蛋白质电泳
蛋白质电泳与操作
3. 分离；
1
4. 染色和脱色。
2
3
应用：用于分析蛋白质的分子量，常用于蛋白质 纯度鉴定和相对定量。
案例二：2-DE分析
• 2-DE简介：2-DE即双向凝胶电泳，是一种分离复杂 蛋白质混合物的方法。通过第一向等电聚焦和第二 向SDS-PAGE分离蛋白质，可展示蛋白质的等电点和 分子量。
案例二：2-DE分析
采用自动化技术，减少人为误差，提高电泳操作的重复性和可靠性。
04 蛋白质电泳实验注意事项
安全注意事项
1 2
避免使用未经灭菌的器具
在实验过程中，应确保所有使用的器具均经过严 格的灭菌处理，以防止微生物污染。
避免直接接触缓冲液
某些缓冲液可能含有刺激性或腐蚀性成分，应避 免直接接触皮肤或眼睛。
3
正确处理废弃物
03 蛋白质电泳技术优化
优化电泳条件
01
02
03
缓冲液选择
根据蛋白质的性质选择合 适的缓冲液，以提高电泳 分离效果。
电压与电流控制
优化电泳过程中的电压和 电流，以获得更好的分辨 率和分离效果。
电泳温度
选择适当的电泳温度，以 减少热量对蛋白质的干扰， 提高分辨率。
改进样品制备方法
样品溶解与变性
采用适当的溶解和变性方法，使蛋白质充分溶解并保持其天然构 象。
琼脂糖凝胶电泳
根据蛋白质分子的电荷和分子 量进行分离，常用于基因工程 和分子生物学研究。
等电聚焦电泳
根据蛋白质分子的等电点进行 分离，常用于蛋白质组学和生
物医学研究。
蛋白质电泳的应用
蛋白质组学研究
用于鉴定、分离和比较不同组织和细胞类型的蛋 白质，有助于深入了解生命活动的分子机制。
电泳分离蛋白质的原理
电泳分离蛋白质的原理
电泳分离蛋白质是一种常用的生物化学实验技术，它基于蛋白质在电场中的迁
移速度不同而实现蛋白质的分离。
这项技术在生物学研究、医学诊断和药物研发等领域都有着广泛的应用。
电泳分离蛋白质的原理是基于蛋白质的电荷和大小之间的差异。
当蛋白质置于
电场中时，由于蛋白质分子带有正电荷或负电荷，它们会受到电场力的作用而向电极迁移。
根据蛋白质分子的大小和电荷量，不同的蛋白质将以不同的速度向电极迁移，从而实现蛋白质的分离。
在电泳分离蛋白质的实验中，通常会使用凝胶作为分离介质。
凝胶可以限制蛋
白质的迁移速度，使得蛋白质可以在凝胶中逐渐分离。
而且，凝胶的孔隙大小可以影响蛋白质的迁移速度，从而实现对蛋白质的精确分离。
除了凝胶电泳外，还有一种叫做毛细管电泳的技术也可以用于蛋白质的分离。
毛细管电泳是利用毛细管内的电场来实现蛋白质的分离，它具有分离速度快、样品消耗少的优点。
电泳分离蛋白质的原理不仅可以用于研究蛋白质的结构和功能，还可以用于检
测蛋白质的含量和纯度。
此外，电泳分离蛋白质还可以用于寻找新的蛋白质标记物，从而为疾病的诊断和治疗提供重要的信息。
总之，电泳分离蛋白质的原理是基于蛋白质的电荷和大小之间的差异，利用电
场力和分离介质来实现蛋白质的分离。
这项技术在生物学研究和临床诊断中具有重要的应用价值，为科学研究和医学进步做出了重要贡献。
蛋白质电泳的基本原理与应用
蛋白质电泳的基本原理与应用蛋白质电泳是一种常见的实验技术，用于研究蛋白质的性质和功能。
本文将介绍蛋白质电泳的基本原理和应用。
一、蛋白质电泳的基本原理蛋白质电泳的基本原理是利用电场将蛋白质分子从一个带电的区域移动到另一个带电的区域。
在蛋白质电泳实验中，通常采用的是聚丙烯酰胺凝胶电泳技术（SDS-PAGE）。
该技术能够将蛋白质分子按照其分子量大小分离出来。
而分离的准确性和灵敏度取决于凝胶浓度、电场强度、加样量等因素。
在SDS-PAGE实验中，首先需要将待分离的蛋白质样品加入到聚丙烯酰胺凝胶中。
然后，通过施加电场，蛋白质分子会向电极反方向移动。
正常情况下，蛋白质分子的移动速度与它们的电荷量、分子量和电场强度相关。
但由于不同的蛋白质分子在电场中受到不同程度的电浸染，因此SDS-PAGE采用的是一种标准化的处理方法，即使用十二烷基硫酸钠（SDS）进行电浸染。
SDS会使蛋白质的构象发生变化，呈现出负电荷。
这样，所有的蛋白质分子都被电荷相近的一个方向拉动，使它们的移动速度只与它们的分子量大小有关。
因此，SDS-PAGE实验可以通过不同大小的蛋白质分子在凝胶中的迁移情况来确定它们的分子量大小。
二、蛋白质电泳的应用蛋白质电泳是一种广泛应用于生物学研究中的实验技术。
以下是它的一些常见应用。
1. 蛋白质分离通过SDS-PAGE技术，科学家们可以将复杂的蛋白质混合物分离成单独的蛋白质组分，以便深入研究它们的特性和功能。
例如，人类血浆中含有数百种不同的蛋白质，SDS-PAGE可以将不同种类的蛋白质分离开，以便进行进一步的研究。
此外，SDS-PAGE还可以用于检测含有特定蛋白质的样品，并对其进行定量和纯化。
2. 蛋白质纯化蛋白质电泳在蛋白质纯化中也起到了关键作用。
通过利用凝胶上不同蛋白质之间的迁移特性，可以轻松分离出一种感兴趣的蛋白质。
例如，当混合物中含有两种分子量相近的蛋白质时，可以通过改变SDS-PAGE实验中的凝胶浓度、电场强度等条件来调整它们之间的迁移速度，实现它们的分离纯化。
蛋白质电泳
DNA电泳和蛋白质电泳有什么区别和联系还有问题，就是既然驱动力是负电荷，那为什么移动的距离和分子量有关，而不是和所带的电荷大小有关呢？还有为什么蛋白质电泳时垂直的，DNA电泳是水平的呢？DNA电泳一般使用的都是琼脂糖凝胶电泳，电泳的驱动力靠DNA骨架本身的负电荷。
蛋白质电泳（一般指SDS-PAGE）一般使用的都是聚丙烯酰胺凝胶电泳，电泳的驱动力靠与蛋白质结合的SDS上所携带的负电荷。
所以相同点就是样品都是带负电荷的，从负极向正极移动，移动的距离都和样品的分子量有关。
而且这两个电泳体系可以互相交换使用。
进行大分子蛋白质电泳时，可以考虑换用琼脂糖凝胶，因为该体系孔径大。
相反，如果需要精确到各位数碱基的DNA电泳也可以使用聚丙烯酰胺凝胶系统，因为使用该系统可以将相差一个碱基的两条DNA链分开。
不同点首先是样品不同。
这个就不用多说了。
其次是结果的观察方法不同。
DNA电泳普遍使用EB做染料，在紫外灯下观察；而蛋白电泳使用的考马斯亮蓝染色，还需要经过脱色步骤，不过观察起来比较简单。
还有就是胶体系的差别，DNA电泳通常是一胶跑到底，而蛋白质电泳则会有分离胶和浓缩胶之区别。
先说这么多，有不明白的你再问好了～回答补充：电泳中样品移动的本质确实是样品所携带的电荷。
但是，区分这些条带直接可以用分子量而无需使用电荷数，是因为这些样品的电荷/分子量比都是恒定的了。
以DNA分子为例，它在电泳中的移动是靠其骨架中磷酸所携带的负电荷来实现的，而这个磷酸分子又是每一个核苷酸中都有的，所以DNA分子所携带的负电荷数是由其核苷酸总数决定的。
而且，DNA分子中核苷酸的组成动辄成百上千，在如此大的分子量面前，讨论单个核苷酸之间分子量的差别就显得毫无意义。
这样，DNA分子中负电荷的量就可以用DNA 的分子量来代替，反过来，DNA的分子量也就可以用DNA分子所携带的电荷来代替（一句话，DNA分子的电荷/分子量比是恒定的）。
这在蛋白电泳中（特别是SDS-PAGE中）是一样的。
蛋白质电泳
聚丙烯酰胺凝胶
它是由丙烯酰胺(Acr)和交联剂甲叉双丙烯酰胺 (Bis)在催化剂N,N,N’,N’-四甲基乙二胺 (TEMED)和过硫酸铵(AP)作用下聚合交联成的 三维网状结构的凝胶，有分子筛作用。
当进入分离胶时，凝胶的pH值（8.8）明显增加， 甘氨酸大量解离，其有效迁移率超过蛋白质，直 接在氯离子后移动，不再形成高电压梯度。同时 由于凝胶孔径变小，使蛋白质分子的迁移率减小。 于是蛋白质分子在均一的电压梯度和pH值中泳动， 并根据其固有的带电性和分子大小进行分离。
结束语
我们还在路上，余晖消失之前都不算终点。
SDS-PAGE
蛋白质与SDS分子按比例结合，形成带负电荷 的SDS-蛋白质复合物。由于十二烷基硫酸根 带负电荷，使SDS-蛋白质复合物都带上负电 荷，而且大大超过蛋白质原有的电荷量，所以 掩盖了蛋白质原有的电荷量的差别，因此，蛋 白质电泳的迁移率取决于蛋白质分子量的大小。 此外，SDS使蛋白质构象改变为长椭圆棒，长 度与分子量大小正相关，所以也可以用这种方 法测蛋白质的分子量。
Gly- P- ClGly PCl-
Gly -
PCl-
Gly PCl-
GlyPCl-
pH为8.3的电泳缓冲液 （Tris-Gly）
pH为6.8的浓缩胶 (Tris-HCl 大孔胶)
pH为8.8的分离胶 (T
MCl->
M
P
>
MGly-
三种物理效应
电荷效应:不同蛋白质所带的电荷种类和数目 不同，在电场中的移动速度也不同，蛋白质带 的负电荷越多，从负极向正极移动的速度越快， 从而把不同的蛋白质分开。
蛋白质电泳
百泰派克生物科技
蛋白质电泳
电泳（electrophoresis，EP）是指带电物质在电场中朝着与其自身电荷相反的电
极迁移的现象，蛋白质、DNA等带电物质都可以进行电泳。
带电物质在电场中的移
动速度与其自身的带电荷量、分子量以及形状等因素密切相关，因此，不同的蛋白质或DNA样品通过电泳可以进行分离、鉴定。
根据电泳有无支持介质和支持介质种类，可以将电泳技术分为琼脂糖凝胶电泳（AGE）、十二烷基硫酸钠聚丙烯酰氨凝胶电泳（SDS-PAGE）、醋酸纤维素薄膜电泳、自由流电泳、等电聚焦电泳（IEF）、亲和电泳、免疫电泳、对流电泳和毛细管电泳等。
其中，IEF与SDS-PAGE可以结合使用，称为二维凝胶电泳或双向电泳（2-DE）。
百泰派克生物科技提供基于SDS-PAGE和双向电泳等的蛋白质电泳分析服务，用于
样品蛋白的分离、分子量测定和纯度鉴定等，欢迎免费咨询。
电泳法分离混合蛋白质的基本原理
电泳法是一种常用的蛋白质分离技术，通过电场作用下蛋白质的迁移速度差异来实现分离。
下面将从基本原理、仪器装置、实验步骤和应用领域等方面介绍电泳法分离混合蛋白质。
一、基本原理电泳法是利用蛋白质在电场中的迁移速度差异来进行分离的技术，其基本原理是蛋白质在电场中受到电荷的影响，带有正电荷的蛋白质在电场中向阴极方向迁移，带有负电荷的蛋白质则向阳极方向迁移。
由于不同蛋白质的分子结构和电荷性质不同，因此其迁移速度不同，进而实现了蛋白质的分离。
在电泳法中，通常会在蛋白质样品中加入一定量的离子从而赋予蛋白质电荷，常用的离子有SDS（十二烷基硫酸钠）和荧光素磺酰氯等。
SDS具有较强的负电荷，在电场中施加电压时，可以使蛋白质呈现负电荷状态，从而呈现出一定的迁移速度。
二、仪器装置进行电泳分离实验需要用到电泳槽、电源、凝胶板和蛋白质样品等仪器和试剂。
电泳槽通常由两个平行的电极板组成，之间用于装载凝胶板。
凝胶板通常有两种，一种是聚丙烯酰胺凝胶，另一种是琼脂糖凝胶。
蛋白质样品经过凝胶板的分离后，需要用染色剂着色才能观察到分离的结果。
凝胶板上的蛋白质迁移痕迹会依据电泳的时间和电压来进行分析。
在进行电泳分离实验时，需要将蛋白质样品加载到凝胶板上，然后施加一定的电压，使蛋白质发生迁移。
根据不同蛋白质的分子大小和电荷性质，它们将会在凝胶板上形成不同的迁移痕迹。
三、实验步骤进行电泳法分离混合蛋白质的实验通常包括以下几个步骤：1. 凝胶制备：根据实验需要选择合适的凝胶材料，制备电泳用的凝胶板。
2. 样品制备：将待分离的蛋白质样品进行处理，通常是在样品中加入一定量的电泳缓冲液和染色剂。
3. 加载样品：将处理后的蛋白质样品加载到凝胶板上。
4. 施加电压：将装载有蛋白质样品的凝胶板放入电泳槽中，然后施加一定的电压，使蛋白质发生迁移。
5. 染色观察：电泳结束后，取出凝胶板并进行染色，观察分离的结果。
四、应用领域电泳法广泛应用于生物学、医学和生物化学等领域，用于分离和分析蛋白质样品中的各种蛋白质成分。
蛋白质电泳方法
蛋白质电泳方法一、背景介绍蛋白质是生物体内最基本的分子，具有多种功能。
蛋白质电泳是一种用于分离和检测蛋白质的方法，广泛应用于生物化学、生物医学和分子生物学等领域。
二、实验准备1. 样品制备：将待测样品加入适量的样品缓冲液中，使得样品中蛋白质浓度适宜。
2. 电泳缓冲液制备：根据实验需要配制合适的电泳缓冲液。
3. 凝胶制备：选择合适的凝胶类型，如聚丙烯酰胺凝胶或聚丙烯酰胺-SDS凝胶，并按照厂家说明书进行制备。
4. 样品加荧光染料：将待测样品加入荧光染料中，使得样品能够在紫外线下显示出明显的荧光信号。
三、电泳条件设置1. 凝胶预处理：将准备好的凝胶放入电泳槽中，注入足够量的电泳缓冲液，使得凝胶完全浸没在缓冲液中，静置20-30分钟。
2. 样品加载：将样品加入凝胶孔中，注意不要过度加载。
3. 电泳条件设置：根据凝胶类型和样品特性，设置合适的电泳条件，如电压、电流、时间等。
四、电泳操作步骤1. 加载样品：将准备好的样品加入凝胶孔中。
2. 开始电泳：将电泳槽连接至电源，开启电源，开始进行电泳。
3. 停止电泳：根据设定的时间或者运行距离停止电泳。
4. 凝胶染色：将凝胶浸入染色液中，使得蛋白质能够被染色剂染色。
5. 洗涤与成像：将凝胶洗涤干净后，在紫外线下成像或使用荧光成像仪进行成像。
五、结果分析1. 凝胶图谱分析：观察凝胶图谱上出现的蛋白质带型和大小，并与标记蛋白质对照进行比较分析。
2. 蛋白质含量计算：根据标记蛋白质对照和样品带型大小进行计算，得出样品中蛋白质的含量。
3. 蛋白质鉴定：根据凝胶图谱上出现的蛋白质带型和大小，结合其他实验结果进行蛋白质鉴定。
六、注意事项1. 样品制备时应注意避免蛋白质的降解和污染。
2. 电泳缓冲液的配制应严格按照说明书进行，避免出现电泳条件不稳定等问题。
3. 凝胶制备时应注意凝胶浓度、孔径大小等参数的选择，以及凝胶的完全固化和无气泡等问题。
4. 染色剂的选择应根据实验需要进行选择，并严格按照说明书操作。
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琼脂糖凝胶电泳分离血清脂蛋白
实验概要
本实验介绍了血清蛋白琼脂糖凝胶电泳的原理及操作步骤等。
实验原理
琼脂糖主要通过氢键而形成凝胶。
电泳时因凝胶含水量大（98－99%），近似自由电泳，因为固体支持物的影响少，故电泳速度快，区带整齐。
而且由于琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很少，是一种较好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质与血清载脂蛋白结合成水溶性的脂蛋白（lipoprotein）形式存在。
各种脂蛋白中所含载脂蛋白的种类及数量不同，各种脂蛋白颗粒大小也相差很大，因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电场中可使各种脂蛋白颗粒分离开来。
琼脂糖凝胶电泳分离血清蛋白方法简单。
将血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑（或油红等）进行预染。
再将预染过的血清加样于琼脂糖凝胶板加样槽中，通电后可以看到脂蛋白向正极移动，并分离出几个区带。
正常人血清脂蛋白可出现三条区带，从阴极到阳极依次为β－脂蛋白（最深），前β－脂蛋白（最浅）及α－脂蛋白（比前β－脂蛋白略深些），在原点处应无乳糜微粒。
有时前β－脂蛋白也显示不出来。
主要试剂
1. 苏丹黑染色液
将苏丹黑B加到无水乙醇中至饱和，摇荡使乙酰化。
用前过滤。
苏丹黑B0.5克甲醇50ml.冰乙酸10ml ,蒸馏水40ml
2. 巴比妥缓冲液
称取巴比妥钠15.4g、巴比妥2.76g及EDTA0.29g，加水溶解后再加蒸馏水至1000mL（pH为8.6，离子强度0.075），为电极缓冲液。
3. 凝胶缓冲液
取三羟甲基氨基甲烷1.212g、EDTA0.29g及NaCl5.85g，用蒸馏水溶解后，稀释至1000mL，pH为8.6。
4. 琼脂糖凝胶
称取琼脂糖0.45 g溶于50 mL凝胶缓冲液中，再加水50 mL。
在水浴中加热至沸，待琼脂糖完全溶解后，立即停止加热。
1. 37℃水浴锅
2. 高速离心机
3. 吸管
4. 载玻片
5. 低温冰箱
6. 毛细管
7. 电泳设备
8. 80℃烘箱
实验材料
血清
实验步骤
1. 预染血清
血清0.2mL中加苏丹黑染色液0.2mL，混合置37℃水浴中染色30分钟，离心（2000转/分）约5分钟。
以除去悬浮于血清中染料沉渣。
2. 制备琼脂糖凝胶板
将已配制好的0.5%琼脂糖凝胶于沸水浴中加热融化，用吸管吸取凝胶溶液浇注在载玻片上，约3 mL。
静置半小时后凝固（天热时需延长，也可放入冰箱中数分钟以加速凝固）。
3. 点样
将剪好的滤纸条对折，以折边在距凝胶一端2cm处切一点样口。
将毛细管插入预染好的血清中，待吸入部分血清后，取毛细管使其有样品的一端靠于点样口端部，停靠3秒左右。
4. 电泳
将凝胶板平放入电泳槽中，使加样端接在阴极一侧，用四层滤纸或纱布做成“引桥”，敷于胶板的两端，各搭住凝胶板约1cm左右，“引桥”的另一端浸于电泳槽内的巴比妥缓冲液中。
接通电源，首先调节电流为
3-4mA/凝胶板，电泳10－15分钟；然后调节电流为6-7mA/凝胶板，电泳30－40分钟，即可观察到分离的区带。
5. 如果需要保留电泳图谱，可将电泳后的凝胶板（连同载玻片）放入清水中浸泡脱盐2小时，然后放烘箱（80℃左右）中烘干即可。
1.电泳样品应为新鲜的空腹血清。
2. 加热溶化琼脂时，须防止水份蒸发过多。
琼脂糖凝胶最好随用随制，以免凝胶表面干燥，影响分离
效果。
3. 制作凝胶板时琼脂糖浓度一般选用0.5%左右为宜，高于1%以上α－脂蛋白部分较紧密，β和前
β－脂蛋白部分不够清晰；低于4.5%则凝固性较差，图谱不清。
4. 点样口要大小适宜，边缘整齐、光滑，否则会影响电泳图谱。
5. 在α－脂蛋白前若出现较浅区带，可列为前α－脂蛋白。
6. 正常参考范围
α－脂蛋白20~30%
β－脂蛋白20~30%
前β－脂蛋白0~28%
乳糜微粒（-）
琼脂糖电泳分离血清脂蛋白
一、实验目的
1.进一步掌握电泳的基本原理及凝胶电泳的原理。
2.熟悉琼脂糖凝胶电泳的特点和操作要点。
3.掌握正常人血浆脂蛋白的分类。
二、实验原理
琼脂糖凝胶电泳的原理：琼脂糖凝胶是由D-半乳糖和3，6脱水L-半乳糖的残基通过氢键交替排列组成的直链多糖。
电泳时，因为凝胶中含水量大（98%～99%），固体支持物的影响较少，故电泳速度快、区带整齐。
而且由于琼脂糖不含带电荷的基团，电渗影响很小，是一种良好的电泳材料，分离效果较好。
血清中脂类物质均与载脂蛋白结合成水溶性脂蛋白形式存在。
各种脂蛋白所含载脂蛋白的种类及数量不同，因而不同脂蛋白颗粒大小相差很大。
因此，以琼脂糖凝胶为支持物，在电场中可使各种脂蛋白颗粒分开。
将血清脂蛋白用脂类染料苏丹黑（或油红等）进行预染。
再将预染过的血清置于琼脂糖凝胶板上进行分离。
通电后，可以看到脂蛋白被分成三条区带，从负极到正极依次为β脂蛋白（最深）、前β脂蛋白（最浅）及α脂蛋白（比前β脂蛋白略深），在原点处应无乳糜微粒。
此法应用于高脂蛋白血症的分型，可将血清脂蛋白分为几种不同的类型，为不同类型的高脂蛋白血症、冠心病、高血压以及心肌梗死的临床诊断提供生化指标。
三、器材和试剂
1.器材电泳仪、电泳槽、离心机、水浴锅、染色盘、移液枪、滤纸、镊子及剪刀、2cm´8cm玻璃片
2.试剂
(1)巴比妥缓冲液(pH8.6):称取巴比妥钠15.4g、巴比妥2.76g及EDTA 0.29g，加水溶解后，再加蒸馏水定溶至1 000ml（pH为8.6，离子强度0.075），作为电极缓冲液。
(2)苏丹黑染色液:将苏丹黑0.5g溶于无水乙醇5ml中至饱和。
(3)凝胶缓冲液:称取三羟甲基甲烷(Tris)1.212g,EDTA 0.29g及NaCl 5.85g,用蒸馏水溶解后，稀释至1 000ml，调pH至8.6。
(4)琼脂糖凝胶:称取琼脂糖0.50g溶于50ml凝胶缓冲液中，再加水50ml，在水浴中加热至沸，待琼脂糖完全溶解后，立即停止加热。
（5）固定液无水乙醇110ml、蒸馏水80ml、甘油2ml混合。
（6）洗脱液75%乙醇
(7)新鲜血清(无溶血现象)。
四、实验步骤
1．预染血清
血清0.2ml加苏丹黑染色液0.02ml于试管中，混和后置37℃水浴染色30min，然后离心(2 000r／min)约5min。
2．制备琼脂糖凝胶板
已配制的0.5％琼脂糖凝胶于沸水浴(或微波炉)中加热融化，用10ml吸管吸取约3ml凝胶溶液浇注在载玻片上，静置约半小时后凝固(天热时需延长，可放冰箱数分钟加速凝固)。
3. 点加预染血清
在已凝固的琼脂糖凝胶板距一端的2cm处，用自制打孔器(在小玻璃片的两面固定两片小胶片)垂直打入凝胶后立即取出，然后用胶片剥出长方小条凝胶。
用小片滤纸吸干小槽中的水分，注意不要损坏槽边缘的凝胶。
最后，再用微量注射器吸取经过预染的血清约20ml注入凝胶板上的小槽内。
4.电泳
将加过血清的凝胶板平行放于电泳槽中，样品放于负极一端。
用两层滤纸或纱布于巴比妥缓冲液浸湿，然后轻轻紧密贴在凝胶板两端,纱布的另一端浸于电泳槽
内的巴比妥缓冲液中,接通电源，电压为100～120V，每片电流为3～4mA，电泳时间40～60min。
5.电泳后的琼脂板放入固定液中20min,然后放入80度干燥箱80min至烘干为止。
6．观察区带
五、注意事项
1.预染血清与温度有关，低温着色慢，高温着色快，37℃较为适宜。
2.浇注琼脂糖凝胶板要尽量使厚薄均一，否则会影响脂蛋白的分离效果。
3.将凝胶板放入电泳槽中，应切记与电力线平行、样品端置负极、搭桥滤纸不能搭在样品上。
六、思考题
1.琼脂糖凝胶电泳有哪些操作要点？
2.为什么正常人血清脂蛋白电泳时见不到乳糜微粒区带？
3.琼脂糖凝胶电泳有哪些注意事项？
七、临床意义
1、正常人血清脂蛋白可出现三条区带,从负极到正极依次为β-脂蛋白(最深)、前β-脂蛋白(最浅)、α-脂蛋白(比前β-脂蛋白略深些),在原点处应无乳糜微粒.
2、如果前β-脂蛋白比α-脂蛋白深,结合血清甘油三酯明显升高和胆固醇正常或略高,可以定为Ⅳ型高脂蛋白血症.
3、如果β-脂蛋白区带比正常血清明显深染者,同时结合血清总胆固醇明显增高、甘油三酯正常者为Ⅱa型;若结合血清总胆固醇增高而甘油三酯略高的前β略溶者为Ⅱb型.
4、结果β-和前β-两区带分离不开连在一起称“宽β区带”,结合血清甘油三酯和胆固醇均有所增高,可定为Ⅲ型.
5、如果原点出现乳糜微粒,β,前β均正常或减低,结合血清甘油三酯明显升高,可定为Ⅰ型.。