脂质体制备方法
脂质体的制备方法
脂质体的制备方法脂质体是一种在生物医学领域中具有广泛应用前景的载体，它可以用于药物传递、基因治疗等方面。
脂质体的制备方法有多种，下面将介绍其中常用的几种方法。
首先，膜溶解法是一种常见的脂质体制备方法。
在这种方法中，磷脂溶解在有机溶剂中，然后将水相缓慢注入有机相中，通过超声或搅拌等手段使两相混合，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体粒径分布较窄，适用于一些需要较为均匀粒径的应用。
其次，薄膜水合法也是一种常用的脂质体制备方法。
在这种方法中，磷脂溶解在有机溶剂中，然后将溶液旋转蒸发，形成薄膜，最后通过加入适量的缓冲液使薄膜迅速水合膨胀，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体结构较为稳定，适用于一些需要长期保存的应用。
另外，脂质体凝胶法也是一种常见的制备方法。
在这种方法中，磷脂和胆固醇混合后，加入溶剂并加热，形成透明的溶液，然后冷却形成凝胶，最后通过加入缓冲液使凝胶水合膨胀，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体具有较高的稳定性和载药量，适用于一些需要长期保存和高载药量的应用。
最后，脂质体膜内溶解法也是一种常用的制备方法。
在这种方法中，磷脂和胆固醇混合后，在有机溶剂中形成薄膜，然后将药物溶解在内水相中，最后将内水相缓慢注入有机相中，通过超声或搅拌等手段使两相混合，形成脂质体。
这种方法制备的脂质体可以实现药物的高效载荷，适用于一些需要高效载药的应用。
综上所述，脂质体的制备方法有多种，每种方法都有其适用的场景和特点。
在选择制备方法时，需要根据具体的应用要求和实验条件进行综合考虑，以选择最适合的制备方法。
希望本文介绍的内容能对脂质体的制备方法有所帮助。
脂质体的制备方法
脂质体的制备方法
脂质体是一种由磷脂类物质构成的微小球形结构，可以用来包封各种水溶性和不溶性的药物。
以下是制备脂质体的一般方法，不包含标题及重复文字。
1. 选择适当的脂质组分：按照需要包封的药物性质（如极性、脂溶性）选择相应的磷脂类物质，常用的有磷脂酰胆碱（PC）、磷脂酰甘油（PG）、磷脂酰丝氨酸（PS）等。
2. 选择合适的方法：制备脂质体的常用方法有薄膜法、乳化法、脂肪酸分散法等。
根据药物特性和制备要求选择合适的方法。
3. 薄膜法制备脂质体：将L-α-磷脂酰胆碱和药物以适当比例
溶解于有机溶剂中（如氯仿），用旋转蒸发器除去溶剂，形成薄膜。
加入适量水溶液，通过超声波处理或机械震荡破碎薄膜，生成脂质体悬浮液。
4. 乳化法制备脂质体：将磷脂、药物和辅助乳化剂（如表面活性剂）溶解于有机溶剂中。
将该溶液滴加到含有乳化剂的水相中，并用机械手段（如超声波）进行乳化处理，形成脂质体。
5. 脂肪酸分散法制备脂质体：将药物与脂肪酸（如硬脂酸）按一定比例共熔，然后迅速冷却。
通过乳化剂或超声波等方法将该混合物乳化成脂质体。
6. 脂质体的后处理：根据需要可以对脂质体进行一些后处理步骤，如冻干、冻融法提高脂质体稳定性等。
综上所述，脂质体的制备方法可以根据实际需求选择薄膜法、乳化法或脂肪酸分散法。
制备时要选择适当的脂质组分，并根据需要进行后处理以提高脂质体的稳定性。
脂质体的制备方法
脂质体的制备方法
脂质体是一种由两层磷脂分子构成的微小囊泡，内部可以包裹
水溶性或脂溶性的药物。
由于其良好的生物相容性和药物传递性能，脂质体在药物输送领域得到了广泛的应用。
下面我们将介绍脂质体
的制备方法。
首先，脂质体的制备需要选择合适的磷脂。
常用的磷脂有卵磷脂、大豆磷脂、磷脂酰胆碱等。
在实验室条件下，我们可以根据需
要选择不同种类的磷脂来制备脂质体。
其次，将所选的磷脂溶解在有机溶剂中，得到磷脂溶液。
常用
的有机溶剂有氯仿、甲醇、乙醇等。
在此过程中需要注意控制温度
和溶剂的选择，以确保磷脂能够完全溶解。
接下来，将药物溶解在水相中。
需要注意的是，药物的选择应
当考虑其溶解度和药效学特性。
将药物溶液缓慢滴加到磷脂溶液中，并利用超声波或机械搅拌等方法使两相充分混合。
然后，利用旋转蒸发、薄膜超滤、凝胶层析等方法去除有机溶剂，得到脂质体悬浮液。
在此步骤中需要注意控制温度和压力，以
避免对脂质体结构的破坏。
最后，通过超声处理、高压均质等方法对脂质体悬浮液进行处理，得到均匀、稳定的脂质体悬浮液。
在此过程中需要注意控制处
理时间和能量密度，以确保脂质体的质量和稳定性。
综上所述，脂质体的制备方法包括选择合适的磷脂、溶解磷脂、药物的溶解和混合、去除有机溶剂以及最后的处理步骤。
在实际操
作中，需要严格控制各个步骤的条件，以确保脂质体的质量和稳定性。
希望以上内容能够对您有所帮助。
脂质体的制备及其应用
脂质体的制备及其应用近年来，脂质体在制药领域里展现出了广阔的应用前景。
从初期的制备到现在的技术逐渐成熟，脂质体已经成为制药工业中最热门的制剂载体之一。
本文将介绍脂质体的制备及其应用。
一、脂质体的制备1. 胆固醇和磷脂共混法该制备法是最早的脂质体制备方法之一，实现较为简单。
只需将胆固醇和磷脂以特定比例共混，并使用水或其他溶剂进行溶解，即可制备出脂质体。
2. 薄膜法该制备法是制备脂质体的另一种常见方法。
将磷脂及其他组份按一定比例混合，并在热水浴中加热搅拌，并持续将其挤压，形成薄膜，薄膜会自行聚集形成脂质体。
3. 超声波法该制备法利用超声波的力量将水相和油相分散均匀，从而形成脂质体。
简单易行且可重复性良好，所以是制备脂质体最常用的方法之一。
二、脂质体的应用1. 药物传递脂质体是一种非常好的药物传递载体，由于其构成和细胞膜相似，因此可有效载药物，并快速进入人体细胞。
脂质体还可以用于治疗肿瘤和炎症。
2. 增强药物传递的稳定性很多药物容易被分解，但是通过使用脂质体，这些药物可以被稳定传递，并防止药物在消化过程中被分解。
对于某些对稳定性要求极高的药物，如RNA、DNA和酶，脂质体的应用显得尤为重要。
3. 疫苗传递最近几年，脂质体在疫苗传递方面展现出自己的优势。
将疫苗包裹在脂质体中，可呈现出更好的抗原肽处理，并取得良好的抗体反应。
这让脂质体成为了一种非常良好的疫苗传递载体。
4. 脂质体在饮食保健品中的应用还有一些饮食保健品在其制备过程中也可以使用脂质体。
例如，脂质体可用于保护鱼油或其他有益成分的品质和稳定性，并让它们更方便地传递到人体内。
总的来说，脂质体已成为制药工业中不可或缺的一部分，并在医药、食品及化妆品等领域发挥着重要作用。
脂质体的制备方法也在不断更新，未来必将有更多的应用领域，为人类健康和生活发挥更大的作用。
脂质体的制备
脂质体的制备脂质体是一种常见的生物细胞的一种重要的结构元素，它拥有独特的外型和内部结构，含有丰富的脂质和蛋白质，能够构成细胞的支架并且能赋予细胞丰富的功能。
脂质体也可以被用于制备有药效负载物质（如药物、基因治疗药物等）的药物载体，有助于药物更好地穿越血脑屏障，从而更有效地治疗神经系统疾病。
因此，脂质体制备技术受到了科学家们的关注。
1、脂质体制备技术主要有三种：溶胀法、过失法和双膜法，其中溶胀法是最常见的。
溶胀法的原理是利用热溶剂应力和化学应力使表面活性剂脂质形成脂质体。
过失法是利用热溶剂或难溶的脂质的溶解度的变化使其形成脂质体，这种方法的优点是能够大量制备单组分微粒，但缺点是生成的脂质体不稳定，多组分混合也不利于微粒的形成。
双膜法是由水溶性溶剂和水不溶的溶剂混合之后，表面活性剂脂质分相聚合形成微胶囊，该方法制备的脂质体在稳定性上有很大的提高，有利于多组分混合。
2、脂质体制备需要一系列操作步骤，包括溶剂准备放入热循环搅拌器中，调整温度和搅拌速度，根据不同的技术，使脂质体形成并分离。
其中，调节温度和搅拌速度是关键步骤，必须在合理温度范围内，以保证溶液和混合能够有效完成，同时保证搅拌速度和时间，让脂质体形成并分离。
3、在实际操作中，应考虑实验室条件、材料特性和安全性，根据实验需要确定溶剂的比例，并保证材料的完整性及包覆物的质量。
另外，脂质体的安放也需要非常严格的管理，及时进行筛选试验，以保证其品质及有效投入使用。
脂质体的制备是一种微观尺度上的操作，通过合理的物理处理，可以使脂质体具有一定的结构稳定性，可以承载药物和其它物质，发挥药物平台作用，比较安全有效地用于药物载体制备，为药物的有效穿越血脑屏障而打开新的立体思路。
脂质体制备工艺流程
脂质体制备工艺流程脂质体是一种由磷脂和胆固醇等成分组成的小型纳米载体，具有良好的生物相容性和生物可降解性。
脂质体在药物递送和基因治疗方面具有广泛的应用前景。
下面将重点介绍脂质体的制备工艺流程。
一、磷脂选择脂质体的制备以磷脂为主要原料，常用的磷脂有卵磷脂、磷脂酰胆碱、磷脂酰丝氨酸等。
选择适合的磷脂是制备高质量脂质体的重要因素。
二、制备方法1. 薄膜分散法将磷脂溶解在有机溶剂中制备成薄膜，再加入药物或基因，利用机械或超声分散制备脂质体。
该法制备的脂质体颗粒分布比较均匀，适合制备小型脂质体。
2. 溶剂挥发法将磷脂溶解在有机溶剂中，加入药物或基因，通过挥发有机溶剂制备脂质体。
该法可以制备大量的脂质体，但颗粒大小分布不如薄膜分散法。
3. 冻干法将磷脂溶解在水相中，加入药物或基因，通过冻干、再溶解、超声或机械处理制备脂质体。
该法制备的脂质体稳定性较好，适合制备高含药量的脂质体。
三、性质调节为了满足不同的应用需求，可以通过改变脂质体的表面性质、大小、药物包载量和脂质组分来调节脂质体的性质。
常用的方法有加入表面活性剂、多肽等改变脂质体表面性质，改变磷脂组分、添加胆固醇等调节脂质体结构和稳定性。
四、质量检测在脂质体制备过程中，应注意生产环境的净化和卫生，保证脂质体的质量安全。
脂质体质量的检测方法包括颗粒大小、分布、多分散性、药物包载量、稳定性等方面的指标测定。
综上所述，脂质体的制备工艺包括磷脂选择、制备方法、性质调节和质量检测。
通过合理选择磷脂和制备方法以及进行性质调节和质量检测，可以得到性质稳定、药物包载量高的高质量脂质体，为药物递送和基因治疗等领域提供了广阔的应用前景。
脂质体制备
脂质体的制备方法
一、试剂、器材
主要试剂:
SPAN80
聚乙烯醇1750士50
天然大豆磷脂LIPoid s100
胆固醇
无水乙醚氯仿
TWEEN80
主要仪器:
AB204一N电子天平
MICROCOMPUTERPH/MV/TEMPMODEL
6171型pH计
R一201旋转蒸发仪
JY-92一H超声波细胞粉碎机(探头式超声仪)
KQ一100E型超声波清洗仪
二、制备方法
薄膜分散法一冻融法
按大豆卵磷脂(100.0mg):胆固醇:SPAN80:TWEEN80(质量比)=4:1:0.24:0.48的比例制备脂质体,加入100.00mL梨形瓶中,加10.00mL无水乙醚,振摇,于旋转蒸发仪上30℃蒸干成膜,然后加入适量TWEEN80、2.00mL干细胞提取物,3.00mLPBS缓冲液,旋转15min,使膜溶解,超声20min使溶液透明,最后补充pH=6.5的PBS至10.00mL,将此溶液于-20℃冷冻12h以上后取出,使其缓慢融化,再超声5min即得干细胞提取物脂质体混悬液。
其流程如图。
脂质体制备方法
2 脂质体的制备方法2.1 薄膜蒸发法该方法是将脂质及芯材(脂溶性药物)溶于有机溶剂，然后将此溶液置于大圆底烧瓶中，再旋转减压蒸干，磷脂在烧瓶内壁上会形成一层很薄的膜，然后加入一定量的缓冲溶液(生理盐水)，充分振荡烧瓶使脂质膜水化脱落，即可制得脂质体。
尽管薄膜分散法是使用最广泛的方法，由于这种方法比较原始，所以尚存在较多缺点。
用该方法制备得到的脂质体的粒径较大且不均匀，为了使其粒径更小、更均匀，可通过超声波仪处理，在一定程度上降低脂质体的粒径，从而提高包封率。
如采用此法制备得到的细辛脑脂质体的包封率达54. 1%[5]。
2.2超声波法MLVs的混悬液经超声波处理，再通过Sepharose 2B或4B柱色谱仪可去除较大的脂质体和MLVs。
常用的方法有探针型和水浴型。
小量脂质悬液(高浓度脂质或黏性水溶液)需要高能量时用探针型。
水浴型更适于大量的稀释脂质。
郑宁等[6]采用薄膜-超声分散法制备依托泊苷脂质体，按均匀设计的最优组合制备脂质体的平均包封率为(61.58±0.83)% ，粒径均小于2μm，体外释药达到了长效缓释的作用，60Co灭菌后脂质体较稳定。
李维凤等[7]以薄膜-超声法和乙醚注入法制备硝苯地平脂质体，结果表明薄膜蒸发法和超声法综合使用，所得脂质体粒径均匀，粒度小，且多为单室。
2.3复乳法(二次乳化法)这种方法是先将脂质溶于有机溶剂，加入待包封芯材的溶液，乳化得到W/O初乳，其次将初乳加入到10倍体积的水溶液中混合，进一步乳化得到W/O/W乳液，然后在一定温度下去除有机溶剂即可得到脂质体，其包封率变化较大，一般为20%-80%。
通过研究发现，在第二步乳化过程和有机溶剂的去除过程中，对脂质体的粒径有较大影响的因素是温度，较低的温度有利于减小脂质体的粒径。
姚瑶等[8]采用二次乳化法制备的酪丝亮肽多囊脂质体，不仅稳定性好，80%的粒径分布在20-30μm，且包封率为92. 43%。
2.4反相蒸发法（逆相蒸发法）反相蒸发法最初由Szoka和Papahadjopoulos于1978年提出，这种方法适用于脂质成分中磷脂占有较大的比例，且芯材中水溶性成分较多的情况。
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微脂體(又称脂质体)及其制备方法一二微脂體(又称脂质体)微脂體起源於1960 年代中期，Bangham博士等人首先提出，在磷酸脂薄膜上加入含鹽分的水溶液後，再加以搖晃，會使脂質形成具有通透性的小球；196 8年，Sessa 和Weissmann 等人正式將此小球狀的物體命名為微脂體（liposo me）並做出明確的定義: 指出微脂體是由一到數層脂質雙層膜(lipid bilayer)所組成的微小的囊泡，有自行密合（self-closing）的特性。
微脂體由脂雙層膜包裹水溶液形成，由於構造的特性，可同時作為厭水性（hydrophobic）及親水性（hydrophilic）藥品的載體，厭水性藥品可以嵌入脂雙層中，而親水性藥品則可包覆在微脂體內的水溶液層中。
如同細胞膜，微脂體的脂質膜為脂雙層構造，由同時具有親水性端及厭水性端的脂質所構成，脂雙層由厭水性端相對向內而親水性端面向水溶液構成，組成中的兩性物質以磷酸脂質最為常見。
微脂體的形成是兩性物質在水溶液中，依照熱力學原理，趨向最穩定的排列方式而自動形成。
微脂體的性質深受組成脂質影響，脂質在水溶液的電性，決定微脂體是中性或帶有負電荷、正電荷。
此外，磷酸脂碳鏈部分的長短，不飽和鍵數目，會決定微脂體的臨界溫度(transition temperature, Tc)，影響膜的緊密度。
一般來說，碳鏈長度越長臨界溫度越高，雙鍵數越多則臨界溫度越低，常見的DPPC(dipalmitoylp hosphatidylcholine)与DSPC(distearoylphosphatidylcholine)的臨界溫度分別是42℃與56℃，而Egg PC(egg phosphatidylcholine)與POPC(palmitoyl oleoyl phosphatidylcholine)的Tc 則低於0℃。
臨界溫度影響微脂體包裹及結合藥物的緊密度，當外界溫度高於Tc時，對膜有通透性的藥物，較容易通過膜；此外，當外界溫度處於臨界溫度時，微脂體脂質雙層膜中的脂質，會因為流動性不一致而使微脂體表面產生裂縫，造成內部藥物的釋出。
在磷脂質內加入膽固醇，會對微脂體性質產生下列影響：增加微脂體在血液中的安定性，較不易發生破裂；減少水溶性分子對微脂體脂膜的通透性；增加微脂體的安定性，使其在血液循環中存在的時間較長。
微脂體可依脂雙層的層數或是粒子大小，加以命名或分類：(1) Multilamellar vesicle（MLV）是具有多層脂雙層之微脂體，粒子大小介於100-1000 nm，特色是粒子內具多層脂質膜，一般而言，乾燥後的脂質薄膜，直接水合後，即形成MLV，體積通常較為龐大，脂質含量較高。
MLV 的脂雙層數，一般在五層以上；小於五層的MLV 又稱為oligo-lamellar liposomes 或paucilamellar vesicle。
(2) Large Unilamellar Vesicle ( LUV) 則是單層脂雙層所構成的微脂體，一般指1000 nm 等級(250-2500 nm 或更大)的微脂體，動物細胞便是一種LU V。
(3) Intermediate-sized Unilamellar Vesicle (IUV) 也是單層脂雙層所構成的微脂體，一般指100 nm 等級(25-250 nm)的微脂體。
不過，目前一般文獻已經很少使用IUV，而是將它併入SUV 中。
(4) Small Unilamellar Vesicle (SUV）是單層脂雙層所構成的小微脂體，早期的分類指特定磷酸脂所能夠成的最小微脂體(一般以超音波震盪製成)。
如egg PC 以生理食鹽水(normal saline) 水合的SUV 是15 nm；DPPC 則是25 nm。
製備微脂體最傳統的方法是薄膜搖振法。
如今已經發展出非常多種製備微脂體的方法，包括：1.) 薄膜搖振法（Thin film method; Hand-shaking method）：又稱做Ban gham’s method，將脂質以有機溶劑如氯仿（chloroform）、甲醇（methanol）及乙醇（ethanol）等溶解，均勻混合後，利用旋轉真空乾燥機(rotary evapor ator) 使圓底瓶內的溶劑揮發之後，即可在瓶壁上形成均勻的脂質膜，在臨界溫度以上的溫度條件下，將欲包覆物質的水溶液和脂質膜混合，用手左右搖動，將瓶壁上的脂質膜振下來，脂質在水溶液中即會自動形成MLV。
2.) 冷凍-再解凍(freez-thaw)、均質(homogenization)及超音波震盪法（soni cation method）：利用微脂體破裂後會再自行密合的特性，以機械性的力量均質或超音波震盪的方式，或者多次冷凍、再解凍的方式，造成微脂體的破裂及重組再密合，最後可形成大小較均勻的單層微脂體。
3.) 反相蒸發法（Reverse phase evaporation method）：以有機溶劑溶解高濃度的脂質，快速混入對於脂質量而言體積極少的藥品水溶液，將兩者混合均勻後再以旋轉真空乾燥機使有機溶劑揮發，形成包覆率較高的微脂體。
這種方法適合用來包覆較為稀少或是較珍貴的藥品及蛋白質。
4.) 有機溶劑注射法(solvent injection)和清潔劑透析法(detergent dialysi s)：利用有機溶劑和清潔劑溶解脂質，與準備包覆的水溶液混合形成微脂體後，以透析法除去有機溶劑和清潔劑。
5.) 濾膜擠出法（Extrusion ）：可將上述方法製成的微脂體，改變成所需粒徑大小的單層微脂體。
MLV或LUV置於擠壓器(extruder)中，加熱到臨界溫度以上的溫度，以氮氣或氬氣加壓，即能將粒徑較大的微脂體擠成接近濾膜孔徑大小的微脂體。
重複擠壓數次後，即可製造出所需粒徑大小且粒徑分佈範圍相當窄的微脂體。
利用這種方法製成的微脂體可將粒徑大小控制到一百奈米以下。
微脂粒在體內之舉止，依其本身的型態、粒徑、脂質組成、表面電荷及服用者的生理狀況、投藥部位等而有很大差異。
微脂粒於靜脈注射後，在血液中至少與兩類血漿蛋白發生作用，1）所謂調理素（opsonins)可附著於微脂粒表面，促使其被RES之吞食細胞噬食。
2）高密度脂蛋白（HDL）襲擊微脂粒，藉phosph atidylcholine transferase活性蛋白之助，抽掉微脂粒上之磷脂分子，使微脂粒破洞或崩潰，內容物漏出。
此二作用皆導致微脂粒在體內之半減期縮短。
目前已研究出幾種改善之道以延長微脂粒在血液循環中之半減期，此種微脂粒稱為長命微脂粒（stealth liposomes）。
微脂粒的表面可設法接上抗體或受質，在體內發揮指向功能。
針對目標細胞膜上的特殊抗原或受體，將對應抗體或受質分子接在微脂粒上，可使絕大部份的微脂粒聚集至目標細胞。
微脂粒與細胞作用的機制有數種：1）膜組成交換（intermembrane transf er）：即微脂粒膜的組成與細胞膜的組成中有一部份互相交換；2）吸著（ads orption）：微脂粒附著於細胞膜；3）膜融合（fusion）：微脂粒與細胞膜融合，將包容物送進細胞內；4）吞食（phagocytosis, endocytosis）：微脂粒被細胞吞食。
欲使微脂粒依期望之機制與細胞作用，則要設計微脂粒。
阳离子脂质体(cationic liposome) 介导转染核酸进入真核细胞的方法是从8 0 年代中期发展起来的一种最具创新性的、高效的转染(transfection) 技术。
阳性脂质体(cationic liposome) ,又称阳离子脂质体、正电荷脂质体(positively ch arged liposome) ,是一种本身带有正电荷的脂质囊泡。
它可作为荷负电物质的传递载体,特别适用于蛋白质、多肽和寡核苷酸类物质、脱氧核糖核酸(DNA) 、核糖核酸(RNA) 等,所以在基因治疗方面有独特应用,近年来，成为在体外研究基因功能和基因表达调控机理的重要手段。
阳性脂质体介导的转染法可将外源基因导入任意种类哺乳动物的原代细胞或连续培养的细胞，在贴壁培养体系和悬浮培养体系中均能应用，并且能得到顺时表达（transient expression）和稳定表达（stable expression）的细胞株。
1．阳性脂质体的组成绝大多数阳性脂质体是由一种中性磷脂和一种或多种阳性成分组成。
中性磷脂和阳性成分都是具有亲水和疏水两种基团，其分子间相互间隔定向排列形成类脂双分子层。
其中,中性磷脂起到稳定双层膜和降低阳性成分毒性的作用,同时提供阳性脂质的细胞渗透功能。
阳性成分是具有不同化学结构的两性分子,多为双链季铵盐型表面活性剂,为整个脂质体提供正电荷，有很强的细胞膜去稳定化作用。
目前，使用最广泛的阳性成分有以N-[1-(2,3-二油酰氧基)丙基]-N,N,N-三甲基氯化铵(DOTMA)、3β-[ N-( Nˊ, Nˊ-二甲基胺乙基) 胺基甲酰基]胆固醇(DC-Ch ol)、2,3-二油酰氧-N-[2(精胺羧基酰胺)乙基]-N,N-二甲基-1-丙基-三氟乙酸铵(DO SPA) 、1 ,2-二油酰氧丙基-N,N,N-三甲基溴化铵(DOTAP)等，具有体外稳定性好，体内可被生物降解的特点，但具有一定的细胞毒性。
2．阳性脂质体介导基因转染的作用机制阳性脂质体介导的基因转染过程中，阳性脂质体的重要性体现在三个方面：（1）与DNA形成脂质体-DNA复合物（2）与细胞膜的作用（3）将DNA释放到细胞中。
2.1 阳性脂质体-DNA复合物（Lipoplex）的形成最初人们认为，阳性脂质体的表面带正电荷，能被核酸中带负电荷的磷酸根所吸附，这样通过阳性脂质体的介导，可以把核酸物质结合到细胞膜上。
Gershon于1993年使用电镜技术,研究了复合物的形成和结构特征。
他认为,阳性脂质体最初结合到DNA分子上,在核酸分子上形成成束的囊泡聚合物。
当聚合达到一定程度时,DNA 诱导的脂质体膜融合和脂质体诱导的DNA断裂同时发生,断裂后的DNA分子被包封于重新形成的脂质体中。
后来，Stefan Huebner等于1999年系统地阐述了复合物的结构特征及形成机理。
他指出，复合物的形成与脂质体／DNA的电荷比例有密切联系。
复合物有三种形式：（1）由DNA包裹的单层囊泡（2）由单层囊泡组成的寡聚复合物（3）多层囊泡聚合物。
并且他提出“脂质体滚动”：当一个由DNA包裹的单层囊泡被另一个“模板”囊泡吸附，随即发生断裂，沿着“模板”囊泡“滚动”，依此类推，就形成了多层囊泡聚合物，这就解释了复合物缺口形成的原因。
目前，这一观点已逐渐为广大研究者所认可。
2.2 细胞对阳性脂质体-DNA复合物的摄取最初的研究指出，最初的研究指出,对于带负电荷的核酸物质(DNA、RNA和寡核苷酸) ,主要是通过胞饮作用(endocytosis)进入靶细胞的。