RealtimePCR原理及其定量方法

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RealtimePCR原理及应用

RealtimePCR原理及应用
特征:可以使用96孔板,样品量大,
也可以使用8连管
PCR扩增原理
Real-time PCR探针工作原理
谢 谢!
RealtimePCR原理及应用
提纲
实时荧光定量PCR原理
实时荧光定量PCR的定量方法
平台定量PCR仪器介绍
实时荧光定量PCR的定义
定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信
号累积实现了实时监测整个PCR进程,对起始模板进
行定量分析的方法
与普通PCR的区别
普通PCR技术:

探针完整,R所发射的荧光能量被Q基团吸收,无荧
光,R与Q分开,则发出荧光

Taq酶有5’→3’外切核酸酶活性,可水解探针

TaqMan探针法工作原理
TaqMan探针法工作原理



每产生一条DNA链,就切断一条探针
每切断一条探针,就产生一个单位信号
信号强度与结合探针的DNA分子数成正比
TaqMan探针法的优缺点
优点:1、对目标序列的高特异性
2、引物设计相对简单
3、重复性比较好
缺点:1、只适合一个特定的目标
2、价格昂贵
如何对未知拷贝数的模板进行定量
平台PCR仪介绍
Rotor-Gene 6000
特征:36孔(0.2mlPCR管)或者72
孔(特殊0.1mlPCR管),离心式
检测
平台PCR仪介绍
Applied Biosystems 7500
线性图谱Βιβλιοθήκη 一些主要概念什么是基线?
基线就是扩增曲线中的水平部分
线性图谱
对数图谱
一些主要概念
荧光阈值:是在荧光扩增曲线上人为设定的一个值,

Real-Time_PCR技术

Real-Time_PCR技术

TaqMan法优缺点
优 点
对目标序列的高特异性 ---阴性结果确定 设计相对简单 ---与目标序列某一区域 互补 重复性比较好
缺 点
只适合一个特定的目标 委托公司标记,价格较高 不易找到本底低的探针
2:SYBR Green I 法(荧光染料法)
在PCR反应体系中,加入过量SYBR Green荧光染料,SYBR Green荧光染料特异性地掺入DNA双链后,发射荧光信号, 而不掺入链中的SYBR染料分子不会发射任何荧光信号, 从而保证荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。
Real-TimePCR技术
许培祥
2013-10-24
主要内容
• Real-timePCR概述 • Real-timePCR的方法 • Real-time PCR定量方法
Real-timePCR概述
1.Real-time PCR
实时荧光定量PCR (Real-time quantitative
PCR )是在PCR反应体系中加入荧光基团,
Ct值的定义:PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信
号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数.
C(t) value
Ct值与模板起始浓度的关系
• 模板起始浓度越高,Ct值越小
• 如果模板浓度增加1倍,Ct值就提前1个循环到达
• 如果模板浓度减少1倍,Ct值就滞后1个循环到达
Ct值的特点
Ct值的特点: 同一个样品重复96次PCR的扩增曲线,终点处产物量不恒定; Ct值则极具重现性
RT-PCR定量的方法 • 标准曲线法的绝对定量 • 相对定量: 比较Ct法---最常用 双标准曲线法 比较定量法
1:标准曲线的绝对定量
通过已知起始拷贝数的标准品可作出 标准曲线, 根据样品Ct值,就可以计算出样品中 所含的模板量

实时荧光定量PCR技术详解和总结

实时荧光定量PCR技术详解和总结

实时荧光定量PCR技术详解和总结
一、什么是实时荧光定量PCR
实时荧光定量PCR(Real-Time Quantitative Polymerase Chain Reaction,简称RT-qPCR)是一种PCR扩增技术,具有灵敏度高、重复性好等特点,可以在实时监测PCR扩增过程中特定片段DNA的产生。

它可以用来检测细胞中其中一特定基因mRNA的表达水平,从而揭示基因活动和表达情况,同时用于特定基因检测,如非病毒性疾病的病原检测以及芯片高通量分析等。

二、实时荧光定量PCR的基本原理
实时荧光定量PCR其基本原理就是利用PCR技术,在特定温度、适当时间内,将少量的模板 DNA 放大成数十亿倍以上。

实时荧光定量PCR的一大特点就是,它能够在实时监测PCR的扩增过程中,随时得知扩增物(amplicon)的数量。

根据扩增的量,从而确定所检测样本中的特定片段DNA的数量,即“定量”。

实时荧光定量PCR可实现定量检测,是因为它引入了一种特殊的参考基因,即“内参基因”,其用来抵消PCR条件、酶种类、反应液等的影响,从而测定量结果的准确性。

三、实时荧光定量PCR的实验步骤
(一)模板提取和核酸纯化:根据实验材料,提取DNA或RNA模板,进行核酸纯化,获得纯度较高的核酸。

(二)制备PCR反应液:制备由dNTPs、PCR酶、聚合酶等试剂组成的PCR反应液,根据所要检测的基因。

Real-timePCR实验原理与技术

Real-timePCR实验原理与技术

实时荧光定量PCR技术原理
01
在实时荧光定量PCR反应中, DNA模板被扩增时,与荧光探 针结合,产生荧光信号。
02
随着DNA的扩增,荧光信号逐 渐增强,通过对荧光信号的实 时监测和分析,可以计算出 DNA的起始浓度。
03
通过标准曲线或内参基因的校 准,可以将起始浓度转化为目 标基因的表达量或基因拷贝数 。
实时监测荧光信号
实时监测荧光信号,确保PCR产物在指数扩增阶段被检测到。
标准化实验流程
建立标准化实验流程,确保实验结果的可靠性和可重复性。
未来展望
新技术应用
01
随着新技术的不断发展,如数字PCR、微流控PCR等,Real-
time PCR技术将得到进一步优化。
高通量检测
02
通过多重PCR和高通量检测平台,实现大规模样本的快速检测。
03
Real-time PCR 实验数 据分析
数据收集与整理
数据收集
在实时PCR实验中,数据收集通常涉 及记录每个循环的荧光信号强度。这 些数据通常以图表形式表示,其中横 轴表示循环数,纵轴表示荧光信号强 度。
数据整理
收集到的原始数据需要经过整理,包 括去噪、去除异常值和标准化等步骤, 以确保数据分析的准确性。
自动化与智能化
03
实现Real-time PCR的自动化和智能化,提高实验效率,减少人
为误差。
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real-timepcr实验原 理与技术
contents
目录
• Real-time PCR 实验原理 • Real-time PCR 实验技术 • Real-time PCR 实验数据分析 • Real-time PCR 实验应用 • Real-time PCR 实验注意事项与优化建

实验技术:RealtimePCR

实验技术:RealtimePCR

实验技术:RealtimePCR作为在实验室奋斗的“奋青”们,都知道Realtime PCR(RT-PCR)是并列于western blot的基础实验之一。

不会做PCR的人都不好意思说自己在搞科研,呵呵哒。

作为一门核心技术,也是相对来说出结果快速的技术,本次小笔将一改逗比风格,高冷正经脸来分享该技能,各位接好了啊。

RT-PCR原理的话简单来说,就是采用荧光基团标记的特异性探针来跟踪PCR产物,做到全程监控,后期结合电脑软件分析定量得出待测样品的初始量。

步骤如下:1. RNA提取和测定(1)平衡:-80℃取出TRIZOL裂解的细胞(也可以当时裂解;如果是组织,需要超声破碎后再进行后续步骤),置于室温使其完全溶解(3-5min左右);(2)分离:随后按照裂解液:氯仿(5:1)的比例加入氯仿,剧烈震摇30 S(自认为手劲儿大的就手动摇,扛不住的话也可以涡旋仪,当然我是一直手动的哈哈)后,室温静置3min,4℃,13,000rpm离心10 min,取上清置于干净的RNAfree的EP管中。

【小提示:取上清的时候很容易将中间层的絮状物吸出,导致蛋白质污染,可以采用PhaseLock Gel的离心管,有效分层水相和有机相,避免吸取的上清混杂杂质。

】(3)沉淀:在上清中加入等体积的异丙醇,轻微上下翻动混合,冰上孵育20min后,4℃,14,000rpm离心20 min,管底部有可见沉淀,即为RNA(如果裂解的细胞较少,沉淀可能肉眼看不见)。

(4)清洗干燥:轻柔的倒掉上清,每管加入1 ml 75%乙醇溶液(采用DEPC水配置),混匀,4℃,14,000 rpm离心15 min。

小心倒掉上清,于超净台边缘干燥5min。

(5)溶解测定:根据具体的RNA的量,加入适当的DEPC水溶解(沉淀可见,加入的DEPC水多一些,反之少加),静置后即可于nanodrop检测浓度(一般我们暂定A260/A280比值在1.8-2.0即可使用)。

Realtime PCR检测原理和问题处理(技术材料)

Realtime PCR检测原理和问题处理(技术材料)

技术研究
2
★实时荧光定量PCR检测技术
(Real-time PCR) 定量PCR的数学原理
定量PCR的化学原理
定量PCR的光学原理
技术研究
3
什么是PCR?
技术研究
4
PCR的反应过程
技术研究
5
RT-PCR原理图
技术研究
6
荧光定量PCR的数学原理
1、Baseline (基线) 2、Threshold (阈值)
推荐措施:提高引物设计质量,避免形成引物二聚体 补救措施:优化引物浓度和退火温度,专设高温度的收集信号步骤
技术研究
53
实例7:重复性不佳
正常的原始数据
技术研究
54
实例7:重复性不佳
不正常的原始数据
原因:盖子未盖紧,溶液蒸发。
技术研究
55
疾病监测中常用的反应Mix
ABI公司 AgPath-IDOne Step RT-PCR Kit(货号 AM1005)
8
阈值
阈值= 基线(背景)信号的标准偏差的10倍,即 PCR扩增信 号进入相对稳定对数增长的最下限,通常设定在S型扩增曲 线的增长拐点处附近。
技术研究
9Ct值Biblioteka 扩增反应中,当荧光信号增长到大于阈值时所对应的循 环数,即PCR增长信号与 Threshold发生交汇的循环数,也是 FQ-PCR判断阴阳性和进行定量分析的依据。
16
定量PCR的数学原理 定量PCR的化学原理 定量PCR的光学原理
技术研究
17
常用的荧光标记方法
1、DNA双链特异性染料 SYBR Green 、SYTO 9、LC Green、Evagreen
2、序列特异性探针

Realtime PCR实验原理与技术 ppt课件

Realtime PCR实验原理与技术 ppt课件
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术实验操作(优化)
标准品的选择: 理论上可以以目的基因的PCR扩增产物为标准品, 但是存在降解、污染等因素影响定量结果。
论坛网友给出了几种解决方法: ① 另设计一对引物用于荧光PCR; ② 将扩增序列插入T载体后作为标准品; ③ 设计一对外围引物扩增PCR,将产物连入T载体(①+②)
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术荧光标记方法的 分类
1. 非特异性的DNA结合染料法:荧光染料能非特异结合DNA
双链结构的小沟中,而游离的荧光染料不发出荧光。
常用染料:Pico Green (灵敏度高,>=25pg/mL) SYBR I
缺点:易受到非特异性扩增和引物二聚体的影响。 措施:设计特异性引物,优化PCR反应条件。
定量分析?
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术原理
a) Ct值(Cycle Threshold;每个反应管中荧光强度达到阈 值所需的循环数)与样本初始拷贝数存在正比线性关 系。
b) 以不同稀释倍数的已知模板制备标准曲线。 c) 实时监测未知样本的Ct值,对应标准曲线得到未知
样本的初始拷贝数。(定量分析)
Realtime PCR实验原理与技术
qRT-PCR技术实验操作(优 化)
有研究建议在每一个循环中 PCR 延伸后增加一步,即 将温度提高后再检测反应体系中的荧光。该检测温度 大于引物二聚体的退火温度 Tm,而小于特异性扩增 产物的 Tm值。在此温度下,引物二聚体都变性成单 链,因此只检测到与特异性 PCR 产物结合的 SYBR Green I 所发出的荧光,消除了引物二聚体的干扰,降 低了非特异性荧光,有助于目标基因的准确定量。

Realtime_PCR的原理和应用

Realtime_PCR的原理和应用

4
Real time PCR的原理
在扩增产物达到阈值线时: XCt=X0(1+Ex)Ct=M (1) XCt:荧光扩增信号达到阈值强度时扩增产物的量. 在阈值线设定以后,它是一个常数,我们设为M 方程式(1)两边同时取对数得: log M=log X0(1+Ex)Ct(2) 整理方程式(2)得: log X0= -log(1+Ex) *Ct+ log M (3) 最后结论: Log X0与Ct呈线性关系,根据样品扩增的Ct值就可计算出样品中所含的 模板量
影响效率的因素为:引物、镁离子以及探针的浓度
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Real time PCR数据处理方法
绝对定量的标准样品:
已知拷贝数的质粒DNA,做系列稀释。
标准样品的种类: •含有和待测样品相同扩增片段的克隆质粒 •含有和待测样品相同扩增片段的cDNA •PCR的产物 •含有已知数目的与待测样品相同的扩增片段的细胞
8
Real Time PCR的方法
分子信标的优点 对目标序列有很高的特异性 用于SNP检测的最灵敏的试剂之一 荧光背景低
分子信标的缺点 设计困难 无终点分析功能 只能用于一个特定的目标 价格较高
9
Real time PCR数据处理方法
绝对定量检测起始模板数的精确拷贝数, ������ 标准曲线法
SYBR-Green 的优点 使用方便 ---不必设计复杂的引物 没有序列特异性 ---可以用于不同的模板 便宜 灵敏 SYBR-Green 的缺点
特异性差,会与非特异性产物结合
7
Real Time PCR的方法
Taqman 的优点 对目标序列有很高的特异性 ---特别适合于SNP检测 与Molecular Beacons 相比设计相 对简单 Taqman 的缺点 价格较高 只适合于一个特定的目标 不能进行融解曲线分析
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定量PCR技术: 通过对PCR扩增反应中每一 个循环产物荧光信号的实 时检测从而实现对起始模 板定量及定性的分析
2、荧光定量PCR常用的三个概念
扩增曲线、阈值、CT值
plateau phase Liner phase
Exponential phase
Normalised reporter Fluorescence (Rn)
另一种思路
由于PCR反应体系中荧光物质的荧光强度与PCR产物的量成 正比,所以可以用荧光强度来代替PCR产物的量,同时考虑 荧光本底值,则:
Rn= RB+ X0(1+ Ex) Rs
总荧光信号强度=本底信号+分子数量×单位信号强度
Rn:第n个循环时的总信号 RB:本底 RS:单位信号强度 X0:起始DNA数目 Ex:PCR扩增效率
线性关系、扩增效率确认
相关系数(R2):大于0.98 标准曲线斜率: -3 到 -3.5 PCR扩增效率(Ex): 0.9到1.2
扩增效率
106 105 104 103 102 10
荧光强度---循环数曲线
初始模板量对数---C(T)循环数标准曲线
扩增效率理论值为1,即每增加一个循环PCR产物加倍。
实时荧光定量PCR原理和定量方法 一、荧光定量PCR的原理
在PCR反应体系中加入荧 光基团,利用荧光信号累积 实现了实时监测整个PCR进程, 对起始模板进行定量分析的 方法。
三个关键词: 实时,定量,荧光
1、定量与常规PCR的差别
常规PCR技术: 对 PCR 扩 增 反 应 的 终产物进行定量及 定性分析
非理想的PCR反应:
Xn=X0 ×(1+Ex)n
n:扩增循环数 X0:起始模板数量 Xn:第n次循环后扩增产物数量 Ex:PCR扩增效率
在扩增产物达到荧光阈值时所经历的循环数为Ct个循环,此 时:
XCt= X0×(1+Ex)Ct= M
XCt :荧光扩增信号达到阈值时扩增产物的量,在阈值设 定以后,它是一个常数,设为M
那么,根据扩增效率Ex与标准曲线斜率的关系,优化的标准
曲线斜率应该为-3.32。
4、荧光定量PCR的化学原理
处于基态的分子经某种波长的入射光照射,吸收电磁辐射后被激 发至激发态,然后通过发光的形式释放出能量,重新跃迁回基态。 所发射的光即为荧光。
荧光定量PCR反应体系
非特异性荧光标记 ➢ DNA结合染料 (SYBR Green) 特异性荧光标记 ➢ 探针 (Taqman、Beacon、FRET、Amplifluor) ➢引物 (Scorption primer、LUX primer)
上式两边同取对数得:
LogM=Log X0 ×(1+Ex)Ct
整理得:
LogX0 = -Ct Log(1+Ex)+ Log M
模板DNA量越多,荧光达 到阈值的循环数越少,即Ct 值越小。
Log模板起始浓度与Ct值 呈线性关系。
Sample
Ck 104
Ck 102
Cycle number
Lg of DNA concentration
Baseline Ct Value
Threshold line
Cycle
(1)扩增曲线(Amplification)
反映PCR循环次数和荧光强度变化的曲线。随着PCR反应的
进行,每经过一个循环,收集一次荧光信号,通过荧光强
度的变化监测扩增产物量的变化,从而得到扩增曲线图。
纵坐标:Rn(荧光值) 横坐标:cycle number(循环数)
类似的,当循环数n等于Ct值时,可推出:
Ct lg (1+Ex) = -lg X0 + lg (RT-RB) – lg Rs 变形得:
此时,PCR反应处于指数期阶段,所有样品的反应效率 Ex稳定且近似相等;lg(RT -RB)、Rs也都相同,只有Ct值 和-lgX0为变量,且这两个变量之间成线性关系。也就是说, 根据样品扩增达到域值的循环数即Ct值就可计算出样品中 所含的模板量。
(1)SYBR Green法
SYBR Green 染料可以与dsDNA小沟区结合并发出绿色荧光。游离 状态下SYBR Green仅发出微弱荧光,与dsDNA结合后荧光强度激增, 其荧光信号强度与dsDNA数量成正比。
热变性 引物退火 延伸反应
融解曲线(melt curve)
在PCR反应程序结束后,逐步提高温度,读取荧光值,得 到温度与荧光值的关系曲线。
Cycle(循环数)
(3)Ct值(Cycle threshold)
PCR过程中,每个反应管内扩增产物的荧光信号达到 设定的阈值时,所经过的扩增循环数。相同模板进行多次 扩增,终点处产物量不恒定,但Ct值极具重现性。
3、荧光定量PCR的数学原理
理想的PCR反应:
Xn=X0×2n
n:扩增循环数 X0:起始模板数量 Xn:第n次循环后扩增产物数量
平台期
前15个循环信号作为荧光 本底信号(baseline)
Rn(荧Байду номын сангаас强度)
荧光阈值的缺省设置是 3~15个循环的荧光信号的标 准偏差的10倍
Lg-liner phase
Threshold
手动设置:大于荧光背 景值和阴性对照的荧光最高 值;进入指数期的最初阶段
真正的信号:荧光信号超 过阈值
Baseline
融解温度(melting temperature, Tm值)
双 链DNA解 链 50%的 温度 。 一般而言 ,退火 ( annealing
temperature)温度等于Tm值减5℃。
荧光强 度
T m
温 度
融解曲线原始图
融解曲线的设置是在PCR反应完成后进行的。一般从60℃升 到90℃,得到的融解曲线随着温度的升高,双链DNA的解链, 荧光信号不断降低,且在Tm值下降速度最快。用荧光信号强 度改变的负的一次导数与温度做图,即得到单峰的融解曲线。 峰值代表斜率改变最大值,即为Tm值。
-d-IdI ddT T
TTmm
融解曲线单峰图
线性图
对数图
荧光信号变化与PCR循环数的变化 直观!
荧光信号变化的对数与PCR循环数的变化 确定阈值线!
(2)阈值(Threshold)
在荧光扩增曲线上人为设定的一个值。它可以设定在荧
光信号指数期任意位置上,一般荧光域值设置是基线荧光信 号(一般是PCR 3~15个循环荧光信号)的标准偏差的10倍。
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