，并由木糖、甘露糖、葡萄糖等单糖 所组成.
2.红薯叶保健饮料 2.1 工艺流程 原料选择-清洗-切碎-煮汁-调配-灌装-杀菌-包装-成品 2.2加工要点 2.2.1原料选择、清洗：同红薯叶软罐头 2.2.2切碎、煮汁：先将净叶切碎投入夹层锅中，加入浸没，煮沸 10min，煮1小时左右，；滤出汁液。 2.2.3 调配 2.2.4灌装：采用易控罐，料液温度85左右，搅拌均匀，及时灌装。 2.2.5 杀菌、包装
3.红薯叶浓缩蛋白
3.1 工艺流程 原料选择-清洗-切碎-打浆-沉淀-脱水-烘干-粉碎-成品 3.2加工要点 3.2.1原料选择 选择品质优良、成熟适度的鲜嫩红薯叶，剔除老叶、黄叶、虫 蛀叶等。 3.2.2清洗、打浆 用清水洗去红薯叶表面的泥土、尘砂等污物，沥干水分，然后 将其切碎放入果汁机中，以揉压的方式压榨挤出液汁。 3.2.3凝聚沉淀及脱水 将汁液加碱调节PH值在8.5左右，同时用蒸汽加热至85-95，以 使蛋白质充分凝聚沉淀，然后用离心机进行脱水得浓缩叶蛋白。 3.2.4 烘干、粉碎 粉碎后过80目筛，即可作为糕点等食品的添加剂
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三、红薯叶的产品开发
目前红薯叶的产品开发已有不少研究报道，已被开发出多种产 品，下面对其产品发展现状做一下阐述，为以后开发红薯叶新 产品提供理论依据。 1.红薯叶软罐头 1.1工艺流程 原料-清洗-护色-腌制-脱盐-压榨-脱水-拌料-调味-装袋-封口-杀 菌-冷却-检验。 1.2加工要点 1.2.1 原料选择：选择翠能碧绿、无污染、无腐烂、无病虫的红薯 叶，去黄叶、杂草和泥土。 1.2.2 清洗、护色，用流动清水将红薯叶充分洗净、沥干。 1.2.3腌制;用原料量15%-18%的食盐，0.1%氯化钙和0.1%抗坏血
甘薯茎叶深加工技术
甘薯茎叶深加工技术甘薯茎叶是不可多得的保健食品，通过深加工可使之得到增值利用。
现将几种深加工方法介绍如下：一、速冻甘薯茎叶：将新鲜甘薯茎叶通过清洗、烫漂、速浆等加工处理，较大程度地保持了新鲜甘薯茎叶原有的色泽风味和维生素，可作长期保存，食用方便，是不可多得的天然绿色保健食品。
其工艺操作要点如下：1.选料清洗：选择品种优良、成熟适度的鲜嫩甘薯茎叶进行采收。
采收时剔除老叶、黄叶、虫蛀叶、蜘蛛网叶和腐烂斑伤叶，不浸水、不捆扎，用专用塑料篮散装并及时运输加工。
加工前用清水洗去甘薯叶上附着的泥土、尘沙等污物，沥干水分。
2.烫漂速冻：将沥干水分的甘薯茎叶用塑料吊篮迅速放入盛有沸水的容器内，烫漂5―10秒，要把握适度，达到半熟程度，以杀青灭酶；捞出后立即送预冷间，用冷水使其温度下降至10℃左右。
采用平面网带式速冻机，迅速冻结预冷后的甘薯茎叶，冻结器平均温度为-32℃，冻品进货平均温度为15℃，出货温度为-18℃。
3.包装冷贮：一边速冻，一边用食品塑料袋进行定量包装（一般分0.5kg、1kg两种包装），然后放入20kg计量的防水包装纸箱内，捆扎后贮于-18℃以下的冷库内。
二、干制甘薯茎叶：将成熟适度的鲜嫩甘薯茎叶采收、清洗后，用沸水烫漂至半熟程度，然后晒干，再用塑料袋定量密封，精制包装即可。
三、甘薯茎叶保健饮料：抽提新鲜甘薯茎叶的汁液，加以科学配制，可制成清香爽口的集食疗、食补于一体的饮料。
其操作要点：1.选料清洗：方法同上。
2.煮汁调配：将沥干水分的甘薯茎叶放置在夹层锅中，加水浸没，煮沸10分钟，保持65―70℃煮1小时左右，滤出汁液，滤渣再加水在微沸状态或95℃条件下加热30分钟，滤出汁液，二次混合即得浅黄绿色澄清液。
调配时按100kg 水加30%甘薯茎叶液汁、6%蔗糖、0.03%糖蜜素、柠檬酸适量，调ph值3.8―5.2，0.2%蜂蜜、异维生素c钠适量、乙基麦芽粉适量、0.1%羟甲基维生素钠。
3.灌装杀菌：在料液温度85℃时搅拌均匀，及时装入易拉罐。
甘薯茎叶的加工利用
汇报人：日期:contents•甘薯茎叶概述•甘薯茎叶的加工技术目录•甘薯茎叶在食品工业的应用•甘薯茎叶在其他领域的应用•甘薯茎叶加工利用的前景与挑战甘薯茎叶概述甘薯茎叶富含膳食纤维，有助于改善肠道健康。
高纤维甘薯茎叶含有丰富的抗氧化物质，如维生素C、β-胡萝卜素和花青素等，有助于抵抗自由基损害，预防慢性疾病。
抗氧化物质甘薯茎叶中含有多种微量元素，如钾、铁、钙和磷等，对维持人体正常生理功能具有重要作用。
微量元素甘薯茎叶的营养价值繁殖方式甘薯茎叶可通过扦插、种子繁殖等多种方式进行繁殖，繁殖系数较高。
生长环境甘薯茎叶生长迅速，适应性强，对土壤和气候要求不高，易于栽培和管理。
病虫害防治甘薯茎叶常见病虫害包括病毒病、细菌病和真菌病等，需采取综合防治措施，如选用抗病品种、生物防治等。
甘薯茎叶的生物学特性甘薯茎叶产量较高，通常与甘薯块根产量配套产出，以满足市场需求。
产量分布应用领域甘薯茎叶在全球范围内均有分布，主要生产国包括中国、巴西、印度和美国等。
甘薯茎叶在食品加工、饲料、肥料和生物质能源等领域具有广泛的应用价值。
030201甘薯茎叶的产量与分布甘薯茎叶的加工技术通过热风炉产生的热风，将甘薯茎叶置于干燥机内，经过一定时间的干燥后，水分被蒸发，得到干燥的甘薯茎叶。
原理热风干燥技术成本低、易于操作，但干燥过程中易受污染，干燥后的产品色泽较差。
特点热风干燥技术将甘薯茎叶在低温下快速冻结，然后在真空条件下进行干燥，使水分直接从固态升华为气态，达到干燥效果。
真空冷冻干燥技术可以较好地保留甘薯茎叶的营养成分和天然色泽，产品复水性好，但成本较高。
真空冷冻干燥技术特点原理微波干燥技术利用微波的穿透性，将甘薯茎叶置于微波干燥机内，通过调节微波功率和时间，使甘薯茎叶中的水分被迅速加热并转化为蒸汽排出。
特点微波干燥技术具有干燥速度快、节能环保、易于控制等特点，但设备成本较高。
原理通过将甘薯茎叶置于高压容器内，施加数百至数千个大气压的压力，杀灭微生物和寄生虫，同时保留营养成分和天然色泽。