植物生理学实验指导
现代植物生理学实验指南
现代植物生理学实验指南植物生理学是一门重要的生物学科，研究植物在生长、发育、代谢和适应环境等方面的生理过程。
为了深入理解植物生理学，我们需要进行各种实验研究，这里为大家提供一份现代植物生理学实验指南，帮助大家系统了解植物生理学实验的基本方法和技巧。
实验一：光合作用实验光合作用是植物体内最重要的生理过程之一，我们可以通过测量植物的氧气释放量和二氧化碳吸收量来评估光合作用效率。
实验步骤如下：1. 将一片绿叶片放入水中，并用环状金属片夹住叶片。
2. 将装有水的容器倒置在金属片上，并使叶片完全浸入水中。
3. 在光亮条件下放置数小时，测量水中溶氧量的变化，记录并计算光合速率。
4. 重复操作若干次，得出稳定的结果。
实验二：水分利用实验水是植物生命的重要组成部分，其缺乏或过多都会对植物生长产生影响。
我们可以通过测量植物根系吸水能力和细胞渗透压来评估植物对水分的利用效率。
实验步骤如下：1. 准备两盆一模一样的植物，其中一盆为对照组，另一盆加盐水。
2. 分别测量两盆植物的根系吸水量和细胞渗透压，记录数据。
3. 将两盆植物进行比较，得出对盐水处理的植物的适应能力。
实验三：激素生理实验植物激素在影响植物生长、发育和适应环境方面发挥了重要作用，我们可以通过测量植物生长的速率和荷尔蒙水平来评估激素的作用。
实验步骤如下：1. 选择一些与生长相关的植物，如小麦或豌豆等。
2. 分别在一组处理中加入不同浓度的激素，另一组作为对照组。
3. 坚持一段时间，测量植物的生长速率和荷尔蒙水平，比较两组的差异。
以上是三个常见的植物生理学实验，希望这份实验指南能对学习植物生理学的同学们有所帮助。
在实验过程中，需要注意实验条件的一致性和数据的准确性，以确保实验的正确性和可靠性。
植物生理学实验指导
实验一叶绿体色素提取分离与理化性质及含量测定一、实验目的和意义▪绿色植物的光合作用是在叶绿体中的叶绿体色素中进行的，了解叶绿体色素的组成、性质及测定对于理解光合作用的本质很有帮助。
因此，测定叶绿素含量便成为研究光合作用与氮代谢必不可少的手段，在作物育种、科学施肥、看叶诊断中有着广泛的应用二、实验原理植物叶绿体色素是吸收太阳光能，进行光合作用的重要物质。
它一般由叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素组成。
这些色素都不溶于水，而溶于有机溶剂，故可用乙醇、丙酮等有机溶剂提取。
色素分离的方法有多种，纸层析是最简便的一种。
当溶剂（有机推动剂）不断从纸上流过时，由于混合物（叶绿素提取液）中各种成分在固定相（滤纸纤维素所吸附的水分）和流动相（有机推动剂）间具有不同的分配系数，所以移动速度不同，经过一定时间后，可将各种色素分开。
▪叶绿素是一种二羧酸——叶绿酸与甲醇和叶绿醇形成的复杂酯，故可与碱起皂化反应而生成醇（甲醇和叶绿醇）和叶绿酸的盐，产生的盐能溶于水中，可用此法将叶绿素与类胡萝卜素分开。
▪叶绿素与类胡萝卜素都具有光学活性，表现出一定的吸收光谱，可用分光光度计精确测定。
叶绿素吸收光量子而转变成激发态，激发态的叶绿素分子很不稳定，当它变回到基态时可发射出红光量子，因而产生荧光。
叶绿素的化学性质很不稳定，容易受强光的破坏，特别是当叶绿素与蛋白质分离以后，破坏更快，而类胡萝卜素则较稳定。
叶绿素中的镁可以被氢离子所取代而成褐色的去镁叶绿素。
去镁叶绿素遇铜则成为铜代叶绿素，铜代叶绿素很稳定，在光下不易破坏，故常用此法制作绿色多汁植物的浸渍标本。
▪测定叶绿体色素混合提取液中叶绿素a、b和类胡萝卜素的含量，只需测定该提取液在三个特定波长下的吸光度D，并根据叶绿素a、b及类胡萝卜素在该波长下的吸光系数即可求出其浓度。
▪Ca=12.7D663–2.69 D645（3）▪Cb=22.9 D645–4.68D663（4）▪Ck=4.7D440- 0.27C a+b三、实验材料和器材1、实验材料▪菠菜或白菜叶片2、器材：722型分光光度计、电子天平、量筒、研钵、剪刀、漏斗、滤纸、移液管（1mL）、试管及试管架、洗耳球、酒精灯、电筒等。
植物生理学作业指导书
植物生理学作业指导书1. 实验目的本次实验旨在帮助学生加深对植物生理学相关知识的理解与应用，通过实际操作实验室中的常见技术和方法，培养学生的实验观察能力和数据分析能力。
2. 实验仪器和材料- 植物样本（如豆芽、植物叶片等）- 干燥器- 秤- 显微镜- 毛细管- 温度计- pH计- 高速离心机- 甘油3. 实验步骤3.1 实验准备3.1.1 准备不同植物材料，确保植物样本的健康状态。
3.1.2 对植物样本进行干燥处理，使其水分含量降至一定程度。
3.1.3 使用秤量取干燥后的植物样本质量，并记录下来。
3.2 水分传导实验3.2.1 取一段长度适当的毛细管，将其一端与水分容器相连，另一端插入植物茎部。
3.2.2 观察水分在毛细管中的上升高度，并记录下来。
3.2.3 根据水分上升高度计算植物茎部的水势。
3.3 光合作用实验3.3.1 准备好一片健康叶片，并在其表面涂抹甘油。
3.3.2 使用显微镜观察叶片中的叶绿素体，并记录下来。
3.3.3 在不同光强下测量光合作用速率，并绘制光合作用速率与光强之间的关系曲线。
3.4 酶活性实验3.4.1 取一定量的酶液，并在不同温度下进行酶活性测定。
3.4.2 使用高速离心机离心酶液，并测定上清液中的酶活性。
3.4.3 根据测定结果，分析酶活性与温度之间的关系。
4. 实验结果分析根据实验步骤中所记录的数据，对每个实验环节进行结果分析。
可以通过绘制图表、计算数据指标等方式呈现实验结果，并结合理论知识进行解释和讨论。
5. 思考题5.1 就水分传导实验结果，探讨植物水势与植物体内水分传导之间的关系。
5.2 对光合作用实验结果进行解读，分析光合作用速率与光强之间的关系，以及甘油对光合作用的影响。
5.3 对酶活性实验结果进行分析，并探讨酶活性与温度之间的关系。
6. 实验总结结合实验步骤、实验结果和思考题，总结本次实验的目的、方法、结果和意义，提出改进措施，并陈述你在本次实验中的收获和体会。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导周祖富黎兆安主编广西大学实验规则1. 做好实验前的预习及准备。
每次实验前务必将指定项目的实验指导仔细阅读，熟悉每项实验的目的、原理、方法和操作程序，并复习教材或笔记中有关部分，使实验进行时能独立操作及分析实验结果2. 保特室内安静，在实验中不得随意走动或谈话，以免影响他人实验。
3. 要爱惜国家财物。
每一位同学应本着爱护国家资财及节约的精神，对器具谨慎使用，如有损坏，应立即报告指导教师，并进行登记。
4.遵守仪器、器具使用规定。
贵重仪器使用时，应有教师在旁指导，未明了正确使用方法前，切勿乱动，以免损坏仪器。
凡属公用器具及药品，不得拿到自己桌上，用后应放回原处，以便他人使用。
5. 保特室内的清洁卫生。
实验室不准随地吐痰或乱掷废纸屑。
每次实验结束后，每组负责清洗并整理本组的实验器具及桌面，以养成良好的工作习惯；值日生应负责扫地、抹桌、倒污水等工作，以保特实验室的整洁。
6. 认真做好实验观察及实验报告。
当实验有继续观察必要时，应按时观察。
凡需同学负责照管的实验，必须按规定管理。
7. 实验完毕后，应按规定格式书写实验报告，并按指定日期交给指导教师批阅。
实验报告内容应包括：实验日期；实验题目；实验目的；实验基本原理；实验材料、仪器设备、药品；实验方法与步骤；实验结果与分析。
8. 实验结果应根据自己实验所得如实记录，不得擅自修改。
如因不严格按实验操作规程进行实验，而导致实验失败时，必须重做。
前言《植物生理学》是农学、园艺、植保、农业资源与环境和生物技术等专业必修的专业基础课程，植物生理学实验是该课程重要的实践性教学环节。
通过实验，进一步加深学生对基础理论的认识和理解，加强对学生基本实验技能的训练和动手能力的培养，使学生初步掌握植物生理的基本测定方法和技术，提高学生分析问题和解决问题的能力，为今后参与科学研究奠定基础。
本教材根据《植物生理学》的各章节内容编写，目的在于让学生较全面接触和了解植物生理学各个过程的实验技术方法。
植物生理学实验指导
实验一小液流法测植物组织水势一、目的学会用小液流法和质壁分离法测植物组织水势和渗透势。
二、材料用具及仪器药品马铃薯、刀片、移液管、培养皿、蔗糖溶液（1mol/L），显微镜三、原理1、小液流法测植物组织水势植物细胞是一个渗透系统，若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时，由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度（或水势）的差异。
两者便会发生水分的交换。
当ψ cell外＞ψw cell时，细胞则吸水，细胞外溶液的浓度↑，细胞外溶液的比重↑。
当ψ cell外＝ψw cell时，细胞液与细胞外溶液水分平衡，细胞外溶液的浓度不变，细胞外溶液的比重不变。
当ψ cell外＜ψw cell时，细胞则失水，细胞外溶液的浓度↓，细胞外溶液的比重↓。
本实验是以有色液滴的比重变化确定等渗浓度。
根据公式，即可计算出外溶液的ψs，即ψs= - CiRT[i:离解系数，蔗糖等于1;c:等渗浓度；R：气体常数，0.0083 MPa·L/mol·K；T表示绝对温度，即273+t（实验时溶液的温度）]。
2、质壁分离法测渗透势ψw＝ψp＋ψs。
当ψ cell外＞ψw cell时，细胞则吸水。
当ψ cell外＜ψw cell时，细胞则失水，发生质壁分离。
当发生初始质壁分离时，ψp＝0 ，ψw＝ψs＝ψ cell外= - CiRT四、方法步骤小液流法测植物组织水势1．按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液（母液）分别配成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。
分别置于5支大试管中，编号作为实验组。
2．另取5支小试管对应于实验组编号，从实验组取2ml蔗糖溶液作为观察组。
3．切约2mm左右见方的马铃薯片。
4．把马铃薯片放入实验组，每组20片，20分钟后，加一点点亚甲基蓝粉末，摇匀。
5．用吸管吸蓝色液，伸入对应观察组中部，轻轻挤出一滴液滴，轻轻取出吸量管，观察液滴移动方向。
6.根据公式ψs=-CiRT,计算出所测材料的ψ cell质壁分离法测渗透势1、按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液（母液）分别配成0.1、0.2、0.3、0.5、0.6 mol/L 蔗糖溶液各2ml。
植物生理学实验指导张志良
植物生理学实验指导引言植物生理学是研究植物内部生物化学和物理活动的科学。
通过实验的方法研究植物的生理过程和生理功能，能够帮助我们更好地了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面的机制。
本实验指导将介绍几个常见的植物生理学实验，并详细说明实验的步骤和注意事项。
实验一：光合作用的测定实验目的通过测定植物光合作用的速率，了解光合作用的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•高度光合作用活跃的绿叶片•蒸馏水•滤纸•光合色素提取液•盐酸•詹氏液•光合作用速率测定仪实验步骤1.准备一片新鲜的绿叶片，并使用滤纸将其表面的水分吸干。
2.将绿叶片放入提取瓶中，加入适量的蒸馏水，盖好瓶盖，放置在强光下静置30分钟。
3.将提取瓶中的绿叶片取出，并将其压碎，制成绿叶片提取液。
4.在一次容器中加入10ml绿叶片提取液，同时加入1ml盐酸，用詹氏液调节为酸性条件。
5.将调节好酸性的绿叶片提取液瞬时注入光合作用速率测定仪中。
6.根据测定仪的说明书进行操作，记录每个时间点下的光合作用速率值。
注意事项•实验中所使用的绿叶片应当是光合作用活跃的绿叶片，新鲜度较高。
•测定的过程中应注意光照的稳定性，以免影响光合作用速率的准确性。
•实验过程中应注意安全操作，避免盐酸和其他化学试剂的直接接触。
实验二：渗透压的测定实验目的通过测定植物细胞内外溶液的渗透压差，了解渗透压的基本原理和影响因素。
实验材料和设备•草莓或马铃薯等含有较多汁液的植物组织•单质水•盐水•倒置显微镜•毛细管实验步骤1.取一片新鲜的含有较多汁液的植物组织，如草莓或马铃薯。
2.用刀将该组织剪碎，并将碎片放入一个玻璃杯中。
3.加入适量的单质水，使植物组织完全浸泡其中，静置12小时。
4.取一根毛细管，在一端封闭后，用吸管吸取约5cm 长的盐水，并保持液柱不断。
5.将封闭端的毛细管插入玻璃杯中，并用胶带固定在较深的位置。
6.进行倒置显微镜观察，记录质点的运动情况。
7.根据质点的运动情况，判断渗透压差的大小。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存..................................... 实验一拟南芥种植和形态观察................................... 实验二植物细胞的活体染色和死活的鉴定......................... 实验三植物原生质体的分离和融合............................... 实验四植物叶面积测定原理、方法和步骤......................... 实验五植物细胞渗透势的测定（质壁分离法）..................... 实验六植物组织水势的测定（小液流法）......................... 实验七植物根系活力的测定（TTC法）............................ 实验八根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定..................... 实验九离体叶绿体的制备以及完整度的测定....................... 实验十叶绿体色素的提取、分离和理化性质....................... 实验十一植物叶片光合速率的测定（改良半叶法）................. 实验十二氧电极法测定植物组织的光合与呼吸速率................. 实验十三小篮子法（广口瓶法）测定植物的呼吸速率. (37)实验十四谷物淀粉含量的测定（旋光法）......................... 实验十五类似生长素对种子萌发的影响........................... 实验十六赤霉素对α-淀粉酶的诱导形成........ 错误！未指定书签。
实验十七植物种子生活力快速测定............................... 实验十八植物光周期现象的观察................................. 实验十九植物抗逆性的测定（电导仪法）....... 错误！未指定书签。
植物生理学模块实验指导
植物生理学模块实验指导植物生理学是生物学中研究物质合成、物质积累和物质运输等生命活动,以及与之有关的光、热、水等环境因素的科学。
它是植物和环境的互动的一个研究方向，是进行农业生物学研究所需的一门重要基础课。
植物生理学模块实验指导旨在提供学生一个系统的实验指导，帮助他们深入了解植物生理学实验的各个方面。
植物生理学实验指导中，共有四个实验模块，分别是：光合作用模块、植物激素与营养元素模块、水营养模块和叶色谱模块。
1.合作用模块光合作用模块是植物生理学实验指导中最重要的模块，用于研究光能的转化、光的光谱特性、植物的光合速率等。
实验原理主要是研究植物的光合特性，以及光照下植物的叶绿素彩谱特征;具体包括：测量植物光合速率，观察植物叶片上不同类型光谱的变化，测定植物叶绿素的分布，了解光照下植物细胞活性蛋白的变化。
2.物激素与营养元素模块这个模块强调植物激素以及植物营养元素的作用。
主要子模块研究内容是植物激素的影响和作用，如：植物激素对营养元素和生长的影响，营养元素对有机物合成的影响，以及植物激素对植物的构造及功能的影响。
3.营养模块水营养模块重点研究不同环境条件下植物生理活性的变化，主要通过观察植物根系和叶片的水分变化，以及植物叶片的膨大、伸长、剪切和扭曲等性状变化来评价植物对水分的响应。
4.色谱模块叶色谱模块用于评价植物对光照和营养元素的响应，可以通过叶绿素的吸收和发射特性来评价植物的生长、叶片颜色、响应光照强度以及叶片表层的温度等。
实验中，学生将学习如何操作叶色谱仪，进行叶片的色谱测定，并对植物的叶片表层温度做出正确的判断。
以上就是本文关于植物生理学模块实验指导的内容，希望能够对学生们有所帮助，更好地理解植物生理学实验，并在实践中获得成功。
只要学生们认真阅读实验指导，仔细按照实验模块所提供的操作步骤进行操作，搭配实际的实验演示和练习，就能够取得较好的实验效果。
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植物生理学实验指导 Prepared on 24 November 2020植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存植物生理实验使用的材料非常广泛，根据来源可划分为天然的植物材料（如植物幼苗、根、茎、叶、花等器官或组织等）和人工培养、选育的植物材料（如杂交种、诱导突变种、植物组织培养突变型细胞、愈伤组织、酵母等）两大类；按其水分状况、生理状态可划分为新鲜植物材料（如苹果、梨、桃果肉，蔬菜叶片，绿豆、豌豆芽下胚轴，麦芽、谷芽，鳞茎、花椰菜等）和干材料（小麦面粉，玉米粉，大豆粉，根、茎、叶干粉，干酵母等）两大类，因实验目的和条件不同，而加以选择。
植物材料的采集和处理，是植物生理研究测定中的重要环节。
在实际工作中，往往容易把注意力集中在具体的仪器测定上，而对于如何正确地采集和处理样品却不够注意，结果导致了较大的实验误差，甚至造成整个测定结果的失败。
因此，必须对样品的采集、处理与保存给予足够的重视。
一、原始样品及平均样品的采取、处理植物生理研究测定结果的可靠性（或准确性），首先取决于试材对总体的代表性，如果采样缺乏代表性，那么测定所得数据再精确也没有意义。
所以，样品的采集除必须遵循田间试验抽样技术的一般原则外，还要根据不同测定项目的具体要求，正确采集所需试材。
目前，随着研究技术的不断发展，应该不断提高采样技术的水平。
在作物苗期的许多生理测定项目中都需要采集整株的试材样品，在作物中后期的一些生理测定项目中，如作物群体物质生产的研究，也需要采集整株的试材样品，有时虽然是测定植株的部分器官，但为了维持器官的正常生理状态，也需要进行整株采样。
除研究作物群体物质生产外，对于作物生理过程的研究来说，许多生理指标测定中的整株采样，也只是对地上部分的采样，没有必要连根采样，当然对根系的研究测定例外。
采样时间因研究目的而不同，如按生育时期或某一特殊需要的时间进行。
除逆境生理研究等特殊需要外，所取植株应是能代表试验小区正常生育无损伤的健康植株。
为了保证植物材料的代表性，必须运用科学方法采取材料。
从大田或实验地、实验器皿中采取的植物材料，称为“原始样品”，再按原始样品的种类（如植物的根、茎、叶、花、果实、种子等）分别选出“平均样品”，然后根据分析的目的、要求和样品种类的特征，采用适当的方法，从“平均样品”中选出供分析用的“分析样品”。
（一）原始样品的取样法1.随机取样在试验区（或大田）中选择有代表性的取样点，取样点的数目视田块的大小而定。
选好点后，随机采取一定数量的样株，或在每一个取样点上按规定的面积从中采取样株。
2.对角线取样在试验区（或大田）可按对角线选定五个取样点，然后在每个点上随机取一定数量的样株，或在每个取样点上按规定的面积从中采取样株。
（二）平均样品的取样法1.混合取样法一般颗粒状（如种子等）或已碾磨成粉末状的样品可以采取混合取样法进行。
具体的做法为：将供采取样品的材料铺在木板（或玻璃板、牛皮纸）上成为均匀的一层，按照对角线划分为四等分。
取对角的两份为进一步取样的材料，而将其余的对角两份淘汰。
再将已取中的两份样品充分混合后重复上述方法取样。
反复操作，每次均淘汰 50 ％的样品，直至所取样品达到所要求的数量为止。
这种取样的方法叫做“四分法”。
一般禾谷类、豆类及油料作物的种子均可采用这个方法采取平均样品，但注意样品中不要混有不成熟的种子及其他混杂物。
2.按比例取样法有些作物、果品等材料，在生长不均等的情况下，应将原始样品按不同类型的比例选取平均样品。
例如对甘薯、甜菜、马铃薯等块根、块茎材料选取平均样品时，应按大、中、小不同类型的样品的比例取样，然后再将每一单个样品纵切剖开，每个切取 1/4 、 1/8 或 1/16 ，混在一起组成平均样品。
在采取果实的平均样品时，如桃、梨、苹果、柑橘等果实，即使是从同一株果树上取样，也应考虑到果枝在树冠上的各个不同方位和部位以及果实体积的大、中、小和成熟度上的差异，按各自相关的比例取样，再混合成平均样品。
（三）取样注意事项1.取样的地点，一般在距田埂或地边一定距离的株行取样，或在特定的取样区内取样。
取样点的四周不应该有缺株的现象。
2.取样后，按分析的目的分成各部分（如根、茎、叶、果等），然后捆齐，并附上标签，装入纸袋。
有些多汁果实取样时，应用锋利的不锈钢刀剖切，并注意勿使果汁流失。
3.对于多汁的瓜、果、蔬菜及幼嫩器官等样品，因含水分较多，容易变质或霉烂，可以在冰箱中冷藏，或进行灭菌处理或烘干以供分析之用。
4.选取平均样品的数量应当不少于供分析用样品的两倍。
5.为了动态地了解供试验用的植物在不同生育期的生理状况，常按植物不同的生育期采取样品进行分析。
取样方法系在植物的不同生育时期先调查植株的生育状况并区分为若干类型，计算出各种类型植株所占的百分比，再按此比例采取相应数目的样株作为平均样品。
二、分析样品的处理和保存1．从田间采取的植株样品，或是从植株上采取的器官组织样品，在正式测定之前的一段时间里，如何正确妥善的保存和处理是很重要的，它也关系到测定结果的准确性。
一般测定中，所取植株样品应该是生育正常无损伤的健康材料。
取下的植株样品或器官组织样品，必须放入事先准备好的保湿容器中，以维持试样的水分状况和未取下之前基本一致。
否则，由于取样后的失水，特别是在田间取样带回室内的过程中，由于强烈失水，使离体材料的许多生理过程发生明显的变化，用这样的试材进行测定，就不可能得到正确可靠的结果。
为了保持正常的水分状况，在剪取植株样品后，应立即插入有水的桶中，对于枝条，还应该立即在水中进行第二次剪切，即将第一次切口上方的一段在水中剪去，以防输导组织中水柱被拉断，影响正常的水分运输。
对于器官组织样品，如叶片或叶组织，在取样后就应立即放入已铺有湿纱布带盖的瓷盘中，或铺有湿滤纸的培养皿中。
对于干旱研究的有关试材，应尽可能维持其原来的水分状况。
采回的新鲜样品（平均样品）在做分析之前，一般先要经过净化、杀青、烘干（或风干）等一系列处理。
（1）净化：新鲜样品从田间或试验地取回时，常沾有泥土等杂质，应用柔软湿布擦净，不应用水冲洗。
（2）杀青：为了保持样品化学成分不发生转变和损耗，应将样品置于105 ℃的烘箱中烘 15min 以终止样品中酶的活动。
（3）烘干：样品经过杀青之后，应立即降低烘箱的温度，维持在 70-80 ℃，直到烘至恒重。
烘干所需的时间因样品数量和含水量、烘箱的容积和通风性能而定。
在无烘箱的条件下，也可将样品置蒸笼中以蒸汽杀青，而后于阴凉通风处风干。
但在蒸汽杀青过程中，常有可溶性物质的外渗损失，因此，此法仅可作为测量大量样品干重时的变通方法，在进行成分分析时应尽量避免。
烘干时应注意温度不可过高，否则会把样品烤焦，特别是含糖较多的样品，在高温下更易焦化。
为了更精密地分析，避免某些成分的损失（如蛋白质、维生素、糖等），在条件许可的情况下最好采用真空干燥法。
此外，在测定植物材料中酶的活性或某些成分（如维生素 C 、 DNA 、RNA 等）的含量时，需要用新鲜样品。
取样时注意保鲜，取样后应立即进行待测组分提取；也可采用液氮中冷冻保存或冰冻真空干燥法得到干燥的制品。
放在 0-4 ℃冰箱中保存即可。
在鲜样已进行了匀浆，尚未完成提取、纯化，不能进行分析测定等特殊情况下，也可加入防腐剂（甲苯、苯甲酸），以液态保存在缓冲液中，置于 0-4 ℃冰箱即可。
但保存时间不宜过长。
2．已经烘干（或风干）的样品，可根据样品的种类、特点进行以下处理：（1）种子样品的处理：一般种子（如禾谷类种子）的平均样品清除杂质后要进行磨碎，在磨碎样品前后都应彻底清除磨粉机（或其他碾磨用具）内部的残留物，以免不同样品之间的机械混杂，也可将最初磨出的少量样品弃去，然后正式磨碎，最后使样品全部无损地通过 1 mm 筛孔的筛子，混合均匀作为分析样品贮存于具有磨口玻塞的广口瓶中，贴上标签，注明样品的采取地点、试验处理、采样日期和采样人姓名等。
长期保存的样品，贮存瓶上的标签还需要涂蜡。
为防止样品在贮存期间生虫，可在瓶中放置一点樟脑或对位二氯甲苯。
对于油料作物种子（如芝麻、亚麻、花生、蓖麻等）需要测定其含油量时，不应当用磨粉机磨碎，否则样品中所含的油分会吸附在磨粉机上将明显地影响分析的准确性。
所以，对于油料种子应将少量样品放在研钵内研碎或用切片机切成薄片作为分析样品。
（2）茎秆样品的处理：烘干（或风干）的茎秆样品，均要进行磨碎，磨茎秆用的电磨与磨种子的磨粉机结构不同，不宜用磨种子的电磨来磨碎茎秆。
如果茎秆样品的含水量偏高而不利于磨碎时，应进一步烘干后再进行磨碎。
（3）多汁样品的处理：柔嫩多汁样品（如浆果、瓜、菜、块根、块茎、球茎等）的成分（如蛋白质、可溶性糖、维生素、色素等）很容易发生代谢变化和损失，因此常用其新鲜样品直接进行各项测定及分析。
一般应将新鲜的平均样品切成小块，置于电动捣碎机的玻璃缸内进行捣碎。
若样品含水量不够（如甜菜、甘薯等）可以根据样品重加入倍的蒸馏水。
充分捣碎后的样品应成浆状，从中取出混合均匀的样品进行分析。
如果不能及时分析，最好不要急于将其捣碎，以免其中化学成分发生变化而难以准确测定。
有些蔬菜（如含水分不太多的叶菜类、豆类、干菜等）的平均样品可以经过干燥磨碎，也可以直接用新鲜样品进行分析。
若采用新鲜样品，可采用上述方法在电动捣碎机内捣碎，也可用研钵（必要时加少许干净的石英砂）充分研磨成匀浆，再进行分析。
在进行新鲜材料的活性成分（如酶活性）测定时，样品的匀浆、研磨一定要在冰浴上或低温室内操作。
新鲜样品采后来不及测定的，可放入液氮中速冻，再放入﹣70 ℃冰箱中保存。
供试样品一般应该在暗处保存，但是，对于供光合、蒸腾、气孔阻力等的测定样品，在光下保存更为合理。
一般可将这些供试样品保存在室内光强下，但从测定前的小时开始，应对这些材料进行测定前的光照预处理，也叫光照前处理。
这不仅是为了使气孔能正常开放，也是为了使一些光合酶类能预先被激活，以便在测定时能获得正常水平的值，而且还能缩短测定时间。
光照前处理的光强，一般应和测定时的光照条件一致。
测定材料在取样后，一般应在当天测定使用，不应该过夜保存。
需要过夜时，也应在较低温度下保存，但在测定前应使材料温度恢复到测定条件的温度。
对于采集的籽粒样品，在剔除杂质和破损籽粒后，一般可用风干法进行干燥。
但有时根据研究的要求，也可立即烘干。
对叶片等组织样品，在取样后则应立即烘干。
为了加速烘干，对于茎秆、果穗等器官组织应事先切成细条或碎块。
实验一拟南芥种植和形态观察一、实验原理拟南芥属(Arabidopsis thaliana）十字花科，被子植物门，双子叶植物纲。
二年生草本，高7-40厘米。
基生叶有柄呈莲座状，叶片倒卵形或匙形；茎生叶无柄，披针形或线形。
总状花序顶生，花瓣4片，白色，匙形。