CD系列在病理诊断中地应用

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CD诊治要点及预后详细讲解

CD诊治要点及预后详细讲解CD（Crohn's disease，克罗恩病）是一种以肠道慢性炎症为特征的炎症性肠病。

它可能影响消化道的任何部分，但最常见的是回盲部和结肠。

治疗CD的目标是缓解症状、减少炎症和控制疾病进展，以提高患者的生活质量。

本文将介绍CD诊治的关键要点和可能的预后。

诊断要点：1.病史：CD通常起病缓慢，腹痛、腹泻、消化不良、贫血、体重下降等是常见症状。

2.体格检查：肠鸣、腹部压痛、肿块、肛门疼痛或溃疡等体征存在。

3.化验检查：血液和粪便检查可以帮助评估炎症程度、贫血水平和排除其他疾病。

4.影像学检查：结肠镜、胃镜、小肠钡餐检查等可以直接观察到病变的部位和程度。

治疗要点：1.机制治疗：可使用5-氨基水杨酸类药物、谷胺酰胺类药物等来减少炎症反应。

2.免疫调节治疗：包括硫唑嘌呤、甲基泼尼松龙等免疫抑制剂，可以调节免疫反应。

3.症状缓解治疗：口服硫糖铝或氧化铋类药物可以缓解腹泻和腹痛症状。

4.营养支持治疗：针对营养不良或肠道吸收障碍，可补充口服或肠内营养支持。

5.手术治疗：对于严重的病变或并发症如肠梗阻、穿孔、大出血等，可能需要进行手术切除病变部分。

预后：CD的预后因个体差异很大，有些人可能长期缓解或进入持续的缓解状态，而其他人可能经历病情反复或持续进展。

以下因素可能影响预后：1.病变部位和程度：如果病变限于结肠，预后较好；如果病变涉及小肠，预后通常较差。

2.年龄：病情早发和儿童期起病的患者预后一般较差。

3.炎症严重程度：炎症越严重，预后越差。

4.并发症：如肠道狭窄、穿孔等并发症会影响预后。

5.是否合理控制：积极的治疗和控制疾病活动可以改善预后。

总体而言，CD是一种慢性疾病，需要终身关注和治疗。

合理的治疗和积极的自我管理可以帮助患者达到充分的缓解和长期的疾病控制。

定期的随访和监测可以帮助医生评估治疗效果和及时调整治疗方案，以提高患者的预后。

如何解读淋巴瘤的病理报告

淋巴瘤是起源于淋巴网状系统的恶性肿瘤，发生于淋巴结或结外部位，包括霍奇金淋巴瘤和非霍奇金淋巴瘤，后者较为常见。

病理诊断是确定恶性淋巴瘤类型的关键步骤。

同时，一份明确的病理报告可以帮助临床医生制定最佳的治疗方案和预后评估。

病理报告中的淋巴瘤类型第五版WHO淋巴造血系统肿瘤分类中列举的淋巴瘤类型有60余种，这些淋巴瘤类型名称不同程度地体现了如下内容：1.细胞起源大多数淋巴瘤名称直接体现了细胞起源，如淋巴结边缘区淋巴瘤、淋巴结滤泡辅助T 细胞淋巴瘤、原发皮肤滤泡中心淋巴瘤等。

2.生长方式部分淋巴瘤类型名称直接体现了显微镜下主要组织学特征，比如：慢性炎症相关性弥漫大B细胞淋巴瘤、单形性侵上皮性肠T细胞淋巴瘤、结节性淋巴细胞为主型霍奇金淋巴瘤等。

3.特异发生部位一些淋巴瘤有部位特异性，如血管内大B细胞淋巴瘤、纵隔灰区淋巴瘤、肝脾T 细胞淋巴瘤、原发免疫豁免部位大B细胞淋巴瘤等。

4.生物学行为一些淋巴瘤名称已经在提示肿瘤的生物学行为了，如胃肠道惰性NK细胞淋巴组织增殖性疾病、原发皮肤CD8阳性侵上皮性细胞毒T细胞淋巴瘤、侵袭性NK细胞白血病等。

5.病因淋巴瘤发病机制复杂，但某些淋巴瘤类型有独特的病因，如KSHV/HHV8阳性弥漫大B 细胞淋巴瘤、EBV阳性皮肤黏膜溃疡、免疫出生错误相关淋巴瘤等，这些淋巴瘤直接为临床医生提供了治疗方向。

6.涉及分子改变随着研究进展，淋巴瘤发生涉及的分子机制逐渐被证实，有些淋巴瘤名称中直接体现了主要的分子机制，如伴IRF4重排大B细胞淋巴瘤、弥漫性大B细胞淋巴瘤/高级别B细胞淋巴瘤伴MYC和Bcl-2重排、高级别B细胞淋巴瘤伴11q异常等。

病理报告中的免疫组化结果免疫组化染色是病理诊断中最常用的技术，免疫组化在病理诊断中的作用主要体现在判断细胞起源、靶向治疗及预后评估：1.细胞起源淋巴细胞主要分为B淋巴细胞和T淋巴细胞，前者的主要免疫标记有CD20、CD19、CD79a、PAX-5等，后者的免疫标记主要有CD3、CD4、CD8、CD2等。

免疫组化的在病理中的临床意义

13、意义：标记物--作用--阳性部位--临床意义耐药性越强：阿霉素、柔红霉素、表阿霉素、米托蒽醌、长春花碱、长春新碱、紫彬醇、泰素帝。

性越强：阿霉素、顺铂、氮芥、环磷酰胺、瘤可宁。

蒽环类抗生素和鬼臼毒素类，如VP16、替尼泊苷、玫瑰树碱、新霉素、柔红霉素、表阿霉素、阿霉素、VM26。

阳性率高者对VP16尤其有效。

预后越好。

C-erbB-2--癌基因产物--胞浆--阳性率越高，肿瘤恶性程度越高。

ER、PE阳性而C-erbB-2也阳性者，用三苯氧胺治疗效果不好。

Ki-67为细胞增值的一种标记，在细胞周期G1、S、G2、M期均有表达，G0期缺如，其和许多肿瘤分化程度、浸润、转移、预后密切相关。

PCNA(增埴细胞核抗原)。

P53在免疫组化中均为突变型，阳性率越高，预后约差。

野生型半衰期很短于乳腺癌、非小细胞肺癌、胃癌、大肠癌、肝癌、喉癌等多种恶性肿瘤的检测。

几乎所有的研究都表明，nm23蛋白高表达患者淋巴结转移率相对较低，存活期相对较长。

胞之间连接的破坏，主要用于肿瘤侵袭和转移方面的研究。

判断的指标之一。

CK18，低分子量角蛋白，主要标记各种单层上皮包括腺上皮，而复层鳞状上皮常阴性，主要用于腺癌诊断。

阳性反应弱阳性或阴性。

乳腺癌、肺癌、子宫内膜和卵巢非黏液性肿瘤常阴性。

道上皮细胞、胰腺和胆管上皮细胞以及肾实质的上皮细胞中（特别是近曲小管）。

Villin在胃肠道癌、胰腺癌、胆囊癌和胆管癌组织中有很高的表达率，具有明显腺样结构的肿瘤上没有villin表达，则这个肿瘤为胃肠道、胰腺、胆囊或胆管来源的可能性极低。

乳腺癌也经常成为女性患者未知原发部位转移癌要鉴别排除的一种疾病。

因为在转移癌组织上观察到明显的villin免疫组化阳性染色，则这个肿瘤就极不可能为乳腺来源。

其他villin免疫组化染色通常为阴性表达的肿瘤还有：如卵巢浆液性癌、尿道移行细胞癌和前列腺癌。

间皮瘤也经常为villin阴性表达，因此在一些情况下Villin还可以作为鉴别间皮瘤和腺癌使用抗体的一种。

CD技术基本知识及临床应用课件

CD技术基本知识及临床应用
25
血管重度狭窄（涡流）频谱图形
CD技术基本知识及临床应用
26
五、声频异常
噪音性杂音频谱：为对称分布在基线两侧的簇状高强信号，一般局限于收缩期。
乐音性杂音频谱：为多条平行的波纹状线条波形，同时可闻及特殊高调的音频信号。
栓子信号频谱： TCD可以检测脑循环中的微栓子信号，主要依据多谱勒频谱和音频信号的改变。
特异性或非特异性血管内膜炎，急脑动脉炎，
大动脉炎、近端血管狭窄或闭塞，远端供血障碍或侧枝循环供血等。
融2合、高，阻Vd力明型显频减谱低，：P峰I值时增可高不。延见长于，高但血S1压和性S2 脑动脉硬化
3、低阻力型频谱：舒张期血流速增高，与收
缩期流速差异很小，PI值减低。见于脑动脉炎、动静脉畸形、血黏度明显增高者。
30
第四讲临床应用及案例等
CD技术基本知识及临床应用
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TCD结果分析中应注意的问题
影响血流速度的因素
应注意的问题
正确识别血管
多谱勒血流
所获得血流参数的准确性。
年龄和性别等生理因素的影响
某些疾病的影响。
仪器工作条件选择
CD技术基本知识及临床应用
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TCD技术的临床应用
CD技术基本知识及临床应用
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常见的血流方向异
ACA血流方向逆转眼动脉血流方向逆转椎动脉血流方向逆转
CD技术基本知识及临床应用
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椎动脉血流方向逆转图形
CD技术基本知识及临床应用
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压颈实验（右ACA闭塞）频谱图
CD技术基本知识及临床应用
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三、流频谱形态异常
1、收缩峰圆钝：峰时延长≥0.12秒（正常为 0.06—0.12秒）波峰圆钝。见于：广泛动脉硬化，血管弹性下降、血脂升高，粘滞性增加、

cd谱的原理和应用

CD谱的原理和应用1. 什么是CD谱CD谱（Chromatography–Mass Spectrometry Data Format）是一种用于记录和交换色谱-质谱（chromatography–mass spectrometry，GC-MS/LC-MS）分析数据的文件格式。

它是一种文本文件，由多个列组成，用于描述样品中各种化合物的质谱信号强度和色谱峰的保留时间等信息。

2. CD谱的原理CD谱的生成基于色谱-质谱联用技术，该技术通常包括质谱（MS）和色谱（GC或LC）两个部分。

质谱实验通过对样品中化合物的离子产生和质谱检测，得到各种化合物的质谱图谱。

而色谱实验则用于分离化合物的混合物，使各组分分离出来，从而能够分别对每个组分进行质谱检测。

通过质谱和色谱的联用，可以得到样品中各种化合物的质谱信号和其对应的色谱峰。

CD谱的核心原理是将质谱峰和色谱峰对应起来，使用一种独特的谱匹配算法，将每个色谱峰与其对应的质谱峰进行对齐。

这样，就能够得到每个化合物的质谱信号强度和色谱峰的保留时间等信息。

CD谱通常由多个列组成，包括色谱峰的保留时间、质谱信号的强度等。

3. CD谱的应用CD谱在化学分析、生物分析、环境监测等领域具有广泛的应用。

3.1 化学分析领域CD谱在化学分析领域可以用于确定样品中各种化合物的种类和浓度。

通过质谱和色谱的联用，能够得到准确的质谱信息和色谱峰的保留时间。

通过对CD谱的解析和比对，可以确定样品中的组分并计算其浓度。

3.2 生物分析领域CD谱在生物分析领域可以用于研究生物样品中的代谢产物、蛋白质和核酸等分子。

通过质谱和色谱联用技术，可以对生物样品进行全面的分析，从而了解其组成和代谢途径等信息。

3.3 环境监测领域CD谱在环境监测领域可以用于分析和监测环境中的有机污染物、农药残留和重金属等。

通过质谱和色谱的联用，能够准确地鉴定和定量各种污染物，并评估其对环境和人体的潜在危害。

4. CD谱的优势CD谱具有以下几个优势：•高分辨率：CD谱利用质谱和色谱的联用技术，能够对复杂样品进行高分辨率的分析，从而能够得到更准确的分析结果。

免疫组织化学检测在乳腺癌病理诊断中的作用探讨

1医学食疗与健康 2023年10月下第21卷第30期·论著·作者简介：李慧芳（1980.05—），女，汉族，硕士研究生，副主任医师，研究方向：病理。

免疫组织化学检测在乳腺癌病理诊断中的作用探讨李慧芳（1.江苏大学附属武进医院，江苏常州 213000）（2.徐州医科大学武进临床学院病理科，江苏常州 213002）【摘要】目的：探讨免疫组织化学检测在乳腺癌病理诊断中的作用。

方法：从2017年6月－2020年10月期间在本院接受检查的疑似乳腺癌患者中随机选择100例。

所选患者均接受病理诊断以及免疫组织化学检测，并对诊断结果展开统计。

结果：将病理检查设定为金标准，灵敏度为94.44%，特异度为100.00%，准确率为95.00%，阳性预测值为94.44%，阴性预测值为100.00%。

结论：在乳腺癌病理诊断中，免疫组织化学检测的临床应用价值较高。

【关键词】免疫组织化学检测；乳腺癌；病理诊断【中图分类号】R737.9；R730.43 【文献标识码】A 【文章编号】2096-5249（2023）30-0001-03乳腺癌为临床中比较常见的疾病之一，属于女性恶性肿瘤疾病的一种，对女性身体健康存在严重危害，患者生活以及工作也会受到影响，随之其生活质量有所下降，甚至会威胁到患者生命健康安全[1]。

我国乳腺癌发病率从20岁开始逐渐产生增加现象，45-50岁达到峰值。

由于近些年医学技术水平的不断发展，全球乳腺癌患者发生死亡的概率正逐年下降[2]。

病理学显示，乳腺癌这一疾病产生原因多与乳腺增生存在密切关系，且乳腺癌内乳区还极易产生淋巴转移现象。

因此尽早诊断并展开治疗极为重要，患者病死率会显著减少。

免疫组织化学检测属于比较常用的一种辅助诊断方式，但由于其诊断效果争议较大，因此需要进一步对该诊断方式的应用价值展开研究[3]。

本文主要探究免疫组织化学检测在乳腺癌病理诊断中的作用，如下。

1 资料与方法1.1 一般资料对2017年6月－2020年10月在本院接受检查的100例疑似乳腺癌患者展开研究。

CD 白细胞分化抗原细胞膜表面分化抗原群的定义及意义

CD1c，这三种不同分子是分别由三个不同的高度同源的基因所编码；②CD45至少可分为CD45RA，CD45RB，CD45RC和CD45RO，它们是同一基因的不同异型/同种型（isoform）；③CD2和CD2R是识别同一个分子上不同的表位；④CD49已进一步划分为CD49a，D49b，CD49c，CD49d，CD49e和CD49f，它们的基因定位于不同的染色体上，但具有较高的同源性。

（4）CD的组划分的特异性是相对的，实际上，许多CD抗原的组织细胞分布较为广泛。

此外，有的CD抗原可由不同的分类角度而归入不同的组，如IL-2受体a链CD25是活化T 细胞的标记，也属于细胞因子受体；再如某些属于T细胞、B细胞、髓细胞或NK细胞组的CD抗原实际上也是粘附分子，等等。

CD 主要抗原表达(Main Antigen Expression)/其他名字/分子量(kDa)CD1a Cortical Thymocytes (stg), B cell subset, Dendritic cells, Langerhans cells 49,12CD1b Cortical Thymocytes (mod), B cell subset, Dendritic cells, Langerhans cells 45,12CD1c Cortical Thymocytes (weak), B cell subset, Dendritic cells, Langerhans cells 43,12CD2 T cells, NK cells LFA-2, E-Rosette Receptor 50CD2R Activated T cells 50CD3 T cells 16,20,25-28CD4 Helper-inducer T cells, Monocytes, Macrophages 56CD5 T cells, B cell subset 67CD6 T cells, B cell subset 105CD7 T cells 40CD8 Cytotoxic/Suppressor T cells, NK cells 32-34CD9 Platelets, Monocytes, Pre-B cells 24CD10 Pre-B cells, Granulocytes CALLA 100CD11a Leukocytes LFA-1, αL Integrin 180CD11b Granulocytes, Monocytes, NK cells MAC-1, αM Integrin, CR3 170CD11c Granulocytes, Monocytes, NK cells, T cell subset, B cell subset, αX Integrin 150 CDw12 Granulocytes, Monocytes 90-120CD13 Granulocytes, Monocytes Aminopeptidase N 130CD14 Monocytes 55CD15 Granulocytes, Monocytes Lewis X CHOCD15s Neutrophils Sialyl Lewis X CHOCD15u Myeloid subset Sulfated Lewis X CHOCD16a NK cells, Macrophages FcRIII A 50-65CD16b Granulocytes FcRIII B 48CD17 Granulocytes, Monocytes, Platelets Lactosylceramide -CD18 Leukocytes (Platelets negative) β2 Integrin 95CD19 B cells 90CD20 B cells 33,35,37CD21 B cells subset, Follicular dendritic cells CR2 145CD22 B cells 140CD23 B cell subset, Eosinophils, Platelets FcεRII 50-45CD24 B cells, Granulocytes 41/38CD25 Activated T cells IL-2Rα Chain 55CD26 T cell subset, Macrophages 110CD27 T cell subset 55CD28 T cell subset 44CD29 Leukocytes β1 Integrin 130CD30 Activated T and B cells, Reed Sternberg cells Ki-1 105CD31 Platelets, Monocytes, Granulocytes, B cells PECAM-1, GPIIa 140 CD32 Monocytes, Neutrophils, B cells, Eosinophils FcRII 40CD33 Myeloid Progenitor cells, Monocytes 67CD34 Hematopoietic Progenitor cells 105-120CD35 Monocytes, B cells, Granulocytes CR1 160,190,220,250CD36 Monocytes, Platelets GPIV (IIIb) 88CD37 B cells 52-40CD38 Activated T cells, Plasma cells 45CD39 B cells, Monocytes 100-70CD40 B cells, Monocytes, Carcinoma cells 48/44CD41 Platelets, Megakaryocytes GPIIb/IIIa, αIIb Integrin 120CD42a Platelets, Megakaryocytes GPIX 23CD42b Platelets, Megakaryocytes GPIB-a 135,23CD42c Platelets, Megakaryocytes GPIB-b 22CD42d Platelets, Megakaryocytes GPV 85CD43 T cells, Granulocytes, Monocytes Leukosialin 90-100CD44 Leukocytes, Erythrocytes H-CAM, Pgp-1 8-90CD44R (Varied-dependent upon Exon Splicing)CD45 Leukocytes Leukocyte Common Antigen 180,190,205,220CD45RA B cells, T cell subset, Monocytes 220,205CD45RB B cells, T cell subset, Monocytes 190,205,220CD45RC B cells, T cell subset 190,205,220CD45RO B cells, T cell subset, Monocytes 180CD46 Ubiquitous (Erythrocytes negative) Membrane Cofactor Protein 66,56 CD47 Ubiquitous 47-52CD47R Broad 47-52CD48 Leukocytes 43CD49a Activated T cells VLA-1, α1 Integrin 210CD49b B cells, Monocytes, Platelets VLA-2, α2 Integrin 160CD49c B cells VLA-3, α3 Integrin 125CD49d Lymphocytes, Monocytes, Eosinophils VLA-4, α4 Integrin 150,80,70 CD49e T cell subset, Monocytes, Platelets VLA-5, α5 Integrin 132/25CD49f T cell subset, Monocytes VLA-6, α6 Integrin 120/25CD50 Leukocytes ICAM-3 124CD51 Platelets αV Integrin 125/25CD51/61 Platelets, Osteoclasts, Endothelial cells complexCD52 Leukocytes CAMPATH-1 21-28CD53 Leukocytes 32-40CD54 Endothelial cells, Various activated cells ICAM-1 90CD55 Broad Decay Accelerating Factor 75CD56 NK cells N-CAM 220/135CD57 NK cells, T cell subset HNK-1 110CD58 Broad LFA-3 65-70CD59 Broad Protectin, Homologous Restriction Factor 18-20CD60a T cell subset, platelets GD3 CHOCD60b T cell subset, activated B cells 9-0-sialyl GD3 CHOCD60c T cell subset 7-0-sialyl GD3 CHOCD61 Platelets, Megakaryocytes β3 Integrin, GPIIIa 110CD62E Endothelial cells E-Selectin, ELAM-1 140CD62L Lymphocytes, Monocytes, NK cells L-Selectin, LECAM-1 150CD62P Activated Platelets, Endothelial cells P-Selectin, LECAM-3 75-80 CD63 Activated Platelets, Monocytes 53CD64 Monocytes FcRI 75CD65 NeutrophilsCD65s Neutrophils, MonocytesCD66a Neutrophils Biliary Glycoprotein 160-180CD66b Granulocytes CGM6 95-100CD66c Neutrophils, Colon carcinoma NCA 90CD66d Neutrophils CGM1 30CD66e Colon epithelial CEA 180-200CD66f Pregnancy Specific GlycoproteinCD67 (Re-assigned to CD66b) (重复CD66b)CD68 Monocytes, Macrophages 110CD69 Activated T and B cells, NK cells Activation Inducer Molecule 34/28CD70 Activated T and B cells, Reed-Sternberg cells 75,95,170CD71 Proliferating cells Transferrin Receptor 95CD72 B cells 43/39CD73 B & T cell subset ECTO-5' Nucleotidase 69CD74 B cells, Monocytes Invariant Chain 41,35,33CD75 B cell subset, Epithelial Lactosamines CHOCD75s B cell subset α-2, 6-sialylated Lactosamines CHOCD77 Activated B cells, Endothelial cellsCD79a B cells MB-1 33,40CD79b B cells B29 33,40CD80 Activated B cells B7-1 60CD81 B cells, T cells, Neutrophils TAPA-1 22CD82 Leukocytes, Platelets 50-53CD83 Dendritic cells, Activated lymphocytes HB15 43CD84 Monocytes, Platelets, B cells 73CD85 Dendritic cells, Monocytes, B cells see note 1 in notes section 110 CD86 Monocytes, Activated B cells B7-2 80CD87 Granulocytes, Monocytes, Activated T cells UPA Receptor 50-65 CD88 Granulocytes C5a Receptor 42CD89 Neutrophils, Monocytes Fcα Receptor 55-70CD90 Progenitor cell subset, Thymic Stromal cells THY-1 18CD91 Monocytes α2 Macroglobulin Receptor 600CD92 Neutrophils, Monocytes, Platelets, Endothelial cells 70CD93 Neutrophils, Monocytes, Endothelial cells 120CD94 NK cells, T cell subset 30CD95 Apoptotic cells FAS 42CD96 Activated T cells Tactile 160CD97 Activated T cells CD55 Ligand 74,80,89CD98 Monocytes, T cells, B cells 4F2 80,40CD99 Lymphocytes, Thymocytes 32CD99R T cells, NK cells, Myeloid cells 32CD100 Broad 150CD101 Granulocytes, Monocytes, Activated T cells 140CD102 Lymphocytes, Monocytes ICAM-2 60CD103 Intra Epithelial Lymphocytes HML-1, αE Integrin 150,25CD104 Epithelial, Schwann cells β4 Integrin 220CD105 Endothelial cells Endoglin 95CD106 Activated Endothelial cells VCAM-1 100-110CD107a Activated Platelets LAMP-1 110CD107b Activated Platelets LAMP-2 120CD108 Activated splenic T cells 80CD109 Activated T cells, Platelets, Endothelial cells Platelet Activation Factor 170/150CD110Stem cell subset,Megakaryocytes,Platelets (v. weak) Thrombopoietin Receptor, Mpl 82-84 CD111 Stem cell subset, Macrophages, Neutrophils PRR/Nectin-1 64-72CD112 Monocytes, Neutrophils, Stem cell subset PRR2/Nectin-2 64-72CD113 Epithelial cells, Placenta PRR3, Nectin-3 83CD114 Granulocytes, Monocytes G-CSF Receptor 95,139CD115 Monocytes, Macrophages M-CSF Receptor 150CD116 Monocytes, Neutrophils, Eosinophils GM-CSF Receptor αChain 60CD117 Progenitor cells SCF-Receptor, c-kit 145CD118 Epithelial cells LIF Receptor 190CD119 Monocytes, B cells, Epithelial cells IFN γ Receptor 90CD120a Monocytes, Granulocytes TNF Receptor, Type 1 55CD120b Monocytes, Granulocytes, TNF Receptor, Type 2 75Activated lymphocytesCD121a T cells, Fibroblasts, Endothelial cells IL-1 Receptor, Type 1 80CD121b B cells, Monocytes, Macrophages IL-1 Receptor, Type 2 68CD122 T cell subset, NK cells IL-2 Receptor β Chain 75CD123 Progenitor cells, Granulocytes, Monocytes, Megakaryocytes, IL-3 Receptor α Chain 70 CD124 B cells, T cells, Progenitor cells IL-4/IL-13 Receptor 140CD125 Eosinophils, Basophils IL-5 Receptor α Chain 60CD126 Plasma cells, Activated B cells IL-6 Receptor α Chain 80CD127 Early B cells, T cells, Progenitor cells, Monocytes, IL-7 Receptor α Chain 65-75CD129 Not assignedCD130 Plasma cells, Activated B cells gp130Receptor Subunit for IL-6,IL-11,LIF, OSM, LNTF,CT-1 130CD131 Myeloid cells Common β Chain for IL-3, IL-5, GM-CSF Receptor 120CD132 Broad Common γ Chain for IL-2, IL-4, IL-7, IL-9, IL-15 Receptors 64CD133 Stem cell subset AC-133 120CD134 Activated T cell subset OX40 48-50CD135 Progenitor cell subset Flt3/FIk2 130-150CD136 Epithelial cells Macrophage Stimulating Protein Receptor 180CD137 T cell subset 4-1BB 30CD138 Plasma cells, Epithelial cells SYNDECAN-1 20CD139 Germinal center B cells 209,228CD140a (Undetectable on most normal cells) PDGF Receptor α 180CD140b Endothelial cell subset, Stromal cells PDGF Receptor β 180CD141 Endothelial cells Thrombomodulin 100CD142 Activated Monocytes and Endothelial cells Tissue Factor 45CD143 Endothelial cell subset Angiotensin Converting Enzyme 170CD144 Endothelial cells VE-CADHERIN 135CDw145 Endothelial cells, Some stromal cells 25,90,110CD146 Endothelial cells, Activated T cells MUC18/S-endo 118CD147 Endothelial cells, Monocytes, T cell subset, Platelets, Erythrocytes, Neurothelin/Basigin 50-60CD148 Hematopoietic cells HPTP-ETA/DEP-1CD150 T cell subset, B cell subset, Thymocytes SLAM 70CD151 Platelets, Endothelial cells PETA-3 27CD152 Activated T cells CTLA-4 44CD153 Activated T cells CD30 Ligand 40CD154 Activated T cells, Mast cells, Basophils CD40 Ligand 33CD155 Monocytes, Macrophages, Thymocytes Poliovirus Receptor 80-90CD156a Monocytes, Macrophages, Granulocytes ADAM8 60CD156b Broad TACE/ADAM17 85CD156c Broad ADAM-10 98CD157 Monocytes, Neutrophils, Endothelial cells BST-1 42-45CD158 T cell subset, NK cell subset see note 2 in notes sectionCD158a NK cells, T cell subset p58.1, P50.1 50,58CD158b NK cells, T cell subset p58.2, p50-2 50,58CD159a NK cells NKG2a 43CD159c NK cells NKG2C 40CD160 T cell subset, NK cell subset By55 26CD161 NK cells, T cell subset NKR-P1 60CD162 T cells, Monocytes, Granulocytes, B cell subset PSGL-1 110CD162R NK cell subset PEN5 CHOCD163 Monocytes KiM4 130CD164 T cells, Monocytes, Granulocytes, B cell subset, Progenitor cells MGC-24 80 CD165 Thymocytes, Thymic epithelial cells AD2/gp37 37CD166 Activated Lymphocytes, Endothelial cells, Fibroblasts ALCAM, CD6 Ligand 100 CD167a Epithelial cells, Myoblasts Discoidin Domain Receptor, DDR1 120CD168 Thymocyte subset, T cell subset, Monocytes RHAMM 84-88CD169 Macrophage subset Sialoadhesin 185CD170 Macrophage subset, Neutrophils Siglec-5 140CD171 Monocytes, T cell subset, B cells L1 200CD172a Monocytes, T cell subset, Stem cells SIRP α 110CD172b Monocytes, Dendritic cells SIRP β1 50CD172g T cells, Activated NK cells SIRP γ, SIRP β2 45-50CD173 Red cells, Stem cell subset, Platelets Blood group H type 2 CHOCD174 Stem cell subset, Epithelial cells Lewis Y CHOCD175 Stem cell subset TN CHOCD175s Erythroblasts Sialyl-Tn CHOCD176 Stem cell subset Thomson-Friedrenreich antigen CHOCD177 Neutrophil subset NB1 56-62CD178 Activated T cells Fas ligand 38-42CD179a Pro-B cells, Pre-B cells V pre beta 16CD179b Pro-B cells, Pre-B cells Lambda 5 22CD180 B cell subset, Monocytes, Dendritic cells Rp105/Bgp 95 95-105CD181 Neutrophils, T cell subset CXCR1 39CD182 Monocytes, Granulocytes, T cell subset CXCR2 40CD183 Activated T cells, Activated NK cells CXCR3 40CD184 T cell subset, B cells, Monocytes, Dendritic cells, Endothelial cells, CXCR4 45 CD185 B cells, T cell subset CXCR5 45CD186 T cell subset CXCR6, BONZO 40CD191 T cells, Monocytes, Stem cell subset CCR1 39CD192 Monocytes, T cell subset, B cells, Basophils, Endothelial cells， CCR2 40CD193 Eosinophils, Basophils, T cell subset, Dendritic cell subset，CCR3 45CD194 T cells, Bascphils, Platelets, Monocytes (low) CCR4 41CD195 Monocytes, T cell subset CCR5 45CD196 T cell subset, B cells, Dendritic cell subset CCR6 45CD197 T cell subset CCR7 45CDw198 T cell subset, Monocytes CCR8 50CDw199 T cell subset CCR9 50CD200 Thymocytes, B cells, Endothelium, Activated T cells OX-2 45-50CD201 Endothelial cell subset Endothelial cell Protein C Receptor(EPCR) 50CD202b Endothelial cells, Stem cells Tie/Tek 150CD203c Basophils, Megakaryocytes NPP3 130-150CD204 Macrophages Macrophage Scavenger Receptor 220CD205 Dendritic cells, Thymic epithelium DEC-205 205CD206 Dendritic cell subset, Macrophages, Monocytes Macrophage Mannose Receptor 180 CD207 Immature langerhans cells Langerin 40CD208 Interdigitating dendritic cells DC-LAMP 70-90CD209 Dendritic cell subset DC-SIGN 44CDw210 T cells, B cells, NK cells, Monocytes, Macrophages IL-10R 90-110CD212 Activated T cells, Activated NK cells IL-12Rβ1 100CD213a1 B cells, Monocytes, Fibroblasts, Endothelial cells IL-13Rα1 65 CD213a2 B cells, Monocytes IL-13Rα2 65CD217 Broad IL-17R 120CD218a Lymphocytes, Neutrophils, Dendritic cell subset IL-18Rα 70CD218b Lymphocytes, Neutrophils, Dendritic cell subset IL-18Rβ 70CD220 Broad Insulin Receptor 140 + 70CD221 Broad IGF-1 Receptor 140 + 70CD222 Broad IGF-2 Receptor/ Mannose-6-phosphate Receptor 250CD223 Activated T cells, Activated NK cells LAG-3 70CD224 Leukocytes, Stem cells Gamma Glutamyl Transferase (GGT) 27, 68 CD225 Broad Leu-13 17CD226 T cells, NK cells, Monocytes, Platelets DNAM-1 65CD227 Stem cell subset, Epithelial cells MUC-1 300CD228 Stem cells, Melanoma cells Melanotransferrin 80-95CD229 T cells, B cells Ly-9 95, 110CD230 Broad Prion Protein 35CD231 T cell leukemia, Neuroblastoma TALLA-1 30-45CD232 Broad VESPR (Plexin C1) 200CD233 Red cells Band 3 90CD234 Red cells Duffy 35-45CD235a Red cells Glycophorin A 36CD235b Red cells Glycophorin B 20CD236 Stem cell subset, Red cells Glycophorin C/D 32/23CD236R Stem cell subset, Red cells Glycorphorin C 32CD238 Stem cell subset, Red cells Kell 93CD239 Stem cell subset, Red cells B-CAM, Lutheran 78-85CD240CE Red cells Rhesus 30 CE 30-32CD240D Red cells Rhesus 30 D 30-32CD241 Red cells Rhesus 50 Glycoprotein 50CD242 Red cells ICAM-4 42CD243 Stem cells MDR-1 180CD244 NK cells, T cell subset 2B4 70CD245 T cell subset p220/240 220-240CD246 Anaplastic T cell leukemia Anaplastic Lymphoma Kinase 80CD247 T cells, NK cells TCR zeta chain 16CD248 Stromal Fibroblasts, Tumor endothelium Endosialin 175CD249 Endothelial cells, Epithelial cells Aminopeptidase A 160CD250 Reserved for TNFCD251 Reserved for lymphotoxinCD252 Dendritic cells, Endothelial cells, Activated B cells OX40 Ligand 34 CD253 Activated T cells, Activated B cells, Activated monocytes TRAIL 33-34 CD254 Activated T cells, Stromal cells, Osteoblasts TRANCE, RANKL 35CD255 Reserved for TWEAKCD256 Myeloid cells APRIL 16CD257 Myeloid cells BlyS, BAFF 45CD258 Activated T cells, Immature dendritic cells LIGHT 28CD259 Reserved for NGFCD260 Reserved for lymphotoxin beta receptorCD261 Leukocytes (very weak), Tumor cells TRAIL-R1, APO2 57CD262 Broad TRAIL-R2, DR5 60CD263 Broad (weak) TRAIL-R3, DcR1 65CD264 Broad TRAIL-R4, DcR2 35CD265 Broad, Osteoclasts, Dendritic cells RANK, TRANCE-R 97CD266 HUVEC TWEAK-R 14CD267 B cells (weak), Activated T cells TACI 32CD268 B cells, T cells (weak) BAFF-R 25CD269 B cells BCMA 27CD270 Reserved for LIGHTRCD271 Neurons, Stromal cells, Follicular dendritic cells NGFR 75CD272 Th1 cells BTLACD273 Dendritic cells, Activated T cells, Activated monocytes B7-DC, PD-L2 25CD274 Dendritic cells, Activated T cells, Activated monocytes B7-H1, PD-L1 40CD275 Dendritic cells, B cells (weak), T cells (weak), Activated monocytes，ICOSL 60 CD276 Dendritic cell subset, Activated monocytes B7-H3 (long) 40-45CD277 T cells, B cells, NK cells, Monocytes, Dendritic cells, Stem cell，BT3.1, BTF5 56 CD278 Activated T cells ICOS, AILIM 56CD279 Activated T cells, Activated B cells PD1 55CD280 Myeloid progenitors, Fibroblasts, Endothelial cell subset, Macrophage subset， Endo180, TEM22 180 CD281 Monocytes, Neutrophils TLR1, TIL 90CD282 Monocytes, Neutrophils TLR2, TIL4 85CD283 Fibroblasts, Dendritic cells TLR3 100CD284 Monocytes (weak) TLR4 85CD285 Reserved for TLR5CD286 Monocytes, Dendritic cells, Endothelial cells TLR6 92CD287 Reserved for TLR7CD288 Peripheral blood leukocytes, Monocytes, Dendritic cells TLR8 120CD289 Dendritic cell subset, Activated B cells TLR9 115-120CD290 B lymphocytes, Dendritic cells TLR10 95CD291 Reserved for TLR11CD292 Bone progenitor cells BMPR1A 50-58CDw293 Bone progenitor cells BMPR1B 50-58CD294 Th2 cells, Eosinophils, Basophils CRTH2, GPR44 55-70CD295 Broad, Monocytes (weak) LEPR, OBR 130-150CD296 Epithelial cells, Muscle, T cell subset, Myeloid cell subset ART1 37CD297 Red cells, Erythroblasts, Activated monocytes ART4, Dombrock Blood Group 38CD298 Broad Na,K ATPase β3 Subunit 52CD299 Endothelial cell subset DC-SIGNR, L-SIGN 45CD300a Dendritic cells, Monocytes, Lymphocyte subsets CMRFH 60CD300c Dendritic cells, Monocytes, Lymphocyte subsets CMRF35ACD300e Monocytes CMRF35L1CD301 Immature dendritic cells MGL, CLECSF14 38CD302 Granulocytes, Monocytes, Dendritic cells DCL1 30CD303 Dendritic cell subset BDCA2 38CD304 Dendritic cell subset BDCA4, Neuropilin 140CD305 NK cells, T cells, B cells, Monocytes LAIR-1 40CD306 Putative secreted protein LAIR-2CD307 B cell subset IRTA2, FcRH5 100CD308 Reserved for VEGFR1CD309 Endothelial cells, Stem cell subsets VEGFR2, FLK1, KDR 230CD310 Reserved for VEGFR3CD311 Reserved for EMR1CD312 Neutrophils, Monocytes, DC subset, Macrophages, Activated lymphocytes, EMR2 90 CD313 Reserved for EMR3CD314 NK cells, T cell subset NKG2D 42CD315 B cell subset, Activated monocytes CD9P1, SMAP6 135CD316 B cells, T cells, NK cells (weak) EWI2, IgSF8 63CD317 B cells, T cells, Monocytes, NK cells, Dendritic cells BST2, HM1.24 29-33CD318 Stem cell subset CDCP1, SIMA135 135CD319 NK cells, T cell subset, B cell subset, Dendritic cell subset CRACC, SLAMF7 66CD320 Follicular dendritic cells 8D6CD321 Broad JAM-1, F-11R 32-35CD322 Endothelial cells, Monocytes, B cells, T cell subset JAM-2, VE-JAM 45 CD323 Reserved for JAM-3CD324 Epithelial cells, Stem cells, Erythroblasts E-Cadherin, Cadherin 1 120 CD325 Neurons, Endothelial cells, Stem cells N-Cadherin, Cadherin 2 140 CD326 Epithelial cells Ep-CAM 40CD327 B cells, Trophoblasts Siglec6, OB-BP1CD328 NK cells, Monocytes, T cell subset Siglec7, AIRM1 75CD329 Monocytes, Granulocytes, NK cells Siglec9CD330 Reserved for Siglec10CD331 Fibroblasts, Epithelial cells FGFR1, FLT2 130CD332 Fibroblasts, Epithelial cells FGFR2, KGFR 115-135CD333 Fibroblasts, Epithelial cells FGFR3, JTK4 115-135CD334 Fibroblasts, Epithelial cells FGFR4, JTK2 110CD335 NK cells NKp46, NCR1, Ly94 46CD336 NK cells NKp44, NCR2, Ly95 44CD337 NK cells NKp30, NCR3, Ly117 30CD338 Stem cell subset ABCG2, BCRP 72CD339 Stromal cells, Epithelial cells, Jagged1, JAG1 150CD340 Stem cell subset, HER-2 185CD344 Stem cell subset, Broad, FZD4 60CD349 Stem cell subset, Broad, FZD9 64 CD350 Stem cell subset, Broad, FZD10 65。

CD155在肾细胞癌细胞上的表达

Advances in Clinical Medicine 临床医学进展, 2019, 9(3), 373-381Published Online March 2019 in Hans. /journal/acmhttps:///10.12677/acm.2019.93057The Expression of CD155 on Renal CellCarcinoma CellsYusheng Zhang, Jian Wang*Department of Urology, Affiliated Hospital of Guangdong Medical University, Zhanjiang GuangdongReceived: Mar. 6th, 2019; accepted: Mar. 22nd, 2019; published: Mar. 29th, 2019AbstractObjective: To detect the expression of the Poliovirus Receptor (PVR, also known as CD155) on the membrane of the renal cell carcinoma and explore the possible mechanism of the immune escape of the renal cell carcinoma. Methods: 25 cases of renal cell carcinoma were collected in the Affi-liated Hospital of Guangdong Medical University. The renal cancer tissues were stained by SP me-thod. The results were analyzed statistically. Results: CD155 was highly expressed on the mem-brane of renal cancer cells. Among the 22 eligible specimens collected, 14 were positive and the positive rate was 63.64%. Among them, the weakly positive specimens accounted for 35.7% of the positive samples, and 64.3% of the positive samples were moderately positive. Conclusion: CD155 is highly expressed on the membrane of renal cancer cells. This study suggested that there is a new inhibitory signaling pathway of the immunology in renal cell carcinoma. CD155 may be a new checkpoint for renal cancer immune escape and may provide a new method of immunotherapy for renal cancer.KeywordsRenal Cell Carcinoma, CD155, TIGIT, CD226, NK Cells, T Cells, ImmunohistochemistryCD155在肾细胞癌细胞上的表达张雨生，王坚*广东医科大学附属医院泌尿外科，广东湛江收稿日期：2019年3月6日；录用日期：2019年3月22日；发布日期：2019年3月29日摘要[目的]通过检测脊髓灰质炎病毒受体(Polyclonal Antibody to Poliovirus Receptor，PVR，又名CD155) *通讯作者。

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ＣＤ系列在病理诊断中的应用(ZT)前言CD的全称是Cluster of Differentiation，意为分化簇、簇分化抗原。

由于它专指白细胞膜上的抗原或抗原识别的抗体，故全称为人白细胞分化抗原或识别分化抗原的单克隆抗体。

它是CD细胞和单克隆抗体的国际统一分类，以CD加序号表示。

白细胞分化抗原是指白细胞在正常分化成熟为不同谱系、不同阶段以与活化过程中，出现或消失的细胞外表分子。

白细胞分化抗原广泛参与细胞的生长、成熟、分化、发育、迁移和激活，白细胞分化抗原的改变还与某些病理状态的发生、开展有关。

随后的研究逐渐发现，白细胞分化抗原也广泛分布于非造血细胞如血管内皮细胞、成纤维细胞等细胞和各种肿瘤中，因而发挥着越来越重要的作用。

CD系列的用途极为广泛，也极为复杂，这里做一个简单罗列，欢迎大家补充、修正。

CD1CD1有四种异构体，分别为CD1a、1b、1c and 1d，CD1a对石蜡包埋的组织有用。

免疫组化表达CD1a、1b和1c常被大多数抗原递呈细胞表达，CD1d通常被胃肠道上皮和B淋巴细胞表达。

1．郎罕氏细胞和指突状细胞。

2． 70%胸腺细胞，但早期胸腺细胞或成熟T淋巴细胞不表达3．前体T-ALL 4．所有后胸腺的T-CLL、T－PLL，Sezary综合征、皮肤T细胞淋巴瘤和结节性T细胞淋巴瘤CD1阴性。

诊断应用1． CD1a：郎罕氏细胞肉芽肿病2．胸腺瘤的分类：皮质胸腺瘤是CD1+3． CD1a阳性在区别胸腺癌和肺肿瘤中可能很有用CD2作为T11抗原和LFA-3抗原〔白细胞功能相关抗原3〕，抗体仅在冰冻新鲜组织中有作用。

免疫组化表达1、所有T淋巴细胞和NK细胞可表达，B淋巴细胞不表达。

2、正常骨髓细胞或正常肥大细胞不表达，但肥大细胞增生症的肥大细胞可表达。

诊断应用一种广谱的T细胞标志物，当前抗体仅在新鲜冰冻组织中有反响。

CD3除了NCL-CD3-PS1外，单抗仅在新鲜冰冻组织中有用，多抗在石蜡包埋的组织中有用。

免疫组化表达存在于胸腺细胞、静止和活化T淋巴细胞上的一种T细胞标记物，B淋巴细胞、巨噬细胞、骨髓细胞与任何其它细胞均不表达，除了小脑中的蒲肯野细胞。

福尔马林固定石蜡包埋的组织需要应用多克隆抗体。

诊断应用1．T-细胞ALL2．非瘤性和瘤性T淋巴细胞3． NK 细胞CD3阴性发生在一些菌状真菌病，多形性淋巴瘤和间变性大细胞淋巴瘤。

CD4抗体仅在新鲜冰冻组织中有用。

免疫组化表达1、TH淋巴细胞，单核/巨噬细胞和郎罕氏细胞。

2、B 细胞不表达，CD4和CD8互相无交叉反响，当前抗体仅仅在新鲜或冰冻组织中有反响。

诊断应用鉴别TH淋巴细胞，大多数T细胞淋巴瘤为CD4+/CD8-。

CD5抗体可在抗原修复处理后的组织中应用。

免疫组化表达大多数T细胞。

诊断应用1. 85%的T-ALL表达2. 3-10%的AML 表达3. T细胞CD5缺乏是恶性标志4. >90%B-CLL表达5. 套细胞淋巴瘤6. 几乎所有其他低级别B细胞淋巴瘤为CD5阴性7. 区别胸腺癌和肺癌可能有用CD7抗体仅在新鲜冰冻组织中有用。

免疫组化表达T细胞诊断应用在T淋巴母细胞性淋巴瘤和ALL中阳性，T细胞阴性表达提示恶性。

CD8目前抗体仅仅在新鲜或冰冻组织中有反响，除了克隆C8/144B在石蜡包埋的组织中有反响。

免疫组化表达1. 抑制性(TS)和细胞毒性(TC)T细胞2. NK细胞3. 大颗粒淋巴细胞性白血病诊断应用T淋巴母细胞性淋巴瘤可表达。

CD9CD9〔运动相关蛋白，MRP-1〕这是一种24-27KD的细胞外表糖蛋白，它抑制细胞运动。

它的表达和肺癌、乳癌、结肠癌与黑色素瘤的生长和转移呈负相关。

免疫组化表达1．血细胞广泛表达2．正常肾脏组织3．肾癌常见的肾细胞癌 31/66乳头状癌 13/13集合管癌 1/4嫌色细胞癌 5/5大嗜酸粒细胞瘤 2/2总计 52/90CD10CD10〔CALLA，NEP〕原先的抗体仅在新鲜冰冻组织中有用，抗原恢复后克隆56C6可作用于石蜡包埋的组织中。

CD10是一种锌依赖性细胞膜金属结合蛋白，参与细胞神经肽和激素肽的后分泌过程。

它广泛地分布于肾、肝、小肠、胎盘、脉络膜丛、脑腺、腺皮质和白细胞，CD10是生发中心细胞与所致淋巴瘤的标志物。

免疫组化表达1．未成熟B细胞2．一些未成熟T细胞3．成熟颗粒细胞4．前体B细胞ALL75%阳性5．所有AML亚型6．未成熟淋巴细胞危象CML表达>90%.7．一些T淋巴母细胞性淋巴瘤8．Burkitt’s淋巴瘤9．滤泡性淋巴瘤：22/28例10．一些弥漫性大B细胞淋巴瘤11．骨髓瘤12．肾小球和肾小管13．纤维母细胞14．胆小管和肝细胞癌〔小管模式〕15．肾、膀胱、前列腺和子宫癌16．胰腺实性假乳头状肿瘤17．黑色素瘤细胞系18．子宫内膜间质〔但不包括腺体〕，子宫内膜间质结节和低级别内膜间质肉瘤，平滑肌瘤和未分化的子宫癌，通常仅仅局部和/或微弱染色增生期子宫内膜 5/5分泌期子宫内膜 5/5萎缩性子宫内膜 3/3子宫内膜间质结节 1/1低级别子宫内膜间质肉瘤 13/13高级别子宫内膜间质肉瘤 4/6混合性子宫内膜间质平滑肌肿瘤 1/1细胞性平滑肌瘤 3/10平滑肌肉瘤 3/5成人粒层细胞瘤 1/10未分化子宫内膜癌 1/6含有子宫内膜间质成分的子宫癌 1/1含有性索样成分的子宫间叶肿瘤〔2型〕 1/1诊断应用1、白血病分类2、淋巴瘤的不同诊断：前B细胞淋巴瘤阳性滤泡性淋巴瘤弱至中等程度染色淋巴母细胞性淋巴瘤阳性Burkitt’s淋巴瘤大多数病例阳性弥漫性大B细胞淋巴瘤占30％CLL 阴性淋巴浆细胞性淋巴瘤阴性套细胞淋巴瘤阴性骨髓瘤弱染与预后有关T细胞淋巴瘤很少阳性，除前体淋巴母细胞淋巴瘤/白血病3、子宫内膜间质肉瘤的诊断：诊断转移性子宫内膜间质肉瘤，可发生于原发灶切除多年以后，在原发性卵巢癌和转移性舌状生长方式的肿瘤中表达不明显。

联合h-caldesmon、desmin和SMA鉴别子宫内膜间质肿瘤和平滑肌瘤。

联合a-inhibin鉴别子宫内膜间质肿瘤和成人粒层细胞瘤。

联合CD45和其它淋巴性标记物，区别子宫内膜间质肉瘤和淋巴瘤，注意局部淋巴瘤阳性。

4、区别肝细胞癌和转移性肝癌，C10小管染色对于肝细胞癌具有特异性。

CD11该抗体仅在恒冷切片应用。

免疫组化表达1、 CD11a，白细胞功能相关蛋白〔LFA-1〕B细胞T细胞NK细胞单核细胞粒细胞巨核细胞和活性血小板2．CD11b，C3bi 受体粒细胞单核细胞一些组织细胞3、CD11c单核细胞组织中的巨噬细胞粒细胞一些抑制/细胞毒T细胞Ts/TK细胞一些B细胞真性组织细胞肿瘤毛细胞白血病一些单核细胞样B细胞淋巴瘤CD13免疫组表达1、一些髓样白血病2、粒细胞肉瘤3、一些B细胞CLLsCD14免疫组化表达1．单核-巨噬细胞2．单核细胞白血病3．真性组织细胞淋巴瘤4．郎罕氏细胞和郎罕氏组织细胞增多症CD15CD15〔LeuM1〕LeuM1最初报道与骨髓单核细胞中膜相关的岩藻三糖类乙酰半乳糖反响，其表位称为X-Itapen。

抗体在石蜡包埋的组织中有用。

免疫组化表达1．成熟粒细胞阳性，早幼粒细胞染色不定，正常原始粒细胞呈阴性。

2．活化淋巴细胞，主要是T细胞。

3．白血病髓样和单核细胞，几乎所有CML病例阳性，ALL阳性率低。

4． R-S细胞和单核霍奇金细胞，这种染色为特征性膜染加上与高尔基体相关的核旁染色。

5．粒细胞肉瘤。

6．大多数腺癌。

诊断应用1．霍奇金淋巴瘤2．粒细胞肉瘤3．区别腺癌和间皮瘤，解释在一些病例中发生的肿瘤细胞被炎症细胞所吞噬的现象可能是困难的， CD15是由死亡的炎细胞所释放。

作者腺癌间皮瘤Srhibani，1986 47/50 0/28Wick，1990 52/52 0/51Doglioni，1996 19/22 0/20Dejmek，1997 35/43 22/110Leers，1998 9/21 0/20Brockstedt，2000 46/57 18/119Gonzalez-lois，2001 8/11 3/40Harper，2001 9/18 7/112in，2001 23/23 2/42总计 84%〔248/297〕 10%〔52/542〕CD16免疫组化表达1． NK 细胞2．一些T细胞3． NK细胞肿瘤4． NK样T细胞淋巴瘤5．大颗粒淋巴细胞白血病CD19这种抗体仅应用于恒冷切片。

免疫组化表达尽管不能调控浆细胞的最终分化，这种蛋白质仍随B细胞系的开展而表达，B细胞系肿瘤细胞能可靠表达，包括白血病。

CD20表位L26在石蜡包埋的组织中起反响。

免疫组化表达1．所有成熟B淋巴细胞但不包括浆细胞2．大多数B细胞淋巴瘤3．大约50%的B淋巴母细胞淋巴瘤瘤CD20阳性4．一些T淋巴细胞显示弱染色5．一些骨髓瘤诊断应用1． B细胞淋巴瘤2．毛细胞白血病CD21CD21是补体C3d的受体，抗体在石蜡包埋的组织中有用。

免疫组化表达1．滤泡树突状细胞〔FDC〕2． B淋巴细胞〔仅在恒冷切片中〕诊断应用证明滤泡树突状细胞的筛状网结构。

1．在HIV 相关淋巴结病中，滤泡可能大而弥漫，侵占淋巴结大部〔PGL I期〕或者萎缩〔PGL II期〕。

2．滤泡中心细胞淋巴瘤。

3．结节性淋巴细胞为主的霍奇金淋巴瘤的结节，显示类似的筛状网结构，但它的外形比滤泡性淋巴瘤更复杂。

4．被低级别MALT淋巴瘤侵袭的剩余生发中心。

5．在套细胞淋巴瘤/家族性淋巴性结肠息肉中散在分布的FDC。

6．血管免疫母细胞性T细胞淋巴瘤其FDC筛状网结构围绕在增生的小静脉周围。

7．Castleman’s病〔血管滤泡性增生〕。

8． FDC肿瘤。

CD22免疫组化表达胞浆表达发生在未成熟B细胞，膜表达发生在成熟B细胞。

毛细胞性白血病强表达，CLL中弱表达。

CD23石蜡切片中染色不完全可靠。

免疫组化表达1．生发中心的活化B细胞。

2．大多数低级别B细胞淋巴瘤，包括大多数CLL。

3．套细胞淋巴瘤不表达。

4．经典型霍奇金淋巴瘤的R-S细胞。

CD25免疫组化表达1．活化T细胞、B细胞和巨噬细胞2．和HTLV相关的成人T细胞ALL3．毛细胞白血病4．一些外周T细胞淋巴瘤5．一些外周B细胞淋巴瘤6．一些霍奇金淋巴瘤CD30CD30〔Ki-1〕Ki-1抗体可识别一种胞内蛋白和一种跨膜糖蛋白，它们之间无明显联系，可能解释某些对Ki-1阳性而使用Ber-H2阴性的病例。

这种跨膜糖蛋白经常被认为是CD30抗原，Ber-H2鉴别常规固定和处理后存在的表位。

CD30基因定位在一号染色体1q36位点，是一种淋巴活性基因。