大学课程遗传学实验实验四 孚尔根(Feulgen)核染色课件
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实验四染色体核型分析课件
臂比（长/ 短）
Arm ratio(L/
S)
类型 Type
1 3.25+0.99=4.24
7.05
2 2.49+0.92=3.41
5.61
3 2.06+1.02=3.08
5.06
4 1.71+1.03=2.74
4.51
5 1.46+0.96=2.42
3.99
6 1.21+0.92=2.13
3.52
L
核型模式图
二、实验原理
不同物种的染色体都有各自特定的形态结构 （包括染色体的长度、着丝点位置、臂比、随 体大小等）特征，而且这种形态特征是相对稳 定的。因此，染色体核型分析是生物种质资源 遗传性研究的重要内容。
染色体核型分析主要包括染色体长度、染色体 臂比、着丝点位置、次缢痕等。
三、实验材料及用品
3.27
st
L
2.70
sm
L
2.03
sm
M2
1.66
m
M2
1.51
m
M1
1.32
m
五、实验方法与步骤
1.用Photoshop图像处理软件，对染色体照片进行适 当的编辑（包括去色、调节反差和对比度）、并对 染色体进行初编号。
2.用Image j 或 Image tool软件，测量每一条染色体 的短臂、长臂的长度，计算其相对长度、臂比值。
核型(karyotype) 是指染色体组在有丝分裂中期的表型,
包括染色体数目、大小、形态特征的总和。 核型模式图(idiogram)
将一个染色体组的全部染色体逐个按 其特征绘制下来, 再按长短、形态等特征排 列起来的图象称为核型模式图,它代表一个 物种的核型模式。
孚尔根染色法
孚尔根染色法DNA是主要的遗传物质，集中于染色体上。
1924年孚尔根首先用席夫试剂(Schiff)作试验，鉴定了染色体上DNA的存在，故称为孚尔根染色法。
孚尔根染色法的反应原理主要与席夫试剂的化学性质有关，此试剂的基本成分是碱性品红，偏亚硫酸氢钠(NaHSO3)和盐酸.碱性品红的主要成分是三氨基三苯甲烷氯化物。
实验原理：细胞中的DNA受1NHC1，60℃水解作用以后，核酸中的嘌呤碱很快完全被除掉，使脱氧核糖中潜在的醛基获得自由状态。
水解后，组织要经水洗再移至希夫（Schiff）试剂中，希夫试剂即同露出来的醛基发生反应，呈现紫红色。
这个反应是Feulgen在1942年提出来的，是DNA的一个特异性检查法。
水解的时间很重要，因为核酸的水解有两个过程，第一，漂呤碱很快被除掉，脱氧核糖中潜在的醛基显露出来，第二，组蛋白和核酸愈来愈多地被除掉。
在短时间的水解作用以后，第一个过程占优势，这时候用希夫试剂染色，染色体的染色作用最强。
随着水解作用的继续进行，第二个过程逐渐变成优势，因此水解液中的希夫反应增强，而染色体中的希夫应减弱。
最后，第二个过程超过第一过程时，染色体也随之停止反应。
希夫试剂是碱性品红———亚硫酸溶液，呈无色。
与DNA醛基反应后，使碱性品红恢复原来的红色。
二、实验目的：观察蚕豆根尖细胞或其它根尖细胞内染色体中的DNA，以及染色体在有丝分裂中的行为，掌握Feulgen染色方法。
三、实验材料：上次实验制成了石蜡切片。
四、实验准备：1．用具立式染色缸一套，镊子，盖玻片，小漏斗，铁架，毛边纸，玻璃棒，显微镜，恒温水浴锅，温度计，烧杯，棕色瓶，黑纸。
2．玻璃器皿的清洗主要是染色缸的清洗，一般用肥皂粉洗，用水冲净即可，如不能洗净时，要用洗液浸泡后，再冲洗，自来水洗后，再用少量蒸馏水过洗一次。
盛放100%酒精、二甲苯的染色缸必须干燥，缸盖内缘必须涂以几士林，以防止蒸发和收水分，影响浓度。
染色缸上要贴上标签。
植物染色体的孚尔根染色法
四、实验步骤
1. 希夫试剂的配制
• 将0.5g碱性品红徐徐加入煮沸的 碱性品红徐徐加入煮沸的100ml蒸馏水中 用玻璃棒搅拌 蒸馏水中, 碱性品红徐徐加入煮沸的 蒸馏水中 用玻璃棒搅拌, 使之充分溶解, 待溶液冷却至58°C左右 过滤于棕色瓶中。 使之充分溶解 待溶液冷却至 ° 左右, 过滤于棕色瓶中。 左右 • 当滤液冷却至 °C时, 再加入 当滤液冷却至26° 时 再加入10ml的1M盐酸和 盐酸和0.5g亚硫酸氢钠 的 盐酸和 亚硫酸氢钠 或偏重亚硫酸钠(钾 摇动, 溶解后密封于棕色瓶中, 或偏重亚硫酸钠 钾), 摇动 溶解后密封于棕色瓶中 置于黑暗 低温处。次日检查溶液颜色, 须呈无色透明或淡茶色才可使用。 低温处。次日检查溶液颜色 须呈无色透明或淡茶色才可使用。 • 若稍呈红色可加入 若稍呈红色可加入0.5g活性炭连续摇动 在4°C下静置过夜 然 活性炭连续摇动, 下静置过夜, 活性炭连续摇动 ° 下静置过夜 后过滤脱色。 后过滤脱色。
2. 染色过程
① 取固定好的根尖, 用水洗2-3分钟, 放入室温条件下的1N HCl处理根尖 材料2-3分钟。 ② 将根尖换入60℃预热的HCl, 置于恒温水浴中, 在60±0.5℃的条件下水 解8-10分钟。 ③ 吸出热HCl, 换入室温1N HCl再处理1-2分钟, 然后水洗2-3次。 ④ 吸净水分, 加入Schiff试剂, 盖上盖子, 在黑暗条件下染色30分钟, 也可 过夜。 ⑤ 用水漂洗, 去掉细胞中残存的一些有色的品红分子。 ⑥ 取根尖置载玻片上, 用镊子夹碎后, 加一滴45%醋酸, 然后盖上盖片。 ⑦ 压片、观察。
玉米染色体核型图(2n=20), Feulgen 染色
玉米染色体核型图(2n=20+2B)
玉米染色体核型图(2n=20+4B) /mnl/79/18rosado.htm
细胞生物学：实验4 feulgen反应显示细胞中的DNA
实验四feulgen反应显示细胞中的dna实验目的了解feulgen反应的基本原理熟悉feulgen反应的染色方法掌握生物学绘图方式实验原理dna可在酸性条件下水解嘌呤脱氧核糖之间的糖苷键断开形成醛基cho再用显示醛基的特异性试剂schiff试剂处理形成光镜下所见的细胞核内紫红色反应产物
实验四
Feulgen 反应显示细胞中 的DNA
细胞膜/壁 细胞质
核仁
标题
细胞核
染色方法（放大倍数）
作业：用铅笔绘制一个洋葱根尖细胞并注 明各主要部位的颜色。
绘图的要求见实验ห้องสมุดไป่ตู้告P16。
选取具有普遍性的细胞
线条平滑、点均一、细致
5）弃去schiff试剂，用 1ml 亚硫酸氢钾洗 3 次，每次浸泡 2-3 min；
6）弃去亚硫酸氢钾，用 2ml 左右的蒸馏水漂洗 2 遍；
7）吸取洋葱根尖置于玻片上，稍微吸取水分；滴加 1 滴 4.5％ 醋酸，然后 盖上盖玻片，轻压使根尖散开成单层云雾状；
8）观察：在低倍镜下找到分生区细胞，再高倍镜下观察细胞各部位的染色反 应。
实验目的
• 了解Feulgen反应的基本原理 • 熟悉Feulgen反应的染色方法 • 掌握生物学绘图方式
实验原理
DNA可在酸性条件下水解，嘌呤—脱氧核糖之间的糖苷键 断开，形成醛基(—CHO)，再用显示醛基的特异性试剂Schiff 试剂处理，形成光镜下所见的细胞核内紫红色反应产物。
Schiff试剂的主要成分是碱性品红，碱性品红结构中的醌基是一个发 色基团，经亚硫酸处理后，则醌基两端的双键打开，形成无色品红-硫 酸复合物。
紫红色
Meristem
洋葱根尖
实验步骤
1）取 0.6cm 长的洋葱根尖放到离心管中；
实验四
Feulgen 反应显示细胞中 的DNA
细胞膜/壁 细胞质
核仁
标题
细胞核
染色方法（放大倍数）
作业：用铅笔绘制一个洋葱根尖细胞并注 明各主要部位的颜色。
绘图的要求见实验ห้องสมุดไป่ตู้告P16。
选取具有普遍性的细胞
线条平滑、点均一、细致
5）弃去schiff试剂，用 1ml 亚硫酸氢钾洗 3 次，每次浸泡 2-3 min；
6）弃去亚硫酸氢钾，用 2ml 左右的蒸馏水漂洗 2 遍；
7）吸取洋葱根尖置于玻片上，稍微吸取水分；滴加 1 滴 4.5％ 醋酸，然后 盖上盖玻片，轻压使根尖散开成单层云雾状；
8）观察：在低倍镜下找到分生区细胞，再高倍镜下观察细胞各部位的染色反 应。
实验目的
• 了解Feulgen反应的基本原理 • 熟悉Feulgen反应的染色方法 • 掌握生物学绘图方式
实验原理
DNA可在酸性条件下水解，嘌呤—脱氧核糖之间的糖苷键 断开，形成醛基(—CHO)，再用显示醛基的特异性试剂Schiff 试剂处理，形成光镜下所见的细胞核内紫红色反应产物。
Schiff试剂的主要成分是碱性品红，碱性品红结构中的醌基是一个发 色基团，经亚硫酸处理后，则醌基两端的双键打开，形成无色品红-硫 酸复合物。
紫红色
Meristem
洋葱根尖
实验步骤
1）取 0.6cm 长的洋葱根尖放到离心管中；
《孚尔根核染色》课件
染色过程
孚尔根核染色包括几个关键步骤：细 胞固定、细胞通透性处理、DNA氧化 、染色和观察。
染色过程需要在弱酸条件下进行，以 促进DNA的氧化和后续的染色反应。
在染色过程中，需要使用特定的染料 ，如Giemsa染料或巴尔巴土染料，这 些染料能够与DNA-蛋白质加合物结 合，产生明显的染色效果。
染色效果
政策支持
政府可以出台相关政策， 支持孚尔根核染色技术的 研发和应用，促进其发展 壮大。
感谢您的观看
THANKS
该技术可用于DNA多态性分析 ，有助于研究基因变异与疾病 的关系。
技术局限性
1 样本量要求
孚尔根核染色技术需要一定量的样本才能进行检测，对 于微量样本可能存在限制。
2 交叉污染风险
孚尔根核染色技术需要一定量的样本才能进行检测，对 于微量样本可能存在限制。
3 假阳性结果
孚尔根核染色技术需要一定量的样本才能进行检测，对 于微量样本可能存在限制。
减少人工操作误差。
降低成本
通过优化试剂和设备， 降低检测成本，使更多 实验室和医疗机构能够
应用该技术。
05
孚尔根核染色技术的未来发展
技术发展趋势
自动化与智能化
随着机器人技术和人工智能的发展，孚尔根 核染色技术将逐渐实现自动化和智能化，提 高染色效率和准确性。
环保与可持续发展
随着环保意识的提高，未来的孚尔根核染色 技术将更加注重环保和可持续发展，减少对 环境的污染和资源消耗。
《孚尔根核染色》PPT课件
目录
• 引言 • 孚尔根核染色技术原理 • 孚尔根核染色技术的应用 • 孚尔根核染色技术的优缺点 • 孚尔根核染色技术的未来发展
01
引言
核染色技术简介
孚尔根反应
实验九 孚尔根反应（Feulgen Reaction）Feulgen反应（Feulgen reaction）是显示DNA的最典型的组织化学反应，是学者Feulgen和Rossenbeck 在1924年首次发明出来的，简称为Feulgen法。
因对DNA的显示反应具有高度专一性，因此常常被用来显示细胞内DNA的分布情况。
实验目的1. 熟悉并掌握Feulgen反应的原理及其实验操作方法2. 对细胞的免疫组化研究方法有一初步的认识实验原理自Feulgen等发明出显示DNA的Feulgen反应方法以来，其作用机制也久经研究和讨论，现已基本取得共识。
其具体反应原理是，标本经稀盐酸水解后，DNA分子中的嘌呤碱基被解离，从而在核糖的一端出现了醛基。
Schiff试剂中的无色品红可与醛基反应，形成含有醌基的化合物分子, 因醌基为发色团，故可呈现出紫红色。
也就是说, DNA经稀酸水解后产生的醛基，具有还原作用，可与无色品红结合形成紫红色化合物，从而显示出DNA的分布。
其反应机制如下图所示。
2HCl+Na2S2O5→2NaCl+SO2+H2SO3实验用品一、材料 香柏油5瓶，擦镜纸5本，镊子5把，盖玻片20片，用carnoy's固定液固定的肝脏和精巢切片20片。
二、试剂1. schiff氏试剂将0.5g碱性品红置入三角烧瓶内沸腾的蒸馏水中，时时摇动玻璃瓶，煮沸5min 使之充分溶解，冷却至50℃时过滤，加入10ml 1mol/L HCl，冷至25℃时，加入0.5g偏重亚硫酸钠(Na2S2O3)无水亚硫酸钠(NaHSO3)，在室温冷暗处至少放置24h(有时需2~3天)，使其颜色退至淡黄色，密封瓶口，藏于暗处，最好保存于4℃冰箱中(可保存数月或更长时间)。
在使用前加入0.5g活性碳, 摇1min, 用粗滤纸过滤，滤液应为无色；若液体颜色变为粉红色，便不能再用。
2. 亚硫酸水(洗涤剂) 用200ml普通自来水(不要用蒸馏水, 以免引起误差)、10ml 10%的偏重亚硫酸钠水溶液和10ml 1mol/L HCl，三者在使用前混合，现用现配。
孚尔根(FEULGEN) 染色
Schiff 试剂的配置
称取0.5g碱性品红加入到100ml煮沸的蒸馏水中（用三角烧瓶）， 时时振荡，继续煮 5分钟（勿使之沸腾），使之充分溶解。然 后冷却至50℃时用滤纸过滤，滤液中加入10ml 1N HCl，冷却至 25℃时，加入0.5g Na2S2O5（偏重亚硫酸钠或钾），充分振荡 后，塞紧瓶塞，在室温暗处静置至少24小时（有时需2～3天）， 使其颜色退至淡黄色，然后加入0.5g活性炭，用力振荡1分钟， 最后用粗滤纸过滤于棕色瓶中，封严瓶塞，外包黑纸。滤液应 为无色也无沉淀，贮于4℃冰箱中备用。如有白色沉淀，就不 能再使用，如颜色变红，可加入少许偏重亚硫酸钠或钾，使之 再转变为无色时，仍可再用
反应原理
样品经稀盐酸水解后，DNA分子中的嘌呤 碱基被解离，从而在核糖的一端出现了醛 基。Schiff试剂中的无色品红可与醛基反应， 形成含有醌基的化合物分子, 因醌基为发色 团，故可呈现出紫红色。也就是说, DNA经 稀酸水解后产生的醛基，具有还原作用， 可与无色品红结合形成紫红色化合物，从 而显示出DNA的分布。
操作方法及步骤
以Feulgen染色法观察洋葱根尖有丝分裂为例
•1．将洋葱根尖或鳞茎内表皮放在1N HCl中， 加热到60℃水解8～10 min。 • 2．蒸馏水水洗。 •3．Schiff试剂遮光染色30min。 •4．用新鲜配制的亚硫酸水溶液洗3次，每次 1min。 • 5．水洗5min。 •6．将根尖放在载玻片上，镊子捣碎，盖上盖 玻片，压片（洋葱表皮可省去压片这一步）。 • 7．显微镜检查。 结果：细胞中凡有DNA的部 位应呈现紫红色的阳性反应。
孚尔根染色法的反应原理主要与Schiff试剂的化学性质有关，此试剂的基本 成分是碱性品红，偏亚硫酸氢钠(NaHSO3)和盐酸.碱性品红的主要成分是 三氨基三苯甲烷氯化物。
孚尔根核染色25页PPT
6、最大的骄傲于最大的自卑都表示心灵的最软弱无力。——斯宾诺莎 7、自知之明是最难得的知识。——西班牙 8、勇气通往天堂，怯懦通往地狱。——塞内加 9、有时候读书是一种巧妙地避开思考的方法。——赫尔普斯 10、阅读一切好书如同和过去最杰出的人谈话。——笛卡儿
Thank you
孚尔根核染色
1、纪律是管理关系的形式。——阿法 纳西耶 夫 2、改为训练，不是通过语言影响 ，而是 让儿童 练习良 好道德 行为， 克服懒 惰、轻 率、不 守纪律 、颓废 等不良 行为。 4、学校没有纪律便如磨房里没有水。 ——夸 美纽斯
5、教导儿童服从真理、服从集体，养 成儿童 自觉的 纪律性 ，这是 儿童道 德教育 最重要 的部分 。—— 陈鹤琴
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1N HCl 60℃
酸解使DNA醛基暴露
醛基与Schiff试剂发生显色反应
孚尔根核染色法是Feulgen和Rossonbek于1924 年提出的鉴定细胞中DNA的组织化学方法。其 优点是制片清洁、染色体清晰、组织软化好， 易于压片。但对小型染色体（如玉米、水稻） 效果较差。在切片、涂片上研究核和染色体时， 能减少细胞质着色对观察的影响。在细胞学研 究中普遍采用
材料：大蒜根尖、洋葱根尖
1mol/L 盐酸(常温和60℃) Schiff试剂 45%醋酸或亮绿
实验步骤
预处理的目的及方法
目的：改变细胞质粘度，破坏和抑制纺锤体 的形成，使染色体适度缩短和分散。
方法： 0.04-0.2%秋水仙素溶液2-4小时。 对二氯苯饱和溶液3-5小时。 0.002M (或0.03%)8-羟基喹啉1.5-2小时以
黑暗条件下染色。 要保证细胞呈单层，使染色体在一个平面上，
根尖的切片尽量要薄，压片必须用力适度，压 片的实验台面要平坦。
实验作业
绘制你所观察到的图象，并说明是有丝 分裂的哪一个时期，并注明放大倍数。
前期、中期、后期、末期
思考题
为什么要严格掌握DNA的水解条件？ 为什么实验材料从60℃盐酸中倒出后，
实验原理
有丝分裂是体细胞分裂的主要方式，在植物根尖或茎尖的 分生组织中可清晰观察。在有丝分裂时，细胞核与细胞质有很 大的变化，但以细胞核内染色体的变化最为明显，而且是有规 律地进行。各种生物染色体在数目上和形态上是相对恒定的， 并随科属种的不同而具有一定的特征。大蒜体细胞中有8对共 16条染色体，在有丝分裂过程中，每个染色体能复制一份， 然后分配到两个子细胞中，所以两个子细胞与母细胞所含的染 色体在数目、形态和性质上都是相同的。在细胞遗传学研究中， 人们常常需要了解某一物种的染色体数目，而最有效的方法就 是观察细胞有丝分裂的中期，这样能得到较为准确的结果。
Carnoy’s固定液： 冰醋酸:氯仿:无水乙醇=1:3:6 改良Carnoy’s固定液： 冰醋酸:无水乙醇=1:3
分组：6人一组
1、取材: 每人2-3个根尖置于eppendorf管—— dH2O洗2-3次——1N HCl，室温2分钟。
2、水解 :倒掉HCL，换入60O预热的HCl——60O 水浴10’。去掉热HCl，再换冷HCl，1分 钟，——蒸馏水洗2次
Schiff试剂 的组成及配制
Schiff试剂 ：即无色亚硫酸品红。 配制方法：溶解1g碱性品红于200ml煮沸的重蒸
水中，轻轻摇动，继续煮5min使其完全溶解， 冷却至55-50℃时过滤到棕色带塞子的玻璃瓶中， 加入1N HCl 20 ml，继续冷却至25 ℃左右，再 加入1g偏重亚硫酸钠，摇动使之溶解，置黑暗低 温处或冰箱内18-24小时后检查，试剂如透明无 色或淡黄色即可使用。
3、染色: 吸净水分，加入Schiff试剂,盖上盖子， 暗处染色30’——漂洗液漂洗2次，2分钟/次
4、取根尖置于载玻片上，用镊子夹碎后，再加 一滴45%的醋酸，软化5min，压片镜检。
HE XI UNIVERSITY
根尖形态与结构
成熟区 伸长区
分生区 根冠
注意事项
Schiff试剂小心取放，及时清洗吸取Schiff试剂 的吸管。
实验 四
植物有丝分裂的孚尔根 (Feulgen)核染色观察
实验目的
掌握孚尔根核染色的方法。 了解孚尔根染色的原理。 有丝分裂
实验原理
孚尔根染色法是鉴别细胞中DNA的组织 化学方法.
DNA—１ＮHCl,60OC水解,部分地破坏核 糖与嘌呤之间的糖苷键—嘌呤碱脱掉—核 糖的C1上的醛基呈游离态—与Schiff试剂 的无色亚硫酸品红分子反应——呈现为紫 红色的化合物。
材料从60℃的盐酸倒出后温度还相当高，如 果直接转入Schiff试剂中，则会使Schiff试剂发 生分解影响效果。所以我们首先要把材料转入 室温的盐酸溶液中，做一个缓冲以避免Schiff 试 剂分解。
为什么RNA在此过程中不会着色？
由于在酸解条件下，RNA较DNA分子更 加稳定，它的醛基难以游离，所以在用 Schiff试剂染色时RNA分子不会着色。
前期（prophase)
染色体逐渐变得清晰可辨，缩短变粗，收缩成 螺旋状，核仁逐渐消失，核膜开始破裂，核质 和细胞质融为一体。
前中期（premetaphase)
纺锤体逐渐明显，在核区形成 ，着丝粒附着在纺锤 丝上。
中期（metaphase)
后期（anaphase)
着丝粒纵裂为二，姐妹染色单体彼此分离，各自移向 一极，染色体的两臂由着丝粒拖曳移动。
使组织内各种物质成分产生不同的折射率，便 于鉴定、观察。
使不同组织成分对染料有不同的亲和力，便于 染色。
防止细胞过度收缩或膨胀，失去原有的形态结 构。
固定液
简单固定液：如乙醇、甲醛、冰醋酸、 升汞等。
混合固定液：如Carnoy’s固定液、AF液 （乙醇:甲醛=9:1)
Carnoy’s固定液
漂洗液——200ml水+10ml 1 M HCl+1g偏 亚硫酸钾（钠）
背背景景知知识识
有丝分裂（mitosis）是细胞分裂的方式，每个 子细胞精确地具有和亲代细胞在数目上及形态上完 全相同的染色体，以保证子细胞含有与母细胞相等 的遗传信息。有丝分裂时，染色体呈现连续的、动 态的变化，一般分为间期、前期、中期、后期和末 期5个时期。从间期到前期和中期，每条染色体为 两条染色单体。从后期到末期，直到下一个细胞周 期的G1期，其染色体实质上只是一条染色单体。在 光学显微镜下，可根据染色体的收缩程度、集结等 特征来确定一个细胞所处的分裂时期。
细胞类型
体细胞
生殖细胞
DNA复制 细胞分裂次数
染色体数目
一次
一次
一次
二次
不变（2n 2n） 减半（2n n）
DNA含量由4c 2c DNA含量由4c c
联会、互换
无
有
实验原理
有丝分裂是一个复杂的连续过程，细胞 内发生了一系列的变化，最主要的是细胞核 内的染色质形成了染色体。经过复制，每条 染色体复制成为两条。有规则地平均分配到 两个子细胞中去
还要放入室温的盐酸中呢？ 为什么RNA在此过程中不会着色？
为什么要严格掌握DNA的水解条件？
温度过低，时间过短：则DNA的水解不 够彻底，醛基暴露不充分，染色会过浅。
温度过高，时间过长：则DNA过度水解， 游离的核苷酸会漂移到细胞质中，造成 染色浅或不均一 。
为什么要在实验材料从60℃盐酸中倒 出后，再放入室温的盐酸中呢？
上，室温。 低温：1-4℃处理24小时。
固定：将新鲜的活组织从生物体取下后， 立即投入固定剂中，借助化学药品的作 用，使细胞保持原有形态结构的一种手 段。
固定的目的
迅速防止细胞的死后变化，防止自溶、腐败， 尽量保持生长状态结构。
使细胞中的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变 为不溶性物质，以保持生前状态。
末期（telophase)
子细胞的染色体凝 缩为一个新核，在核的 四周核膜重新形成，染 色体又变为均匀的染色 质，核仁又重新出现。 纺锤体被降解，细胞质 被新的细胞膜分隔成两 部分，结果产生2个子 细胞，其染色体和原来 细胞中完全一样。
减
数
分期Ⅰ
分
中期Ⅱ
中期
裂
的
后期Ⅱ
后期
比
较
有丝分裂 减数分裂