辣椒染色体倍性!水平的快速检测

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辣椒染色体常规镜检技术

染色体是遗传信息的载体，制着生物体的遗传控
性状，现出高度的稳定性和物种特异性。此研究染表因
过大量试验，我们掌握了染色体常规镜检技术的关键环
节，分析判断制片中存在的一些问题，取了相应的并采
自己的看法．有因为问题富有争议而事先设定学生没
３联系广泛的社会文化背景教育是文化的传承。１文化 “ 解 ” 教育活动受到了应有的重视。本书提供溶在的小组活动内容并没有狭隘的局限于章节教学内容，除部分紧密围绕章节教学内容的知识点，有相当一还部分活动是与社会现象甚至民族文化相联系的，如例第２ｌ章小组活动Ｂ，就是以菜肴风格的发展历史为出发点，查美国农作物的发展历史。是单纯的让学调不生知道一些社会文化的存在，是启发学生运用生物而学知识、生物学角度去分析这些社会现象，有助从更于学生人生观、界观的形成。世
处理措施。现就辣椒根尖染色体常规镜检操作的技术规
程以及制片中存在的问题和处理措施介绍如下：
１根尖染色体常规镜检操作技术规程
１１取材镜检用材料为辣椒根尖。将种子除去杂．质，用５ ℃温水浸泡２ — ０ｍｎ然后室温浸泡种子先５０３ｉ，６８ｈ，中间换１次水，用自来水冲洗５ｍｎ，入再ｉ放铺有潮湿滤纸的培养皿中，盖。置２ ℃恒温条件下加８萌发。每天用温水洗涤１２次以利发芽。待根长到 — 最新进展，论人类基因组计划对人类发展的一系列讨影响。这些问题的提出开阔了学生的视野，学生从把周围身边的生活琐事中引导出来，高了学生的观察提视角，进一步培养了学生的科学素养。也

红辣素色价及辣素含量的检测

红色素色价及辣精辣素含量的检测摘要我国辣椒资源丰硕，是传统的出口产品之一。

我国对辣椒产品的深度开发不够，连年来一直以出口辣椒干、辣椒油脂等低级产品和半成品为主，经济效益和社会效益都不睬想。

而美国、日本等发达国家，那么利用我国出口的辣椒干，采纳先进技术去除杂质和异味，制成辣椒红素等产品再高价返销我国。

为了彻底改变这种状况，有关专家建议，充分利用我国丰富的辣椒资源优势，采用先进的生产工艺，大力开发品质好、成本低的辣椒红素，不仅可满足国内市场的需求，还可出口创汇，在国际市场上占有一席之地。

辣椒红素是一种平安性好、且有必然营养价值和药理作用的天然食用色素，早在“七五’期间就被国家列为重点进展的四种天然色素之一。

最近几年来，由于人们回归自然、追求健康和绿色消费潮流的兴起，曾一度被普遍利用的化学合成色素，尽管其色泽鲜艳、着色力强、性质稳固、价钱低廉，但因其同时存在着无营养价值、化学毒性、在人体代谢进程中会产生有害物质和在合成进程中还可能被砷或铅等重金属污染等弱点，而使其在国内外的利用量不断减少，这就为辣椒红素等天然色素提供了加倍广漠的市场。

一种辣椒红色素和辣椒素提取工艺，用乙醇和正己烷的混合溶液对红辣椒颗粒进行浸泡后过滤取得滤液；将滤液静置并分层分离，分出正己烷与辣椒红色素混合液相即A相及乙醇与辣椒素混合液相即B相，加热A相使正己烷挥发被分离或氮气或除氡气之外的出，留下的辣椒红色素液体再用乙醇提纯，最后通入CO2惰性气体，取得纯净的辣椒红色素；加热B相使乙醇被分离出，留下的辣椒素浓缩液再与丙酮溶剂混合，将取得的辣椒素与丙酮混合液相加热，使得丙酮被分离出，制得纯净的辣椒素。

本发明制得的辣椒红色素和辣椒素的纯度和得率高，产品适用范围广，生产本钱低，产量大，便于操作。

关键词：辣素含量，红色素色价你的摘要不行需从头整理！。

辣椒质量标准及检验操作规程

辣椒质量标准及检验操作规程XXXXXXXXXXX有限公司原料质量标准及检验操作规程1 品名：1.1 中⽂名：辣椒1.2 汉语拼⾳：Lajiao2 代码：3 取样⽂件编号：4 检验⽅法⽂件编号：5 依据：《中国药典》（2020年版⼀部）。

6 质量标准：7 检验操作规程：7.1 试药与试剂：甲醇、四氢呋喃、辣椒素对照品、⽯油醚（60～90℃）、⼄酸⼄酯、⼆氯甲烷、浓氨试液、0.5%2，6-⼆苯醌-4-氯亚胺甲醇溶液（临⽤配制）、氨、⽔、⼆氢辣椒素对照品。

7.2 仪器与⽤具：电⼦天平、显微镜、离⼼机、硅胶G板、超声波清洗器、⾼效液相⾊谱仪、⼆氧化硫测定仪。

7.3 性状：取本品适量，⾃然光下⽬测⾊泽，嗅闻⽓味。

7.4 鉴别：7.4.1 取本品制⽚置10×10显微镜下做显微观察。

7.4.2 取本品粗粉2g，加甲醇-四氢呋喃（1：1）混合溶液25ml，超声处理30分钟，滤过，滤液蒸⼲，残渣加⼄醇2ml使溶解，离⼼，取上清液作为供试品溶液。

另取辣椒素对照品，加甲醇制成每lml含0. 5mg的溶液，作为对照品溶液。

照薄层⾊谱法（附录7）试验，吸取供试品溶液2～10µl 、对照品溶液5µl ，分别点于同⼀硅胶G薄层板上，以⽯油醚（60～90℃）-⼄酸⼄酯-⼆氯甲垸-浓氨试液（10 ：10 ：5 ：0.05）为展开剂，展开，取出，晾⼲，喷以0.5%2，6-⼆氯醌-4-氯亚胺甲醇溶液（临⽤配制），⽤氨蒸⽓熏⾄斑点显⾊清晰。

供试品⾊谱中，在与对照品⾊谱相应的位置上，显相同颜⾊的斑点。

7.5检查：⼆氧化硫残留量照⼆氧化硫残留量测定法（附录58）测定，不得过150mg/kg。

7.6含量测定：照⾼效液相⾊谱法（附录8）测定。

⾊谱条件与系统适⽤性试验以⼗⼋烷基硅烷键合硅胶为填充剂；以甲醇-⽔（50 ：50）为流动相；检测波长为280nm，柱温40℃。

理论板数按辣椒素峰计算应不低于3000。

对照品溶液的制备辣椒素对照品、⼆氢辣椒素对照品适量，精密称定，加甲醇制成每lml含辣椒素50µg、⼆氢辣椒素20µg的混合溶液，即得。

辣椒花药培养再生株群体染色体倍性构成的多样性

收稿日期:2006-03-07基金项目:国家“863”项目(2002AA244021,2002AA20701223);北京市科委项目(H022*********)作者简介:陈　斌(1975-),男,北京人,在职硕士,主要从事甜(辣)椒育种及花药培养的研究通讯作者:刘　凡(1965-),女,北京人,博士,研究员,主要从事生物技术方面的研究工作。

辣椒花药培养再生株群体染色体倍性构成的多样性陈　斌1,赵　泓1,耿三省1,张宝玺2,张月云1,刘　凡1(11北京市农林科学院蔬菜研究中心,北京　100097;21中国农业科学院蔬菜花卉研究所,北京　100081) 摘要:采用流式细胞分析术和染色体计数法对辣椒花药培养再生株群体的染色体倍性构成情况进行了鉴定。

显示了花药培养再生株中染色体倍性构成的多样性。

观察到染色体倍性在不同检测组织器官中的差异现象,说明对同一材料不同器官进行倍性检测以确定植株倍性的必要性,以及植株上部器官的染色体倍性对于结籽能力的决定性。

观察到再生株中个别细胞染色体的丢失现象。

对流式细胞检测技术和染色体计数法的相关性进行了研究,得出2种检测技术下二者的吻合度为0195,并对流式检测技术中的偏峰现象进行了初步的分析。

关键词:辣椒;花药培养;倍性构成;流式细胞仪;染色体计数中图分类号:Q343 文献标识码:A 文章编号:1000-7091(2007)01-0123-06Studies on Ploidy Composing in R egenerated Plants from AntherCulture of Pepper(Capsicum annuum L.)CHE N Bin 1,ZH AO H ong 1,G E NG S an 2sheng 1,ZH ANGBao 2xi 2,ZH ANG Y ue 2yun 1,LI U Fan 1(11Beijing Vegetable Research C enter ,Beijing Academ y of Agriculture and F oresty S ciences ,Beijing 100097,China ;21Institute of Vegetables and Flowers ,Chinese Academ y of Agricultural S ciences ,Beijing 100081,China )Abstract :Flow cytometric (FC M )analytical technique and chrom os ome counting were used for the detailed ploidy i 2dentification in population of anther culture derived pepper plants.Results revealed ploidy diversity in regenerated plants.The different ploidy in organs (eg.Leave and root tips )of the same plant was observed ,and this phenomena showed the im portance of determining ploidy level by different sam ples.Chrom os ome deletion was observed in s ome cells of haploid or double haploid plants.The coincidence between FC M and chrom os ome counting was high up to 0.95in our experiment.We als o discussed about the phenomenon of peak distortion in FC M analytical technique.These observations and results are significant for the haploid breeding ,germ plasm innovation and cytogenetic researches.K ey w ords :Pepper (Capsicum annuum L.);Anther culture ;Ploidy com posing ;Flow cytometry ;Chrom os ome counting 花药培养等单倍体育种技术不仅可以使杂合体快速稳定,缩短育种年限,而且可以获得新种质。

辣椒碱辣椒精辣椒粉辣度HPLC检测方法

辣椒碱、辣椒精、辣椒粉、辣度HPLC检测方法(一)辣椒碱检测辣椒碱、二氢辣椒碱、总辣椒碱含量检测：1、试剂和器材；1.1乙腈色谱级或同等级；1.2 冰醋酸,试剂级或同等级；1.3 水,色谱级或同等级；1.4 乙醇,95%分析纯；1.5合成辣椒素、二氢辣椒素（进口）；1.6高效液相色谱仪配置紫外可见检测器等。

2．液相色谱应用条件2.1流动相: 60%水加入1%的醋酸:40%乙腈(V/V)；2.2 流动速度1.5 ml/min；2.3 LC-18,5微米,15厘米*4.6毫米；2.4进样量20μl；2.5柱温28℃；2.6检测器在280 nm处测吸光值。

3．标样测量3.1标准样的准备（分别用辣椒素和二氢辣椒素）准称150mg（质量记为Mc和Md）左右标准品加入至100ml容量瓶中,用95%乙醇定容，摇匀，再移液稀释10倍；3.2用注射器移取标准稀释液溶液，加装过滤器注射到HPLC；3.3分别运行并记录峰谱面积Sc和Sd。

4．样品测量4.1样品的准备，准确称150mg（质量记为m）左右样品加入至100ml容量瓶中,用95%乙醇定容，摇匀，再移液稀释10倍；4.2用注射器移取标准液，加装过滤器(0.45um)注射到HPLC；4.3运行并记录峰谱面积，按出峰前后，降二氢辣椒碱为N, 辣椒碱为C, 二氢辣椒碱为D。

5．计算5.1辣椒碱含量=(C/Sc)*辣椒碱标样纯度*(Mc/m)*100℅；5.2二氢辣椒碱含量=(D/Sd)*二氢辣椒碱标样纯度*(Md/m)*100℅；5.3其它辣椒碱含量,仅选取降二氢辣椒碱其它辣椒碱含量=(N/Sc) *辣椒碱标样纯度*(Mc/m)*100℅；5.4总辣椒碱=辣椒碱含量+二氢辣椒碱含量+其它辣椒碱含量。

（二）辣椒精检测1．试剂和器材1.1乙腈色谱级或同等级；1.2 冰醋酸,试剂级或同等级；1.3 水,色谱级或同等级；1.4 乙醇,95%分析纯；1.5合成辣椒素、二氢辣椒素（进口）；1.6高效液相色谱仪配置紫外可见检测器等；1.7 丙酮,分析纯。

一种适用于辣椒大规模PCR鉴定的DNA快速提取技术

之为模板可在后续的ＳｓＲ．ＰＣＲ中得到良好的实验结果。结果表明针对不同的研究目的需采取不同的
组织部位来进行ＤＮＡ的提取，当面临种子纯度测定的任务时，需要截取种子的芽根。当面临成熟植株
的基因型筛选的任务时，需要截取植株的顶端嫩叶。综上，本研究表明相较其他传统的ＤＮＡ提取方法，
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｐｕｒｐｏｓｅｓ．ＲｏｏｔｓｏｆｇｅｒｍｉｎａｔｅｄｓｅｅｄｓｗｅｒｅｎｅｅｄｅｄｄｅＭｉｎｇｗｉｔｈｓｅｅｄ—ｐｕｒｉｔｙ—ｉｄｅｎｔｉ￣ｉｎｇ．
Ｔｏｐｂｕｄｓｏｆｍａｔｕｒｅｐｌａｎｔｓｗｅｒｅｎｅｅｄｅｄｄｅａｌｉｎｇｗｉｔｈｐｌａｎｔｇｅｎｅｔｉｃｓｃｒｅｅｎｉｎｇ．Ｉｎｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ，ｉｔｉｓｃｏｎｆｉｒｍｅｄｔｈａｔｃｏｍｐａｒｅｄｗｉｔｈｏｔｈｅｒｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌＤＮＡｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｍｅｔｈｏｄｓ，ａｌｋａｌｉｎ—ｈｅａｔｉｎｇｍｅｔｈｏｄｉｓａｍｏｒｅｓｕｉｔａｂｌｅｗａｙｔｏｓｏｌｖｅｔｈｅｐｒｏｂｌｅｍｏｆｈｉｇｈｔｈｒｏｕｇｈｐｕｔｇｅｎｅｔｉｃｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｐｅｐｐｅｒ．Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ｐｅｐｐｅ￣ｓｅｅｄｐｕｒｉｔｙ；ｇｅｎｅｔｉｃｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ；ＤＮＡｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
碱煮法确是更适合解决辣椒大规模鉴定问题的技术手段。
关键词：辣椒；纯度；基因型鉴定；ＤＮＡ提取
中图分类号：Ｑ７８１，ｓ６４１．３文献标志码：Ａ

辣椒红色素的检测方法

万方数据
2 ’
辣椒红色素的检测方法
作者：作者单位：刊名：英文刊名：年，卷(期)：被引用次数：王丽霞，庞杰王丽霞(福建农林大学生命科学院,福州,350002)，庞杰(福建农林大学食品科技学院,福州,350002) 辣椒杂志 JOURNAL OF CHINA CAPSICUM 2003，1(1) 3次
" # # $年第 ’期
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辣椒杂志 ( 季刊 +
产品加工
辣椒红色素的检测方法
王丽霞 ’ 庞
( ’ .福建农林大学生命科学院摘福州
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福州 $ / # # # " " .福建农林大学食品科技学院
要! 综述辣椒红色素的多种检测方法 , 即溶解性试验 0 显色反应 0 分光光度测定法及薄层层析法检测显色反应分光光度法薄层层析法
’ 2 含量1 显色反 -本文从介绍了溶解性试验 0 1 ’ 2 " , $ 2 应0 可见光谱测定方法 0 分光光度测定法 1
定 - 该法包括测定紫外可见吸收光谱和红外
/ 2 吸收光谱 1 紫外可见吸收光谱是取少量样品 -
用石油醚溶解0 稀释, 以石油醚为参比, 在分光光度计 ( 岛津 9:%" 上测定其吸收光 ; # + 谱红外吸收光谱是将样品制片 ,在红外分光
/ 0 1
组分组成 * 极性大小不同 * 用展开剂系统可以将其分离 ( 即将高效硅胶 @ 板在 = = # A活化将色素用丙酮稀释* 用微量毛细管点 # $ 3 * B 样* 点样后薄板放在层析缸中* 按上行法展开* 至斑点分开时终止层析 * 取出薄板晾干 ( 计算展开系统薄层层析的 C 值( D 质量指标分析 ?

不同十字花科作物气孔保卫细胞周长和叶绿体数目与其倍性的相关性研究

不同十字花科作物气孔保卫细胞周长和叶绿体数目与其倍性的相关性研究胡靖锋;兰梅;徐学忠;杨红丽;张丽琴;刘家佳;赵颖;和江明【摘要】Using oilseed rape, greenterrier and spring vegetable as the tested materials, the author studied the correlations between the circumference and chloroplast number of leaf stoma guard cell and the ploidy of these cruciferous crops. The results showed that there were significant differences in the circumference and chloroplast number of leaf stoma guard cell among different cruciferous crops or between diploid and haploid plants of the same crop. The result of identifying the ploidy of plants by chloro-plast count of stomata guard cells was the same as that by plant morphology observation. Therefore,the circumference and chloro-plast number of leaf stoma guard cell of plants could be used to rapidly identify their ploidy at earlier growth stage.%以油菜、青梗菜、春菜为试验材料,对其叶片气孔保卫细胞周长及叶绿体数目与其倍性关系进行了研究,结果表明:不同作物间气孔保卫细胞周长及叶绿体数目差异显著;相同作物二倍体与单倍体植株气孔保卫细胞周长及叶绿体数目差异显著;气孔保卫细胞叶绿体计数鉴定与植株形态观察鉴定植株倍性相结合,鉴定结果一致.利用植株气孔保卫细胞周长及叶绿体数目鉴定植株倍性,可作为早期快速鉴定植株倍性的一种方法.【期刊名称】《江西农业学报》【年(卷),期】2018(030)002【总页数】4页(P34-37)【关键词】十字花科作物;气孔保卫细胞周长;叶绿体数目;倍性【作者】胡靖锋;兰梅;徐学忠;杨红丽;张丽琴;刘家佳;赵颖;和江明【作者单位】云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205;云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205;云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205;云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205;云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205;云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205;云南农业职业技术学院农学与生物技术学院,云南昆明650212;云南省农业科学院园艺作物研究所/国家蔬菜改良中心云南分中心,云南昆明650205【正文语种】中文【中图分类】Q942.4体细胞融合、花药培养、小孢子培养等再生植株都需要进行倍性鉴定，常用的方法包括流式细胞仪检测［1－2］、植株形态学观察［2］、根尖染色体计数［3］等。

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!& 材料与方法
!’ !& 供试材料供试材料为辣椒纯系 (!) 、 (#$ 花药培养产生的单倍体植株（ ! * " * !# ）及用其种子长成的二倍体植株（ # ! * # " * #+ ）。当小孢子来源的植株长出 + , - 片真叶时，移植于无菌培养基质［# （珍珠岩） . # （草炭） . # （土壤） * !. !. ! ］上，置于组培室中生长。培养条件为室温（（ #- / ! ） 0 ），每天光照 !1 , !# 2，光照强度 $ 111 34。种子消毒后置 56 培养基上培养无菌苗，当有 + , - 片真叶、根长为 !’ - , #’ 1 78 时移植于无菌培养基质［# （珍珠岩） . # （草炭） . # （土壤）* ! . !. ! ］上，置于组培室中，生长培养条件同前。 !’ #& 倍性鉴定方法 !’ #’ !& 取样时期和部位 & 当植株移栽后具有 % 片真叶时开始观察。每一植株均取顶端向下第 - 片真
"!!
西北农林科技大学学报（自然科学版）
第 $- 卷
多育种材料。因此，寻求一种简便、快速、有效的鉴定方法，对于加速育种进程具有十分重要的意义。单倍体的根、茎、叶、花、气孔等与二倍体相比有明显差异，具有特殊的农艺性状和细胞生物学特性。叶片上的气孔是植株与外界进行气体交换的通道。叶片中气孔保卫细胞叶绿体数目受染色体控制，能准
# ! ［收稿日期］［基金项目］ # ［作者简介］ # ［通讯作者］ #
*++IK+IK*G 国家 “ 十一五” 科技支撑计划项目（ *++IF8V+D8, ）；西北农林科技大学植物遗传育种专项（ +"_L+*EKD ）张菊平（ DGI$ ‘ ），女，河南汝阳人，副教授，在读博士，主要从事蔬菜生物技术与遗传育种研究。巩振辉（ DG", ‘ ），男，陕西礼泉人，教授，博士生导师，主要从事蔬菜种质资源与生物技术研究。万方数据 AKY1<’： CX44DI$a >14&&( @&Y( @0
!"#$% %&’&()$*"’$+* +, #-+$%. -&/&- +, 01(+)+2+)& $* #&##&(
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#"!
平均值之比为 !" #$ % ! ，略低于其染色体数之比。 ! 值大于 ’" ’( ，表明二倍体和 ! 适合性测验表明，
#& 结果与分析
#’ !& 辣椒气孔保卫细胞叶绿体数与染色体倍性的相关性从表 ! 可看出，单倍体和二倍体辣椒叶片气孔保卫细胞中叶绿体数的变异系数较大，平均分别达 !+’ $$9 和 !#’ !$9 。差异显著性检验（ $ 检验）结果表明，不同染色体倍性间的气孔叶绿体数平均值差异达极显著水平，二者间 $ 值为 !+’ +#，而不同品种同一倍性内气孔保卫细胞叶绿体数平均值的差异不明显。从图 ! 可清晰区分不同品种不同倍性辣椒气孔保卫细胞叶绿体数目的差异。辣椒气孔叶绿体数目与染色体倍数性存在着正相关关系。因此，用气孔保卫细胞叶绿体数平均值鉴定染色倍性，可以排除品种及不同取样部位的影响。辣椒植株气孔保卫细胞叶绿体数目平均值，可以作为染色体倍性的鉴定依据。
表 !& 辣椒单倍体和二倍体植株气孔保卫细胞叶绿体数的比较 ABC3D !& EF8GBH<IF= FJ 723FHFG3BIK =L8CDH FJ IKF8B MLBHN 7D33 CDKODD= 2BG3F<NI B=N N<G3F<N G3B=KI <= GDGGDH
辣椒品种 PFK GDGGDH QBH<DK<DI (!) (#$ 平均值 XQDHBMD (!) (#$ 平均值 XQDHBMD 二倍体 ?<G3F<N 二倍体 ?<G3F<N $11 $11 倍性 @3F<NR 3DQD3I 单倍体 PBG3F<N 单倍体 PBG3F<N 观察气孔数 SF’ FJ IKF8B !-1 !-1 叶绿体数平均值 5DB= QB3LD FJ 723FHFG3BIK =L8CDH )’ -1 / !’ $% %’ W) / !’ #$ )’ !1 !-’ )W / !’ V) !-’ -# / #’ 1# !-’ V+ 叶绿体数变异幅度 TBH<BK<F= HB=MD FJ 723FHFG3BIK =L8CDH V , !# V , !# V , !# !$ , #1 !$ , !) !$ , !)’ 变异系数 U 9 EFDJJ<7<D=K FJ QBH<BK<F= !+’ -1 !+’ !!+’ $$ !!’ ## !$’ 1+ !#’ !$
!"#$%&’$ ：R0 &/B6/ 3& 766T 1 7<YO’6 10B /1O ’6=6’ &2 @4/&Y&7&Y6 <0 O6OK O6/， 346 41O’& @&.03<0C 346 0.YZ6/ &2 73&Y1 @4’&/&O’173 <0 C.1/B @6’’( [46 /67.’37 74&56B 3413 346 B<7@/6OK 10@> &2 346 1=6/1C6 @4’&/&O’173 0.YZ6/ 517 6\3/6Y6’> O/&Y<0603( ]4’&/&O’173 0.YZ6/ &2 346 41O’& ’6=6’7( [46 /6’<1Z<’<3> &2 O’& <B603<2<@13<&0 @&.036B Z> 73&Y1 C.1/B @6’’ @4’&/&O’173 0.YZ6/ 517 4<C46/ ， 5<34 346 1=6/1C6 1@@./136 /136 &2 G*( I$J ， 74&5<0C 3413 Y617./6Y603 &2 346 0.YZ6/ &2 73&Y1 @4’&/&O’173 <0 C.1/B @6’’ @&.’B Z6 @&07<B6/6B 17 1 2173 10B 1@@./136 Y634&B 3& B636/Y<06 41O’& Q6=6’ 加速育种进 # # 单倍体育种可大大缩短育种年限，程，提高选育效率，在育种中具有极大的应用潜力。倍性鉴定是植物单倍体育种中不可或缺的重要环节，其鉴定速度和精度关系到单倍体育种的进程。传统的倍性鉴定技术是采用根尖染色体直接计数法或通过观察开花结实情况进行判断，前者程序比较复杂，技术要求高，耗时多；后者鉴定时期太晚，且已完成整个生育期而无法再采取补救措施，浪费了许
万方数据色体 ! * !# ，二倍体与单倍体染色体数之比为 #. ! ；
& & 辣椒二倍体植株染色体 # ! * #+ ，单倍体植株染
辣椒二倍体气孔保卫细胞叶绿体数平均值为!-’ V+ ，单倍体为 )’ !1 （表 !），二倍体和单倍体间叶绿体数
第P 期
张菊平等：辣椒染色体倍性水平的快速检测
第 !" 卷# 第 $ 期 *++, 年 $ 月