生理学实验指导copy
生理学实验指导(二)
引言生理学实验是生理学学习中不可或缺的一部分，通过实验可以直观地观察和了解生物体内的各种功能和机制。
本文将为您提供一份生理学实验指导（二），内容涵盖了多个方面的生理学实验方法和技巧，希望能为您的实验提供有益的指导。
概述本文将分为五个大点来阐述生理学实验的指导内容。
我们将讨论实验前的必要准备工作，包括实验设计、材料准备和安全注意事项。
我们将介绍一些常用的生理学实验技术，如离心、染色和显微镜观察等。
接着，我们将详细解释一些常见的实验操作流程，包括取样、培养和记录数据等。
然后，我们将讲解如何进行生理学实验的数据分析和结果解读。
我们将总结本文的主要内容，并提供一些建议和建议。
正文内容1.实验前的准备工作（1）实验设计：在进行生理学实验之前，我们需要制定一个有效的实验设计。
这包括确定实验目标、选择合适的实验对象和确定实验组织的数量和分组。
通过仔细的实验设计，可以提高实验的可靠性和可重复性。
（2）材料准备：准备好所需的实验材料是实验成功的关键。
这包括培养基、试剂、生物样本和实验设备等。
在准备材料时，要注意保持材料的新鲜度和质量，确保实验结果的准确性和可靠性。
（3）安全注意事项：在进行生理学实验时，安全是至关重要的。
我们需要了解和遵守实验室的安全规定，正确使用实验设备和化学试剂，避免事故的发生。
在实验过程中，要注意个人防护和实验环境的卫生。
2.常用的生理学实验技术（1）离心技术：离心是一种常用的实验技术，可以将悬浮物质与液体分离开来。
通过调整离心机的速度和时间，可以将生物样本中的细胞和颗粒沉淀下来，用于后续的实验分析。
（2）染色技术：染色是一种常见的生理学实验技术，通过使用染色剂可以将细胞和组织中的结构和成分染色，便于观察和分析。
常用的染色方法包括荧光染色、Giemsa染色和HE染色等。
（3）显微镜观察：显微镜是生理学实验中常用的观察工具，可以放大细胞和组织的结构，帮助研究者观察和分析。
在显微镜观察中，要注意调整光源、镜头和对焦等参数，以获得清晰的观察结果。
生理学实验报告手册
实验五、急性动物实验
实验名称：急性动物实验
【材料与设备】家兔；常规手术器械一套；气管插管；兔手术台；止血钳；剪毛剪；20ml 注射器；生理盐水；纱布；棉线；
【实验目的】学习生理实验基本的组织分离技术；掌握气管插管、膀胱导尿的方法。
【方法和步骤】
1、麻醉、固定动物、气管插管
取家兔一只，称重，用35mg/kg体重量的戊巴比妥钠或用4mL/kg体重量的25%乌拉坦溶液耳缘静脉注射麻醉后，仰卧位固定于手术台上，剪去颈部兔毛，沿颈部正中做3～4cm 长的切口，进行气管插，分离颈部两侧的迷走神经，穿线备用。
2、膀胱导尿
剪去腹部兔毛，沿耻骨联合上方1cm处做3-5cm长切口，沿腹白线逐层分离，找到膀胱，进行膀胱导尿。
【小结】
1、家兔肌肉紧张、角膜反射喝对皮肤夹捏的反应，这些活动银线减弱后消失时，应立即停止注射，以避免麻醉过深，抑制呼吸中枢，导致动物死亡。
2、不能将毛兔拎起，这样容易剪到皮肤和皮下神经
3、输尿管镜膀胱处结扎后，可略等片刻，输尿管观略充盈后再剪口插管会容易很多。
《第二部分动物生理学》实验指导书.docx
动物生理学实验指导书实验一基本生理实验操作——蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备（2学时）［实验目的］学习生理学实验基本的组织分离技术；学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；了解刺激的种类。
［实验原理］蛙类的一些基木生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标木放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张-•次，表明神经和肌肉产牛了-•次兴奋。
在牛理学实验屮常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性；刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标木是生理学实验的一项基木操作技术。
［实验对象］蟾赊或蛙［实验药品］任氏液、食盐、1% H2SO4滤纸［仪器与器械］普通剪刀、手术剪、眼科蹑（或尖头无齿银）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、锌铜弓（或电了刺激器）、酒精灯。
［实验方法与步骤］（一）标木制备1.破坏脑脊髓：左手持蛙，用食指下压吻端，拇指按压背部，使蛙头前俯；右手食指沿两鼓膜」［沖向后触摸，触及一凹陷处，即枕骨大孔。
用蛙针由凹陷处乖直刺入枕骨大孔，再向前伸入颅腔，捣毁脑；向后插入椎管，捣毁脊髓。
或把铁剪刀插入口裂，沿两眼后缘剪去头，再以蛙针捣毁脊髓。
待蛙四肢肌肉紧张性完全消失，即表示脑和脊髓己破坏完全。
2.剪除躯干上部及内脏：在腋部用铁剪刀剪断脊柱，将头、前肢和内脏一并弃去，仅保存一段脊柱和后肢。
脊柱的两旁可见坐骨神经从。
3.剥皮：先剪去肛门周I韦I皮肤，然后用左手捏住脊柱断端，右手捏住断端边缘皮肤，向下剥掉全部后肢皮肤。
标本放入盛有林格液的小烧杯中，将手及用过的器械、蛙板洗净，以免皮肤分泌物污染神经-肌肉标本。
若标本系电生理实验用则禁止撕皮，需用剪刀剪断皮F 结缔纟R织来分离皮肤。
4.分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本均匀地分成左右两半，分别作进一步剥制。
实验指导书(生理学部分)
实验项目一：常用实验动物的基本操作（一）实验动物的抓握、固定和处死方法1、小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
有经验者直接用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
2、小鼠的处死方法可采用颈椎脱臼法。
此法是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为大、小鼠最常用的处死方法。
操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，实验动物立即死亡。
（二）动物血细胞计数方法材料和用品（1）器材：细胞计数板、细口滴管、绸布。
（2）试剂：0.4％台盼蓝。
（3）材料：血细胞悬液。
实验原理细胞计数一般用血细胞计数板，按白细胞计数方法进行计数。
细胞计数时，先将培养细胞或血细胞稀释成细胞悬液，然后将细胞悬液滴入细胞计数板内，计数计数板上计数室四大格内的细胞数。
根据计数室的容积及稀释倍数，即可计算出细胞浓度。
实验步骤：图5－1 血细胞计数板1．采血及稀释用1ml移液管吸取0.38ml白细胞稀释液放入小试管内备用，另用5ml移液管吸取3.98ml红细胞稀释液放入小试管内备用。
用酒精棉球消毒兔的耳缘静脉采血部位，用刺血针刺破血管，让血液自然流出，擦去第一滴血，待流出第二滴血时，用一次性毛细血管分2次准确吸取20ul、和20ul，将血液分别吹入盛有白、红细胞稀释液的小试管内，用滴管放在试管底部轻轻吹出血液，用上清液冲洗毛细取血管2～3次，轻轻摇动，使液体充分混匀。
运动生理学实验指导
运动生理学实验指导实验一血红蛋白测定及血型测定A..血红蛋白的定量测定【目的】掌握用比色法来测定血红蛋白量。
（3分）【原理】血红蛋白量测定方法有光电比色法、分光光度法和沙里氏比色计比色法。
本实验采用沙里氏比色法。
血液中血红蛋白的颜色随其结合的氧量多少而有一定的变化。
为提高测定的标准，可向血液中加稀盐酸，使亚铁血红蛋白酸化成高铁血红蛋白而显稳定的棕黄色，加蒸馏水稀释并与标准色比较，既可求出100mL血液中所含的血红蛋白的克数。
血红蛋白的含量受年龄、性别、营养状况、体育锻炼以及居住条件的影响。
（5分）我国正常成年男子约含12～15g·dL-1；女子约为11～14 g·dL-1。
【器材】沙里氏比色计（含比色管、比色架、吸血管）、采血针、75℅酒精、棉球、95℅酒精、0.1mol盐酸、乙醚、蒸馏水、小玻棒、小滴管。
（6分）【步骤】1.向比色管内加入0.1mol盐酸10滴（约达到比色管的10℅的刻度线）。
（3分）2. 采血。
以75℅的酒精消毒无名指及采血针（2分）；3．用采血针刺破无名指指腹一侧皮肤，让血液自然流出，用消毒干棉球擦去一滴后，用右手平持吸血管使管口接触自然流出的一滴血管，准备吸取20μl 的血液（血柱液面平20μl刻度线）。
（6分）4．用干棉球拭檫管外的血液，然后迅速将吸血管移入比色管，徐徐将血液吹入盐酸深层，并用上层清夜多次洗涤吸血管，轻轻振荡，置室温中10～15min,充分到使亚铁血红蛋白变成高铁血红蛋白。
（6分）5.比色。
将比色管放入血红蛋白比色架中，向比色管逐滴加入蒸馏水并且边滴边搅拌边竖起对光观察，将比色管的颜色与比色计上的标准颜色做比较，直至比色管溶液颜色与标准颜色一致为止。
正确读出并记录比色管内溶液弯月面下缘最底点对应的比色管刻度数值，此数值即为每100mL血液中所含血红蛋白的克数。
（9分）【注意事项】1.要准确配制0.1mol的盐酸。
血液被酸化的时间不得少于10min。
生理药理学实验指导
生理学实验一、蛙（蟾蜍）坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】1. 掌握蛙类坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
2. 观察组织的兴奋性、刺激与反应律以及骨骼肌收缩的特点。
【实验原理】蛙和蟾蜍是两栖类动物，其生存环境较简单，离体组织或器官所要求的条件也较简单。
坐骨神经和腓肠肌属于可兴奋组织，把它们置于人工配制的林格液中，其兴奋性在几个小时内保持不变。
若给坐骨神经一个适宜的刺激，可在神经和肌肉上产生一个可传导的动作电位，肉眼可以看到一次肌肉的收缩和舒张，表明神经和肌肉兴奋了一次。
【实验材料】实验对象：蟾蜍或蛙。
实验器材：蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪刀、尖镊子、培养皿、锌铜弓。
实验试剂：任氏液【实验方法】坐骨神经腓肠肌标本的制备可采用离体或在体的方法。
1 、离体坐骨神经腓肠肌标本制备（ 1 ）破坏脑脊髓：取蟾蜍 1 只，以左手示指压其头部前端使其尽量前俯，中指与示指夹住其前肢，拇指抵住其骶部，使整个躯干做最大屈曲，后肢悬空。
探针自枕骨大孔处垂直刺入，到达椎管，随即将探针改变方向刺入颅腔，向左右两侧不断搅动，彻底捣毁脑组织。
将探针退出至枕骨大孔处，转向后刺入椎管，捻动探针使其逐渐刺入整个椎管内，完全捣毁脊髓。
脑脊髓完全破坏的标志是：下颌呼吸运动消失，反射消失，四肢松软。
（ 2 ）去除头部和内脏：左手握住蟾蜍后肢，此时躯干上部及内脏即全部下垂。
右手持粗剪刀在骶髂关节前1cm处剪断脊柱，剪除全部躯干及内脏组织，注意勿损伤神经。
（ 3 ）去皮：用圆头镊子夹住脊柱，注意不要碰到神经，捏住皮肤边缘，逐步向下牵拉剥离皮肤。
全部皮肤剥除后，把标本置于盛有林格液的培养皿中。
（ 4 ）双手和用过的全部手术器械。
（ 5 ）分离两后肢：避开坐骨神经，用粗剪刀从背侧剪去骶骨，然后沿中线将脊柱剪成左右两半，再从耻骨联合中央剪开两腿，将已分离的下肢标本浸入盛有任氏液的培养皿中保存。
（ 6 ）完成坐骨神经腓肠肌标本。
①游离坐骨神经：取出一下肢，用蛙钉固定于蛙板上。
动物生理学实验指导书
动物生理学实验指导书生理学实验指导目录实验一神经生理实验1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备1.2 神经干动作电位引导 1.3 神经传导速度的测定实验二血液生理实验2.1 红细胞计数 2.2 红细胞渗透脆性试验实验三循环生理实验之蛙心起搏点及心肌特性3.1 蛙心起搏点 3.2 心肌特性实验四循环生理实验之蛙心灌流 4.1 蛙心灌流实验五循环生理实验之动脉血压的直接测定及其影响因素5.1 动脉血压的直接测定及其影响因素实验六消化生理实验7.1 胃肠运动的直接观察 7.2 小肠吸收和渗透压的关系 7.3 离体肠段运动描记实验七泌尿生理实验8.1 尿的分泌及其影响与调节实验八泌尿、循环、呼吸生理综合实验（综合计划 07级）实验九肌肉生理实验9.1 阈刺激、阈上刺激与最大刺激 9.2 肌肉的单收缩9.3 肌肉的强直收缩和收缩总和实验一神经生理实验年月日星期1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备目的和原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，它的离体组织所需要的生活条件又比较简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本来研究神经肌肉的一般生理，如：神经干动作电位引导、神经传导速度测定、肌肉收缩的机能等。
实验对象：蟾蜍或蛙实验器材和药品：中式剪子，眼科剪，眼科镊，蛙板，玻璃分针（玻璃勾），探针，锌铜弓，培养皿，大头针，棉花，线，任氏液，纱布等。
实验方法：1、破坏脑脊髓取一只蟾蜍或蛙，用自来水冲洗干净。
保定好，用探针从枕骨大孔垂直刺入，然后向前刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织，再向后刺入脊椎管捣毁脊髓。
此时蟾蜍四肢松软，呼吸消失，表示脑脊髓破坏完全。
2、剪除躯干上部及内脏，提起蟾蜍的背部，在骶髂关节水平以上0.5-1.0厘米处剪断脊柱（见图），用左手捏住蟾蜍骶髂关节以下的脊柱，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持中式剪刀，沿脊柱两侧剪除皮肤肌肉和一切内脏（注意勿损伤坐骨神经），仅留骶尾联合以下的后肢、骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。
生理学实验指导
生理学实验指导中药教学部重庆邮电学院生物学院二O O四年六月前言本课程的作用是使学生学习人体生理学实验知识、方法和技能，了解生理学实验的主要过程及基本方法以及与人体的联系。
从而使学生在认识人体机能活动基本规律的基础上，进一步认识运动训练的生理学原理；了解各类不同年龄、性别、运动项目、及训练水平的运动员的生理特点，从而科学地指导训练实践；了解体育运动对人体机能活动发展变化的影响，为运动健身提供理论基础。
本实验指导选择的实验内容经典、实用，做到既与理论课有密切联系，又有实验课的独特体系；既有整体动物实验，既有验证性实验，又有设计性实验,还有综合性实验。
从而使学生初步具备对客观事物进行观察、比较、分析、综合和解决问题的能力，并验证、巩固和加深理解基本理论，从而初步掌握药理学实验的基本方法。
重庆邮电学院生物学院陈玉英刘圣蓉编著二0 0四年六月目录绪论3 (5)实验一刺激频率、刺激强度与肌肉反应的关系6 (7)实验二反射时的测定与反射弧的分析8实验三安静时脉博、心音和动脉血压的测定9 (11)实验四肺功能的测定12 (14)绪论运动生理实验课的目的：１．初步掌握生理学实验的基本操作技术，了解获得生理学知识的科学方法。
２. 验证和巩固生理学的基本理论。
３. 培养科学作风和分析解决问题的能力以及对科学工作的严肃态度、严肃的工作方法和严谨的工作作风，从而为科学地组织体育教学，指导体育锻炼和课余体育锻炼，以及开展体育科学研究奠定初步基础。
为了达到实验目的，请同学门做到以下要求：1.遵守纪律，提前5分钟到达实验室，因故外出或早退应向老师请假。
进入实验室必须身穿白大衣，不许穿拖鞋，衣着整洁干净。
实验时应严肃认真，不高声谈笑，不进行实验室无关的活动。
2.实验前：仔细阅读实验手册，复习有关理论。
做到充分理解，预测该实验各个步骤应得的结果和可能发生的误差。
3.实验中：1.实验者必须先熟悉仪器的使用要点，而后运用。
仪器损坏或失灵，应请老师修理或调换。
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40℃ 温水 刺激 心室
40℃ 温水 刺激 静脉 窦
冰水 刺激 心房
冰水 刺激 心室
冰水 刺激 静脉 窦
斯氏 第一 结扎
斯氏 第二 结扎
心室 搏动 频率
静脉 窦搏 动频 率
2. 蛙坐骨神经一腓肠肌标本的制备
见动物生物学实验指导-蛙的系列实验
3.蛙脊髓反射及反射弧分析
蛙的处理：只毁脑，不毁脊髓。 见动物生物学实验指导-蛙的系列实验。
观察（不做坐骨神经麻醉）：记录实验现 象。 屈反射（并测定反射时间） 搔扒反射（并测定反射时间） 去后肢踝关节下皮肤后 毁脊髓后
4.蛙的微循环观察
蛙的处理：双毁髓 见动物生物学实验指导-蛙的系列实验 体视镜观察
实验结果要求： 区分动脉、静脉及毛细血管； 记录各种血管内血流特点，如血流速度、血管 是否搏动等； 记录滴加药物（去甲肾上腺素和盐酸普鲁卡因） 后各种血管及其血流的变化。
跟腱反射：受试者跪于椅子上，下肢于膝关节部位呈直 角屈曲，踝关节以下悬空。检查者以叩诊槌轻叩跟腱。 正常反应为腓肠肌收缩，足向跖面屈曲（图3-30右）。
注意事项： 1． 检查者动作轻缓，消除受检者紧张 情绪。 2． 受检者不要紧张，四肢肌肉放松。 3．每次叩击的部位要准确，叩击的力度 要适中。
腹面朝上
5.蛙心电图描记
由于机体任何组织与器官都处于组织液 的包围之中，而组织液作为导电性能良 好的容积导体，可将组织和器官活动时 所产生的生物电变化传至体表。故在体 表或容积导体中的远隔部位可记录出某 一器官或组织活动的电变化，如心脏活 动所产生的生物电变化，可通过引导电 极置于体表的不同部位记录下来，即心 电图。
(4) 将培养皿中的心脏重新放回蛙心胸腔原来的 位置，观察记录纸或显示器上的变化。
(5) 将心脏倒放（即心尖朝上），此波形将发生 什么变化？
(6) 从蛙腿上取下导联线，夹在培养皿边缘并与 培养皿内的任氏液相接触，再将心脏置于培养皿中部， 观察记录纸或显示器上是否显示心电波形。
(7) 再将心脏任意放置于培养皿内，心电图的波 形又有何变化？
1.将引导电极置于体表或体内任何部位，为什么 均可引导记录到心脏的生物电活动？
2.如果将心脏取出结果又将如何？为什么？ 3.若在将心脏放回胸腔，此时又将如何变化？为 什么？ 4.如将心脏放置于培养皿的任氏液中浸泡，并通 过培养皿中的任氏液能否引导记录到心电变化？为什
么？
6.盲点测定
实验目的： 证明盲点的存在及测定其大小。
1.证明盲点的存在：
在黑板上贴一张50×20 cm的白纸，在白纸的 左侧面画一个小而显眼的黑色“+”字，距“+” 字右侧25 cm处画一个直径5 cm的黑色圆形色 标。受试者站在距白纸2m处，遮住左眼，用 右眼注视正前方白纸上的“+”字，此时白纸右 侧的圆形色标清楚可见。令受试者向白纸缓慢 前行，在前进中圆形色标突然从受试者视野中 消失，若继续缓慢前行，圆形色标又会在受试 者视野中重新出现。这样可证明盲点的存在。
[注意事项]
1.剪取心脏时切忌勿伤及静脉窦。 2.培养皿中的任氏液温度最好保持 在30℃左右。 3.仪器必须接地良好，以克服干扰。 如果按标准导联连接，出现干扰时，可
将左前肢也与仪器的左前肢导联线连接
起来，即可克服干扰。
[实验结果] 剪贴记录曲线(图7.7-3) ，根据实验结果总结容
积导体的导电规律。 [思考题]
实验原理： 视神经自视网膜穿出的部位缺乏感光细 胞，外来的光线成像于此处不能引起视 觉。因此，将视神经穿出视网膜的部位 称作盲点。我们可以根据物体成像的规 律，从盲点的投射区域，推算出盲点所 在的位置和范围。
实验对象： 人
实验器材和用品： 白纸，铅笔，小黑色目标物，尺，遮眼 板。
实验步骤和观察项目：
1.蛙心起搏点的分析
蛙的处理：双毁髓 见动物生物学实验指导-蛙的系列实验
记录内容： 1.观察静脉窦、心房、心室收缩顺序； 2.完成表1（见下页）；
分析心脏不同部位节律性的高低，哪个部位为起 搏点。
注意读取数据时每次重复3次，取平均值！
单位： 无刺 次/ 激 分钟
心房 搏动 频率
40℃温 水刺激 心房
[实验对象] 蛙或蟾蜍
[实验药品] 任氏液
[仪器与器械] 心电图机或计算机生物信号采集处
理系统（或二道生理记录仪），蛙类手 术器械，培养皿，鳄鱼夹，解剖针，蛙 钉（或大头钉），蛙板。
[实验方法与步骤]
1.实验准备： 蛙或蟾蜍毁脑和脊髓后，用蛙钉（或大头钉）背位固 定于蛙板上。自剑突下将胸部皮肤剪去，剪掉胸骨， 暴露心脏。
肱三头肌反射：受试者上臂稍外展，前臂及上臂半屈成 90°。检查者以左手托住其右肘部内侧，然后用叩诊槌 轻叩尺骨鹰嘴的上方1~2 cm处的肱三头肌肌腱。正常 反应为肱三头肌收缩，表现为前臂呈伸展运动（图3-29 右）。
膝反射：受试者取坐位，双小腿自然下垂悬空。检查者 以右手持叩诊槌，轻叩膝盖下股四头肌肌腱。正常反应 为小腿伸直动作（图3-30左）。
实验内容
蛙心起搏点的分析 蛙坐骨神经一腓肠肌标本的制备 蛙脊髓反射及反射弧分析 蛙的微循环观察 蛙心电图描记 盲点测定 人体腱反射
实验报告要求
实验名称 1.实验目的 2.实验材料、仪器、试剂等 3.实验步骤（概括，不要照书抄） 4.实验结果（包括实验现象描述、测量数据、
计算等） 5.分析及讨论
各实验分开写
测定盲点大小
在黑板上和眼相平行的地方划一白色“+”字记号，受试者立于黑板前， 使眼与“+”字的距离为50 cm。用遮眼板遮住一眼，让受试者用另一 眼目不转睛地注视“+”字。实验者将小白色目标物由“+”字开始慢 慢向所测眼的外侧移动，到受试者刚好看不见目标物时，就把目标物 所在位置记下来。继续再将目标物慢慢向外侧移动，直到它刚又被看 见时，再记下它的位置。由所记下的两个记号的中点起，沿着各个方 向移动目标物，找出并记录目标物能被看见和看不见的交界点。将所 记下的各点依次连接起来，就可以形成一个大致呈圆形的圈。此圈所 包括的区域叫做盲点投射区域。
依据相似三角形各对应边成正比的定理，计算出盲点与中央凹的距离 和盲点的直径。参考图3-28及域与十字距离× （15÷500）
盲点的直径（mm）= 盲点投射区域的直径×（15÷500）
7.人体腱反射
实验原理： 牵张反射是最简单的躯体运动反射，包括肌紧 张和腱反射两种类型。腱反射是指快速牵拉肌 腱时发生的牵张反射。腱反射是一种单突触反 射，其感受器是肌梭，中枢在脊髓前角，效应 器主要是肌肉收缩较快的快肌纤维成分。 腱反射的减弱或消退，常提示反射弧的传入、 传出通路或脊髓反射中枢的损害或中断。而腱 反射的亢进，则提示高位中枢的病变。因此， 临床上常通过检查腱反射来了解神经系统的功 能状态。
实验对象： 人
实验器材和用品： 叩诊槌。
受试者应予以充分合作，避免精神紧张和意识 性控制，四肢保持对称、放松。如果受试者精 神或注意力集中于检查部位，可使反射受到抑 制。此时，可用加强法予以消除。最简单的加 强法是叫受试者主动收缩所要检查反射以外的 其它肌肉。
肱二头肌反射：受试者端坐位，检查者用左手托住受试 者右肘部，左前臂托住受试者的前臂，并以左手拇指按 于受试者的右肘部肱二头肌肌腱上，然后用叩诊槌叩击 检查者自己的左拇指。正常反应为肱二头肌收缩，表现 为前臂呈快速的屈曲动作（图3-29左）。
2.连接实验装置 模拟心电图标准导联Ⅱ的连接方式，将接有导线的鳄 鱼夹分别固定在蛙或蟾蜍右前肢和两后肢的蛙钉（大 头钉）上，负极接右前肢，正极接左后肢，右后肢则 与地线连接，输出导线联接至心电图机或计算机生物 信号采集处理系统（或二道生理记录仪）（图7.7-1）。 为保证导电性良好，可在鳄鱼夹和蛙钉之间垫以任氏 液浸过的脱脂棉。
导联连接方式： 红色：动物的右上肢 黄色：动物的左上肢 绿色：动物的左下肢 黑色：动物的右下肢 白色：胸导联
3.实验项目 (1)记录蛙或蟾蜍常规导联时的心电
图。
(2) 将引导电极随意放置于蛙或蟾 蜍身体各部位,观察是否能记录到心电图? 其波形有何变化?
用小镊子夹住主动脉干，连同静脉窦一同快速剪下心 脏，并将蛙心放入盛有任氏液的培养皿内，此时开动 心电图机或计算机生物信号采集处理系统（或二道生 理记录仪）心电图有何变化？