血球计数板使用方法
血球计数板的计数方法

血球计数板的计数方法血球计数板是一种常见的实验室设备,用于进行血液细胞计数。
本文将详细介绍血球计数板的计数方法,包括准备工作、样本处理、装载计数板、显微镜观察和计算结果等方面。
一、准备工作1.清洁:将血球计数板从存放位置取出,用酒精或去离子水擦拭干净,确保无灰尘和污垢。
2.检查:检查血球计数板是否完好无损,如有破损或变形应及时更换。
3.校准:使用前应进行校准,确保读数准确可靠。
二、样本处理1.采集样本:从受试者的静脉或指尖采集适量的血液样本,并将其加入到已经预先混合好的抗凝剂中。
2.混匀:轻轻摇动管子使其充分混匀,避免产生气泡。
3.稀释:将适量的稀释液加入到混合好的样本中。
通常情况下,白细胞需要进行稀释,而红细胞不需要稀释。
具体稀释倍数应根据实际情况而定。
三、装载计数板1.取出计数板:将血球计数板取出,放在干净的台面上,注意不要碰到玻璃面。
2.装载样本:使用移液器或吸管将稀释好的样本加入到计数板的样本槽中。
注意不要加过多,以免溢出。
3.震荡:轻轻震动计数板,使其充分混合。
四、显微镜观察1.调节显微镜:将显微镜调整到适当的倍率,并调节焦距,以便观察细胞。
2.观察细胞:在计数板上找到一个适当的视野,并开始观察细胞。
对于白细胞和红细胞,应分别选择不同的区域进行观察。
3.计数细胞:使用目镜和标尺,在每个小方格内逐一计数细胞。
对于白细胞和红细胞,应分别进行计数,并记录下来。
五、计算结果1.白细胞计算:根据已经记录下来的白细胞数量和稀释倍数,按照公式进行计算得出白细胞计数结果。
2.红细胞计算:根据已经记录下来的红细胞数量和稀释倍数,按照公式进行计算得出红细胞计数结果。
3.血红蛋白计算:根据已经记录下来的红细胞数量和血红蛋白浓度,按照公式进行计算得出血红蛋白计数结果。
4.其他指标计算:根据实验需要,可以进一步计算其他指标,如平均红细胞体积、平均血红蛋白含量等。
六、注意事项1.避免使用过期或损坏的血球计数板。
2.样本必须充分混匀,以确保稀释均匀。
血球计数板的使用方法

血球计数板的使用方法血球计数板是临床检验中常用的一种实验工具,用于进行血液细胞计数。
它能够帮助医生了解患者的血液状况,对于疾病的诊断和治疗起着重要的作用。
在使用血球计数板时,我们需要按照一定的步骤和方法进行操作,下面将详细介绍血球计数板的使用方法。
首先,准备工作。
在进行血球计数板的使用前,需要准备好所需的仪器和试剂,包括血球计数板、显微镜、计数用液等。
同时,要确保仪器的清洁和完好,避免因为仪器问题导致实验结果的不准确。
第二步,取样。
在进行血球计数前,需要从患者的静脉血中抽取一定量的血液样本。
在抽取血样时,要注意使用无菌注射器和采血针,避免引入外部细菌或其他污染物质。
第三步,稀释。
将取得的血液样本进行稀释处理,使其浓度适合于在血球计数板上进行观察和计数。
通常情况下,我们会采用一定比例的稀释液将血液样本稀释,以便于在显微镜下观察到合适数量的血细胞。
第四步,填充血球计数板。
将稀释后的血液样本填充到血球计数板的计数室中。
填充时要注意不要使得计数室过满或者过少,以免影响后续的观察和计数。
第五步,观察计数。
将填充好的血球计数板放置在显微镜下,以适当的放大倍数观察血细胞的数量和形态。
在观察过程中,要仔细观察每一个计数室,并记录下其中的红细胞、白细胞和血小板的数量。
第六步,计数。
根据观察到的血细胞数量,进行相应的计数。
通常情况下,我们会选择几个计数室进行计数,并取其平均值作为最终的计数结果。
在计数过程中,要注意避免重复计数或者漏计,保证结果的准确性。
最后,记录结果。
将观察和计数的结果记录在实验记录表中,并进行相应的数据处理和分析。
在记录结果时,要注意标明样本的来源和处理方法,以便于后续的结果验证和分析。
总之,血球计数板的使用方法包括准备工作、取样、稀释、填充、观察计数、计数和记录结果等步骤。
在进行实验时,要严格按照操作规程进行,确保实验结果的准确性和可靠性。
希望以上介绍能够帮助大家正确使用血球计数板,提高实验效率和结果质量。
细胞数的测定(血球计数板的使用方法)

、目的与要求了解血球计数板计数的原理,学会测定细胞总数方法。
二、原理用血球计数板在显微镜下直接计数是一种常用的微生物计数方法。
血球计数板是一块特制的厚载玻片,其上由四条槽构成三个平台,中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半,每一边的平台上各刻有一个方格网,每个方格网共分为9个大方格,中间的大方格即为计数室。
计数室的刻度一般有两种规格,一种是一个大方格分成16个中方格,每个中方格又分成25个小格(即16x25),另一种是一个大方格分成25个中方格,每个中方格又分为16个小方格(即25X 16),但无论是哪一种规格的计数板,每一个大方格中的小方格都是400个,每一个大方格边长为 1 mm则每一个大方格的面积为 1 mm2,盖上盖玻片后,盖玻片与载玻片之间的高度为0.1mm,所以计数室的容积为0.1 mm3实磴圈-石血球计弦板杓构jfi三、血球计数板的使用方法(一)菌悬液的制备为便于计数,对样品进行适当稀释,稀释程度以每小格内含5〜10个酵母为宜,可采用10倍系列稀释法。
(二)加菌悬液样品将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片,再用无菌的毛细滴管将摇匀的菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴,让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自动进入计数室,用吸水纸吸去多余水液。
由盖玻片边缘或槽内加入计数板来回推压盖玻片,使其紧贴在计数板上,计数室内不能有气泡。
静置5-10分钟。
(三)显微镜计数在低倍镜下找到小方格网后更换高倍镜观察计数,上下调动细螺旋,以便看到小室内不同深度的菌体。
位于分格线上的菌体,只数两条边上的,其余两边不计数。
如数上线就不数下线,数左边线就不数右边线。
当芽抱菌体达到母细胞大小的二分之一时,可记作两个细胞。
(四)计数时若使用刻度为25X 16 (大格)的计数板,则数四角的4个大格(即100小格)内的菌数。
如用刻细胞数的测定D申決甌裕牧我度为16X 25 (大格)的计数板,除数四角的4个大格外,还需数中央1个大格的菌数(即80 小格)。
血球计数板的使用方法

血球计数板的使用方法
一、注意事项
1. 血球计数板只能用于血液检查,不能用于测量其他物质;
2. 将血球计数板放置于平面上,确保平稳,防止晃动和碰撞;
3. 在开始测定之前,要根据靶点的电极安装完整;
4. 滴血时要涂抹几种抗凝剂,防止血液沉淀。
如果血液较深,可在计数前用刨子将血液挖出。
二、步骤
1. 将血液精确滴在血球计数板上;
2. 连接血球计数板上的接头,打开电源;
3. 根据靶点调整电位器;
4. 将光学镜头的焦距调节到节点最佳状态;
5. 通过镜头观察血液样本,一次性计数红细胞、白细胞和血小板的数量;
6. 通过刀片移动的方式,进行血球的细致观察和计数;
7. 计数结束后,关闭电源,清理血球计数板上的血液,清洗各个部分,涂抹上抗菌剂。
血球计数板的使用方法

血球计数板的使用方法血球计数板是临床实验室中常用的一种设备,用于进行血细胞计数和形态观察。
正确的使用方法对于获得准确的结果至关重要。
下面将详细介绍血球计数板的使用方法。
首先,准备工作。
在进行血球计数之前,需要准备好所需的工具和试剂,包括血球计数板、显微镜、横纹管、生理盐水、乙醇等。
确保这些工具和试剂都是清洁的,并且没有污染。
接下来,进行样本制备。
首先,将一滴血液加入到横纹管中,然后用生理盐水进行稀释,直到样本达到合适的稀释倍数。
将稀释后的样本加入到血球计数板的计数室中,确保填满计数室的每一个小格。
然后,进行计数和观察。
将血球计数板放置在显微镜上,调整倍数和焦距,观察计数室中的血细胞。
使用显微镜的目镜和物镜进行细胞计数和形态观察,记录所观察到的细胞数量和形态特征。
最后,进行数据分析和结果记录。
根据观察到的细胞数量和形态特征,进行数据分析,计算出各种血细胞的数量比例。
将结果记录在实验记录表中,并进行结果的验证和复核。
在使用血球计数板的过程中,需要注意以下几点。
首先,确保血球计数板和显微镜的清洁和干燥,避免污染和误差。
其次,稀释样本时要注意控制稀释倍数,以确保观察到合适数量的细胞。
最后,进行计数和观察时,要认真细致,避免遗漏或重复计数。
血球计数板的使用方法并不复杂,但需要严格按照操作规程进行,以确保结果的准确性和可靠性。
正确的使用方法不仅可以提高实验效率,还可以避免误差和污染,保证实验结果的科学性和可信度。
希望以上介绍对于血球计数板的正确使用有所帮助。
血球计数板的使用方法

血球计数板的使用方法
血球计数板是一种用于测量血液中各种血球数量的实验室工具。
下面是使用血球计数板的一般步骤:
1. 准备工作:
- 清洁血球计数板:使用酒精或其他适当的清洁剂将血球计
数板彻底清洁,并确保完全干燥。
- 准备血液样本:采集血液样本,并将其置于抽血管中。
2. 充填血液样本:
- 将橡胶管连接至抽血管的一端,并将另一端放入含有适当
稀释液(例如乙醇,盐水等)的试管中。
- 轻轻压抽血管,让血液与稀释液混合,确保样本适当稀释。
3. 填充计数室:
- 将计数室的一角放入混合好的血液样本液中。
- 逐渐放松手指,使液体自然充满整个计数室。
4. 观察计数室:
- 使用显微镜,在10倍或40倍放大倍数下观察计数室的血
球图像。
- 记录计数室内的血球数量。
5. 计算血球数量:
- 将计数室中各种血球的数量进行计算和统计。
- 根据计数室内的面积和深度,计算总血球数量。
- 可以使用计数室所覆盖的血球数量与已知的面积,以得出
总血球数量的近似值。
6. 清洗和储存:
- 使用适当的清洁剂彻底清洗计数室,确保无血液残留。
- 将计数室储存在干燥,洁净的地方,以防止污染和损坏。
请注意,使用血球计数板可能需要一定的实验室训练和技巧,以确保准确性和可靠性。
在进行血液分析时,应遵循实验室的操作指南和安全规定。
血球计数板的计数方法

血球计数板的计数方法
血球计数板是一种常用的实验仪器,用于计算血球数量。
具体的计数方法如下:
1. 准备工作:首先,确保血球计数板干净,无污染。
可用洗涤剂和双蒸水进行清洗和冲洗,然后用无纹纸巾擦干。
2. 取血样:使用无菌针头采集一定量的血液样本,通常使用的样本量为0.02毫升。
3. 加样:将血液样本滴入血球计数板的计数区。
滴落的血液应均匀地分布在计数区的每个小方格内。
4. 观察:视觉放大镜或显微镜的帮助下,通过目镜观察计数区的血球数量。
5. 计数:随机选择若干个小方格,计算这些方格中血球的数量。
一般使用的计数面积为3个或4个方格。
6. 计算:将所选方格中的血球数量相加,然后乘以血球计数板的稀释倍数和倒干涉系数。
根据计算公式,可得出血球的浓度,常用单位为每立方毫米的血液中血球的数量。
7. 结果:将最终计算出的血球浓度记录下来,并报告给相关的医务人员或研究人员。
使用血球计数板进行血球计数时,需要严格按照操作规程进行,
避免出现污染或操作错误。
在完成计数后,要及时清洗血球计数板,以备下次使用。
血球计数板使用说明

而由于仪器(计数板、盖片、吸管等)不够准确与精密带来的误差称仪器误差;
由于细胞分布不均匀等因素带来的细胞计数误差属于分布误差或计数域误差(filed error)。
仪器误差和分布误差统称为固有误差或系统误差。技术误差和仪器误差可通过规范操作、提高熟练程度和校正仪器而避免或纠正,但细胞分布误差却难于彻底消除。质量控制一般需采用以下措施。
n为测定例数,∑d2为双样之差的平方和。
3.人员质量评价一般用两差比值法或双样试验标准差评价法进行质量评价或工作人员自我考核;变异百分数法通常用于评价细胞计数的结果。
(1)两差比值法用于考核实验结果的精密度。采用同一稀释样间隔2h后进行重复计数,求出两次镜下计数值之差(取绝对值)与两次计数值标准差的比值,即两差比值(r)。
评分:score=100-20.1×r,20.1为失分系数(40/1.99)。评级:90-100为优秀,80-89为良好,70-79为中等,60-69为及格,<60时为不及格。
(2)细胞稀释液应等渗、新鲜、无杂质微粒,同时应该保证细胞没有明显的团块。
(3)严格操作,从取样、重悬、稀释、充池到计数都应规范,尤其应注意的是样品稀释及充池时既要作到充分混匀,又要防止剧烈震荡为破坏红细胞。必须一次性充满计数室,防止产生气泡,充入细胞悬液的量以不超过计数室台面与血盖片之间的矩形边缘为宜。
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血球计数板介绍
用优质厚玻璃制成。
每块计数板由H形凹槽分为2个同样的计数池。
计数池两侧各有一支持柱,将特制的专用盖玻片覆盖其上,形成高0.10mm的计数池。
计数池画有长、宽各3.0mm的方格,分为9个大方格,每个大格面积为1.0mm.容积为0.1mm(ul),其中,中央大方格用双线分成25个中方格,位于正中及四角5个中方格是红细胞计数区域,用单线划分为16个小方格。
四角的4个大方格是白细胞计数区域,用单线划分为16个中方格。
根椐国际标准局(NBS)规定,大方格每边长度允许误差为±1%。
使用方法
1.视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释(斜面一般稀释100倍),以每小格的菌数可数为度。
2.取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片。
3.将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘摘入一小滴(不宜过多),让菌悬液利用液体的表面张力充满计数区,勿使气泡产生,并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌悬液。
也可以将菌悬液直接滴加在计数区上(不要使计数区两边平台沾上菌悬液,以免加盖盖玻片后,造成计数区深度的升高),然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。
4.静置片刻,使细胞沉降到计数板上,不再随液体漂移。
将血球计数板放置于显微镜的载物台上夹稳,先在低倍镜下找到计数区后,再转换高倍镜观察并计数。
由于生活细胞的折光率和水的折光率相近,观察时应减弱光照的强度。
5.计数时若计数区是由16个大方格组成,按对角线方位,数左上、左下、右上、右下的4个大方格(即100小格)的菌数。
如果是25个大方格组成的
计数区,除数上述四个大方格外,还需数中央1个大方格的菌数(即80个小格)。
为了保证计数的准确性,避免重复计数和漏记,在计数时,对沉降在格线上的细胞的统计应有统一的规定。
如菌体位于大方格的双线上,计数时则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。
即位于本格上线和左线上的细胞计入本格,本格的下线和右线上的细胞按规定计入相应的格中。
见右图:即本格中计数细胞为3个。
6.对于出芽的酵母菌,芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。
每个样品重复计数2-3次(每次数值不应相差过大,否则应重新操作),按公式计算出每mL(g)菌悬液所含细胞数量。
7.测数完毕,取下盖玻片,用水将血球计数板冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏网格刻度。
洗净后自行晾干或用吹风机吹干,放入盒内保存。
计数公式
1、16格×25格的血球计数板计算公式:
细胞数/ml=100小格内细胞个数/100×400×10000×稀释倍数
1、25格×16格的血球计数板计算公式:
细胞数/ml=80小格内细胞个数/80×400×10000×稀释倍数。