5发酵过程控制5(补料)

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发酵过程控制与优化

发酵过程控制与优化


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• 白细胞介素:是一类具有激活、增殖、成熟和分化 •
机体免疫细胞,抗病毒、抗肿瘤及增强机体免疫 功能的细胞因子。 全球氨基酸的年产量估计在50~80万吨,其中 2/3用于食品,其余大部分作动物词料添加剂用, 还有相当数量用于医药工业和作为合成化学试剂 的前体。重组DNA技术已成功地应用于提高棒杆 菌和其他工业生产菌种的氨基酸生产。 全球的微生物多糖的产值估计已超过10亿美元。 这类生物高分子属于胶体,其独特功能在于它们 可作为增稠剂、亲水胶体,用于水基系统中的乳 化、悬浮和稳定混合物。它们在温度、pH和盐浓 度大幅度变化的条件下仍能与其他系统相容,甚 至起协同增效作用。
2.提取质粒
从大肠杆菌的细胞质中提取质粒,质粒为环状。 此质粒将作为胰岛素基因的载体。 1.碱裂解法:此方法适用于小量质粒DNA的 提取,提取的质粒DNA可直接用于酶切、 PCR扩增、银染序列分析。 2.煮沸裂解法:指用煮沸加热的方法裂解菌 体,以提取质粒。
3.基因重组
取出目的基因与质粒,先利用同种限制性内 切酶将质粒切开,再使用DNA连接酶将目的 基因与质粒“缝合”,形成一个能表达出胰 岛素的DNA质粒。

5.3泡沫对发酵的影响及其控制
• 5.3.1泡沫的产生及其影响 • 发酵过程中因通气搅拌与发酵产生的二氧化碳以

及发酵液中糖、蛋白质和代谢物等稳定泡沫的物 质的存在,使发酵液含有一定数量的泡沫。 泡沫的存在可以增加气液接触表面,有利于氧的 传递。但也给发酵带来许多负作用,主要表现在: ①降低了发酵罐的装料系数。②增加了菌群的非 均一性。③增加了污染杂菌的机会。④大量起泡, 控制不及时,会引起产物的流失。③消泡剂的加 入有时会影响发酵或给提炼工序惹来麻烦。
• 5.3.3泡沫的控制 • 泡沫的控制方法可分为机械消沫和消泡剂

发酵技术中的补料的控制(精)

发酵技术中的补料的控制(精)
间接方法:以溶氧、pH值、呼吸商、排气中CO2分压及代谢产物浓度等作为控制参数。对间接方法来说,选择与过程直接相关的可检参数作为控制指标,是研究的
关键。通气发酵利用排气中CO2含量作为FBC反馈控制参数是较为常用的间接方法。
直接法:随着一系列技术障碍的克服,该法将会得到迅速普及。反馈控制的FBC ,常常是依据个别指标来进行,在许多情况下,并不能奏效,尚需进行多因子分析。FBC还可采用“放料和补料” (withdraw and fill方法:发酵一定时间,产生了代谢产物后,定时放出一部分发酵液(可供提炼,同时补充一部分新鲜营养液,并重复进行。
采用FBC方式,可以控制适当的基质浓度,解除抑制作用,得到高浓度的产物。2解除或减弱分解代谢物的阻遏
有些合成酶受到迅速利用的碳源或氮源的阻遏,如葡萄糖阻抑纤维素酶、赤霉素、青霉素等多种酶或产物的合成。通过补料来限制基质葡萄糖的浓度,就可解除酶或其产物的阻遏,提高产物产量。
缓慢流加葡萄糖,纤维素酶的产量几乎增加200倍;将葡萄糖浓度控制在0.02%水平,赤霉素浓度可达905 mg/L ;采用滴加葡萄糖的技术,可明显提高青霉素的发酵单位等。这都是利用发酵技术解决分解代谢物阻遏的实际应用。在植物细胞培养中,也采用该技术来提高产量。
无菌操作
碳氮平衡,经济合理
3可以使明了各个参数之间的相互关系。利用FBC技术,就可以使菌种保持在最大生产力的状态。
随着FBC补料方式的不断改进,为发酵过程的优化和反馈控制奠定了基础。随着计算机、传感器等的发展和应用,已有可能用离线方式计算或用模拟复杂的数学模型在线方式实现最优化控制。
FBC的优点:
高浓度营养物抑制微生物生长:
①基质过浓使渗透压过高,细胞因脱水而死亡;
②高浓度基质能使微生物细胞热致死(themal death ,如乙醇浓度达10%时,就可使酵母细胞热致死;

发酵的操作规程

发酵的操作规程

发酵的操作规程发酵是一种利用微生物代谢产物进行食品加工、改变食品性质的传统技术。

下面是发酵的操作规程。

一、发酵前准备1. 确定所要制作的食品种类和所使用的微生物菌种。

2. 准备好所需的原材料,包括主要原料和辅助原料。

3. 准备好所需要的设备和器皿,包括发酵罐、发酵器、温度计、PH计等。

4. 对发酵设备进行清洗消毒,确保无细菌和微生物残留。

5. 对所需的原材料进行清洗处理,除去杂质和有害物质。

二、制作发酵基质1. 根据所选用的原料制作发酵基质,一般包括水、面粉、糖、盐等。

2. 按照一定的比例将原料混合均匀,加入适量的水进行搅拌,直到形成较为稠密的糊状物。

3. 将制作好的发酵基质放置在发酵罐中,盖上盖子,进行静置。

三、接种微生物菌种1. 根据所选用的微生物菌种进行培养,保证菌种活性和纯度。

2. 取适量的培养菌种,加入发酵基质中,进行均匀的混合。

3. 注意保持发酵基质的温度和PH值,确保菌种得到良好的生长环境。

四、发酵过程控制1. 控制发酵温度,一般根据菌种的适宜生长温度进行调节,保持在适宜的范围内。

2. 控制发酵时间,根据所制作食品的要求和菌种的生长特性,确定合适的发酵时间。

3. 监测发酵过程中的PH值和酸碱度,保持在适宜的范围内。

4. 监测发酵过程中的氧气含量,及时补充新鲜空气,保证菌种的氧气供应。

5. 定期对发酵过程进行观察和抽样检测,判断发酵的进程和品质。

五、完成发酵1. 根据发酵的需要和所制作食品的要求,确定发酵时间并进行定时监测。

2. 当发酵时间结束后,停止继续添加发酵基质或菌种,即可完成发酵过程。

3. 停止发酵后,对发酵食品进行冷却处理,降低食品的温度。

4. 对发酵食品进行质量检测,包括外观、口感、气味等方面的评估。

5. 根据发酵食品的要求和市场需求,进行进一步的加工和包装。

六、清洁消毒1. 发酵过程结束后,对使用的设备和器皿进行彻底的清洗。

2. 使用合适的清洁剂和消毒剂进行清洗和消毒。

发酵过程控制 补料 、发酵终点判断

发酵过程控制 补料 、发酵终点判断
发酵时间太长,菌体自溶,释放出菌体蛋白或 体内的酶,改变发酵液性质,增加过滤难度,延长过 滤时间,破坏一些不稳定产物。
太长或太短均会使产物质量下降,含量增加。
3、特殊因素 异常情况:染菌、代谢异常(糖耗缓慢等)。 为避免损失,可提前或拖后放罐时间来挽救。
算限制性基质的浓度,间接控制流加;
用传感器直接测定限制性基质的浓度,直接控制流加。
五、补料控制参数的选择
为了有效地进行中间补料,必须选择恰当的 反馈控制参数,以及了解这些参数与微生物代谢、 菌体生长、基质利用以及产物形成之间的关系。
采用最优的补科程序也是依赖于比生长曲线 形态、产物生成速率及发酵的初始条件等情况。 因此,欲建立分批补料培养的数学模型及选择最 佳控制程序都必须充分了解微生物在发酵过程中 的代谢规律及对环境条件的要求。
生产能力(或称生产率、产率): 是指单位时间内单位罐体积发酵液的产物积
累量而言。
生产率单位:一般为g/(L·h)或kg/(m3·h),产 物浓度单位为g/L或kg/m3,发酵时间单位为h。
二、影响放罐时间的因素
合理的放罐时间是由实验来确定的,即根据 不同的发酵时间所得的产物产量计算出发酵罐的 生产率和产品成本,采用生产率高而成本又低的 时间,作为放罐时间。
控制微生物的中间代谢,使之向着有利于 产物积累的方向发展。
为实现这一目标,在中间补料控制时,必 须选择恰当的反馈控制参数和补料速率。
四、补料控制的策略
大多数补料分批发酵均补加生长限制性基质。
以经验数据或预测数据控制流加; 以pH、尾气、溶氧、产物浓度等参数间接控制流加; 以物料平衡方程,通过传感器在线测定的一些参数计
第十节 发酵终点的判断
一、发酵终点的判断原则

微生物工程第5章发酵过程及控制

微生物工程第5章发酵过程及控制

(三)、pH在发酵过程中的变化规律
在发酵前期,菌体生长缓慢,糖分解的少, 铵离子利用的也少,所以pH变化缓慢。
随菌的生长,菌分解了含氮有机物,释放出 铵,培养基的pH会缓慢上升。
当菌转入对数生长期,由于菌体大量繁殖, 大量利用糖和铵离子,培养基的pH逐渐下降。
在生长后期,由于菌体自溶,释放出铵,pH 又回升。
二、发酵过程中的代谢变化及规律
与代谢有关的参数: 1、物理参数 ⑴、温度 ⑵、罐压 ⑶、搅拌速度 ⑷、空气流量 ⑸、表观粘度 ⑹、发酵液重量
与代谢有关的参数: 2、化学参数 ⑴、基质浓度 ⑵、pH ⑶、产物浓度 ⑷、DNA量 ⑸、关键酶 ⑹、溶解氧 ⑺、排气中的氧含量 ⑻、排气中的CO2含量
与代谢有关的参数: 3、生物参数 ⑴、菌丝形态 ⑵、菌丝干重或湿重 ⑶、菌体比生长速率 ⑷、氧的比消耗速率 ⑸、糖的比消耗速率 ⑹、氮的比消耗速率 ⑺、产物的比生产速率
一、种子制备工艺及质量控制
菌种是发酵的关键,从一个保存的菌 种,到生产上使用的种子,如果按几 十~几百吨的发酵规模,10%的种子量 (接种量)计,需要几吨~几十吨的种 子。
(一)、作为种子的要求: 1、细胞的生活力强,移种至发酵罐后能迅速生长 2、菌体总量及浓度能满足大容量发酵罐的要求 3、无杂菌污染 4、生理形状稳定、保持稳定的生产能力
• 泡沫的控制除了添加消泡剂外,改进培养基成分 也是相辅相成的一个重要方面。
化学消泡剂应具备以下特点:
• 必须是表面活性剂,具有较低的表面张力,消泡 作用迅速有效;
• 具有一定的亲水性,使消泡剂对气-液界面的分 散系数足够大,从而迅速发挥消泡活性;
• 在水中的溶解度必须小,以保持持久地消泡或抑 泡性能;
缓慢利用的氮源物质:有利于延长产物的合 成期。

第5章 发酵工艺过程及其控制

第5章  发酵工艺过程及其控制

2.发酵过程的溶氧变化
一定发酵条件下,每种发酵产物的溶氧浓 度变化都有自己的规律。 发酵过程中,有时会出现溶氧浓度明显降 低或明显升高的异常变化。 其本质都是由耗氧或供氧方面出现了变化 所引起的氧的供需不平衡所致。
异常发酵 溶氧曲线 异常发酵光 密度曲线
正常发酵 溶氧曲线
谷氨酸发酵时正常 和异常的溶氧曲线
发酵过程需氧量受菌体浓度、营养基质种类 和浓度以及培养条件等因素影响,菌体浓度 的影响最明显。 发酵液的摄氧率是随菌体浓度增加而成比例 增加的,但氧传递速率是随菌体浓度对数关 系减少。 因此,可通过控制菌体比生长速率略高于临 界值,以达到最适浓度。 最适菌体浓度即可保证产物比生长速率维持 在最大值,又不会使需氧大于供氧。 菌体浓度可通过基质浓度来控制。还可采用 调节发酵温度、液化培养基、中间补水、添 加表面活性剂等工艺措施来改善溶氧水平。
2.发酵过程中的代谢变化参数
发酵的各种工艺参数分为物理参数、化学 参数和生物学参数。 (1)物理参数:包括温度、压力、流量、 转速、补料和泡沫等,可直接在线测量和 控制。
发酵过程中的物理参数的测量方法和意义
①温度:是指发酵整个过程或不同阶段中 所维持的温度。其高低与发酵中酶反应速 率、氧在培养液中的溶解度和传递速率、 菌体生长速率和产物合成速率等有密切关 系。不同产品,发酵不同阶段所维持的温 度亦不同。 ②压力:是发酵过程中发酵罐维持的压力。 罐内正压可防止外界空气中的杂菌侵入, 同时与氧和二氧化碳在培养液中的溶解度 有关。 ③搅拌转速:与培养基中氧的传递、发酵 液的均一性等有关。
④搅拌功率:是指搅拌器搅拌时所消耗的 功率,常指每立方米发酵液所消耗的功率 (kW· -3)。大小与氧容量传递系数KLa有关。 m ⑤空气流量:是指每分钟内每单位体积发 酵液通入空气的体积,也叫通风比。一般 控制在0.5L· -1· -1~1.0L· -1· -1。 L min L min ⑥粘度:是细胞生长及形态的一项指标, 其大小可改变氧的传递阻力,也可表示菌 体的相对浓度。

04发酵过程控制技术-补料控制技术重点

04发酵过程控制技术-补料控制技术重点

二、项目实施:补料的控制
1. 补料的操作
无菌 空气 电磁流量计 糖 液 贮 罐 阀门开度调节器 回 流 管 补 料 阀 电机 气 液 分 离 器 流量计 排气阀门
流量控制器 蒸汽
(1)间ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ补料
进 气 阀 门 搅拌器
(2)连续补料
2. 耗糖速率计算与补糖量的控制
耗糖速率 上次补加糖液体积 糖液浓度 上次取样的残糖浓度 本次取样的残糖浓度 累计发酵体积
补加量应控制为2 m3左右。
发酵后期也要特别注意耗糖速率的变化,把握好残糖浓度、 糖液流量和停止流加的时间。正常情况下,在发酵结束前 的1~2个小时停止流加,让菌体尽可能耗尽残糖,确保发酵
放罐时残糖在4 g/L以下。
发酵15 h的残糖浓度是16.0 g/L,15~16 h补加了1.5m3的糖液, 16 h的残糖浓度是12.4 g/L,16 h的累计发酵体积时125.5m3, 那么发酵15~16 h的耗糖速度是:
1.5 480 h) 16.0 12.4 9.3 (g/L· 125 .5
根据实践中总结的耗糖规律,发酵16~17 h的耗糖速率一般 在8.0~9.0 g/L· h ,为了维持发酵17 h的残糖浓度在10~12 g/L, 通过耗糖速率计算式子进行初步估算,发酵16~17 h的糖液
例如:在酵母生产中,残糖过高易引起Crabtree效应,导致 乙醇的生成,造成发酵产率降低。
对于部分生长耦联型发酵和非生长耦联型发酵,通常在微生 物细胞进入产物合成期以后才开始补料,并注意控制适当的 残留底物浓度。
例如:在青霉素发酵生产中,过早过多地补加葡萄糖液而致
使葡萄糖浓度较高,容易引起葡萄糖分解产物阻遏效应。
(3)补料配比

课用第五章_发酵条件及过程控制

课用第五章_发酵条件及过程控制

◊ 微生物的酶的组成和特性也受到温度的控制
例如:用米曲霉制曲时,温度控制在低限,有利于蛋白酶 的合成,α-淀粉酶的活性受到抑制。
2、影响发酵温度的因素
• 发酵热:指的是发酵过程中释放出来的净热量,以J/(m3· h) 为单位表示。 • 发酵热的通式可表示为: Q发酵=Q生物+Q搅拌-Q蒸发±Q辐射 (1)生物热(Q生物):指微生物在生长繁殖中,培养基质 中的碳水化合物、脂肪和蛋白质被氧化分解为二氧化碳、 水和其他物质时释放出的热。这些释放出来的能量一部分 用于合成和代谢活动,另一部分用于合成代谢产物,其余 部分则以热的形式散失。
☺基础培养基中采用适量的浓度给予控制,以保证菌 体的正常生长所需;
代谢缓慢:补加磷酸盐。举例:在四环素发酵中,间歇,微量 添加磷酸二氢钾,有利于提高四环素的产量。
(四)菌体浓度的影响及控制
1、菌体浓度(cell concentration)指单位体积中菌体
的含量,是发酵工业中的一个重要参数。它不仅代 表菌体细胞的多少,而且反应菌体细胞生理特性不 完全相同的分化阶段。在发酵动力学研究中,常采 用菌体浓度来计算菌体的比生长速率和产物的比生 产速率等动力学参数及相互关系。
► 发酵热的计算:
(5)发酵热(Q发酵)
①通过测量一定时间内冷却水的流量和冷却水进出口温度来计算: Q发酵=qvc(t2-t1)/V
式中,qv——冷却水的体积流量,L/h;
c——水的比热容,kJ/(kg•℃); t2,t1——进、出冷却水的温度;
V——发酵液体积,m3。
②通过罐温度的自动控制,先使罐温达到恒定,再关闭自动装置,测 量温度随时间上升的速率,按下式求出发酵热: Q发酵=(M1c1+M2c2)u
式中,M1——发酵液的质量,kg;
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补糖量
补糖量的控制,以控制菌体浓度不增或略增为
原则,使产生菌的代谢活动有利于产物合成。 一般在补糖开始阶段控制还原糖在较高水平, 以利于产物合成,但高浓度的还原糖不宜维持过久, 否则会导致菌体大量繁殖影响产物的合成。一般还
原糖水平维持在0.8~1.5%之间较为合适。
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加、恒速流加、指数速率流加、变速流加。
从补加营养物成分来看,又有单组分补料和多组分补料。
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例: L-缬氨酸补料分批发酵的研究
南开大学学报,赵丽丽等,2002
分别采用不同的补料方式来进行: 一次定量加入:在发酵30h,残糖浓度为1%~2%时,一次 性补加467mL补料液(60%的葡萄糖水溶液),使总糖浓 度达到15%。 间歇定量加入:在初糖浓度降为1%~2%时,补加117mL补 料液,然后每当残糖浓度降为1%~2 %时补加,分4次补完, 总量为468mL。 间歇恒速流加:每当残糖浓度降为1%~ 2%时,就以 25g/L.h的速度流加补料液,直至467mL补料液全部补完。
发酵工程 课件
欢迎 Fermentation Engineering 光临
第五章 发酵过程控制(5)
主讲人:夏帆
第五节 中间补料及其控制 (2学时)
教学目的: 了解中间补料的原因、优缺点,掌
握中间补料的意义、原则及控制。
教学重点、难点:中间补料补什么?怎么补
(补糖时间、补糖量、补料方式)?
1、补充能源和碳源 2、补充氮源 3、补前体 4、补水、无机盐和微量元素
16.7
17.3
32.63
34.65
不同补料方式,菌体浓度相差不大,但葡萄糖转化率 相差较大。
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不同的流加方式也会有不同的结果
例:补料方式对酵母菌生产谷胱甘肽的影响
工业微生物,童群义等,2003 三种不同的流加补料模式:酵母菌 解毒
◆ 恒速流加补料分批培养
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补碳源最早的例子 谷氨酸:在原工艺(初糖浓度较 高)的基础上,减少初糖(葡萄糖)浓度,增加生物素 (作用是用于细胞合成)用量达5μg/L,加大接种量到 10%左右,以利于菌体迅速繁殖,获得生产所需要的足 够量的菌体。 当进入产酸期,残糖达2%左右,连续补糖,维持糖 浓度在2%左右,提高温度到36~37℃,流加氨水或尿素, 维持pH7.0~7.5,利用菌体所形成的酶系继续进行发酵, 产酸可达10%。 后来补糖方法在抗生素发酵中普遍采用。
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不同补料方式对L-缬氨酸发酵的影响
补糖方式 L-缬氨酸 (g/L) 一次定量 45.98 菌体浓度 对葡萄糖的 残糖浓度 (g/L) 转化率(%) (g/L) 16.2 30.65 9.2 4.9 1.8
间歇定量
间歇恒速 流加
48.94
51.98
8
常用的两个参考指标
●根据还原糖水平,如赤霉素还原糖降到0.6%就需要补糖;
●根据总糖水平,如抗生素发酵,有的是2%或3%不等。 具体要根据菌的酶系和pH变化的大小来决定补还原糖还 是总糖。如,菌体淀粉酶活力高就可补淀粉之类的物质(总糖), 若淀粉酶活力低那就补还原糖;补还原糖pH变化明显,而补 淀粉,由于它是水解糖,pH变化很小较稳定。 注意:不同的发酵阶段控制的残糖浓度有可能不同。 如金霉素,前期3.5%,中期2.5%,后期1.5%。
够使反应器中营养物浓度控制在较低的水平, 而使菌体浓度呈指数增加。结果见下图:
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恒pH补料分批培养模式
根据培养基pH的变化流加40g/L的葡萄糖。
由于葡萄糖的分解变成小分子酸使pH下降,
当pH降低到一定程度后,加入碱液调节pH达到 设定的数值。然后随着糖被消耗越来越少,pH又 会升高。再根据糖的消耗加入适量的葡萄糖,当
3
内容速览
一、中间补料的意义及原则 二、 中间补料控制
1、补能源和碳源 2、补氮源 3、补前体 4、补水、无机盐和微量元素
三、中间补料的优缺点
4
一、中间补料的意义及原则
☼ 意义:控制菌的生长速率以及培养中期的代谢活动,延
长合成期,推迟菌体自溶。另外,加入前体增加合成产物的 中间体,从而使产量大幅度提高。
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补糖时间的选择
残糖浓 补糖时间 补糖总量 菌体量 纳他霉素增 度(%) (h) (g/L) (g/L) 长率(%) 3.0 38 27 9.37 16.7 2.5 44 22 8.48 14.3 2.0 50 23 7.23 32.1 1.5 60 13 6.96 20.2
温度30℃,转速150r/min 培养12h后,流加40g/L的葡萄糖溶液,至 60h流加结束,72h培养结束。
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● 恒速流加培养
在培养过程中以恒定的流速加入葡萄糖
好处:解除了底物抑制——葡萄糖阻遏效应, 结果延长了菌体的生长周期,增加了菌体浓度 和GSH(谷胱甘肽)产量,结果见下图:
生产的相对统一。因此,发酵液中的总
GSH含量最高。
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酵母菌发酵的四种培养模式比较
●分批培养由于没有进行补料,到发酵后期由于碳源不
够,使得酵母菌的细胞干重和GSH总量都比较低。
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例:根据残糖浓度补料发酵提高纳他霉素产量
药物生物技术,何艳玲,2002 采用间歇补料分批发酵,补加时间以发酵液中还原糖水平 为控制指标。
实验条件:
■ 当葡萄糖浓度分别降至3%、2.5%、2%、1.5%时开始平 均每隔6h补糖一次。
■ 维持葡萄糖浓度分别在3%、2.5%、2%、1.5%,研究对 纳他霉素产量的影响,发酵周期都为96h。结果如下表 :
☼ 原则:控制和引导产生菌在培养过程中,特别是中
后期的生化代谢活动向着有利于产物积累的方向发展。
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二、中间补料控制
补什么? 怎么补?
1、补充微生物所需的能源和碳源物质
发酵过程中,能源是从主要碳源来的。碳源是菌体需 要量最大的物质,在发酵前期消耗很快,到了产物合成 阶段菌体要维持活性必须补充碳源,以便延长产物合成 期。 如添加葡萄糖、液化淀粉、饴糖;作为消泡剂的天然 油脂,同时也起到补充碳源的作用。
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例:不同补糖速率对L-缬氨酸发酵的影响
天津科技大学,赵丽丽,2002
初糖浓度为80g/L,发酵30h后,分别以10g/L· 25g/L· h、 h、
40g/L· h的补糖速度进行,结果如下:谷氨酸棒杆菌
补糖速度 (g/L· h) 10
L-缬氨酸 (g/L) 50.42
菌体浓度 (g/L) 16.3
pH下降到一定程度后,又加入适量的碱液调节
pH。如此反复,发酵液中始终保持在较低的葡萄 糖浓度。至60h流加结束,72h发酵结束。
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从图中可看出,采用恒pH补料分批培 养既可以获得较高的菌体浓度,菌体中 GSH含量也较高,达到了菌体合成和GSH
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2、补充微生物所需的氮源
补氮是发酵控制的另一个重要项目,主要作 用是调节pH 和补充产生菌所需的氮源,从而控 制代谢活动。 生产上补氮有两种:
对葡萄糖的 转化率(%) 33.61
25
40
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52.23
49.33
17.1
16.8
34.82
32.89
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补料方式
补料方式可分为:连续流加 不连续流加 (少量多次、大量少次)
多周期流加
连续流加效果最好,可以避免因一次大量加入引起环境突 然改变给菌体代谢带来的影响。每次流加又可分为:快速流
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纳他霉素Natamycin
Streptomyces natalensis、 Streptomyces chatanoogensis、Streptomyces gilvosporeus
一种天然、广谱、高效安全的酵母菌及霉菌等丝状 真菌抑制剂,它不仅能够抑制真菌,还能防止真菌 毒素的产生. 对人体无害,很难被人体消化道吸收,而且微生物 很难对其产生抗性 国际上唯一的抗真菌微生物防腐剂。97年卫生部 正式批准纳他霉素作为食品防腐剂。目前该产品已 经在50多个国家得到广泛使用。主要应用于乳制 品、肉制品、发酵酒、饮料等食品的生产和保藏。
2013年8月7日星期三 很重要,过早会刺激菌体生长,加速 糖的消耗,不利于合成产物;过迟所需能量供应不上菌 体已老化,合成产物的能力本身都很低了。 例:四环素 补糖时间 96h效价 20h 6000u/ml 45h 10000u/ml 62h 6000u/ml 说明:开始补糖的时间必须根据代谢的变化情况来决 定,即根据基础培养基的碳源种类及用量、菌丝生长情 况、糖的消耗速率及残留水平来综合考虑,不能单纯以 时间为依据。
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