实验三葡聚糖凝胶柱层析

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葡聚糖层析实验报告

葡聚糖层析实验报告

一、实验目的1. 掌握葡聚糖凝胶层析的原理及其在生物大分子分离中的应用。

2. 学习并掌握葡聚糖凝胶层析的基本操作技术。

3. 通过实验,验证葡聚糖凝胶层析对分子量不同的物质具有分离效果。

二、实验原理凝胶层析,又称分子排阻层析或凝胶过滤,是一种基于被分离物质分子量差异的层析分离技术。

该技术利用凝胶颗粒的多孔网状结构,通过分子量差异使不同组分在层析柱中以不同的速度移动,从而达到分离的目的。

葡聚糖凝胶是一种由直链的葡聚糖分子和交联剂3-氯1,2-环氧丙烷交联而成的高分子化合物。

通过调节葡聚糖和交联剂的比例,可以控制凝胶颗粒的孔径大小。

分子量大于允许进入凝胶网孔范围的物质被凝胶排阻,不能进入凝胶颗粒内部,阻滞作用小,随溶剂流动快速流出层析柱;而分子量小的物质可进入凝胶颗粒的网孔内,阻滞作用大,流程慢,后流出层析柱。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:- 葡聚糖凝胶(Sephadex)- 标准蛋白质溶液(如牛血清白蛋白、鸡蛋清蛋白等)- 溶剂(如磷酸盐缓冲溶液)- 离心机- 层析柱- 漏斗- 吸管2. 实验仪器:- 电子天平- 移液器- 显微镜四、实验步骤1. 准备层析柱:将葡聚糖凝胶倒入层析柱中,用溶剂冲洗,直至凝胶床均匀。

2. 加载样品:将标准蛋白质溶液加入层析柱中,使其在凝胶床表面形成一薄层。

3. 洗脱:用溶剂缓慢冲洗层析柱,收集不同时间流出的洗脱液。

4. 分析洗脱液:将收集到的洗脱液进行比色分析或电泳分析,确定各组分的位置。

五、实验结果与分析1. 实验结果:- 洗脱液在比色分析或电泳分析中,可观察到不同分子量的蛋白质分别在凝胶层析柱中的位置。

- 小分子量的蛋白质先流出层析柱,大分子量的蛋白质后流出。

2. 结果分析:- 通过实验,验证了葡聚糖凝胶层析对分子量不同的物质具有分离效果。

- 实验结果表明,小分子量的蛋白质在凝胶层析柱中的流动速度较快,大分子量的蛋白质流动速度较慢。

六、实验结论1. 葡聚糖凝胶层析是一种基于分子量差异的层析分离技术,在生物大分子分离中具有广泛的应用。

凝胶层析_实验报告

凝胶层析_实验报告

一、实验目的1. 了解凝胶层析的原理和操作方法。

2. 掌握凝胶层析分离混合物中不同组分的基本技能。

3. 分析实验结果,验证实验原理。

二、实验原理凝胶层析是一种基于分子筛效应的分离技术。

该技术利用凝胶的孔隙结构,使不同分子量的物质在凝胶柱中受到不同的阻滞作用,从而实现分离。

凝胶是一种具有多孔、网状结构的分子筛,分子量不同的物质通过凝胶柱的速度也不同。

在凝胶层析实验中,样品被注入凝胶柱,随着洗脱液的流动,不同分子量的物质会以不同的速度通过凝胶柱,从而实现分离。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:混合样品、葡聚糖凝胶、洗脱液(如蒸馏水、乙醇等)。

2. 实验仪器:凝胶层析柱、注射器、恒流泵、收集器、滤纸、烧杯等。

四、实验步骤1. 准备凝胶层析柱:将葡聚糖凝胶倒入层析柱,轻轻敲打柱底,使凝胶均匀分布。

2. 洗脱液平衡:将凝胶层析柱放入盛有洗脱液的烧杯中,使凝胶充分浸泡。

3. 样品制备:将混合样品与洗脱液按一定比例混合,制成样品溶液。

4. 注射样品:将样品溶液注入凝胶层析柱。

5. 收集分离组分:随着洗脱液的流动,不同分子量的物质会以不同的速度通过凝胶柱。

将收集器放置在凝胶柱下方,收集分离组分。

6. 分析实验结果:观察收集到的组分,分析实验结果。

五、实验结果与分析1. 分离效果:通过凝胶层析实验,成功分离出混合样品中的不同组分。

2. 分组情况:根据收集到的组分,分析其分子量大小,确定分离效果。

3. 实验原理验证:实验结果表明,凝胶层析能够有效分离混合物中的不同组分,验证了实验原理。

六、实验讨论1. 凝胶层析的原理:凝胶层析的原理是基于分子筛效应,通过凝胶的孔隙结构,使不同分子量的物质在凝胶柱中受到不同的阻滞作用,从而实现分离。

2. 影响分离效果的因素:实验过程中,洗脱液的种类、流速、凝胶的孔径等因素会影响分离效果。

在实验中,应严格控制这些因素,以确保分离效果。

3. 实验结果分析:通过分析实验结果,可以了解不同组分在混合样品中的含量和分子量大小,为后续研究提供数据支持。

葡聚糖凝胶层析实验报告

葡聚糖凝胶层析实验报告

葡聚糖凝胶层析实验报告一、实验目的1、学习凝胶(Gel)层析法的基本原理;2、掌握葡聚糖凝胶(Sephadex)柱层析的操作技术。

二、实验原理凝胶层析又称排阻层析,凝胶过滤,渗透层析或分子筛层析等。

对于某种型号的凝胶,一些大分子不能进入凝胶颗粒内部而完全被排阻在外,只能沿着颗粒间的缝隙流出柱外(所用洗脱液的体积为外水体积);而一些小分子不被排阻,可自由扩散,渗透进入凝胶内部的筛孔,尔后又被流出的洗脱液带走(所用洗脱液的体积为内水体积)。

分子越小,进入凝胶内部越深,所走的路程越多,故小分子最后流出柱外,而大分子先从柱中流出。

一些中等大小的分子介于大分子与小分子之间,只能进入一部分凝胶较大的孔隙,亦即部分排阻,因此这些分子从柱中流出的顺序也介于大、小分子之间。

这样样品经过凝胶层析后,分子便按照从大到小的顺序依次流出,达到分离的目的。

三、仪器、材料和试剂1、仪器:内直径为1cm,外直径为1.5cm的层析柱,恒流泵、收集器、酶标仪、试管、烧杯、移液枪。

2、材料与试剂:交联葡聚糖、双蒸水、蛋白溶液样品。

四、实验步骤1、装柱将交联葡聚糖溶液用玻璃棒引流导入层析柱中,要注意,不能让柱子中有气泡,可以边装边用玻璃棒搅拌。

2、上样装好柱后,用移液枪将柱子中上面的水吸出,再用移液枪将1ml 的蛋白溶液加入层析柱中。

3、洗脱和收集打开恒流泵和收集器装置,待样品刚好渗入到凝胶中时,再向层析柱中加入3-4ml的蒸馏水,此时盖上层析柱的上盖,将上盖的细管插入到盛有双蒸水的烧杯中,调节恒流泵的速度和收集器时间,开始洗脱收集。

4、样品的检测收集一段时间后,将样品取出,依次编号,依次加入200μl到酶标版上,选用一个孔加入双蒸水作为对照,用酶标仪在280nm下测检测。

五、实验结果及分析1、实验结果:序号 2 4 6 8 10 12 14吸光0.051 0.045 0.051 0.071 0.195 0.127 0.067 度A序号16 8吸光0.055 0.039 0.066 0.027 0.053 0.049 0.011度A2、蛋白质样品洗脱曲线:收集样品时设置的时间为3min每管,收集得到每管的体积为1.4ml,则计算:流速=每管体积/每管时间=1.4/3=0.47ml/min。

实验三葡聚糖凝胶柱层析纯化蛋白质课件

实验三葡聚糖凝胶柱层析纯化蛋白质课件

实验三葡聚糖凝胶柱 层析纯化蛋白质课件
目录
• 实验原理 • 实验材料与设备 • 实验步骤 • 结果分析与讨论 • 注意事项与安全
01
实验原理
葡聚糖凝胶柱层析的原理
葡聚糖凝胶是一种具有三维网络结构的凝胶,具有良好的机 械强度和化学稳定性。它可以通过改变凝胶孔径的大小来分 离不同大小的分子。
当混合物溶液通过葡聚糖凝胶柱时,分子量较小的物质可以 进入凝胶孔内,而分子量较大的物质则被排阻在外。随着流 动相的流动,分子量小的物质逐渐被冲出凝胶柱,而分子量 大的物质则被滞留在凝胶柱内或缓慢流出。
结果的讨论与优化
结果讨论
根据实验结果,讨论凝胶柱层析纯化蛋白质的效果,分析可能影响分离效果和蛋 白质纯度的因素,如凝胶柱的填装、洗脱液的组成和洗脱速度等。
结果优化
根据结果讨论,提出优化实验条件的建议,如改变凝胶柱的填装方式、调整洗脱 液的组成或改变洗脱速度等,以提高蛋白质的分离效果和纯度。
05
注意事项与安全
分离度的计算
分离度是相邻两个峰之间的距离与峰宽的比值,可以通过测量洗脱液中 蛋白质的浓度变化来计算。
03
回收率的计算
回收率是纯化后蛋白质的质量与纯化前蛋白质的质量的比值,可以通过
称重法或紫外吸收法来测量。
蛋白质纯度的检测
检测方法:蛋白质纯度的检测方法包 括电泳法、质谱法、免疫学检测法和 光谱分析法等。电泳法是最常用的方 法之一,可以通过观察电泳图谱来判 断蛋白质的纯度。
电泳图谱的分析:电泳图谱中,单一 的、清晰的条带表明蛋白质纯度较高 ;而模糊的、多条带则表明蛋白质中 含有杂质。
纯度标准:蛋白质纯度标准通常由国 际蛋白质协会制定,分为一级、二级 和三级纯度标准。一级纯度标准要求 蛋白质中仅含有一种单体蛋白质,不 含有其他杂质;二级纯度标准要求蛋 白质中主要含有一种单体蛋白质,其 他杂质含量不得超过5%;三级纯度标 准要求蛋白质中主要含有一种单体蛋 白质,其他杂质含量不得超过10%。

葡聚糖凝胶层析

葡聚糖凝胶层析
反筛效应, 反筛效应, 大分子在前, 大分子在前, 小分子在后. 小分子在后.
凝胶类型:葡聚糖凝胶(Sephadex)和琼 脂糖凝胶(Sepharose). 葡聚糖凝胶:直链的葡聚糖分子和交联剂 3—氯1,2—环氧丙烷交联而成.
葡聚糖凝胶G—25作为固定相载体,来分离 蓝色葡聚糖—2000和溴酚蓝.蓝色葡聚 糖—2000分子量接近2×106, 而溴酚蓝分 子量为670,二者分子量相差较大,前者完 全排阻,而后者则可完全进入凝胶颗粒网 孔内,二者通过层析柱的时间不同而分开.
3.加样品:打开螺旋夹使柱面上的洗脱液流出, 直至床面与液面刚好平齐为止,关闭下端出口. 取溴酚蓝及蓝色葡聚糖—2000混合液0.3毫升,小 心地加于凝胶表面上,切勿搅动层析柱床表面. 打开下端出口,使样品溶液进入凝胶内,并开始 收集流出液.当样品溶液恰好流至与凝胶表面平 齐时,关闭下端出口.用少量洗脱液清洗层析柱 加样区,共洗涤三次,每次清洗液应完全进入凝 胶柱内后,再进行下一次洗涤.最后在凝胶表面 上加入洗脱液,保持高度为3—4cm.
葡聚糖凝胶层析
实验目的
【实验目的】 实验目的】 1.掌握葡聚糖凝胶的特性及凝胶层析的原理.
2.学习葡聚糖凝胶层析的基本操作技术.
葡聚糖凝胶层析原理
凝胶过滤层析也称分子筛层析,排阻层析. 是利用具有网状结构的凝胶的分子筛作用, 根据被分离物质的分子大小不同来进行分 离
凝胶层析: 凝胶层析:
实验材料
1.实验器材:层析柱(1×20cm)附有一小 实验器材: 实验器材 段乳胶管及螺旋夹;洗脱液瓶(带下口的 三角瓶,250m1);试管及试管架;量筒 10m1;721型分光光度计 2.实验试剂 实验试剂
(1)Tris—醋酸缓冲液(pH7.0): (2)溴酚蓝与葡聚糖—2000 混合样品. (3)葡聚糖凝胶G-25 (Sephadex-G-25)

实验三葡聚糖凝胶柱层析

实验三葡聚糖凝胶柱层析

颗粒大 小μm
24~44 24~44 24~44 20~40 20~40 25~75 25~75 25~75
பைடு நூலகம்
特性/应用
肽类、寡糖、小蛋白等 重组蛋白、细胞色素 单抗、大蛋白 蛋白、肽类、多糖、核酸 蛋白、肽类、寡糖、多糖 肽类、小蛋白 蛋白,如清蛋白 蛋白、抗体 多糖、具延伸结构的大分 子如蛋白多糖、脂质体 巨大分子 巨大分子如重组乙型肝炎表 面抗原 蛋白、大分子复合物、病毒、 不对称分子如核酸和多糖 (蛋白多糖) 蛋白、多糖 蛋白、多糖 蛋白、大分子复合物、病毒 、不对称分子如核酸和多糖 (蛋白多糖)
④Kd>1,则Ve>Vo+Vi , Sephadex
对它们有吸附作用。如某些芳香族化 合物(Phe,Tyr,Trp等),
2.1、影响凝胶层析分离的因素:
1、样品的体积、粘度; 2、层析柱 ;(高度,内径,材质) 3、洗脱液流速的影响 过慢:扩散 过快:拖尾 4、洗脱液离子强度、PH的影响。
2.1.1、样品的体积、粘度:
2.1.2、层析柱:
①柱长:组别分离时,5-30厘米; 分级分离时,可长至100厘米; ②柱径:分析分离时,由于样品量少, 常使用1厘米直径的层析柱,若制备分离时 样品量大,最好使用直径2-3厘米的层析 柱。
今天选用的是1cm ×30cm的层析柱。
2.1.3、洗脱液的离子强度和pH值的影响:
多糖类,水是最佳洗脱剂; 蛋白类,离子强度>0.02M的盐溶液作洗脱剂, 以消除凝胶的吸附作用; PH>7时,酸性物质易被洗脱; PH<7时,碱性物质易被洗脱。
脱盐及交换缓冲液用 脱盐及交换缓冲液用
同一型号的胶,胶颗粒越细,所形成的 2~13 4~6 干粉20~80 脱盐及交换缓冲液用 柱子理论踏板数越高,分辨率越高,这 1000~5000 2~13 4~6 干粉10~40 脱盐及交换缓冲液用 也就是为什么很小的HPLC预装柱能够 1500~30000 2~10 9~11 干粉100~300 小分子蛋白质分离 有很好的分离效果的原因了。 2~10 9~11 1500~30000 干粉50~150 小分子蛋白质分离

葡聚糖凝胶层析

葡聚糖凝胶层析

1.凝胶的预处理交联葡聚糖凝胶的市售商品多为干燥颗粒,使用前必须充分溶胀。

方法是将欲使用的干凝胶缓慢地倾倒入5~10倍的去离子水中,参照相关资料中凝胶溶胀所需时间,进行充分浸泡,然后用倾倒法除去表面悬浮的小颗粒,并减压抽气排除凝胶悬液中的气泡,准备装柱。

在许多情况下,也可采用加热煮沸方法进行凝胶溶胀,此法不仅能加快溶胀速率,而且能除去凝胶中污染的细菌,同时排除气泡。

2.装柱层析柱的选择一般根据分离样品的种类和样品的数量而定。

纯化蛋白质时,柱床体积应为样品体积的25~100倍。

去除盐及游离荧光素约为样品体积的4~10倍。

柱太短,影响分离效果。

柱长一些,分离效果好,但柱太长,则延长分离时间,样品也稀释过度。

层析柱的内径也要选择适当。

内径过细,会发生“器壁效应”,即靠近管壁的流速要大于中心的流速影响分离效果。

所以层析柱的内径和高度应有一定的比例。

对于除盐来说应为1︰5~1︰25;对于纯化蛋白质来说应为1︰20~1︰100。

凝胶柱的装填方法和要求,基本上与离子交换柱的制备相同。

一根理想的凝胶柱要求柱中的填料(凝胶)密度均匀一致,没有空隙和气泡。

通常新装的凝胶柱用适当的缓冲溶液平衡后,将带色的兰葡聚糖–2000、细胞色素,或血红蛋白等物质配制成质量浓度为2g/L的溶液过柱,观察色带是否均匀下移,以鉴定新装柱的技术质量是否合格,否则,必须重新装填。

3.加样与洗脱(1)加样量:加样量与测定方法和层析柱大小有关。

如果检测方法灵敏度高或柱床体积小,加样量可小;否则,加样量增大。

例如利用凝胶层析分离蛋白质时,若采用28Onm波长测定吸光度,对一根2cm×6Ocm的柱来说,加样量需5mg左右。

一般来说,加样量越少或加样体积越小(样品浓度高),分辨率越高。

通常样品液的加入量应掌握在凝胶床总体积的5%~10%。

样品体积过大,分离效果不好。

对高分辨率的分子筛层析,样品溶液的体积主要由内水体积(Vi)所决定,故高吸水量凝胶如Sephadex G-200,每mL总床体积可加0.3~0.5mg溶质,使用体积约为0.O2倍总体积;而低吸水量凝胶如Sephadex G–75,每mL总床体积加溶质质量为0.2mg,样品体积为0.Ol倍总体积。

葡聚糖凝胶柱的使用方法

葡聚糖凝胶柱的使用方法

葡聚糖凝胶柱的使用方法一、准备工作:1.准备好葡聚糖凝胶柱和所需的缓冲液,如PBS(磷酸盐缓冲液)、TBS(三甲基氨基甲烷缓冲液)等。

2.将葡聚糖凝胶柱放入柱层析设备中,并根据设备的要求进行调整和固定。

3.预冲柱层析设备和葡聚糖凝胶柱,以去除可能的污染和杂质。

二、样品处理:1.将待纯化的生物大分子样品先进行预处理,如去除悬浮物、离心沉淀等。

2.将样品溶液以适当的缓冲液进行稀释,以达到最佳的样品浓度和适合葡聚糖凝胶柱操作的样品体积。

三、样品加载:1.将处理好的样品溶液缓慢地倒入柱顶,让样品从柱顶进入柱内。

避免产生气泡。

2.分子在葡聚糖凝胶柱中会根据分子大小和亲疏水性质的不同而发生分离和吸附。

较大分子会在柱上层析,而较小分子会透过凝胶层均匀流出。

因此,样品会在柱内逐渐被分离和纯化。

四、缓冲液流动:1.样品完成加载后,使用适当的缓冲液进行柱洗涤,以洗掉非特异结合的杂质。

2.缓冲液的选择应根据样品的性质而定,具体的选择和流动条件可以参考相关的文献或经验。

五、洗脱纯化:1.在用于洗脱纯化的缓冲液中,调整适当的条件以实现目标分子的洗脱。

如调整pH值、离子浓度、添加洗脱剂等。

2.根据分子的亲疏水性质,选择适当的缓冲液浓度梯度进行洗脱。

一般来说,较强亲疏水性的分子需要更高浓度的洗脱缓冲液。

六、收集洗脱液:1.将洗脱液通过柱底收集,收集不同时间点或不同分析目的的洗脱液。

2.根据实验需要,将洗脱液分为不同部分进行后续的分析或纯化处理。

七、重复使用:1.柱层析后,葡聚糖凝胶柱可以进行再生,以重复使用。

具体的再生方法可以参考柱层析设备和葡聚糖凝胶柱的说明书。

总结:葡聚糖凝胶柱是一种常用的生物大分子纯化方法,通过分子在柱内的分离和纯化来实现样品纯化的目的。

使用葡聚糖凝胶柱时,需要根据样品的特性和需求进行适当的样品处理、缓冲液选择、洗脱纯化条件的优化等。

如操作规范且配合适当的实验条件,葡聚糖凝胶柱可以快速、高效地纯化和富集生物大分子。

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2.2、凝胶层析法的应用:
1、分子量的测定用已知分子量的标准蛋白洗脱制备标准曲线。
2、分离多组分混合物
3、脱盐与分离纯化用于脱盐的凝胶多为大颗粒、高交联度的凝胶。
此时,溶液中大分子(如蛋白质)的kd=0,盐类的kd=1,易于分离脱盐。
如: 用于去除热原物质热源是微生物产生的某些可以使人发热的物质,多
介绍几个体积:
Vt(total volume) Vi(inner volume) Vg(gel volume) Vo(outer volume) Ve(elution volume)
Vt(床体积)=Vo+Vi+Vg , Ve(洗脱体积)=Vo+Kd×Vi。
Kd是分配系数:用于衡量物质在凝胶内外的分配率, 是凝胶层析的一个特征常数,只与被分离物质分子 大小和凝胶孔径大小有关,与层析柱的长短粗细无 关。 Kd值的计算:Kd=(Ve-Vo)/Vi 几个特征Kd值意义: ①Kd=0,则Ve=Vo ,全排阻; ②Kd=1,则Ve=Vo+Vi , 全掺入; ③0<Kd<1,则Ve=Vo+Kd×Vi ,部分掺入;
pH稳定 性工作
3~12 3~12 3~12 3~12 3~12 3~11 3~11 3~11
耐压 Mpa
0.3 0.3 0.3 0.4 0.7 0.2 0.2 0.2
最 快流 速cm/h
100 100 100 30 30 20~39 20~39 20~39
Superdex凝胶过滤层析介质的技术数据 30 <10000 Superdex 75 3000~70000 Superdex200 10000~600000 Superose 6 5000~5×106 Superose 12 1000~300000 Sephacryl 1000~ 100000 S-100 HR Sephacryl 5000~250000 S-200 HR Sephacryl 10000~1.5×106 S-300 HR Sephacryl 20000~8×106 S-400 HR Sepharose 6 10000~4×106 Fast Flow Sepharose 4 60000~20×106 Fast Flow Sepharose 2B 70000~40×106 Sepharose 4B 60000~20×106 Sepharose 6B 10000~4×106 Sepharose 70000~40×106 CL-2B Sepharose 60000~20×105 CL-4B Sepharose 10000~4×106 CL-6B
3.4、凝胶的防腐、保存:
Sephadex、Sepharose等都是多糖类物质, 易于长菌,因此常在凝胶(不用时)中加入 抑菌剂,使用时再除去。
1. 常用0.02%叠氮钠作防腐剂。 该溶液在1厘米光程时, 254nm处透光率为60%, 280nm处透光率为100%。
2. 现多用20%的乙醇溶液保存各类凝胶
实验三、葡聚糖凝胶柱层析
1、目的与要求:
1.1、学习凝胶(Gel)层析法的基本原理; 1.2、掌握葡聚糖凝胶(Sephadex)柱层 析的操作技术。
2、凝胶层析法的原理:
凝胶层析是一种液相层析,机理是分子筛 效应。当洗脱开始以后,小分子可进入凝 胶颗粒内部,流程长,流动慢;大分子不 能进入凝胶颗粒内部,流程短,流动快。 这样就可使大小不同的分子分开。
溶胀最少 平衡时间h 室温 3 3 6 6 6 6 6 6 6 6 24 24 48 48 72 72 72 72 沸水 1 1 2 2 2 2 2 2 2 2 3 3 5 5 5 5
最快 流速 (cm/h) 2~5 2~5 2~5 2~5 2~5 2~5 2~5 2~5 2~5 2~5 72 16 47 11 21 5.6 11 2.8
4000~1.5×105 4000~1×105 5000~3×105 5000~1.5×105 5000~6×105 5000~2.5×105
100~4 000
特别为使用有机溶剂而设计。适合分离脂类、胆固醇、脂肪酸、激素、 维生素及其他小生物分子。此分离范围指以酒精为溶剂的分离
凝胶过滤介 质名称
分离范围
3.5 试剂、器材:
3.1 层析介质 Sephadex G-50; 3.2 混合样品(由三个组分组成)(要过滤或离心): 蓝葡聚糖2000-10mg/ml, 溶菌酶—40mg/ml, Trp—10mg/ml。 上样量:0.2ml/柱。 3.3、洗脱液:0.15M氯化钠,即生理盐水(需抽滤) 3.4、层析系统:层析柱、恒流泵、部分收集器、 核酸蛋白检测仪、记录仪。
④Kd>1,则Ve>Vo+Vi , Sephadex
对它们有吸附作用。如某些芳香族化 合物(Phe,Tyr,Trp等),
2.1、影响凝胶层析分离的因素:
1、样品的体积、粘度; 2、层析柱 ;(高度,内径,材质) 3、洗脱液流速的影响 过慢:扩散 过快:拖尾 4、洗脱液离子强度、PH的影响。
2.1.1、样品的体积、粘度:
颗粒大 小μm
24~44 24~44 24~44 20~40 20~40 25~75 25~75 25~75
特性/应用
肽类、寡糖、小蛋白等 重组蛋白、细胞色素 单抗、大蛋白 蛋白、肽类、多糖、核酸 蛋白、肽类、寡糖、多糖 肽类、小蛋白 蛋白,如清蛋白 蛋白、抗体 多糖、具延伸结构的大分 子如蛋白多糖、脂质体 巨大分子 巨大分子如重组乙型肝炎表 面抗原 蛋白、大分子复合物、病毒、 不对称分子如核酸和多糖 (蛋白多糖) 蛋白、多糖 蛋白、多糖 蛋白、大分子复合物、病毒 、不对称分子如核酸和多糖 (蛋白多糖)
分离 范围 <700 <1500 1000~5000 1000~5 000 1000~5000
颗粒 大小 (μm) 干粉40~120 干粉40~120 干粉100~300 干粉50~150
特性/应用
pH 稳定性 工作 2~13 2~13 2~13 2~13
干凝胶 溶胀体 积mL/g 2~3 2.5~3.5 4~6 4~6
4、实验操作过程:
4.1、凝胶用量的计算; 4.2、凝胶的溶胀; 4.3、装柱; 4.4、上样; 4.5、洗脱和收集。
4.1、凝胶用量的计算:
根据层析柱的容积和所选凝胶溶胀后的柱床 体积计算出所需凝胶干粉的重量。 凝胶的克数= Vbed ÷ Vc 。
凝胶过滤介质 名称 SephadexG-10 SephadexG-15 SephadexG-25 Coarse SephadexG-25 Medium SephadexG-25 Fine SephadexG-25 Superfine SephadexG-50 Coarse SephadexG-50 Medium SephadexG-50 Fine SephadexG-50 Superfine SephadexG-75 SephadexG-75 Superfine SephadexG-100 SephadexG-100 Superfine SephadexG-150 SephadexG-150 Superfine SephadexG-200 SephadexG-200 Superfine SephadexLH20 ( 嗜脂性 )
3.1、层析用凝胶必须具备 下列条件:
1、惰性:保证其不与待分离物质发生化学反应; 2、稳定; 3、低电荷:避免离子交换效应的发生; 4、足够的机械强度:在一定的操作压下不形变。
3.2、能用于层析的凝胶主 要有下面几种:
2.2.1、天然凝胶: 马铃薯淀粉凝胶、琼脂及琼脂糖凝胶 。 2.2.2、人工合成凝胶: 聚丙烯酰胺凝胶 、交联葡聚糖凝胶 。
0.012 0.02
26 30
3.3、葡聚糖凝胶Sephadex)的使用原则
2.4.1、型号选择: 组别分离时,Sephadex G-25最为常用。例如 样品中缓冲液的更换,蛋白质的脱盐 ; 分级分离时(如多种蛋白质的分离),应根据 待分离物中各组分的分子量大小和分子量分布范 围来确定型号。 参考商家的产品信息。 2.4.2、粒度的选择 : 组别分离时,选用较粗的颗粒; 分级分离时,以细颗粒凝胶为主,而且要求颗 粒大小均匀。 同型号的胶,同样的床体积,粒度小的胶对样品的 分离度要优于粒度大的胶,即有较高的分辨率。
为内毒素,是制药中必须去除的物质。内毒素是一个含脂肪A、糖类和蛋白, 是带负电的复合大分子。内毒素经常是多聚体,凝胶过滤层析可有效地将 之去除,特别是在小分子药物。选用的凝胶可以与脱盐类似,只是此时热 源等大分子物质的kd=0,而小分子药物的kd=1
3、凝胶介绍:
凝胶是一种具有立体网状结构的物 质 ( 如 葡 聚 糖 、 琼 脂 糖 、 聚 丙 烯酰胺等)吸收大量液体(水或洗脱液) 溶胀而成。
脱盐及交换缓冲液用 脱盐及交换缓冲液用
同一型号的胶,胶颗粒越细,所形成的 2~13 4~6 干粉20~80 脱盐及交换缓冲液用 柱子理论踏板数越高,分辨率越高,这 1000~5000 2~13 4~6 干粉10~40 脱盐及交换缓冲液用 也就是为什么很小的HPLC预装柱能够 1500~30000 2~10 9~11 干粉100~300 小分子蛋白质分离 有很好的分离效果的原因了。 2~10 9~11 1500~30000 干粉50~150 小分子蛋白质分离
25~75
平均90 平均90 60~200 45~165 45~165 60~200
3~11
2~12 2~12 4~9 4~9 4~9
0.2
0.1 0.1 0.004 0.008 250 10 11.5 14 15
45~165
45~165
蛋白、多糖
蛋白、多糖
3~13 3~13
1500~30000 1500~30000 3000~80000 3000~70000 干粉20~80 干粉10~40 干粉40~120 干粉10~40 干粉40~120 干粉10~40 干粉40~120 干粉10~40 干粉40~120 干粉10~40 干粉25~106 小分子蛋白质分离 小分子蛋白质分离 中等蛋白质分离 中等蛋白质分离 中等蛋白质分离 中等蛋白质分离 稍大蛋白质分离 稍大蛋白质分离 较大蛋白质分离 较大蛋白质分离 2~10 2~10 2~10 2~10 2~10 2~10 2~10 2~10 2~10 2~10 9~11 9~11 12~15 12~15 15~20 15~20 20~30 18~22 30~40 20~25
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