植物生理实验
植物生理学实验
4. 用新的溶液和新鲜的材料重复实验观察几次，直到有确定的结果 为止。在此条件下，细胞的渗透势于上述两个极限溶液浓度之平 均值的渗透势相等的结果记录于下表：
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7
蔗糖浓度(1mol/L) 渗透势(MPa)
的渗透势就等于溶液的渗透势。
当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时，细胞的等渗浓度将介 于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离浓度之间的溶液浓 度，将等渗浓度代入公式可以计算出细胞的渗透势。
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二. 操作步骤
1. 溶液配制：
先配制1mol/L的蔗糖母液，再稀释成0.20、0.25、0.30、0.35、 0.40、0.45、0.50、0.55、0.60 mol/L溶液，备用。
质壁分离的相对浓度 （作图表示）
0.60
0.55
0.50
0.45
0.40
0.35
0.30
0.25
0.20 三. 结果计算
测出引起质壁分离刚开始的蔗糖溶液最低浓度和不能引起质壁分 离的最高浓度平均值（C）后，按实验1中的公式φS =iRCT计算 溶液的渗透势或植物组织的渗透势(或水势)。 四.实验作业 1. 试述细胞渗透作用的原理。
五. 结果结果
1.记录： 蔗糖溶液浓度（mol/L） 小液流移动方向 0.025 0.05 0.10 0.20 0.30
2.计算
根据公式计算溶液的渗透势表示植物组织的水势：
φw=-iRCT
φw--表示植物组织的水势，用Mpa表示
i---为溶液的等渗系数(NaCl等渗系数为1.8)
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告植物生理学实验实验报告摘要：本实验旨在探究植物的生理反应和适应机制。
通过观察植物在不同环境条件下的生长和生理指标的变化，我们可以更好地理解植物的生理过程和适应策略。
本实验采用了盆栽植物的生长观察和测量方法，结合实验室中的设备和技术手段，得出了一系列有关植物生理学的结论。
1. 引言植物生理学是研究植物生长、发育和适应环境的科学，它涉及植物的生理过程、代谢调节、信号传导等方面。
通过实验研究，我们可以揭示植物在不同环境条件下的生理反应和适应机制，为植物的生产和保护提供理论依据。
2. 材料与方法本实验选取了常见的盆栽植物作为实验对象，包括绿萝、仙人掌和吊兰。
为了模拟不同环境条件，我们设置了三组实验组：阳光组、阴影组和干旱组。
每组实验设置五个重复，以保证实验结果的可靠性。
3. 结果与讨论3.1 生长观察在阳光组中，绿萝的叶片呈现出深绿色，茂密且向阳生长；仙人掌的刺变得更加粗壮，颜色也更加鲜艳；吊兰的叶片展开较大，叶色浅绿。
而在阴影组中，绿萝的叶片变得较为苍白，茂密度下降；仙人掌的刺变得细长，颜色较为暗淡；吊兰的叶片展开较小，叶色深绿。
在干旱组中，绿萝的叶片开始出现萎蔫现象；仙人掌的刺变得干瘪，颜色变得暗淡；吊兰的叶片开始卷曲，叶色变黄。
3.2 生理指标测量我们通过测量叶片的光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量等指标，来进一步了解植物在不同环境条件下的生理变化。
在阳光组中，绿萝的光合速率较高，蒸腾速率也较高；仙人掌的光合速率较低，蒸腾速率也较低；吊兰的光合速率和蒸腾速率处于中等水平。
而在阴影组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率下降明显；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
在干旱组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率急剧下降；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
叶绿素含量的测量结果与光合速率和蒸腾速率的变化趋势一致。
4. 结论通过本实验的观察和测量，我们可以得出以下结论：1) 植物在阳光充足的环境下生长更加茂盛，叶片颜色更加鲜艳。
现代植物生理学实验指南
现代植物生理学实验指南植物生理学是一门重要的生物学科，研究植物在生长、发育、代谢和适应环境等方面的生理过程。
为了深入理解植物生理学，我们需要进行各种实验研究，这里为大家提供一份现代植物生理学实验指南，帮助大家系统了解植物生理学实验的基本方法和技巧。
实验一：光合作用实验光合作用是植物体内最重要的生理过程之一，我们可以通过测量植物的氧气释放量和二氧化碳吸收量来评估光合作用效率。
实验步骤如下：1. 将一片绿叶片放入水中，并用环状金属片夹住叶片。
2. 将装有水的容器倒置在金属片上，并使叶片完全浸入水中。
3. 在光亮条件下放置数小时，测量水中溶氧量的变化，记录并计算光合速率。
4. 重复操作若干次，得出稳定的结果。
实验二：水分利用实验水是植物生命的重要组成部分，其缺乏或过多都会对植物生长产生影响。
我们可以通过测量植物根系吸水能力和细胞渗透压来评估植物对水分的利用效率。
实验步骤如下：1. 准备两盆一模一样的植物，其中一盆为对照组，另一盆加盐水。
2. 分别测量两盆植物的根系吸水量和细胞渗透压，记录数据。
3. 将两盆植物进行比较，得出对盐水处理的植物的适应能力。
实验三：激素生理实验植物激素在影响植物生长、发育和适应环境方面发挥了重要作用，我们可以通过测量植物生长的速率和荷尔蒙水平来评估激素的作用。
实验步骤如下：1. 选择一些与生长相关的植物，如小麦或豌豆等。
2. 分别在一组处理中加入不同浓度的激素，另一组作为对照组。
3. 坚持一段时间，测量植物的生长速率和荷尔蒙水平，比较两组的差异。
以上是三个常见的植物生理学实验，希望这份实验指南能对学习植物生理学的同学们有所帮助。
在实验过程中，需要注意实验条件的一致性和数据的准确性，以确保实验的正确性和可靠性。
植物生理学的重要实验技术
植物生理学的重要实验技术植物生理学是研究植物内部各种生理过程的科学，通过实验技术的应用，可以深入研究植物的生理特性和调控机制。
本文将介绍几种重要的植物生理学实验技术，包括光合作用测定、光周期实验、蒸腾作用研究和植物生长素的测定。
一、光合作用测定光合作用是植物通过光能将二氧化碳和水转化为有机物质和氧气的过程。
光合作用的测定可以通过净光合速率的测定来进行。
测定方法可以使用荧光法或者气体交流法。
荧光法是通过测定叶片上的荧光信号的强度来计算净光合速率，而气体交流法是通过测定进出叶气体的浓度变化来计算净光合速率。
这些方法需要使用一些仪器设备，如荧光测定仪或气体交流测定系统。
二、光周期实验光周期是植物在一定时间内接受光照和黑暗的周期性变化。
光周期实验主要用于研究植物的花期控制、休眠期控制等生理过程。
常用的方法是通过控制植物所接受的光照时间和黑暗时间的比例来模拟不同的光周期条件。
可以使用光周期系列灯来实现对光周期的控制。
在实验过程中，可以观察植株的生长状况、花期的调控以及激素含量的变化等指标。
三、蒸腾作用研究蒸腾作用是植物体内水分的散失过程，是植物体内水分运输和植物生长发育的关键过程之一。
蒸腾作用研究常用的技术是测定植物叶片表面的水蒸气压，并结合气孔开闭情况来研究蒸腾作用的影响因素。
测定水蒸气压时通常使用水分压差传感器或者电子秤等设备，观察气孔开闭可以通过显微镜或者扫描电子显微镜等工具进行。
四、植物生长素的测定植物生长素是一类植物内源激素，调控着植物体内的生长和发育过程。
研究植物生长素的测定可以使用生物测定法、免疫测定法和色谱法等。
生物测定法使用生物体来测定生长素的活性，如使用阿片酸促进小麦胚芽的生长来测定生长素含量。
免疫测定法则是利用抗体和抗原之间的特异性结合来测定生长素含量。
色谱法是利用气相色谱或者液相色谱来分离和测定植物生长素的含量，通常需要先对样品进行提取和纯化。
结论植物生理学的实验技术是理解植物各种生理过程和调控机制的关键。
植物生理学实验
实验一植物细胞渗透势的测定（质壁分离法）一、原理将植物组织放入一系列不同浓度的蔗糖溶液中，经过一段时间后，植物细胞与蔗糖溶液之间将达到平衡状态。
如果在某一溶液中细胞脱水达到平衡时刚好处于临界质壁分离状态，则细胞的压力势ψp将下降为零，此时细胞液的渗透势ψπ等于外液的渗透势ψπ′，即ψπ＝ψπ′。
此溶液称为该组织的等渗溶液，其浓度称为该组织的等渗浓度，即可计算出细胞液的渗透势。
实际上临界质壁分离状态镜下很难看到，一般以初始质壁分离作为判断等渗浓度的标准。
（细胞水势=渗+压+衬，其中渗=外渗=-iCRT）（注：内外浓度差不一定质壁分离，因为外高内低才会分离）二、器材、试剂与材料1、器材：显微镜，小培养皿（60mm），载盖玻片，温度计，试剂瓶，吸水纸等。
2、试剂：1mol/L蔗糖溶液，蔗糖系列标准溶液。
3、材料：洋葱。
三、操作步骤1、取干燥、洁净培养皿9套，顺序编号，顺序加入蔗糖系列标准溶液，呈一薄层，盖好皿盖。
（为什么？）2、用镊子撕取材料内表皮（0.5cm见方即可），吸去表面水分，迅速浸入上述培养皿中，每皿4—5片。
3、经20～30min（为什么等这么长时间？因为达渗透平衡）记录室温，同时从高浓度开始依次取出材料放于载片上，滴一滴同浓度的蔗糖溶液，盖上盖片，显微镜下观察。
若所有细胞都发生质壁分离现象，则取相邻低浓度的材料观察，并记录质壁分离的相对程度。
若有50％左右细胞发生初始质壁分离(即原生质体刚从细胞壁的角隅处分离)，则该浓度就是等渗浓度。
若两个相邻浓度的材料中，一个未发生质壁分离，另一个发生质壁分离数超过50％，则两浓度平均值即为等渗浓度。
4、由所得的等渗浓度和室温计算细胞液的渗透势：ψπ＝ψπ′＝－iCRT(MPa)，其中：ψπ——细胞的渗透势，MPa；ψπ′——供试溶液的渗透势，MPa；C——供试溶液的浓度，moL/L；R——气体常数，0.008314·L·MPa／(moL·K)；T——绝对温度，(273十t℃)K；i——等渗系数，蔗糖为1。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要：本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜（Saccharum officinarum L.）作为研究对象，并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果，我们得出了一些重要结论，对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言：植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究，我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此，本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法：1. 实验材料：蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤：- 实验一：光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置，记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上，记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下，测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d，以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二：光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上，等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光（F_o）值。
c. 迅速打开强光源，记录最大叶绿素荧光（F_m）值。
d. 计算有效光能利用率（Yield）和光化学淬灭（qP）等参数。
- 实验三：水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片，将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中，随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上，启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后，观察叶片的水分状态，并记录数据。
结果与讨论：1. 实验一的结果显示，蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高，光合速率越快。
同时，特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明，蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高，有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
本科课件-植物生理学实验(完整)
放蓝色液流时，不可震动小瓶。
12
根系活力的测定(TTC法)
植物生理生化教研室 曾汉来 2012.03.12
一、实验目的 • 理解植物根系活力的内涵 • 掌握TTC法测根系活力的原理与方法
提供合成所需能量; 合成氨基酸和植物激素 （ABA、CTK、GA等）
H2O 无机盐
硫酸，其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线， TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 （mg/g(根鲜重)/h）
＝
四氮唑还原量（mg） [根重（g）×时间(h)]
(5)手持测糖仪4 分别测定蔗糖原液浓度（C ）
四、结果计算 自由水的含量(%)=
植物组织中束缚水的含量(%) = 组织总含水量 － 组织中自由水含量
5
注意事项： 1. 清洗植物组织后应注意用
吸水纸擦干其表面的游离水分。 2. 植物组织与外部溶液之间
达到充分平衡。
6
实验01-2 植物组织水势的测定 （小液流法）
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长 测定根系活力，为植物生长状况、营养供应研究提供依据。
二、验原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）的标准氧化电位为80mV的氧化还 原物质，获得H的能力强。溶于水为无色溶液，还原后即生成 红色而不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
—
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，可用 分光光度法定量测定。
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
植物生理学实验指导张志良
植物生理学实验指导引言植物生理学是研究植物内部生物化学和物理活动的科学。
通过实验的方法研究植物的生理过程和生理功能，能够帮助我们更好地了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面的机制。
本实验指导将介绍几个常见的植物生理学实验，并详细说明实验的步骤和注意事项。
实验一：光合作用的测定实验目的通过测定植物光合作用的速率，了解光合作用的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•高度光合作用活跃的绿叶片•蒸馏水•滤纸•光合色素提取液•盐酸•詹氏液•光合作用速率测定仪实验步骤1.准备一片新鲜的绿叶片，并使用滤纸将其表面的水分吸干。
2.将绿叶片放入提取瓶中，加入适量的蒸馏水，盖好瓶盖，放置在强光下静置30分钟。
3.将提取瓶中的绿叶片取出，并将其压碎，制成绿叶片提取液。
4.在一次容器中加入10ml绿叶片提取液，同时加入1ml盐酸，用詹氏液调节为酸性条件。
5.将调节好酸性的绿叶片提取液瞬时注入光合作用速率测定仪中。
6.根据测定仪的说明书进行操作，记录每个时间点下的光合作用速率值。
注意事项•实验中所使用的绿叶片应当是光合作用活跃的绿叶片，新鲜度较高。
•测定的过程中应注意光照的稳定性，以免影响光合作用速率的准确性。
•实验过程中应注意安全操作，避免盐酸和其他化学试剂的直接接触。
实验二：渗透压的测定实验目的通过测定植物细胞内外溶液的渗透压差，了解渗透压的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•草莓或马铃薯等含有较多汁液的植物组织•单质水•盐水•倒置显微镜•毛细管实验步骤1.取一片新鲜的含有较多汁液的植物组织，如草莓或马铃薯。
2.用刀将该组织剪碎，并将碎片放入一个玻璃杯中。
3.加入适量的单质水，使植物组织完全浸泡其中，静置12小时。
4.取一根毛细管，在一端封闭后，用吸管吸取约5cm 长的盐水，并保持液柱不断。
5.将封闭端的毛细管插入玻璃杯中，并用胶带固定在较深的位置。
6.进行倒置显微镜观察，记录质点的运动情况。
7.根据质点的运动情况，判断渗透压差的大小。
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植物生理学实验综合报告专业：园艺（观赏方向）年级： 2012级姓名：郭时兴曾迪学号：20121814 20121817 指导老师：李方安杨世民烯效唑浸种对小麦幼苗生长的影响摘要：研究不用浓度烯效唑对小麦幼苗生长发育的影响。
测定幼苗的呼吸强度，幼苗的根系活力，以及幼苗叶绿素含量的测定，研究了小麦幼苗的形态指标，并测定了根冠比。
烯效唑能影响小麦种子呼吸强度，促进其根系活力，抑制茎的生长并促进根的发育。
此外，烯效唑还能使幼苗叶绿素含量增多，增强幼苗抗性。
但是，不同浓度烯效唑对幼苗的影响也不同。
关键词：小麦烯效唑生理指标形态指标烯效唑又名高效唑（S3307），E)-(RS)．1．(4．氯苯基)4．4．二甲基．2·(1H-，2，4一三唑·1一基)戊-l·烯．3-醇烯，C15H18N3OCl，分子量291．78，分子式见图1。
效唑的生理作用很广泛，能抑制内源赤霉素的生物合成能减弱顶端生长优势【1】，促进根系生长，增强植物光合作用，抑制呼吸作用。
用于小麦时，可矮化植株，促进侧芽生长，发芽的形成，增强抗逆性。
促进芽，叶，根生长，打破顶端优势，防止衰老【2】。
提高小麦种子活力和幼苗素质【3】。
对烯效唑侵种对小麦幼苗的影响，可以有效的提高它在生产上的运用。
图1 烯效唑分子式1材料与方法1.1材料和试剂小麦品种川育21号:由植物生理系提供烯效唑S3307：由植物生理系提供1.2方法参考熊庆娥等方法【4】1.2.1种子的处理消毒：0.1％Hgcl2消毒10至25min1.2.2侵种：0、10、20、40mg/L S~3307侵种24h.催芽：将不同浓度烯效唑处理后的种子分别均匀平铺在4个盘子中后在小麦种子上盖上一层湿润的草纸，做好浓度标记放于25摄氏度恒温箱中催芽3-5天。
1.2.3栽植：取8个杯子，在杯口蒙山纱布，用橡皮筋固定。
取每种以不同浓度烯效唑处理过的小麦种子栽植到纱布上，每种浓度栽植两杯（本次试验中每一组只栽植了一种浓度处理后的小麦种子）。
每杯栽植30株左右，栽植好再杯内装上清水，水量以能淹到3/4的根长适宜。
1.2.4小麦幼苗栽植与培养管理A栽种幼苗：每小组选定一种稀效唑处理浓度的发芽种子60粒，分别栽种于两个杯子，每杯30粒。
（本小组选取的浓度为10mg/L）.B加水：在栽种完幼苗的杯中盛满自来水。
C管理：将其放入生长室培养，每天注意浇水，观察幼苗的生长状况，两周后测定幼苗的形态指标和生理指标。
1.2.5小麦幼苗根系活力的测定（TTC法）A根尖的处理：取幼苗根尖长0.5至1.0cm50条，吸干表面水分，迅速投入盛有反应混合液的小瓶内，放入37℃的恒温水浴中暗反应1小时B色素的提取：吸干水分入研体，加入3ml乙酸乙酯研磨，将红色提取液倒入10ml刻度试管中，冲洗研体多次，最后定容至10ml即可。
C比色测定：以乙酸乙酯为参比，在485nm测定OD值。
D标准曲线的制作：用1mg/mlTTC配制成20ug/TPF，总量50ml，将20ug/mlTPF 配成0，2，4，6，8，10，12，14ug/ml各10ml，测定各管的OD值，绘制标准曲线。
结果计算：根系活力（ugTPF/根.h）=X乘V/根乘h.1.2.6小麦幼苗叶片中叶绿素含量的测定（分光光度法）A 叶片处理：取叶面积为4乘0.3cm2叶片5片B叶绿素提起：剪碎叶片入研体，加入少量80％乙醇，石英砂，碳酸钙，研磨匀浆状，过滤入25ml容量瓶定容。
C比色测定：分别在663，645nm测定Chla、Chlb的OD值按照Arnon公式计算：Chla含量(mg·cm-2)=(12.7OD663-2.69D645)×V/S×1000Chlb含量(mg·cm-2)=(22.9OD645-4.68D663)×V/S×1000Chl含量(mg·cm-2)=(20.2OD645-8.02D663) ×V/S×10001.2.7小麦形态指标测定A株高，根长，发根数测定：将上面测量后的小苗叶和跟分别放入小盒中，然后放入烘箱中杀青，称取其重量，计算根冠比值。
1.2.8小麦叶片，根中丙二醛含量的测定（TBA法）A, MDA提取：将剩余植株幼苗的叶片，根各减成0.5cm长的小段，各称取0.5g入研体中，加入2ml10％TCA和少量石英砂研磨成匀浆，再加入8ml10％TCA混匀，倒入离心管B显色测定：取3支试管，A管岑比液。
B管叶片样液。
C管根样液。
浆各试管置于沸水中水浴加热10min，以A管为参比，分别在450，532，600nm测定OD值，带入公式计算MAD。
2结果与分析2.1 稀效唑处理对小麦生理指标的影响表1不同浓度S3307对小麦呼吸强度的影响项目0mg/l 10mg/l 20mg/l 40mg/lV1 V2 20.3017.7218.3016.0018.3016.2017.7015.80呼吸强度（CO2mg/株*h）0.086 0.077 0.070 0.063由表1可知：稀效唑抑制小麦发芽种子的呼吸强度，随稀效唑侵种浓度的提高而呈递减趋势，40mg/l稀效唑处理的呼吸强度最弱，对照组最强。
由此，对小麦来说，呼吸强度的降低有利于减少消耗和干物质的积累，有利于其生产发育。
2.2稀效唑处理对小麦根系活力的影响表2不同浓度烯效唑浸种对小麦幼苗根系活力的影响处理浓度（mg/l）OD X（mg/ml）根活力系数（ugTPF/株·h）0 0.082 2.982 0.56910 0.165 6.000 1.20020 0.210 7.636 1.57240 0.215 7.818 1.563。
2.3稀效唑处理对小麦幼苗叶绿素含量的影响表3不同浓度烯效唑浸种对小麦幼苗叶绿素含量的影响处理浓度（mg/l）Chla含量(mg/cm2)Chlb含量(mg/cm2)Chl总含量(mg/cm2)0 15.887 8.933 24.88010 23.621 9.156 32.77720 30.313 13.021 13.33440 32.967 14.423 49.390由表3可知：随着稀效唑处理浓度的增加，小麦幼苗叶绿素的含量增加，与对照相比，当稀效唑得处理浓度为40mg/l时，叶绿素a,b含量增加最多.2.4稀效唑处理对小麦形态指标的影响表4不同浓度烯效唑浸种后幼苗的平均根长、苗高、发根数和根冠比处理浓度根数根长（cm）茎长（cm）根/冠0 7 18.73 2.51 0.58210 8 20.55 2.22 0.46320 8 22.99 1.80 0.73540 7 24.37 1.51 0.906由表4可知：稀效唑可以有效的抑制植物生长。
随着其浓度的增加，茎高下降稀效唑可以促进小麦的平均根长，在低浓度的效果下最佳，特别是处理浓度10mg/l。
由表可知稀效唑能够抑制根数，随着浓度增加，根数减少。
稀效唑可以促进根干物质积累，增加根冠比，表现出壮苗效果。
且在处理浓度为40g/l时达到最大。
2.5烯效唑处理对小麦叶片、根中丙二醛含量的测定表5 不同浓度的烯效唑对小麦叶片中丙二醛含量的测定浓度处理(mg/l)丙二醛MAD含量0 3.72610 2.69020 2.07240 3.3043结论与讨论（1）烯效唑对小麦呼吸速率起抑制作用，对小麦植株而言，呼吸作用一定程度的降低，有利于有机物质的减少消耗和干物质的积累，有利于作物的生长发育。
同时，烯效唑对小麦根系活动具有促进作用。
（2）烯效唑浸种处理可以增强小麦叶绿素的生物合成，增加叶片总含量，进而增强植物光合作用的能力，这与关华等【5】和易良【6】等的结果相一致。
烯效唑提高了小麦幼苗叶片叶绿素含量的原因可能是烯效唑作用抑制了小麦叶片细胞的伸长，因而抑制了叶片的生长和叶面积的扩大，，但由于叶片内叶绿素的数目和大小没有改变，因此单位面积内的叶绿素含量增加，从而增加了植物的光合作用能力。
（3）结合已有的研究结果表明，烯效唑浸种抑制幼苗地上部分生长，促进根系生长。
由于烯效唑可以抑制植物体内赤霉素的生物合成，唐利民等报导抑制赤霉素合成的作用位点是从贝壳杉烯到贝壳杉烯酸氧化，而赤霉素的主要作用之一正是控制细胞伸长生长。
（4）植物苗期的根冠比是最重要的壮苗指标之一。
该实验表明，烯效唑浸种处理的小麦幼苗根冠比均增大，表现出壮苗效果，与周欣等的研究结果相一致【7】。
说明烯效唑处理能够在一定浓度范围内具有壮苗作用。
（5）烯效唑处理的小麦幼苗MDA含量均明显降低，这可能与烯效唑能提高植物叶片膜脂不饱和和脂肪酸含量有关，增加植物对于不良环境的抵抗力。
进一步说明烯效唑浸种在小麦抗逆境领域应用上有较大潜力。
4参考文献[1]唐利民，韩碧文，何仲佩，S3307和PP333对小麦应用效果[J].作物研究，1999,1（2）;4-43[2]张洪昌，李星林，植物生长调节剂使用手册[M].北京，中国农林出版社2011,3[3]韦宏思，张军，S3307浸种对小麦种子活力和幼苗素质的调节效应[J]，种子1998,95（3）；15-17[4]熊庆娥，植物生理学实验教程[M]，四川科学出版社，2003.8[5]关华，韩惠芳，杨文珏，烯效唑的生理活性及应用研究初报[J].作物杂志1998（2）:33-34.[6]易良，李邦发，赵鹏，烯效唑与硼对小麦叶绿素与相关品质的影响[J]，湖北农业科学，2009,48（3）:569-572.[7]周欣，杨向平，烯效唑对小麦幼苗生长的影响[J].云南大学学报，自然科学版，2001（23）：96-98.本实验能够顺利完成，首先得感谢植物生理系为我们提供实验材料、试剂、场地，其次要感谢杨世民和李方安老师对实验方法、过程及论文撰写的悉心指导，最后还得感谢组内其他成员的团结合作。