小分子人工抗原的制备方法

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抗原的制备方法

抗原的制备方法

抗原的制备方法 除完整的细胞可作为抗原外,各种不同的细胞内存在的各种分子量不同的物质,也都具有全抗原或半抗原的性质,某种抗原物质可能是某一类细胞所特有的,可作为这种细胞的一个标志。

由于细胞存在着许多性质不同的抗原物质,有时要从这众多的物质中提取、纯化某种抗原物质,以供科学研究之用。

一、抗原的提取 抗原的制备是一件十分细致的工作,要制备一个高纯度的抗原,需要付出艰巨的努力,制备工作涉及物理学、化学和生理学等许多领域的知识。

根据物理或化学特性建立起来的分离、纯化方法的主要原理不外乎科二个方面:①利用混合物中几个组分分配率的差别将他们分配到可用机械方法分离的两或几个物相中,如盐析、有机溶剂抽提、层析和结晶等;②把混合物置于单一物相中,通过物理力场的作用使各组分分配于不同的区域而达到分离的目的,如电泳、超速离心和超滤等。

由于组织细胞内存着许多分子结构和理化性质不同的抗原物质,其分离方法也不一样,就是同一类大分子物质,因选材不同,所使用的方法也很大差别。

因此很难有一个通用的标准方法供提取任何生物活性物质使用,所以在提取前必须针对所欲提取的物质,充分查阅文献资料,选用合适的方法。

如果要提取一个结构及性质未知的抗原物质,更需要经过各种方法的比较探索,才能找到一些工作规律和获得预期的效果。

抗原物质的制备,大概要经过如下过程:①材料的选择和预处理;②细胞的粉碎(细胞器的分离)。

③提取;④纯化;⑤浓缩或干燥,保存。

现分别简述如下。

(一)材料的选择及预处理 选择什么材料主要根据实验目的而定。

通常选含量高、工艺简便、成本低的材料。

材料选定后,通常要进行预处理,剔除结缔组织、脂肪组织等,把组织块剪碎。

若取材后不立即进行提取,则应冷冻保存,动物组织更要深低温保存。

某些容易失活的物质,一般宜采用新鲜材料。

(二)细胞的粉碎 除了提取体液、组织间液内的多肽、蛋白质、酶不需粉碎细胞外,凡要提取组织内、细胞膜上及胞内的生物活性物质,都必须把组织和细胞粉碎,使活性物质充分释放到溶液内。

半抗原的设计、修饰及人工抗原的制备

半抗原的设计、修饰及人工抗原的制备

半抗原的设计、修饰及人工抗原的制备宋娟;王榕妹;王悦秋;唐雨榕;邓安平【摘要】制备具有良好免疫原性的人工抗原是建立测定小分子化合物的免疫分析方法的最关键步骤.本文对半抗原的设计、修饰(修饰位点的选择、修饰物的制备、连接臂的选择)、载体的选择、半抗原与载体的偶联(偶联方式、偶联条件、最佳偶联率)、人工抗原的纯化与鉴定等方面作了详细的介绍.【期刊名称】《分析化学》【年(卷),期】2010(038)008【总页数】8页(P1211-1218)【关键词】半抗原;人工抗原;设计;修饰;免疫分析;评述【作者】宋娟;王榕妹;王悦秋;唐雨榕;邓安平【作者单位】四川大学化学学院,成都,610064;四川大学化学学院,成都,610064;四川大学化学学院,成都,610064;四川大学化学学院,成都,610064;四川大学化学学院,成都,610064【正文语种】中文免疫分析是以抗原与抗体之间特异性识别和可逆性结合反应为基础的痕量分析方法,已在临床分析和生物分析中得到广泛应用。

免疫分析不仅适用于大分子化合物 (如蛋白质、核酸、细菌)的检测,也适用于小分子化合物(如激素、药物)的测定。

由于免疫分析具有特异性强、灵敏度高、简单、快速、费用低和适于现场大批量样品筛选等优点,它在环境和食品安全等分析领域中的应用备受关注[1]。

近年来,针对环境和食品样品中的农药[2]、兽药[3-4]、环境激素[5]、毒素[6]及违禁食品添加剂[7]等小分子化合物残留量的免疫分析方法的应用实例较多。

建立小分子化合物的免疫分析方法的关键是能够制备出对小分子化合物具有高亲和力和高选择性的抗体。

由于大多数农药、兽药等为小分子化合物 (分子量小于 1000),不具有免疫原性,即缺乏 T细胞表位而无法直接诱导动物机体等产生特异性抗体,故小分子化合物被称为半抗原。

然而,半抗原可以通过适当的化学修饰方法,在其分子结构的某个位置上,带上端基为活性基团的连接臂,再与大分子载体结合,生成半抗原-载体的偶联物,此偶联物即为人工抗原,它可以借助 T细胞表位来间接诱导B细胞的增殖及分化,产生特异性抗体[8]。

林可霉素人工抗原的合成与鉴定

林可霉素人工抗原的合成与鉴定

林可霉素人工抗原的合成与鉴定张小辉;职爱民;侯玉泽;宋春美;王耀;龚芳;赵启法;张改平【摘要】拟合成并鉴定林可霉素( Lincomycin,LIN)人工抗原,通过动物免疫生产亲和力高、特异性好的鼠源LIN多克隆抗血清.采用高碘酸钠法将林可霉素与牛血清白蛋白(BSA)及鸡卵清蛋白(OVA)分别偶联,合成免疫原LIN-BSA和包被原LIN-OVA,并采用紫外分光光度法(UV)和聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)进行鉴定.结果表明,半抗原LIN和载体蛋白偶联成功.动物免疫试验(免疫BALB/c纯系小鼠)结果显示,3只小鼠效价均达1∶3 000,且2号小鼠多抗血清抗LIN的半数抑制质量浓度IC50为3.85 μg/L,与莫能菌素的交叉反应率为6.19%,与其他药物无交叉反应.表明成功获得高效价、特异性好、亲和力高的鼠源抗LIN多抗血清.%The goal of this study was to synthesize artificial antigen of lincomycin and to obtain its mice polyclonal antiserum. Artificial antigen LIN-BSA and LIN-OVA were synthesized using sodium perio-date by linking carrier proteins BSA and OVA to LIN. The antigen LIN-BSA and LIN-OVA was identified by ultraviolet scanning and SDS-PAGE. The results showed that the hapten LIN was successfully linked to carrier proteins. The animal immunization results showed that three BALB/c mice indirect ELISA titer against LIN were 1 : 3 000 and the IC50 of No. 2 mice was 3. 85 μg/L and the high-titer; the rate of cross reaction of LIN mAb with Monensin was 6. 19%, and there was no cross-reactivity to other compounds; sensitivity LIN polyclonal antiserum has been generated. The artificial antigen of LIN and its mice polyclonal antiserum laid a foundation base for product the monoclonal antibodies and rapid test reagent against LIN.【期刊名称】《西北农业学报》【年(卷),期】2012(021)008【总页数】6页(P1-6)【关键词】林可霉素;人工抗原;合成;多抗血情【作者】张小辉;职爱民;侯玉泽;宋春美;王耀;龚芳;赵启法;张改平【作者单位】河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002;河南科技大学食品与生物工程学院,河南洛阳471003;河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002;河南科技大学食品与生物工程学院,河南洛阳471003;河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002;河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002;河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002;河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002;河南省农业科学院,农业部动物免疫学重点开放实验室,河南省动物免疫学重点实验室,郑州450002【正文语种】中文【中图分类】S859.84林可霉素(lincomycin,LIN)又称洁霉素,是由林肯链霉菌发酵产生的林可酰胺类抗生素[1-2]。

阿莫西林人工抗原的制备及鉴定

阿莫西林人工抗原的制备及鉴定
科技 论坛
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阿莫 西林 人工抗 原 的制 备及鉴定
于海涛 ( 哈 药集 团技术 中心 , 黑龙江 哈 尔滨 1 5 0 0 2 5 ) 摘 要: 目的 : 建立 阿莫西林人工抗原的制备及鉴 定方法。方法 : 将 阿莫西林半抗原通过 N 一 羟基 琥珀 酰亚胺 活性酯( N H S ) 法分别与大 分子蛋 白载体牛血 清白蛋 白( B s A ) 和牛 甲状腺球蛋 白( B T G) 相 偶联 , 合成完& - C j 免 疫抗原 A MO ~ B S A和检测抗原 AM O — B T G 。 利 用紫外一 可 见分光光度法和动物免疫 实验对合成的阿莫西林人 工抗 原进行鉴 定。结果 : 紫外分光光度法扫描 出 A MO — B S A和 A MO — B T G的紫外吸收 峰 分别为 2 7 6 n m和 2 7 5 n m; 动物免疫法的血清效价均高于 阴性和 空白对照 。结论: 该制备方法通过鉴 定是有效可行的。
表 1 间接 E L I S 一甲酸三水合物, 是一种最常用 的青霉素类广谱 B一 内酰胺类抗生素 [ I 】 。目
前关于阿莫西林 的检测方法主要有 :高效液 相色谱串联质谱法嘲 、 毛细管 电泳法t 3 1 等。 但这 S A、 B T G偶联成功 。 些检测方法的设备昂贵 、 耗 费时间。而合成阿莫西林人工抗原可建 B 2 . 3动物免疫实验 立根据免 疫学原理进行 检测 的方法 , 该 方法 具有成本 低 、 简便快速 等优点 。 本文介绍的阿莫西林人工抗原的制备及 鉴定方 法为 阿莫西 取 4只 B A L B /C 小 鼠( 来 自我院实验 动物 中心) , 用A M O — B S A 免疫原腹腔注射对小 鼠进行免疫 。 第一次免疫 , A M O - B S A免疫原与 林 免疫检测奠定一定的基础。 1 仪 器 与 试 剂 弗 氏完全佐 剂等体积混匀充分乳化 , 免疫剂量为 1 5 0 1 , 只。 加强免 疫, A MO — B S A免疫 原与弗 氏不完全佐剂等体积混匀充分乳化 。 每隔 1 . 1 仪器 电子 天平 ( B S A 2 2 4 S赛 多利斯 ) ;紫外 一可见光 分光 光度 计 2 周进行一次加强免疫。加强免疫后 1 O天进行断尾末端取血 , 分离 f r o 一 1 9 0 1 北京 普析通 用仪 器有 限责 任公 司生产 ) ;多功 能酶标 仪 血清 。按 照间接 E L I S A检测法测定抗血清的效价 , 用A M O — B T G作 ( S p e c t r a Ma x M 5 美 国 Mo l e c u l a r D e v i c e s 公司) ; p H计 ( P H S 一 3 C上 为包 被抗 原。 海雷磁仪器 厂 ) 。 间接 E L I S A效 价测定结 果 ( 见表 1 ) 显示 , 所 有检测样 品的 O D 1 . 2试 剂 值 均 高 于 阴性 和 空 白样 品 的 O D 值 , 证 明检 测 血 清 中 含 有 MO — B S A免疫原的抗体 。 A MO( 西安欣禄 生物科技有 限公 司 , 纯度为 9 9 %) ; 牛血清 白蛋 A 白( s s A ) 、 牛 甲状腺球 蛋 白( B T G) 、 弗 氏不完 全佐 剂 A )、 弗 氏完 全 3 讨 论 阿莫西林 由于具 有谱广抗 菌 、 杀菌作用迅速 、 杀 菌效力 强等特 佐剂( F C A ) ( 美国 G i b c o公 司 ) ; N 一羟基琥珀酰 亚胺 活性酯( N Hs ) ( 北 京 中生瑞泰科技有限公司 ,分析纯 ) ;辣根过氧化物酶标记羊抗 鼠 点 , 因此广泛用于 临床治疗伤寒 , 伤寒带菌 者 , 其他沙 门菌感染 , 耳、 I g G ( 北 京索莱宝科 技有限公 司 ) ; 磷酸 盐缓 冲液 ( P B S ,p H 7 . 0 , 0 . 0 1 鼻、 喉、 呼吸道、 尿道及软组织的感染。但阿莫西林的药物残留会引 mo l / L ) ; 水( 注射水) 。 起人体产 生抗 药性 、 过敏反应等 问题 , 只有快速准 确地检测 出阿莫 2 方法与结果 西林的药物残 留 , 才能解决这些问题 。 免疫法检测具有成本低 、 准确 度高 、 灵敏度强等优点 。 A MO是小分子物质 , 属于半抗原 , 即只有反 2 . 1 免疫抗原 AM O — B S A 和检测抗原 A MO — B T G制备 称取 A MO 1 5 mg , N HS 1 5 mg , 碳 二 亚胺 盐酸 盐 ( E D C・ H C L ) 应原性 , 无免疫原性 , 只有将其 与具有免疫性 的载体 蛋 白偶联才 能 , 完全抗原与抗 A MO抗体结合进行免疫检测 。 3 0 mg , 加入 到 2 ml 二 甲基 甲酰胺 ( D MF ) 中, 放人磁 力搅拌器转 子 形成完全抗原 充分溶解 , 将烧杯 密封 , 避光, 室温反应 1 2 h , 得 到阿莫西林 活化 反 本研究通 过 N H S法 将 A MO分 别 与 B S A、 B T G相 偶 联 形 成 应液 。然后称取 B S A 4 0 m g 充分溶解 于 6 m L P B S中。然后将阿莫 AMO的完 全抗原 ,进 而采 用紫外分光光度法 和动物免疫法鉴定偶 西林活 化反应液逐滴加入 B S A溶液 中, 将烧杯密封 , 避光 , 4 ℃搅 拌 联效果 。 紫外分光光度法 扫描 出 A M O — B S A和 A M O — B T G的紫外 吸 过 夜 。将 反 应 液 转 移 至 经 3 2 h P B S预处 理 的透 析 袋 中 , 4 ℃, 收峰分别为 2 7 6 n m和 2 7 5 n m; 动物免疫法 的血清效价均高于阴性和 0 . O l m o l / L的 P B S透析 7 2 h ,每 隔 5 小 时换 1 次透析液 。透析结束 空 白对照 , 为阳性 。结果说 明本次 阿莫西林人工抗原 的制备是成功 后 ,取上清 离心 ,去沉 淀后 获得免 疫抗 原 A MO — B S A 。检测 抗原 的, 鉴定方法也是有效 的。 AMO — B T G的制备 : 除称 取 B T G 2 5 m g替换 B S A外 , 其余 步骤 均与 参考 文献 免疫抗 原 A MO — B S A相同。 【 1 】 薛添, 宋凯, 薛小平. 阿莫 西林人 工抗原 的合成 及其单克 隆抗体 的 2 . 2紫外 一可见分光检测 制备[ J ] . 细胞与分子免疫 学杂志, 2 0 1 1 , 2 7 Q ) : 7 7 0 ~ 7 7 2 . 在 1 5 0 — 5 0 0 r i m波长范 围对 A MO、 B S A 、 B T G、 A MX — B S A和 【 2 ] L I H u i , X I A Xi , X U E Y a n a n , e t a 1 . S i m u k a n e o u s d e t e r m i n a t i o n o f mo x i c i l l i n a n d p r e d n i s o l o n e i n b o v i n e mi l k u s i n g u l t r a —h i g h p e 卜 A MX — B T G进行扫 描 , 配制 A MO、 B S A和B T G的标准液 , 并且 B S A a 和 B T G的标准液 的蛋 白质质 量浓度 与 A MO — B S A和 AM O — B T G溶 f o r m a n c e l i q u i d c h o r ma t o g r a p h y t a n d e m m a s s s p e c t r o me t r y[ J 】 . J r o ma t o g r B, 2 0 1 2, 9 0 0: 5 9 —_ 6 3 . 液 一致 。通过 扫 描 曲线 比对 A MO与 B S A、 B T G是 否偶 联 ,以及 Ch A M X — B S A和 A M X — B T G的最大吸收峰值 。 [ 3 】 邵钰 秀. 毛细 管电泳在线 富集检测食品 中三类抗 生素残 留【 D 】 . 镇 江苏大学. 2 0 1 3 . 通过 紫外 一可见分光 检测 结果显示 , A MO的吸收峰为 2 7 1 n m, 江: B S A的吸 收峰为 2 7 9 n m, B T G的吸 收峰为 2 7 8 n m, AM O — B S A 和 【 4 】 刘庆堂, 王磊 , 职 爱 民等. 碳 二亚胺 法制备 阿莫 西林人工抗原及 其 A MO — B T G的紫外 吸 收峰分别 为 2 7 6 n m和 2 7 5 n m,偶联后 产物 与 鉴定『 J 1 . 河南农业科 学, 2 0 1 2 4 l ( 3 ) : 1 4 2 — 1 4 5 . A MO、 B S A和 B T G相 比紫外 吸收峰都 发生 了变化 ,证 明 A MO与

特布他林人工抗原的制备

特布他林人工抗原的制备
t h e c a r r i e r p r o t e i n s i s n e e d e d .I n t h i s r e s e a r c h, t h e h a p t i n i s l i n k e d t o t h e c a r r i e r p r o t e i n s B S A w i t h b u t a n e —I ,4 一 d i o l d i g l y c i d y l e t h e r ,a n d a l s o, l i n k e d t o t h e p r o t e i n s OVA w i t h EDC, wh i c h ma k e t h e a r t i i f c i a l a n t i g e n T B L- BS A a n d TB L- OVA a c h i e v e d.W h a t i s n e x t i s t o a p p r a i s e t h e s y n he t t i c u s i n g u l t r a v i o l e t s p e c t r o p h o t o me t r y a n d S DS - P AGE.Af t e r t h e u l t r a v i o l e t s c a n n i n g .c o u p l i n g r a t i o i s c a l c u l a t e d t h a t t u r n s o u t t o b e 7 . 6 0 : 1 a n d 7 . 6 5 : 1 r e s p e c i t v e - l y ,a n d t h e n i n t h e e n d d r a w t h e c o n c l u s i o n a s f o l l o ws :t hi s c o mp l e t e a t r i i f c i a l a n t i g e n T BL i s c a p a b l e t o i mmu n i z e a n i ma l s ,t h a t l a y s a s o l i d f o u n d a t i o n f o r t h e p r e p a r a t i o n o f a n t i b o d y T B L . Ke y wo r d s:t e r b u t a l i n e ;a t r i i f c a l a n t i g e n; s y n t h e s i s

氧氟沙星人工抗原的合成及鉴定

氧氟沙星人工抗原的合成及鉴定
s, ej a diet c t n0 l x e rica An ) I s n dni ai fOf ai A t i 丌 s i f o o n i f l n X ̄ -hn ta ( nu gi l rl n esy ee, nu 3 06 ioe ege l A h i r ut a i ri 。H fi A hi o3 ) A c u Uv t 2 A s a t Cr Mi leme o a m l e n t yt s fooai( F t arn rtn oiesrn abmi( S ad oa u i bt c at i d t dw se po d i h s h i o f xcn O L) I cr i po isbvn eul l n B A)n vl mn r x m h y e n es l l ig e u b
氧氟沙星(fxc ,F ) O o i O L 是氟喹诺酮类抗菌药物, l an 有抗 菌谱广、 抗菌活性强等优点_, l 因此在畜禽及水产养殖业 中 J
有 比较广泛 的应 用 _。但是 此类 药 物在 动物 性食 品 中的残 2 J
MA Z ;K1 离心机 (IMA)J 20 D U)2 5型 SG ;A o3型 上皿 电子 天平 ;
潘 孝成1 , 2祁克宗 , 强 , 朱良 3 涂建’ , 张小飞 赵瑞宏2 2
(. 1安徽农业大学 , 安徽台肥 203 ;. 3062安徽省农业科学院畜牧兽医研究所 , 安徽合肥 203;. 3 13安徽省兽医总站 , 0 安徽合肥 200 ) 301
摘 要 采用碳二 亚胺法制备 了氧 氟沙星与牛血 清 白蛋 白(s ) 卵清蛋 白(V 的结合 物 , BA及 O A) 通过 FC3 色反 应 , 外扫描 以及动 物免 e1显 紫 疫证明了人工抗原的成功合成。经紫外光谱l测定, 击 每分子牛血清白蛋白连接的氧氟沙星分子数为 1. 个; 11 6 每分子卵清蛋白连接的氧 氟沙星分子数 为 59个。 . 关键词 氧 氟沙星 ; 碳二 亚胺 法 ; 工抗 原 人 中图分 类号 S 8 . 422 文献标识 码 A 文章编 号 01 — 6/ o60 — 47 0 57 6/( o) 08 — 2 2 3

抗原的制备方法

抗原的制备方法

抗原的制备方法
抗原是指能够诱导机体产生免疫应答并能与免疫应答产物(抗体或效应细胞)特异性结合,发生免疫效应的物质。

抗原的制备方法有很多种,下面介绍其中几种常见的方法:
1. 天然抗原的制备:天然抗原是指从自然界中获得的抗原,如病毒、细菌、真菌、寄生虫等。

这些抗原可以通过培养、分离、纯化等方法获得。

2. 人工抗原的制备:人工抗原是指通过人工合成或修饰得到的抗原,如蛋白质、多糖、核酸等。

这些抗原可以通过化学合成、基因工程等方法获得。

3. 基因重组抗原的制备:基因重组抗原是指通过基因重组技术将抗原基因导入宿主细胞中表达得到的抗原。

这种方法可以获得大量的抗原,并且可以对其进行修饰和改造。

4. 合成肽抗原的制备:合成肽抗原是指通过化学合成方法合成的抗原肽段。

这种方法可以获得特定的抗原肽段,并且可以对其进行修饰和改造。

氨苄青霉素人工抗原的制备及鉴定

氨苄青霉素人工抗原的制备及鉴定

氨苄青霉素人工抗原的制备及鉴定刘成梅;黄丽;罗舜菁;张鸿【期刊名称】《食品科学》【年(卷),期】2007(028)009【摘要】本研究采用戊二醛法和物理法制备氨苄青霉素(AMP)人工抗原,以紫外扫描和SDS-PAGE电泳鉴定偶联成功,采用改良的BCA法测定偶联率分别为8~10和17~21.通过单因素和L9(34)正交试验研究了反应物起始摩尔比、偶联剂的添加量和偶联时间等因素对偶联率的影响,选择最佳的偶联条件.最终确定戊二醛法的最佳反应条件为:反应物起始摩尔比40:1;戊二醛10μl;反应时间4h.物理法的最佳反应物起始摩尔比为20:1,反应时间3h.本研究表明物理法优于戊二醛法,是一种更好的制备氨苄青霉素人工抗原的方法.【总页数】5页(P384-388)【作者】刘成梅;黄丽;罗舜菁;张鸿【作者单位】南昌大学,食品科学教育部重点实验室,南昌大学中德食品工程中心,江西,南昌,330047;南昌大学,食品科学教育部重点实验室,南昌大学中德食品工程中心,江西,南昌,330047;南昌大学,食品科学教育部重点实验室,南昌大学中德食品工程中心,江西,南昌,330047;南昌大学,食品科学教育部重点实验室,南昌大学中德食品工程中心,江西,南昌,330047【正文语种】中文【中图分类】R446.61【相关文献】1.氨苄青霉素人工抗原的制备及抗体特性鉴定 [J], 张海棠;李桂平;季跃光;王自良2.烯效唑人工抗原的制备及其免疫原性鉴定 [J], 欧阳秋丽; 万益群3.万古霉素人工抗原的制备及鉴定 [J], 李玉静;刘鹏茹;刘静静;李春生4.1-芘丁酸人工抗原的制备及鉴定 [J], 孔蒙蒙;黄忠民;邓瑞广;索标;刘情情;胡骁飞;王娜5.基于杂环类双功能螯合剂DOTA的重金属铅人工抗原的制备与鉴定 [J], 翟璐;郭建军;金仁耀;桑丽雅;王振国;陈笑笑;王伟萍;廖杰因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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小分子人工抗原的制备常用方法
一、碳二亚胺(EDC)法(制备KAN-BSA )
1. A 液的制备:准确称取BSA 20mg,EDC 55mg,使之充分溶解于2mL 0.01M
PBS 中,4℃避光搅拌反应6h,得到反应液为A 液;
2. B 液的制备:准确称取卡那霉素标准品50 mg,加入1.5 mL 0.01 M PBS 中,
边加边搅拌,使之充分溶解后所得溶液称为 B 液;
3.将上述B 液逐滴加入A 液中(边加入边搅拌),密封,避光,在4℃下
搅拌过夜;
4.待上述反应完后,将反应液转移到处理好的透析袋中,4℃用0.01M PBS 透
析3d,透析第一天每3h 换液一次,以后每8-10h 换液一次;
5.透析完成后,将偶联产物分装于 1.5ml ep 管中,于-20℃保存备用。

本实验
将其作为免疫原。

二、戊二醛(GA)法(制备KAN-GA-OVA )
1. A 液的制备:准确称取卡那霉素标准品50mg,量取0.5%戊二醛溶液1mL,
2.先后将二者充分溶于2 mL 0.01M 的PBS 中,于4℃,避光搅拌反应30
min,所得反应溶液称为A液;
3.B液的制备:准确称取OVA 150 mg,将其充分溶于5mL 0.01M PBS 中,
得到的溶液称为B液;
4.将上述B 反应液逐滴加入到 A 反应液中,边加入边搅拌,再向反应溶液中
加入约5.5mg硼氢化钠,调节溶液pH至8.0,于4℃避光搅拌反应2h;
5.用 0.01M PBS 透析,4℃透析5d,每8h换液一次,透析完成后,将反应液
分装于1.5mL离心管中,放于-20℃冻存备用。

三、混合酸酐法(制备克百威人工抗原)
1.取半抗原克百威(BFNH或BFNB)溶解在DMF(二甲基甲酰胺)中,然后在
该溶液中加入等当量的正三丁胺和氯甲酸乙酯,在室温下反应1h;
2.取反应液500ul加入到5ml 15mg/ml的BSA碳酸缓冲液中,在磁力搅拌下
反应2h;
3.反应完成后,蒸馏水透析2次;0.8%生理盐水透析;
4.紫外扫描测定结合比,于-20℃保存备用。

四、活泼酯法(制备克百威人工抗原)
1.克百威半抗原BFNB的合成及纯化
1)取一四口烧瓶置于恒温磁力搅拌器上,配置温度计。

2)称取1.64 g呋喃酚溶解于50 mL二氯甲烷(DCM)中,冰浴下加入1.11 g三乙胺
(Et3N),搅拌10 min;
3)将3.04 g二(对硝基苯)碳酸酯溶于15 mL二氯甲烷中,缓慢滴加到上述反应体
系中,缓慢升温至室温,继续搅拌反应1 h,TLC板监控反应完成,展开剂为V(石油醚) : V(乙酸乙酯)=10 : 1,此为溶液A;
4)称取1. 697 g经三乙胺碱化的4-氨基丁酸甲酯盐酸盐溶于10 mL二氯甲烷中,
在冰浴下滴加到A液中,将温度升到室温并继续搅拌过夜;
5)用水、饱和食盐水依次洗涤并用无水硫酸钠干燥,滤液真空旋干后用硅胶柱层
析纯化,得到半抗原中间体B;
6)将B溶于15 mL 1,4-二氧六环溶液中,加人18 mL三氟醋酸和15 mL水,60 C反
应4 h后冷却至室温;
7)反应液用乙酸乙酯萃取后,依次用水、饱和碳酸氢钠、水、饱和食盐水进行
洗涤,用无水硫酸钠干燥,滤液真空旋干后用硅胶柱层析纯化后即可得到克百威半抗原BFNB,洗脱剂为V(石油醚):V(乙酸乙酯)=5:1;
2.半抗原BFNB鉴定
将纯化后的克百威半抗原BFNB采用核磁共振仪和LC-GC进行分子结构鉴定,已确定半抗原是否合成成功;
3.完全抗原的合成
1)免疫原(BFNB-BSA采用活性酯法进行合成,控制半抗原BFNB与载体蛋白BSA
的反应摩尔比为80:1;
2)称取29.3 mg半抗原BFNB,13.8 mg NHS溶于1ml无水DMF中,充分溶解完
全;
3)加入24.3 mg DCC(N,N'-二环己基碳酰亚胺)室温搅拌反应过夜;
4)离心去沉淀,收集上清,此为A液;
5)称取BSA 83 mg溶解在5 ml 0.01 mol/L PBS溶液中,为B液;
6)在冰水浴中,将A液逐滴滴加到B液中,4℃搅拌过夜;
7)反应混合液用PBS缓冲液透析3 d,6-8 h换液1次,离心取上清,分装于0.5
ml 离心管中,-20℃保存备用。

8)包被原(BFNB-OVA)在合成中,载体蛋白为OVA,半抗原BFNB与OVA的反
应摩尔比为40:1,其余步骤与免疫原的合成相同。

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