植物生理学实验-2
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告植物生理学实验实验报告摘要：本实验旨在探究植物的生理反应和适应机制。
通过观察植物在不同环境条件下的生长和生理指标的变化，我们可以更好地理解植物的生理过程和适应策略。
本实验采用了盆栽植物的生长观察和测量方法，结合实验室中的设备和技术手段，得出了一系列有关植物生理学的结论。
1. 引言植物生理学是研究植物生长、发育和适应环境的科学，它涉及植物的生理过程、代谢调节、信号传导等方面。
通过实验研究，我们可以揭示植物在不同环境条件下的生理反应和适应机制，为植物的生产和保护提供理论依据。
2. 材料与方法本实验选取了常见的盆栽植物作为实验对象，包括绿萝、仙人掌和吊兰。
为了模拟不同环境条件，我们设置了三组实验组：阳光组、阴影组和干旱组。
每组实验设置五个重复，以保证实验结果的可靠性。
3. 结果与讨论3.1 生长观察在阳光组中，绿萝的叶片呈现出深绿色，茂密且向阳生长；仙人掌的刺变得更加粗壮，颜色也更加鲜艳；吊兰的叶片展开较大，叶色浅绿。
而在阴影组中，绿萝的叶片变得较为苍白，茂密度下降；仙人掌的刺变得细长，颜色较为暗淡；吊兰的叶片展开较小，叶色深绿。
在干旱组中，绿萝的叶片开始出现萎蔫现象；仙人掌的刺变得干瘪，颜色变得暗淡；吊兰的叶片开始卷曲，叶色变黄。
3.2 生理指标测量我们通过测量叶片的光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量等指标，来进一步了解植物在不同环境条件下的生理变化。
在阳光组中，绿萝的光合速率较高，蒸腾速率也较高；仙人掌的光合速率较低，蒸腾速率也较低；吊兰的光合速率和蒸腾速率处于中等水平。
而在阴影组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率下降明显；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
在干旱组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率急剧下降；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
叶绿素含量的测量结果与光合速率和蒸腾速率的变化趋势一致。
4. 结论通过本实验的观察和测量，我们可以得出以下结论：1) 植物在阳光充足的环境下生长更加茂盛，叶片颜色更加鲜艳。
植物生理学题库-02 植物矿质营养作业及答案
第二章植物矿质营养一、名词解释1. 矿质营养: 是指植物对矿质元素的吸收、运输与同化的过程。
2．灰分元素：亦称矿质元素，将干燥植物材料燃烧后，剩余一些不能挥发的物质称为灰分元素。
3．大量元素：在植物体内含量较多，占植物体干重达万分之一以上的元素。
包括钙、镁、硫、氮、磷、钾、碳、氢、氧等9种元素。
4．微量元素：植物体内含量甚微，稍多即会发生毒害的元素包括：铁、锰、硼、锌、铜、钼和氯等7种元素。
5. 单盐毒害和离子拮抗：单盐毒害是指溶液中因只有一种金属离子而对植物之毒害作用的现象；在发生单盐毒害的溶液中加入少量其他金属离子，即能减弱或消除这种单盐毒害，离子间的这种作用称为离子拮抗。
6. 平衡溶液：在含有适当比例的多种盐溶液中，各种离子的毒害作用被消除，植物可以正常生长发育，这种溶液称为平衡溶液。
7. 胞饮作用：物质吸附在质膜上，然后通过膜的内折而转移到细胞内的攫取物质及液体的过程。
8. 诱导酶：又称适应酶，指植物体内本来不含有，但在特定外来物质的诱导下可以生成的酶。
如硝酸还原酶可为NO3-所诱导。
9. 生物固氮：某些微生物把空气中游离氮固定转化为含氮化合物的过程。
二、填空题1．植物生长发育所必需的元素共有种，其中大量元素有种，微量元素有种。
16、9、7 2．植物必需元素的确定是通过法才得以解决的。
水培3．解释离子主动吸收的有关机理的假说有和。
载体学说质子泵学说4．果树的“小叶病”往往是因为缺元素的缘故。
Zn5. 缺氮的生理病症首先表现在叶上，缺钙的生理病症首先表现在叶上。
老、嫩6．根系从土壤吸收矿质元素的方式有两种：和。
通过土壤溶液得到、直接交换得到7．(NH4)2S04属于生理性盐，KN03属于生理性盐、NH4NO3属于生理性盐。
酸、碱、中8．硝酸盐还原成亚硝酸盐的过程由酶催化，亚硝酸盐还原成氨过程是叶绿体中的酶催化的。
硝酸还原酶、亚硝酸还原酶9．影响根部吸收矿物质的条件有、、和。
温度、通气状况、溶液浓度、氢离子浓度、离子间的相互作用10．植物地上部分对矿质元素吸收的主要器官是，营养物质可从运入叶内。
植物生理学实验 2
氧化态DCIP在620 nm有最大吸收。故以 3 号管为空白，测定 1，2 号 管的 OD620 值。加入DCIP后立即测定，此为时间为0的 OD620 起始值。然 后每光照 0.5 min 测定一次，共 5～6 次。记录结果。 5、作业 分别对 1、2 管号的测定值，以△OD620 /min为纵坐标，时间（min）为 横坐标作图，并对两条曲线进行比较分析。
3、叶绿体色素理化性质的鉴定与结果分析（p.54-55）
①叶绿素荧光现象观察：取提取液（2 ml）于一支试管中，比较在入 射光和反射光下颜色的差异，并解释之。
②光对叶绿素的破坏作用：2 支试管盛取提取液少许（0.5 ～1 ml）分 别置于强光和黑暗下，实验结束时，观察其颜色的变化，并解释之。
③铜代反应：取提取液少许（1 ml）于一支试管内，逐滴加入浓 HCl 至提取液变成褐色，然后加入CuAC2（醋酸铜）晶体少许，并于酒精 灯上加热，再观察颜色变化，并解释之。
（2）混合组分的OD值等于各组分在此波长下的OD值之和，则 OD663=ka-663 · Ca+kb-663 · Cb OD645=ka-645 · Ca+kb-645 · Cb 代入已知 k值，经单位换算可得： Ca=12.7 OD663－2.69 OD645 Cb=22.9 OD645－4.68 OD663 （mg/L） （3 ） （4） （1） （2）
生命科学学院 龙云
2、材料 菠菜（叶）
3、操作步骤（一组/ 2人）
菠菜叶（去主脉）0.5 g → 加少许CaCO3，石英砂 → 丙酮 2 ml → 研磨成匀浆→ 80 %丙酮 8 ml → 离心（3 000 rpm, 2 min） → 上清用80 % 丙酮定 容至 20 ml →取 1 ml + 80 % 丙酮 4 ml → 比色 （空白：80 %丙酮）
植物生理学实验报告
实验一植物组织水势的测定（小液流法）——2013.3.11 一、目的用小液流法（落滴法）测定植物组织的水势，由水势大致了解植物体内的水分状况二、原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，谁从水势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势插决定。
三、材料与设备植物材料：阔叶树叶片（大叶女贞）实验器具：细滴管一支；试管及指形管各五支（带塞）；100mL烧杯一只；镊子、剪刀各一把；2mL、5mL移液管各一支；标签纸；钻孔器；木板试剂：1ml/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液四、操作步骤1.用短滴管吸取1,mol/L蔗糖液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液（0.05,0.1,0.2,0.3,0.4mol/L）各10 ml，加入干燥刻度试管内，各管都加上塞子，充分混合，并编号。
用移液管从浓度各试管中吸取1ml注入第二指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
2.用钻孔器（取相同部位）钻取同大小叶片。
每支指形管中放入10片，加塞，放置20~30分钟（期间摇动2~3次），到时间后，加入2~3滴甲烯蓝溶液于指形管中，使其溶液呈蓝色，以区别原来的颜色。
3.用细长滴管从各指形管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入相同编号（原相同浓度）试管的中部，缓慢从细长滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，在无色透明背景上观察小液滴移动的方向。
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，若找不到改浓度，取在下降上升转变时量浓度的均值。
五、作业1.记录小液流在试管内的移动方向2.按下列公式计算组长的水势：ψW（细胞水势）=ψs=-CRT式中：ψs——溶液的渗透势，以Mpa为单位R——气体常数，为0.008314Mpa*L/（mol*K）。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要：本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜（Saccharum officinarum L.）作为研究对象，并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果，我们得出了一些重要结论，对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言：植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究，我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此，本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法：1. 实验材料：蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤：- 实验一：光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置，记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上，记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下，测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d，以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二：光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上，等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光（F_o）值。
c. 迅速打开强光源，记录最大叶绿素荧光（F_m）值。
d. 计算有效光能利用率（Yield）和光化学淬灭（qP）等参数。
- 实验三：水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片，将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中，随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上，启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后，观察叶片的水分状态，并记录数据。
结果与讨论：1. 实验一的结果显示，蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高，光合速率越快。
同时，特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明，蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高，有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
本科课件-植物生理学实验(完整)
放蓝色液流时，不可震动小瓶。
12
根系活力的测定(TTC法)
植物生理生化教研室 曾汉来 2012.03.12
一、实验目的 • 理解植物根系活力的内涵 • 掌握TTC法测根系活力的原理与方法
提供合成所需能量; 合成氨基酸和植物激素 （ABA、CTK、GA等）
H2O 无机盐
硫酸，其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线， TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 （mg/g(根鲜重)/h）
＝
四氮唑还原量（mg） [根重（g）×时间(h)]
(5)手持测糖仪4 分别测定蔗糖原液浓度（C ）
四、结果计算 自由水的含量(%)=
植物组织中束缚水的含量(%) = 组织总含水量 － 组织中自由水含量
5
注意事项： 1. 清洗植物组织后应注意用
吸水纸擦干其表面的游离水分。 2. 植物组织与外部溶液之间
达到充分平衡。
6
实验01-2 植物组织水势的测定 （小液流法）
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长 测定根系活力，为植物生长状况、营养供应研究提供依据。
二、验原理
氯化三苯基四氮唑（TTC）的标准氧化电位为80mV的氧化还 原物质，获得H的能力强。溶于水为无色溶液，还原后即生成 红色而不溶于水的三苯基甲腙 （TTF）。
—
生成的TTF比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，可用 分光光度法定量测定。
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告
《植物生理学实验实验报告》
实验目的：
本实验旨在探究植物生长过程中的生理学特性，通过实验观察和数据分析，了
解植物对外界环境的适应能力。
实验材料：
本次实验所需材料包括小麦种子、培养皿、水、土壤、温度计、光照计、湿度
计等。
实验步骤：
1. 将小麦种子放置于培养皿中，分别在不同的条件下进行实验观察。
其中包括
不同的温度、光照和湿度条件。
2. 记录每组实验条件下小麦种子的发芽率、生长速度、叶片颜色等生理学特征。
3. 对实验数据进行统计分析，比较不同条件下植物生长的差异，分析植物对外
界环境的适应能力。
实验结果：
经过实验观察和数据分析，我们发现在不同的温度、光照和湿度条件下，小麦
种子的生长状况存在显著差异。
在适宜的温度和湿度条件下，小麦种子的发芽
率和生长速度较高，叶片颜色也更加翠绿。
而在极端的温度和湿度条件下，小
麦种子的生长受到抑制，甚至出现枯萎现象。
实验结论：
通过本次实验，我们深刻认识到植物对外界环境的适应能力，以及不同环境条
件对植物生长的影响。
这不仅有助于我们更好地了解植物生理学特性，也为农
业生产和植物保护提供了重要的理论依据。
总结：
植物生理学实验是深入了解植物生长过程和生理特性的重要手段，通过实验观察和数据分析，我们可以更加全面地了解植物对外界环境的适应能力，为植物生长和保护提供科学依据。
希望本次实验能够对植物生理学研究和相关领域的发展起到一定的推动作用。
植物生理学实验-实验二 植物组织水势的测定(液体交换法)
实验二植物组织水势的测定(液体交换法)[实验目的]：了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
[实验原理]：植物组织的水分可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势(Ψcell)小于某一溶液的水势(Ψout),则组织吸水，反之组织吸水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及植物组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
小液流法[器材与试剂]：1.实验仪器：试管，移液管，毛细滴管，直径0.5cm打孔器，镊子2．实验试剂：1.00mol/L蔗糖溶液，甲烯蓝3．实验材料：菠菜叶片[实验步骤]：1.用1.00mol/L蔗糖母液配制一系列不同浓度的蔗糖溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L)各10mL，注入8支编好号的试管中，各试管都加上塞子，按编号在试管架上排成一排，作为对照组。
2．另取8支试管对应于对照组各管编号，作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移入相同编号的试验组试管中，并都加上塞子。
3．用打孔器在菠菜叶片中部靠近主脉附近打取叶圆片，随机取样，向试验组的每一支试管中放入相等数目(15-30)的圆叶片，加塞，放置30分钟，期间摇动数次。
到时间后，用大头针沾取少许甲烯蓝粉末加入到每一支试管中，并振荡，此时溶液呈蓝色。
4．用8支毛细滴管从试验组的各管中依次吸取着色的液体少许，然后深入对照组同样浓度溶液的中部缓慢从毛细滴管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色溶液的移动方向。
如果蓝色液滴向上移动，说明溶液从叶片细胞中吸出水分而被冲淡，密度比原来小了；如果液滴向下移动，则说明叶片细胞从溶液中吸了水分，溶液密度变大；如果液滴不移动，则说明叶片与溶液的水分交换平衡，即叶片的水势与此种浓度的溶液的渗透势相等。
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课程名称：植物生理学及实验实验类型：探索、综合或验证
实验项目名称：植物组织水势测定
学生姓名：专业：农业资源与环境学号：
同组学生姓名：
指导老师：
实验地点：实验日期：2019年 9 月25日
一、实验目的和要求
1. 巩固植物组织水势概念和植物组织水势的组成
2. 掌握小液流法测定植物组织水势原理
3. 了解其他水势测定方法原理。
二、实验内容和原理
1.小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
2.压力室法测定海桐叶片组织水势。
植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回
木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中
的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备
小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管（10个）、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙
压力室法：植物水势仪
四、操作方法与实验步骤
小液流法：
1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，充分摇匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30-40min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+t o C) ×浓度
压力室法：
1、根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖
2、将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀
3、仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
组织Ψw(Mpa) = -0.1×压力室压力表读数
五、实验数据记录和处理
根据公式计算得到萝卜组织液浓度
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+t℃) ×浓度
= -0.0083×(273+20) ×0.1
= -0.2432Mpa
萝卜组织液浓度约为0.2mol/L，水势约为-0.2432Mpa
压力室法测定结果：
室温20℃，测出出水压力读数为14，水势 -1.4Mpa
六、实验结果与分析
1、小液流法测定植物组织水势时，应保证所用试管干燥，为了防
止外来的水稀释了蔗糖溶液。