分子生物学实验
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学是一门在微观层面研究生物大分子结构与功能的科学，而分子生物学实验则是探索生命奥秘的重要手段。
通过一系列精确设计的实验操作，我们能够揭示基因的表达、遗传信息的传递以及生物体内各种分子的相互作用。
在分子生物学实验中，有几个关键的技术和方法常常被运用。
其中之一就是核酸提取技术。
核酸，包括 DNA 和 RNA，是携带遗传信息的重要分子。
要对其进行深入研究，首先就得有效地从细胞或组织中提取出来。
这可不是一件简单的事情，需要小心翼翼地操作，以避免核酸的降解和污染。
比如说，提取 DNA 时，通常会先将细胞破碎，使细胞核内的 DNA 释放出来。
然后，通过加入各种试剂，去除蛋白质、脂质等杂质，最后得到纯净的 DNA 溶液。
这个过程中，每一步所使用的试剂浓度、温度和反应时间都需要严格控制。
RNA 的提取则更为棘手，因为 RNA 很容易被环境中的 RNA 酶降解。
所以，实验过程中要使用无 RNA 酶的试剂和器材，操作也要尽可能迅速。
另一个重要的技术是 PCR 扩增，也就是聚合酶链式反应。
这就像是一个神奇的魔法，能让我们把微量的 DNA 片段大量复制。
想象一下，我们手里只有一点点 DNA 样本，但是通过 PCR 技术，就能够在短时间内获得足够多的相同 DNA 片段，用于后续的分析和研究。
PCR 反应需要特定的引物，这些引物就像是导航仪，告诉聚合酶从哪里开始合成新的 DNA 链。
反应还需要精确控制温度的循环变化，包括高温变性、低温退火和适温延伸这几个步骤。
在分子生物学实验中，还有一项常用的技术是电泳。
这就好比是一场分子的赛跑比赛。
我们把 DNA 或蛋白质样品放入凝胶中，然后通电，由于分子的大小和电荷不同，它们在电场中的移动速度也不一样。
这样，我们就能根据它们移动的距离和位置来分析样品的特性。
比如说，DNA 电泳可以帮助我们判断 DNA 片段的大小，看看有没有我们想要的那个片段。
蛋白质电泳则能让我们了解蛋白质的分子量、纯度等信息。
分子生物学实验方法
分子生物学实验方法1.DNA提取与纯化DNA提取是分子生物学实验中最常用的技术之一，用于从不同种类样本中提取纯化DNA。
常见的提取样本包括细菌、动植物组织以及人体样本。
提取过程通常包括细胞破碎、蛋白质除去、DNA溶解和纯化等步骤。
常用的提取方法包括酚/氯仿提取法、CTAB提取法和商业化提取试剂盒。
2.PCR（聚合酶链反应）PCR是一种高效扩增DNA的技术，可将一小段目标DNA序列扩增成数百万个拷贝。
PCR反应通常包括DNA模板、两个引物、dNTPs（四种核苷酸单元）和DNA聚合酶等成分。
反应的核心步骤是多个高温循环，包括变性（解开DNA的双链）、退火（引物结合到目标序列）和延伸（DNA聚合酶合成新链）等步骤。
PCR广泛应用于分子克隆、基因表达研究、疾病诊断等领域。
3.转染和转化转染和转化是将外源DNA导入宿主细胞中的技术。
转染是指将DNA导入非真核细胞（如细菌）或真核无性细胞中，常用的方法包括电穿孔法、化学法和病毒载体介导等。
转化是指将外源DNA导入真核多细胞直至整个个体范围内，常见的方法包括冷冻转化、冲击转化和基因枪法等。
4.蛋白质表达和纯化蛋白质表达和纯化是研究蛋白质结构和功能的关键步骤。
常见的表达系统包括细菌系统（如大肠杆菌）、酵母系统（如酵母菌）和哺乳动物细胞系统（如CHO细胞）。
表达后，蛋白质需要经过多个步骤进行富集和纯化，如离心、柱层析和亲和层析等。
以上仅是分子生物学实验方法中的一部分，随着技术的发展，分子生物学实验方法也在不断更新和扩展。
这些实验方法在疾病诊断、基因工程、生物学研究等领域发挥了重要作用。
分子生物学实验
实验一：细胞的传代与培养实验材料：1、细胞：PC12细胞株2、试剂：0.25％胰酶、1640培养基（含10％胎牛血清）3、仪器和器材：倒置显微镜，培养箱、培养板，吸液枪，酒精灯等实验原理：从生物体中取出某种组织或细胞，模拟体内生理条件，在人工培养条件下使其生存、生长、繁殖或传代，这一过程称为细胞培养。
细胞培养技术的最大优点是使我们得以直接观察活细胞，并在有控制的环境条件下进行实验，避免了体内实验时的许多复杂因素，还可以与体内实验互为补充，可同时提供大量生物性状相同的细胞作为研究对象，耗费少，比较经济，因此成为生物学研究的重要手段。
细胞培养可分为原代培养和传代(继代)培养。
直接从体内获取的组织细胞进行首次培养为原代培养；当原代培养的细胞增殖达到一定密度后，则需要做再培养，即将培养的细胞分散后，从一个容器以1：2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培养，为传代培养，传代培养的累积次数就是细胞的代数。
细胞培养是一种程序复杂、要求条件多而严格的实验性工作。
所有离体细胞的生长都受温度、渗透压、pH值、无机盐影响，消毒、配液等均有严格的规范和要求，特别是无菌操作是细胞培养成败的关键。
操作步骤：1、将长满细胞的培养板中原来的培养液吸去。
2、加入1到2ml 0.25％胰酶溶液，使板底细胞都浸入溶液中。
3、放入培养箱中消化2-3分钟4、用吸管将贴壁的细胞反复吹打成悬液，再按照观察的生长情况确定的传代比例传代。
5.根据确定的比例来取需要的量，加入4ml左右的培养液6.前后左右的来回震荡使细胞分散均匀后，将培养皿放入培养箱7.收拾整理超净台实验结果：生长良好的PC12细胞图如下：实验二：MTT比色法实验材料：1、细胞：PC12细胞株2、试剂：0.25％胰酶、1640培养基（含10％胎牛血清）、DMSO、MTT 溶液MTT 溶液的配制方法：通常，此法中的MTT 浓度为5mg/ml。
因此，可以称取MTT 0.5克，溶于100 mL的磷酸缓冲液（PBS）或无酚红的培养基中，用0.22 μm 滤膜过滤以除去溶液里的细菌，放4℃避光保存即可。
常见分子生物学实验方法
常见分子生物学实验方法1.DNA/RNA提取DNA和RNA提取是进行分子生物学实验的第一步。
常见的提取方法包括酚/氯仿法、离心法、基于载体的提取等。
这些方法可以从细胞、组织或血液中提取出高质量的DNA或RNA用于后续实验。
2.PCR扩增聚合酶链反应（PCR）是一种常用的体外DNA扩增技术，用于复制特定DNA片段。
通过PCR，可以从少量的DNA样本中扩增目标序列，并与特异性引物一起进行扩增。
PCR具有高度特异性和灵敏度，广泛应用于基因克隆、基因检测和定量分析等领域。
3.基因克隆基因克隆是指将特定目标基因从一个有机体中分离并插入到另一个有机体中。
常见的基因克隆方法包括限制性内切酶消化、连接、转化、筛选等。
基因克隆可以用于生成重组DNA、构建表达载体、设计并构建突变基因、重组蛋白质等。
4.蛋白质表达和纯化蛋白质表达和纯化是研究蛋白质功能和结构的重要步骤。
常见的表达系统包括细菌、酵母、昆虫细胞、哺乳动物细胞等。
表达后，通过亲和纯化、离子交换层析、凝胶过滤等手段纯化所得蛋白质。
5.基因敲除/敲入基因敲除或敲入是通过改变目标基因的DNA序列来研究基因功能的方法。
基因敲除可以通过CRISPR-Cas9系统、RNA干扰、转座酶介导的基因敲入等方法实现。
6.DNA测序DNA测序是分析DNA序列的方法。
常见的测序技术包括Sanger测序、下一代测序（包括Illumina、Ion Torrent、PacBio等）等。
DNA测序可以应用于基因组学、转录组学、评估其中一区域的突变等领域。
7.西方印迹西方印迹是一种蛋白质检测方法，用于检测和定量特定蛋白质的存在和表达水平。
通过电泳将蛋白质分离，然后转移到膜上，并使用特异性抗体与目标蛋白质结合，最后通过酶标记二抗或荧光二抗的检测。
8.荧光定量PCR荧光定量PCR（qPCR）是一种用于定量分析DNA或RNA浓度的方法。
通过特异性引物、探针与目标序列的结合，实时检测并记录PCR扩增产物的信号，进而测定起始目标序列的数量。
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学实验是一种研究生物体分子结构、功能和交互作用的实验方法。
本文将介绍分子生物学实验的一般步骤和常用技术，并以DNA提取和PCR扩增为例，详细描述了实验的具体步骤和操作。
分子生物学实验一般包括以下几个步骤：实验前的准备、生物样品的采集和处理、核酸提取、酶切和电泳、PCR扩增、蛋白质表达等。
实验前的准备包括实验设计、试剂的准备和设备的调试。
根据实验目的和问题，确定实验设计和具体操作步骤，选择适当的试剂和设备，并对实验条件进行优化。
生物样品的采集和处理是分子生物学实验的基础。
根据研究对象不同，可以采集细胞、组织、血液等生物样品，并进行预处理，如细胞培养、组织切片、离心等。
核酸提取是从生物样品中分离出核酸的步骤。
核酸提取可以使用化学方法或基于特定原理的商业试剂盒。
其中，常用的方法有酚/氯仿法、骨架蛋白法、磁珠法等。
酶切和电泳是分子生物学实验中常用的技术手段。
酶切是通过限制性内切酶对DNA进行特异性切割，生成特定大小的DNA片段。
电泳是利用电场对DNA片段进行分离和检测，可通过琼脂糖凝胶电泳或聚丙烯酰胺凝胶电泳进行。
PCR扩增是一种重要的分子生物学实验技术。
PCR通过不断循环的变性、退火和延伸过程，在体外扩增DNA序列。
PCR 需要DNA模板、引物、核苷酸和聚合酶等关键试剂。
PCR扩增过程包括初始变性、循环扩增和最终延伸。
扩增产物可通过琼脂糖凝胶电泳进行分析和检测。
蛋白质表达是研究蛋白质功能和结构的重要实验手段。
常用的蛋白质表达系统包括原核表达系统和真核表达系统。
表达载体经过构建和转染后，利用细胞的表达机制使蛋白质在体内合成。
总之，分子生物学实验是研究生物体分子结构和功能的重要方法。
通过实验前的准备、生物样品的采集和处理、核酸提取、酶切和电泳、PCR扩增、蛋白质表达等步骤，可以获得关于生物体分子结构和功能的有价值的信息。
分子生物学实验
分子生物学实验分子生物学实验是研究生命分子结构和功能的基础。
分子生物学的研究对象是生命体内的DNA、RNA、蛋白质等生物分子，通过实验可深入了解生命分子的结构及其功能，为治疗疾病等产生重要的科研意义。
本文将着重介绍PCR扩增、基因克隆、蛋白质表达和酶联免疫吸附实验等分子生物学实验。
PCR扩增PCR扩增是分子生物学领域中使用最广泛的实验技术之一。
PCR扩增技术是通过不断的复制，使DNA分子增多。
PCR主要操作步骤包括：DNA样品提取、模板DNA扩增、DNA回收纯化和定量检测等。
PCR扩增实验分为两部分：第一部分是制备PCR反应混合物，包括模板DNA、引物（Primer）、反应缓冲液、酶、脱离剂、种子液等。
制备反应混合物的过程中，需要将所有的试剂按照一定比例混合后，将混合液均匀吸入PCR管内。
第二部分是PCR反应实验本身，包括控制PCR反应温度变化、确保每个PCR 反应的时间和温度一致、等等。
PCR反应时间通常在2-6小时之间，取决于所扩增的DNA片段的长度和针对不同目标所使用的引物。
基因克隆基因克隆是利用重组DNA技术将外源DNA和载体DNA组装重组成新的DNA分子，然后通过转化等方式将新的DNA分子转移到感受态宿主细胞中，使得新的DNA分子被细胞所接受并复制，从而达到克隆目的的一种实验方法。
基因克隆实验的主要操作步骤包括：选取适当的载体，将所需要的外源DNA和载体DNA连接起来组成重组DNA分子，将重组DNA分子转化至感受态宿主细胞中，最后从发酵液中提取所需的目标DNA分子。
基因克隆技术在分子生物学实验研究中起到了重要的作用，使得我们能够制备大量目标分子用于进一步的研究。
蛋白质表达蛋白质表达是一种将蛋白质合成出来的实验技术。
蛋白质表达技术的主要目的是利用外源基因的扩增技术，将目标蛋白表达并纯化出来，从而进一步深入了解蛋白质的结构及其功能。
蛋白质表达实验的主要操作步骤是：蛋白质的基因落库、基因克隆到重组基因载体中、启动子、子纯化表达及活性鉴定等。
分子生物学实验技术3篇
分子生物学实验技术
第一篇：PCR技术
PCR（聚合酶链反应）是一种基于体外体内 DNA 复制的技术。
PCR 技术广泛应用于分子生物学、生物医学研究、医学诊断、生物技术等领域。
在 PCR 中，核酸模板、引物、聚合酶和反应缓冲液是必不可少的组成部分。
PCR 引物是在特定位置的 DNA 片段，用于诱导聚合酶模板 DNA 的扩增。
聚合酶通过催化模板 DNA 在 DNA 引物的引导下合成相应的 DNA 片段，产生大量的重复 DNA 片段。
PCR 是一种快速、高效、灵敏的 DNA 分析技术，可以对非常小的样本进行扩增。
PCR 的操作流程如下：
1．取得合适的 DNA 样品。
2．准备 PCR 反应体系，包括 PCR 反应缓冲液、聚合酶、DNA 模板和引物。
3．用 PCR 机进行程序设定和反应。
4．检查 PCR 反应产物，包括 PCR 产物的带型和验证PCR 产物的特异性和纯度等。
PCR 的应用
1．DNA 序列鉴定以及 DNA 序列变异检测。
2．基因表达分析、基因定量、等位基因分析等基因功能研究操作。
3．分子诊断，可以根据染色体、基因、蛋白质等材料进行分析。
4．农业和畜牧业生物工程的研究。
优点：
PCR 反应时间逐渐缩短，灵敏度高，重现性好，稳定性强。
PCR 技术可以在非常小范围内进行 DNA 分析，并可以处理复杂的实验体系。
缺点：
PCR 技术还有一些局限性，比如需要合理设计引物，需要准确的温度控制，需要恰当的试剂，且对样品的纯度和净化度有严格的要求。
分子生物学实验3篇
分子生物学实验第一篇：PCR技术在分子生物学中的应用PCR（聚合酶链式反应）是分子生物学中一项广泛应用的技术，被用于DNA的扩增和检测。
PCR技术已经成为了分子生物学和生物医学研究的基础技术之一。
PCR技术被广泛的应用于遗传学、人类学、医学研究、植物学和动物学研究等各领域。
PCR技术的基本原理是：通过提取DNA，将DNA特异性引物与模板DNA相结合，利用热稳定DNA聚合酶和四种脱氧核苷酸为反应体系提供能量，使其在一定条件下循环扩增目标DNA片段。
通过PCR扩增后的DNA片段可以进行进一步的分析和检测。
PCR技术的扩增具有明显的优势，可同时扩增不同长度的DNA片段，扩增时间短，扩增的精度和重复性高，且所需的样本量小。
PCR技术在分子诊断、基因组学和分子系统学等领域的应用不断扩展和深化。
随着PCR技术的不断发展，PCR在分子生物学研究中的应用越来越广泛，成为分子生物学研究的重要工具。
第二篇：RNA干扰技术在分子生物学中的应用RNA干扰（RNAi）是分子生物学中一种重要的现象，其中小分子RNA片段通过RNAi途径参与靶基因的沉默和调节。
RNAi技术是人类基因功能研究中最具前途的一种技术之一。
RNA干扰技术的基本原理是通过利用RNAi分子的特异性配对功能，引导RNAi分子与靶基因mRNA相结合，导致mRNA的降解和翻译的抑制，实现对基因表达的调控。
RNA干扰技术在分子生物学研究中有广泛的应用，如：功能基因的筛选、基因表达调节、基因功能验证等。
RNA干扰技术具有多种优点，如高效性、特异性强、节约时间、资源和成本等方面的优势，逐步成为生命科学研究中的重要工具。
在研究过程中，RNA干扰技术常用于寻找分子病理学中新的治疗靶点，鉴定靶点基因和靶点蛋白，为新药物的开发和临床治疗提供了重要的理论和实验基础。
第三篇：基因克隆技术在分子生物学中的应用基因克隆技术始于20世纪70年代，是指将DNA分子导入到载体中，使其在细胞中进行表达的过程。
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分子生物学实验
（1）琼脂糖凝胶电泳进行DNA分离原理
琼脂糖是从琼脂中提取的一种多糖，具亲水性，但不带电荷，是一种很好的电泳支持物。
DNA分子在琼脂糖凝胶中时有电荷效应和分子筛效应。
DNA分子在高于等电点的溶液中带负电荷，在电场中向正极移动。
在一定的电场强度下，DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应。
具有不同的相对分子质量的DNA片段泳动速度不一样，可进行分离。
相对分子质量相同，但构型不同的DNA分子泳动速度不一样。
最前沿的是SCDNA,其后依次是L DNA和OC DNA
EB（溴化乙锭）的作用是染色剂，可以插入到DNA的双链中，在紫外线的作用下，会发出白光
电泳缓冲液的PH在6~9之间，离子强度0.02~0.05最合适，琼脂糖凝胶约可区分相差100bp的DNA片段，。
（2）SDS法提取植物基因组DNA的原理
利用含高浓度SDS的抽提缓冲液在较高温度（55~65度）条件下裂解植物细胞，使染色体离析，蛋白质变性，释放出核酸，然后提高盐浓度（KAc）和降低温度（冰上保温）的办法沉淀除去蛋白质和多糖（在低温下KAc与蛋白质及多糖结合成不溶物），离心除去沉淀后，上清液中的DNA用酚/氯仿抽提，反复抽提后用乙醇沉淀水相中的DNA。
（3）DNA回收试剂盒回收DNA原理
从琼脂糖凝胶中回收DNA片段．可得到大小一致的DNA片段。
先使凝胶被溶胶液溶解，然后DNA与HiBindTM DNA柱子结合，再从HiBindTM DNA柱子中洗脱出DNA片段。
HiBindTM DNA柱子可以在某种适宜的情况下高效而可逆地结合DNA/RNA，除去蛋白质及其他杂质，而被结合的核酸能很容易地被去离子水或低盐缓冲液洗脱出来。
（4）利用PCR扩增目的基因原理
利用DNA半保留复制，在试管中进行DNA的扩人工复制，在很短时间内，将DNA扩增几百万倍甚至几十亿倍，使实验室所需的遗传物质不再受限于活的生物体。
PCR由变性--退火--延伸三个基本反应步骤构成：①模板DNA的变性：模板DNA经加热至93℃左右一定时间后，使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离，使之成为单链，以便它与引物结合，为下轮反应作准备；②模板DNA与引物的退火(复性)：模板DNA 经加热变性成单链后，温度降至55℃左右，引物与模板DNA单链的互补序列配对结合；③引物的延伸：DNA模板--引物结合物在TaqDNA聚合酶的作用下，以dNTP为反应原料，靶序列为模板，按碱基配对与半保留复制原理，合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链重复循环变性--退火--延伸三过程，就可获得更多的“半保留复制链”，而且这种新链又可成为下次循环的模板。
（5）目的DNA片段的T载体连接及阳性重组子氨芐青霉素抗性筛选的原理
1.T4噬菌体DNA 连接酶催化DNA 连接反应分为3 步：首先，T4 DNA 连接酶与辅因子ATP形成酶-ATP复合物；然后，酶-ATP复合物再结合到具有5’磷酸基和3’羟基切口的DNA上，使DNA腺苷化；最后产生一个新的磷酸二酯键，把切口封起来。
连接反应通常将两个不同大小的片断相连
连接反应的温度在37℃时有利于连接酶的活性。
但是在这个温度下粘末端的氢键结合是不稳定的。
因此采取折中的温度，即12-16℃，连接12-16h（过夜），这样既可最大限度地发挥连接酶的活性，又兼顾到短暂配对结构的稳定。
2.氨苄青霉素抗性插入失活筛选法先将转化液涂布含有Amp的平板；再将Amp平板上的转化子影印至含有Tet的平板上；在Amp平板上生长、但在Tet 平板上不长的转化子即含有目的重组子。
将外源DNA片段插在EcoRI位点，则：非重组子呈Ampr、Tetr 重组子呈Ampr、Tetr 将外源DNA片段插在BamHI 位点，则：非重组子呈Ampr、Tetr 重组子呈Ampr、Tets 显色筛选法可以区分转化子与非转化子，也可区分重组子与非重组子。
原理：
氨苄青霉素筛选原理：一般阳性重组子中都含有氨苄青霉素抗性基因，放在含有氨苄青霉素的培养基上培养，如果含有外源DNA，那么细胞内就有载体，载体上有抗性基因，能够对抗生素具有抗性，因此能生长，而如果细胞内没有外源基因，也就没有载体上的抗性基因，不能表达，从而在抗生素培养基上长不起来
常用的筛选重组体的杂交方法有1、菌落和噬菌斑原位杂交2、斑点印迹杂交3、R-环检测4、Southern印迹杂交5、Northern印迹杂交1、原位杂交筛选2、斑点印迹杂交3、R-环检测法4、Southern印迹杂交Southern （6）大肠杆菌热激转化原理
实验原理:
质粒的转化是指将质粒或以它为载体构建的重组子导入细菌的过程。
将连接产物转化到感受态细胞中，实现重组克隆的增殖，便于后续分子操作。
热激法:大肠杆菌在0C、CaCl2 低渗溶液中，菌细胞膨胀成球形，与转化混合物中的DNA形成抗DNase的羟基-钙磷酸复合物粘附于细胞表面，经42°C短时间热冲击处理，促进细胞吸收DNA复合物，在丰富培养基上生长数小时后，球状细胞复原并分裂增殖。
在被转化的细胞中，重组子基因得到表达，在选择性培养基平板上可挑选所需的转化子
实验步骤:
(1)从-80 °C冰箱内取- -管冻存的感受态大肠杆菌DH-5a于冰浴上融化复苏10min;
(2)加入待转化的质粒0.5μL-1.5μL，轻轻吹打混匀，冰浴30min;
(3)在42 °C恒温水浴锅中严格操作热激90 s然后立即冰浴静置2 min
(4)在无菌操作台内，向感受态大肠杆菌中加入600 μL-1000μLLB液体培养
基，在200r/min、37°C恒温摇床内摇30min-1h进行活化;
(5)在活化的时候，从4C拿出含抗生素的固体细菌培养板放到37"C恒温培养箱中回温十分钟。
(6)活化结束后，在无菌操作台内，吸取菌液20μL-40μL涂板到含抗生素(50 mg/ml)的固体细菌培养板上;
(7)置于37 C恒温培养箱内过夜培养(12h-16h)。
要点:
1，固体培养板的抗生素抗性(Amp，Kana)
2，转化质粒的量根据质粒浓度进行添加
3，涂板菌液的量根据活化加培养基的量进行选择
4，注意每项工作前都要进行充分准备，比如涂板棒进行灭菌，移液枪进行消毒等。
5，对刚连接的质粒进行转化，不同之处在于活化时间为1-2h。
活化后，将菌液2500 -3500rpm离心3 min, 留下沉淀和200μL菌液，充分混匀，涂板到含抗生素的固体培养基上。
7，离心机和移液枪的使用和注意事项
移液器操作规范和使用注意事项:量程：0,5~10ul,20~200ul,100~1000ul
1.设定移液体积
从大量程调节至小量程为正常调节方法，逆时针旋转刻度即可
从小量程调节至大量程时,应先调至超过设定体积刻度,再回调至设定体积，这样可以保证移液器的精确度
2.装配移液枪头
将移液枪垂直插入吸头，左右旋转半圈，上紧即可。
用移液器撞击吸头的方法是非常不可取的，长期这样操作回导致移液器的零件因撞击而松散，严重会导致调节刻度的旋钮卡住
3.吸液及放液
垂直吸液
吸头尖端浸入液面3mm以下，吸液前枪头先在液体中预润洗
慢吸慢放
放液时如果量很小则应吸头尖端可靠容器内壁
4.吸有液体的移液枪不应平放，枪头内的液体很容易污染枪内部而可能导致枪的弹簧生锈
5.移液枪在每次实验后应将刻度调至最大，让弹簧回复原型以延长移液枪的使用寿命
6.吸取液体时--定要缓慢平稳地松开拇指，绝不允许突然松开，以防将溶液吸入过快而冲入取液器内腐蚀柱塞而造成漏气。
7.为获得较高的精度，吸头需预先吸取一次样品溶液，然后再正式移液，因为吸取血清蛋白质溶液或有机溶剂时，吸头内壁会残留--层”液膜”，造成排液量偏小而产生误差。
8.浓度和粘度大的液体，会产生误差，为消除其误差的补偿量，可由试验确定，补偿量可用调节旋钮改变读数窗的读数来进行设定。
9.可用分析天平称量所取纯水的重量并进行计算的方法，来校正取液器,1mL蒸
馏水20C时重0. 9982g.
10在设置量程时，请注意旋转到所需量程数字清清楚楚在显示窗中，所设量程在移液器量程范围内不要将按钮旋出量程，否则会卡住机械装置，损坏了移液器。
11.移液器严禁吸取有强挥发性、强腐蚀性的液体( 如浓酸、浓碱、有机物等)12.严禁使用移液器吹打混匀液体。
13.不要用大量程的移液器移取小体积的液体，以免影响准确度。
同时，如果需要移取量程范围以外较大量的液体，请使用移液管进行操作。
1、离心机应始终处于水平位置，外接电源系统的电压要匹配并要求有良好的接地线。
2、开机前应检查机腔有无异物掉入。
3、样品应预先平衡使用离心机微量离心时，离心套管与样品应同时平衡。
4、挥发性或腐蚀性液体离心时，应使用带盖的离心管,并确保液体不外漏以免侵蚀机腔或造成事故。
5、每次操作完毕，应做好使用情况记录，应定期对机器各项性能进行检修。
6、离心过程中若发现异常现象，应立即关闭电源，报请有关技术人员检修。
7、定期清洁机腔。
8、使用离心机时遵守左右手分开原则，只以右手操作仪器。
9、使用冷冻离心机时，除注意以上各项外，还应注意擦拭机腔的动作要轻柔,以免损坏机腔内温度敏感器。
离心机的使用步骤:
1、离心前用天平保证离心管的绝对平衡。
2.打开电源歼关，离心机自检后,开启盖门。
3、选择所需转头,用扳手安装转头,松紧适当。