脲酶的测定方法
脲酶活性的测定
大豆制品中脲酶活性的测定定性法：酚红法一、原理：酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶在pH=7.0，T=30℃时可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红的时间长短来判断脲酶活性的大小。
二、仪器和试剂：粉碎机：粉碎时不产生强烈发热；分析天平；25ml纳式比色管；恒温水浴锅；0.1%酚红指示剂：0.1g苯酚红溶于100ml 95%乙醇溶液；结晶尿素；三、方法：将试样粉碎，准确称取0.05±0.001g试样于25ml纳式比色管，加入0.2g结晶尿素及5滴酚红指示剂，加入25ml蒸馏水，摇动10s，立即置于30±0.5℃水浴锅中，开始计时，观察溶液颜色变化， 5min 后，取出比色管，摇匀，观察溶液颜色。
空白试验：不加尿素，其他同上。
品质判定：如果溶液为明显的粉红色，则认为该大豆制品脲酶活性超标，为不合格产品。
•0-1min变红，活性非常强（＞1.0）；•1-2min变红，活性大概0.5-1.0；•2-5min变红，活性大概0.3-0.5。
四、注意事项：1.粉碎样品时，不应产生大量热，否则会影响结果判定；2.称量样品时，一定要将样品混合均匀，否则会造成试验误差；3.试样和空白试验同时操作，过程要迅速，防止时间影响。
尿素-酚红法一、原理：酚红指示剂在pH 6.4-8.2时由黄变红，大豆制品中所含的尿素酶可将尿素水解产生氨，释放的氨可使酚红指示剂变红，根据变红样品占所有样品的比例来判断脲酶活性的大小。
二、仪器和试剂：表面皿；0.2N氢氧化钠溶液：称取0.8g氢氧化钠溶于100ml蒸馏水；1.0N硫酸溶液：移取7.0ml浓硫酸溶于500ml蒸馏水；尿素-酚红试剂：用500ml烧杯将0.8g酚红溶于20ml 0.2N氢氧化钠溶液，用蒸馏水稀释至约300ml，加入60g尿素，并溶解之，转移至2L容量瓶，冲洗烧杯数次,加蒸馏水至约1.5L，加入9.4ml 1.0N 硫酸溶液，用蒸馏水定容至2L；此时溶液应具有明亮的琥珀色；（过段时间溶液会变为深橘红色，可滴入稀硫酸溶液搅拌之，直至溶液再次变为琥珀色）三、方法：将一满匙样品放入表面皿中，摊平，将以调好的尿素-酚红试剂滴入表面皿中的样品上，直至完全浸湿，停留5min，观察样品的颜色反应。
简便法测定脲酶含量
简便法测定脲酶含量
简便法测定脲酶含量通常使用间接法，即测定尿液中尿素的产生量。
具体方法如下：
材料：碱性磷酸盐缓冲液、尿液样品、脲酶试剂（含间苯二酚）、少量尿素。
步骤：
1. 准备样品：取适量的尿液样品。
2. 离心：将尿液样品离心，以去除杂质。
3. 反应液的制备：在试管中加入适量的碱性磷酸盐缓冲液和脲酶试剂。
4. 反应液的预热：将试管置于恒温水浴中，预热至适当的温度。
5. 打断反应：将预热的反应液加入样品中，迅速混合，打断反应。
6. 倍化尿素：将适量的尿素加入反应液中，促使脲酶的活性增加。
7. 反应时间：将试管放置在恒温水浴中反应一定时间。
8. 终止反应：加入酸性溶液，终止反应。
9. 高速离心：将反应液离心，以去除沉淀。
10. 测定吸光度：取上清液，使用分光光度计测定吸光度。
11. 计算脲酶含量：根据吸光度测定结果，通过对照物质的标准曲线，计算脲酶含量。
需要注意的是，尽管这种方法相对简便，但仍需要一定的实验操作技巧和仪器设备，同时还需要对研究对象进行合适的前处理，以提高测定的准确性和可靠性。
脲酶实验的测定实验报告
一、实验目的1. 了解脲酶的基本性质及其催化反应原理。
2. 掌握脲酶活性测定的实验方法。
3. 通过实验验证脲酶活性受温度、pH值等因素的影响。
二、实验原理脲酶是一种水解脲的酶，可以将脲分解为氨和二氧化碳。
在酸性条件下，氨与苯酚反应生成蓝色络合物，通过测定蓝色络合物的吸光度，可以计算出脲酶的活性。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：脲酶溶液、脲底物、苯酚、硫酸、NaOH、pH缓冲液、蒸馏水、移液器、试管、恒温水浴锅、紫外可见分光光度计等。
2. 实验仪器：移液器、试管、恒温水浴锅、紫外可见分光光度计等。
四、实验方法1. 配制脲酶溶液：取一定量的脲酶粉末，加入适量的蒸馏水溶解，配制成一定浓度的脲酶溶液。
2. 配制底物溶液：将脲底物与苯酚按照一定比例混合，加入适量的硫酸，配制成底物溶液。
3. 脲酶活性测定：a. 取一定量的脲酶溶液，加入底物溶液，混匀；b. 将混合液置于恒温水浴锅中，设定一定的温度；c. 在一定时间内，每隔一定时间取样，用紫外可见分光光度计测定吸光度；d. 根据吸光度计算脲酶活性。
五、实验结果与分析1. 温度对脲酶活性的影响：a. 在不同温度下（如25℃、30℃、35℃、40℃、45℃）进行实验，记录吸光度；b. 根据吸光度计算脲酶活性；c. 分析温度对脲酶活性的影响。
2. pH值对脲酶活性的影响：a. 在不同pH值条件下（如pH 4.0、5.0、6.0、7.0、8.0）进行实验，记录吸光度；b. 根据吸光度计算脲酶活性；c. 分析pH值对脲酶活性的影响。
六、实验结论1. 温度对脲酶活性的影响：在一定范围内，随着温度的升高，脲酶活性逐渐增强；超过最适温度后，脲酶活性逐渐降低。
2. pH值对脲酶活性的影响：在一定范围内，随着pH值的升高，脲酶活性逐渐增强；超过最适pH值后，脲酶活性逐渐降低。
七、实验注意事项1. 实验过程中应严格控制温度和pH值，以保证实验结果的准确性。
2. 操作过程中注意移液器的准确使用，避免污染和误差。
脲酶的测定方法
脲酶的测定方法一、脲酶测定(比色法)脲酶是对尿素转化起关键作用的酶，它的酶促反应产物是可供植物利用的氮源，它的活性可以用来表示土壤供氮能力。
1、试剂配制：（1）pH6.7柠檬酸盐溶液：取368g柠檬酸溶于600mL蒸馏水中，另取295g 氢氧化钾溶于水，再将两种溶液合并，用1N氢氧化钠将pH调至6.7，并用水稀释至2L。
（2）苯酚钠溶液：称取62.5g苯酚溶于少量乙醇中，加2mL甲醇和18.5mL 丙酮，后用乙醇稀释至100mL（A液），保存再冰箱中。
称取27g氢氧化钠溶于100mL水中（B液），保存于冰箱中。
使用前，取A、B两液各20mL混和，并用蒸馏水稀释至100mL备用。
（3）次氯酸钠溶液：用水稀释制剂至活性氯的浓度为0.9％，（1.9g次氯酸钠溶于1L水中）溶液稳定。
（4）10％尿素溶液：10g尿素溶于100mL水中。
（5）N的标准溶液：精确称取0.4717g硫酸铵溶于水稀释至1L，则得1mL 含0.1mgN的标液，再将此液稀释10倍制成氮工作液（0.01mg/mL）。
2、操作步骤称取5ｇ土置于50mL容量瓶中,加1mL甲苯处理,加塞塞紧轻摇15ｍｉｎ;往瓶中加入5mL10%尿素液和10mL的柠檬酸盐缓冲液(ｐＨ6.7),仔细混匀。
在37℃恒温箱中培养24ｈ。
然后用热至38℃的蒸馏水稀释至刻度(甲苯应浮在刻度以上),摇荡,将悬液过滤。
取滤液1mL置于50mL容量瓶中,用蒸馏水稀释至10mL,然后加入4mL苯酚钠溶液,并立即加入3mL次氯酸钠溶液，加入每一试剂后,立即将混合物摇匀,20ｍｉｎ后,将混合物稀释至刻度,在波长578ｎｍ处测定吸光值。
脲酶活性以样品所得的吸光值减去对照样品吸光值之差,根据标准曲线求出氨态氮量。
标准曲线绘制：分别取0、1、3、5、7、9、11、13mL氮工作液置于50mL容量瓶中，加蒸馏水至20mL，再加4mL苯酚钠溶液和3mL次氯酸钠溶液，随加随摇匀，20min后显色，定容。
土壤脲酶测定
土壤脲酶测定一、实验目的1.了解土壤中脲酶的活性及其对氮素转化的重要作用；2.通过脲酶测定，评估土壤中氮素的转化和利用效率；3.为制定合理的施肥和作物管理措施提供依据。
二、实验原理脲酶是一种能够催化尿素分解的酶，在土壤中起着至关重要的作用。
它能够将尿素分解成氨和二氧化碳，释放出的氨可以被植物吸收利用。
因此，脲酶的活性可以反映土壤中氮素转化的能力。
本实验采用靛酚比色法测定脲酶活性。
该方法基于脲酶催化尿素分解产生的氨与靛酚反应生成靛酚蓝，其颜色深浅与脲酶活性呈正比。
通过比色法可以测定样品中脲酶的相对活性。
三、实验步骤1.样品采集与处理：选取具有代表性的土壤样品，将其风干、磨碎并过筛。
称取适量样品于试管中，加入适量的磷酸盐缓冲液，充分搅拌均匀。
2.实验溶液配制：配制尿素溶液（100mmol/L）和靛酚溶液（0.05mol/L）。
3.对照试验：取一支试管，加入等体积的磷酸盐缓冲液和尿素溶液，充分混合后放置在30℃恒温箱中30分钟。
然后加入靛酚溶液并充分混合，放置10分钟。
最后加入适量碳酸钠溶液，使溶液呈碱性，终止反应。
以靛酚蓝为标准品，在625nm波长下测定吸光度。
4.样品试验：取适量样品于试管中，加入等体积的磷酸盐缓冲液和尿素溶液，充分混合后放置在30℃恒温箱中30分钟。
然后按照对照试验的步骤加入靛酚溶液并测定吸光度。
5.数据记录与处理：记录对照试验和样品试验的吸光度值，计算脲酶活性。
四、结果分析1.对照试验与样品试验吸光度值的差异反映了样品中脲酶的活性。
对照试验中，由于没有脲酶的作用，尿素分解较慢，因此靛酚与氨的反应较慢，吸光度值较低。
而在样品试验中，由于样品中存在脲酶，脲酶催化尿素分解加速，导致靛酚与氨的反应加快，吸光度值较高。
2.通过比较对照试验和样品试验的吸光度值，可以计算出样品的脲酶活性。
具体计算方法为：脲酶活性（mg/g·h）= [(样品吸光度-对照吸光度)/(对照吸光度×时间×样品质量)]×100%。
1.脲酶活性测定 尿素残留量法
脲酶活性测定（尿素残留量法）（Tabatabai，1994）1.原理：通过对新鲜土壤与尿素溶液在37︒C培养5h后测尿素残留量，估计脲酶的活性。
2. 仪器：50ml 容量瓶；培养箱或恒温水浴；沸水浴；分光光度计3. 试剂（所用试剂均为分析纯）1.) 尿素溶液：称取2.0 g 尿素，用700 ml 水溶解，定容1000 ml，低温保存备用。
2.) 氯化钾（2.0 mol L－1）－乙酸苯汞溶液：称1500g氯化钾溶于9L水中，再加入1L 乙酸苯汞（PMA）（称取50mg乙酸苯汞溶入1L水中）。
3.)显色剂：在进行显色反应之前，将25ml 二乙酰一肟和10ml 氨基硫脲加入到500ml 混酸溶液中，即配即用。
(a．二乙酰一肟（DAM）：称2.5g二乙酰一肟溶于100ml 水中; b.)氨基硫脲（TSC）溶液：称0.25g 氨基硫脲溶于100ml 水中; c.)混酸溶液：取磷酸（85％）600ml 和浓硫酸20ml，加入到200ml水中，再用水定容至1000ml。
)5.)尿素标准溶液：称干燥过的尿素0.2500g溶于约750ml的氯化钾－乙酸苯汞溶液中，并用该溶液定容至1L。
在冰箱中保存。
配制标准溶液系列：将尿素标准溶液用氯化钾－乙酸苯汞稀释10倍。
分别吸取0，1，2，4，6，8ml 该溶液至50 ml 容量瓶中，并用KCl－PAM 溶液补至10ml。
然后和样品同时加入显色剂30 ml、进行30 min沸水浴及冷却后定容和比色。
4. 步骤称取相当于5g干重的新鲜土样（＜2 mm ）放置于150 ml 具塞三角瓶中, 加入5 ml 尿素溶液(试剂1), 混匀,塞上瓶塞,在37 ︒C条件下培养5 h. 加入50 ml 的氯化钾-乙酸苯汞溶液,盖上瓶塞后在振荡机上振荡1h后过滤.分析仪上测定（或采用手动方法：吸取滤液1-2ml(最多含200μg尿素)放入50 ml 容量瓶中，并加入氯化钾-乙酸苯汞溶液10 ml 和显色剂30 ml。
脲酶、蛋白酶和L-天冬酰胺酶活性测定方法
一、脲酶活性测定方法（苯酚钠-次氯酸钠比色法）1.称取5g过100目筛的风干土样于50ml容量瓶中，加入1ml甲苯使其与土样充分混匀静置15min，使土壤中微生物被完全杀死；2.往瓶中加入10ml 100g/L的尿素溶液和20ml柠檬酸盐缓冲液，仔细混匀后置于37℃恒温下培养24h；3.用加热至38℃的蒸馏水稀释至刻度线（甲苯应浮在刻度线之上），摇匀，过滤；4.每一土样都设置用水代替基质的对照；对整个实验，设置无土壤的对照，以检验试剂的纯度；5.吸取3ml滤液到50ml容量瓶中，用水稀释至15ml，然后加入4ml苯酚钠溶液，并加入3ml次氯酸钠溶液，每次加完试剂都要摇匀；6.静置20min后，使其充分显色，定容显色液，于分光光度计578nm处比色，脲酶活性以24h后1g土壤中铵态氮的mg数表示。
1.取25ml酪氨酸基质溶液于100ml三角瓶中，于30℃水浴保温；2.加入5g鲜土，1ml甲苯，混匀后，30℃恒温箱中培养48h；3.取出三角瓶，加入25ml蛋白质沉淀剂，静置30min，待蛋白质沉淀后用干滤纸过滤；4.取2ml滤液于试管中，加入0.55mol/L Na2CO35ml，33% Folin试剂1ml，立即振荡；5.将试管放入30℃恒温水浴中，显色30min；6.用分光光度计在波长680nm处测定光密度，由标准曲线查出酪氨酸含量。
1.称取5g鲜土（过10目）于50ml刻度试管中，加0.2ml甲苯和9ml Tris缓冲液，混匀后加入1ml 0.05mol/L L-天冬酰胺溶液，混匀，37℃下培养2h后，加入35ml KCl-Ag2SO4混合溶液，混合均匀，静置冷却至室温（约5min），用KCl-Ag2SO4混合溶液定容，混匀；2.吸取20ml L-天冬酰胺溶液前，加入KCl-Ag2SO4混合溶液。
脲酶km值的测定实验报告
脲酶km值的测定实验报告脲酶KM值的测定实验报告引言：脲酶是一种重要的酶类，广泛存在于生物体内，参与尿素代谢等关键生物化学反应。
了解和测定脲酶的KM值对于研究其催化活性和酶动力学特性具有重要意义。
本实验旨在通过测定脲酶对底物浓度的依赖关系，确定其KM值，并探讨其对底物亲和力的影响。
材料与方法：1. 实验仪器：分光光度计、试管、移液器等。
2. 实验试剂：脲酶提取液、尿素底物溶液、缓冲液等。
3. 实验步骤：a. 制备一系列尿素底物溶液，浓度分别为0.1 M、0.05 M、0.025 M、0.0125 M、0.00625 M。
b. 取一定体积的脲酶提取液，加入不同浓度的尿素底物溶液，使得最终反应体系中脲酶浓度一定。
c. 在一定温度下，将反应体系放置一段时间，使反应达到平衡。
d. 用分光光度计测定反应体系中底物的浓度变化，记录吸光度值。
e. 根据吸光度值和标准曲线，计算不同浓度底物的浓度。
f. 绘制脲酶底物浓度与吸光度值的曲线，并根据曲线拟合计算KM值。
结果与讨论：根据实验数据，我们绘制了脲酶底物浓度与吸光度值的曲线，并进行了拟合计算。
通过分析曲线，我们得到了脲酶的KM值为0.025 M。
这意味着在该浓度下，脲酶对底物的亲和力最强，催化效率最高。
脲酶的KM值是衡量酶与底物结合亲和力的重要参数。
KM值越小，表示酶对底物的亲和力越强，催化效率越高。
反之，KM值越大，表示酶对底物的亲和力越弱，催化效率越低。
在本实验中，我们选择了尿素作为脲酶的底物，并通过测定不同浓度底物的反应体系中底物浓度的变化，得到了一系列吸光度值。
通过计算和拟合，我们得到了脲酶的KM值。
脲酶的KM值的测定对于研究酶的催化机制和酶动力学特性具有重要意义。
通过测定不同条件下的KM值，我们可以了解到脲酶对底物的亲和力如何受到温度、pH值等环境因素的影响。
同时，通过比较不同酶的KM值，可以揭示不同酶的催化机制和底物特异性。
然而，本实验还存在一些限制。
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一、脲酶测定(比色法)脲酶是对尿素转化起关键作用的酶，它的酶促反应产物是可供植物利用的氮源，它的活性可以用来表示土壤供氮能力。
1、试剂配制：（1）pH6.7柠檬酸盐溶液：取368g柠檬酸溶于600mL蒸馏水中，另取295g 氢氧化钾溶于水，再将两种溶液合并，用1N氢氧化钠将pH调至6.7，并用水稀释至2L。
（2）苯酚钠溶液：称取62.5g苯酚溶于少量乙醇中，加2mL甲醇和18.5mL 丙酮，后用乙醇稀释至100mL（A液），保存再冰箱中。
称取27g氢氧化钠溶于100mL水中（B液），保存于冰箱中。
使用前，取A、B两液各20mL混和，并用蒸馏水稀释至100mL备用。
（3）次氯酸钠溶液：用水稀释制剂至活性氯的浓度为0.9％，（1.9g次氯酸钠溶于1L水中）溶液稳定。
（4）10％尿素溶液：10g尿素溶于100mL水中。
（5）N的标准溶液：精确称取0.4717g硫酸铵溶于水稀释至1L，则得1mL 含0.1mgN的标液，再将此液稀释10倍制成氮工作液（0.01mg/mL）。
2、操作步骤称取5ｇ土置于50mL容量瓶中,加1mL甲苯处理,加塞塞紧轻摇15ｍｉｎ;往瓶中加入5mL10%尿素液和10mL的柠檬酸盐缓冲液(ｐＨ6.7),仔细混匀。
在37℃恒温箱中培养24ｈ。
然后用热至38℃的蒸馏水稀释至刻度(甲苯应浮在刻度以上),摇荡,将悬液过滤。
取滤液1mL置于50mL容量瓶中,用蒸馏水稀释至10mL,然后加入4mL苯酚钠溶液,并立即加入3mL次氯酸钠溶液，加入每一试剂后,立即将混合物摇匀,20ｍｉｎ后,将混合物稀释至刻度,在波长578ｎｍ处测定吸光值。
脲酶活性以样品所得的吸光值减去对照样品吸光值之差,根据标准曲线求出氨态氮量。
标准曲线绘制：分别取0、1、3、5、7、9、11、13mL氮工作液置于50mL容量瓶中，加蒸馏水至20mL，再加4mL苯酚钠溶液和3mL次氯酸钠溶液，随加随摇匀，20min后显色，定容。
1h内再分光光度计上于578nm处比色。
3、结果计算以24小时后1g土壤中NH3－N的质量（mg）表示脲酶活性（Ure）Ure＝a·V·n/m式中：a为由标准曲线求得的NH3－N浓度（mg/mL）；V为显色液体积（50mL）；n为分取倍数；m为烘干土重（g）。
补充：1) 1h内在（（青定）酚的蓝色在1h内保持稳定）在分光光度计上用1cm液槽，于578nm处将显色液进行比色测定。
2) 无土对照：不加土样，其他操作与样品实验相同。
以检验试剂纯度，整个实验设置一个对照3)无基质对照：以等体积的水代替基质，其他操作与样品实验相同。
每个土样都设此对照。
过氧化氢酶测定(容量法)过氧化氢酶也叫接触酶，能促进过氧化氢对各种化合物的氧化。
几乎在所有的生物体内部有过氧化氢酶，在某些细菌里，其数量约为细胞干重的1％。
土壤的过氧化氢酶活性，与土壤呼吸强度和土壤微生物活动相关，在一定程度上反映了土壤微生物学过程的强度。
原理过氧化氢酶的测定有测压法和滴定法。
测压法是测定过氧化氢分解时析出的氧量(反应过氧化氢酶式为：H2O2+H2O O2+H2O，方法简单，但准确性较差。
后者则是定量滴定酶促反应后剩余的过氧化氢量，反应式为2KMnO4+5H2O2+3H2SO42MnSO4+K2SO4+8H2O+5O2，此法测定结果较好。
试剂(1) 0.3% H2O2：按1：100将30％的H2O2用水稀释。
(2) 3N H2SO4（也就是1.5mol/l H2SO4）：以配1000ml为例，需要的浓硫酸的体积为1.5*98.08/1.83=80.39ml，可以取80ml。
KMnO4的分子量=158.026,当量=31.605.高锰酸钾水溶液受到水中还原物和杂质以及受日光直射等影响能分解析出棕色的含水的二氧化锰沉淀，而有浓度的改变。
因此在配制其标准溶液时必须使用棕色瓶盛装，以防日光直射作用.配制后并应放置一段时间，待与水中还原物完全作用后，滤去沉淀，然后进行标定，才能得到基本稳定不易变化的标准溶液。
(3) 0.1N KMnO4溶液：称取化学纯高锰酸钾3.161克，溶于l升无CO2蒸馏水（沸水）中，溶解后,在暗处放置一周, 然后用虹吸管将上部澄清溶液移于棕色瓶中(或用玻璃棉滤过)保存，以备标定.注：C(1/5 KMnO4)=0.1mol/l表示的就是0.1N KMnO4溶液。
0.1N KMnO4溶液标定（GB/T601-2002）称取0.2g（准至0.0001g）于105~110℃烘至恒重的基准草酸钠。
溶于100mL（8+92）硫酸溶液中，用配制好的高锰酸钾溶液[c（1/5 KMnO4）=0.1mol/l]滴定，近终点时加热至65℃，继续滴定至溶液呈粉红色保持30s，同时作空白试验（不加草酸钠，其他一样）。
高锰酸钾溶液标准浓度按下式计算c（1/5KMnO4）=m*1000/[（V1-V2）*M ]式中c（1/5KMnO4）—高锰酸钾标准液之物质的量浓度，mol/L；m——草酸钠之质量，g；V1——滴定草酸钠消耗的高锰酸钾溶液之用量，mL；V2——空白试验用高锰酸钾溶液之用量，mL；M——草酸钠的摩尔质量的数值,单位为（g/mol），[ M(1/2Na2C2O4)=66.999 ]或者c（1/5KMnO4）=m/（V1-V2）*0.067000.06700——与1.00mL高锰酸钾溶液c（1/5KMnO4）=0.1mol/l相当的以克表示的草酸钠的质量。
操作步骤：（1）取2.0 g土，置于100mL（或150ml）三角瓶中，并注入40mL蒸馏水和5mL 0.3％H2O2溶液。
（B）（2）同时设置对照，即三角瓶中注入40mL蒸馏水和5mL 0.3％过氧化氢溶液，而不加土样。
（A）（3）将三角瓶放在往返式振荡机上120r/min振荡20min后，加入5mL3N硫酸，以稳定未分解的过氧化氢。
再将瓶中悬液用慢速滤纸过滤。
吸取25mL滤液，用0.1N KMnO4滴定至淡粉红色终点。
结果计算用于滴定土壤滤液所消耗的高锰酸钾量（毫升数）为B，用于滴定25mL原始的过氧化氢混合液所消耗的高锰酸钾量（毫升数）为A。
以20min后1g土壤消耗的0.1N KMnO4溶液的毫升数表示（以20min后1g土壤中的过氧化氢的毫克数表示？）。
土壤过氧化氢酶活性=（A-B）×T/dwt式中，T——为高锰酸钾滴定度的校正值。
dwt——烘干土质量（g）滴定度：分析化学专属名词单位：g/ml、mg/ml表示符号：Ts：每毫升标准溶液中所含滴定剂（溶质）的克数。
例如：T HCl＝0.001012g/ml的HCl溶液，表示每毫升此溶液含有0.001012g纯HCl。
Ts/x：指每毫升标准溶液相当于的待测组分的质量。
S：代表滴定剂（标准溶液）的化学式。
X：代表被测物的化学式。
例如：T HCl/Na2CO3＝0.005316g/ml HCl溶液，表示每毫升此HCl 溶液相当于0.005316g Na2CO3。
例：用T（EDTA/CaO）=0.5mg/ml的EDTA标准溶液滴定含钙离子的待测溶液，消耗了5ml,则待测溶液中共有CaO 2.5mg。
计算方法：T=n*M/V 或T=C*M土壤蔗糖酶活性测定（3,5- 二硝基水杨酸比色法）一、原理蔗糖酶与土壤许多因子有相关性，如与土壤有机质、氮、磷含量，微生物数量及土壤呼吸强度有关，一般情况下，土壤肥力越高，蔗糖酶活性越高。
蔗糖酶酶解所生成的还原糖与 3,5- 二硝基水杨酸反应而生成橙色的3-氨基-5-硝基水杨酸。
颜色深度与还原糖量相关，因而可用测定还原糖量来表示蔗糖酶的活性。
二、试剂1）酶促反应试剂：基质8%蔗糖，pH5.5磷酸缓冲液：1/15M磷酸氢二钠（11.876gNa2HPO4·2H2O溶于1L蒸馏水中）0.5ml加1/15M磷酸二氢钾（9.078g KH2PO4溶于1L蒸馏水中）9.5ml即成，甲苯2）葡萄糖标准液（1mg/mL）预先将分析纯葡萄糖置80℃烘箱内约12小时。
准确称取50mg葡萄糖于烧杯中，用蒸馏水溶解后，移至50mL容量瓶中，定容，摇匀（冰箱中4℃保存期约一星期）。
若该溶液发生混浊和出现絮状物现象，则应弃之，重新配制。
3） 3,5- 二硝基水杨酸试剂（DNS试剂）称0.5g二硝基水杨酸，溶于20ml 2mol/LNaOH和50ml水中，再加30g酒石酸钾钠，用水稀释定容至100ml（保存期不过7天）。
三、操作步骤（1）标准曲线绘制分别吸1 mg/mL的标准葡糖糖溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1mL于试管中，再补加蒸馏水至1mL，加DNS试剂1mL混匀，于沸水浴中准确反应5min（从试管放入重新沸腾时算起），取出立即泠水浴中冷却至室温，以空白管调零在波长508nm处比色，以OD值为纵坐标，以葡萄糖浓度为横坐标绘制标准曲线。
（2）土壤蔗糖酶测定称取1 g土壤，置于50mL三角瓶中，注入3 ml 8%蔗糖溶液，1 ml pH 5.5磷酸缓冲液和200μL甲苯。
摇匀混合物后，放入恒温箱，在37℃下培养24h。
到时取出，迅速过滤。
从中吸取滤液1ml，注入50ml容量瓶中，加1ml DNS试剂，并在沸腾的水浴锅中加热5min，随即将容量瓶移至自来水流下冷却3min。
溶液因生成3-氨基-5-硝基水杨酸而呈橙黄色，最后用蒸馏水稀释至7 ml，并在分光光度计上于508nm处进行比色。
为了消除土壤中原有的蔗糖、葡萄糖而引起的误差，每一土样需做无基质对照，整个试验需做无土壤对照；如果样品吸光值超过标曲的最大值，则应该增加分取倍数或减少培养的土样。
四、结果计算：蔗糖酶活性以24h，1g干土生成葡萄糖毫克数表示。
蔗糖酶活性=（a样品－a无土－a无基质）×n／ma样品、a无土、a无机质分别表示其由标准曲线求的葡萄糖毫克数；n为分取倍数；土壤多酚氧化酶活力的测定试剂配制（1）1%邻苯三酚溶液（2）乙醚（3）0.5N盐酸（4）重铬酸钾标准溶液——0.75g重铬酸钾溶于1升0.5N HCl(相当于50mI 醚中含5mg紫色没食子素)(5) pH4．5柠檬酸——磷酸缓冲液。
1. 标准曲线的绘制：取重铬酸钾标准溶液，用0.5N HCI稀释成各种不同浓度。
定容后，在分光光度计上于430nm处比色测定。
以光密度位为纵坐标，以浓度为横坐标绘制标准曲线。
2. 投作步骤取1g土样(过0.25mm筛)，置于50ml三角瓶中，然后注入10ml 1％邻苯三酚溶液，将瓶内含物摇荡后放在30度恒温掐小培养2h。
取出后加4mlpH 4．5柠檬酸——磷酸缓冲液，再加35ml乙醚，用力摇荡数次，萃取30min。
最后，将含溶解的紫色没食子素的着色乙醚相进行比色。
比色时用波长为430nm的滤光片。