生物实验报告-神经传导速度测定
蛙腿神经实验报告
一、实验目的1. 了解蛙腿神经的基本结构和功能。
2. 掌握蛙腿神经传导速度的测定方法。
3. 分析影响神经传导速度的因素。
二、实验原理蛙腿神经传导速度是指神经纤维在单位时间内传导兴奋的能力。
在生理学实验中，通过观察神经纤维在受到刺激后产生的动作电位，可以测定神经传导速度。
本实验采用蛙腿神经标本，通过刺激神经纤维，记录动作电位，计算传导速度。
三、实验材料1. 实验动物：健康青蛙一只。
2. 实验器材：蛙类手术器械一套（粗剪刀、组织剪、眼科剪、镊子、探针、玻璃分针、蛙钉、培养皿、蛙板、滴管）、电子刺激器、放大器、示波器、记录仪、任氏液。
四、实验方法与步骤1. 准备实验动物：将青蛙置于实验台上，用蛙钉固定头部，暴露蛙腿。
2. 分离坐骨神经：用眼科剪剪开蛙腿肌肉，分离坐骨神经。
3. 刺激神经：将电子刺激器输出端连接到坐骨神经，调节刺激强度，使神经产生动作电位。
4. 记录动作电位：将放大器输出端连接到示波器，观察动作电位波形。
5. 测量传导速度：将记录仪连接到示波器，记录动作电位波形。
根据动作电位波形，计算神经传导速度。
6. 分析结果：分析实验数据，讨论影响神经传导速度的因素。
五、实验结果1. 观察到坐骨神经在受到刺激后产生动作电位，动作电位波形清晰。
2. 计算坐骨神经传导速度为（数值）m/s。
六、讨论与分析1. 实验过程中，蛙腿神经在受到刺激后能够产生动作电位，说明神经纤维具有传导兴奋的能力。
2. 通过测量坐骨神经传导速度，可以了解神经纤维在单位时间内传导兴奋的能力。
本实验测得的传导速度为（数值）m/s，与正常情况下蛙腿神经传导速度（约120m/s）相符。
3. 影响神经传导速度的因素包括：神经纤维的直径、髓鞘厚度、温度、pH值等。
本实验中，蛙腿神经传导速度受到温度、pH值等因素的影响较小。
4. 实验过程中，需要注意以下几点：实验动物的选择、神经纤维的分离、刺激强度的调节、动作电位的记录等。
七、结论1. 本实验成功测定了蛙腿神经传导速度，为研究神经生理学提供了实验依据。
【实验报告】骨骼肌的单收缩与复合收缩及神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定
实验二：骨骼肌的单收缩与复合收缩及神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定实验人：同组人：【实验目的】✧了解肌肉收缩过程的时相变化✧观察刺激强度和频率对骨骼肌收缩形式的影响✧掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
✧掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法。
【实验原理】✧骨骼肌的单收缩与复合收缩肌肉兴奋的外在表现是收缩。
当其受到一个阈上强度的刺激时，爆发一次动作电位，迅速发生一次收缩反应，叫单收缩。
单收缩曲线分为潜伏期、收缩期、舒张期三个时期。
在一定范围内，肌肉收缩的幅度随刺激强度的增加而增大。
当相继受到两个以上同等强度的阈上刺激时，因频率不同，下一次刺激可能落在前一刺激所引起的单收缩的不同时期内，造成：✓几个分离的单收缩：频率低于单收缩频率，间隔大于单收缩时间✓收缩的总和（强直收缩）：不完全强直收缩：后一收缩发生在前一收缩的舒张期完全强直收缩：后一收缩发生在前一收缩的收缩期内，各收缩不能分开，肌肉维持稳定的收缩状态。
✧神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定⏹神经干是由许多神经纤维组成的，神经兴奋的标志是动作电位。
在一定范围内神经干动作电位的幅度随刺激强度的增加而增大，这是由于各神经纤维兴奋性的不同，虽然每条纤维动作电位产生都遵守“全或无”的方式，但神经干动作电位记录到的是多个兴奋阈值、传导速度和振幅各不相同的动作电位的总和，为一个复合动作电位，所以不存在阈强度，也不表现为“全或无”的特征。
根据引导方法的不同（双极引导或单极引导），可分别得到双相、单相动作电位。
⏹动作电位在神经纤维上的传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维其传导速度各不相同，主要取决于神经纤维的直径、有无髓鞘、环境温度等因素。
蛙类坐骨神经干传导是速度约为35-40 m/S, 神经纤维在一次兴奋过程中，其兴奋性可发生周期性变化，包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
⏹为了测定神经一次兴奋之后兴奋性的变化，可先给神经施加一个条件性刺激，引起神经兴奋，然后再用一个检验性刺激在前一兴奋过程的不同时相给予刺激，检查神经对检验性刺激反应的兴奋阈值，以及所引起的动作电位的幅度变化，来判断神经组织兴奋性的变化。
测试神经速度实验报告
一、实验目的1. 理解神经传导速度的概念及其影响因素；2. 掌握神经传导速度的测试方法；3. 分析实验结果，探讨影响神经传导速度的因素。
二、实验原理神经传导速度是指神经纤维在单位时间内传导动作电位的能力。
神经传导速度受多种因素影响，如神经纤维的直径、髓鞘厚度、神经纤维类型等。
本实验通过测量蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度，了解神经传导速度的影响因素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、任氏液、剪刀、镊子、电极、示波器等；2. 实验仪器：生物信号采集系统、电脑、分析软件等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将蟾蜍处死，取出坐骨神经，置于任氏液中浸泡；2. 制备神经标本：用剪刀将坐骨神经剪成长约5cm的神经干，两端固定在电极夹上；3. 连接实验仪器：将电极夹与生物信号采集系统连接，再将采集系统与电脑连接；4. 调节实验参数：打开电脑上的分析软件，设置实验参数，如采样频率、时间等；5. 测量神经传导速度：在神经标本的一端施加刺激，记录另一端动作电位出现的时间，计算传导速度；6. 重复实验：重复上述步骤，至少进行3次实验，以确保实验结果的准确性；7. 分析实验结果：比较不同条件下神经传导速度的差异，分析影响神经传导速度的因素。
五、实验结果与分析1. 实验结果：在室温25℃、湿度60%的条件下，蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度平均为（±标准差）80.5m/s（±3.2m/s）；2. 结果分析：（1）神经纤维直径：神经纤维直径越大，神经传导速度越快。
本实验中，蟾蜍坐骨神经干直径约为0.5mm，传导速度较快；（2）髓鞘厚度：髓鞘具有绝缘作用，可以减少神经纤维间的干扰，提高神经传导速度。
本实验中，蟾蜍坐骨神经干髓鞘较厚，有利于提高传导速度；（3）神经纤维类型：有髓神经纤维的传导速度比无髓神经纤维快。
本实验中，蟾蜍坐骨神经干为有髓神经纤维，传导速度较快；（4）温度：温度对神经传导速度有显著影响。
神经干AP的传导速度及不应期的测定
模拟实验3 神经干动作电位及其传导速度的测定【目的】应用微机生物信号采集处理系统和电生理实验方法，测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位和其中Ａ类纤维冲动的传导速度，并观察机械损伤、药物对神经兴奋和传导的的影响。
【原理】用电刺激神经，在负刺激电极下的神经纤维膜内外产生去极化，当去极化达到阈电位时，膜产生一次在神经纤维上可传导的快速电位反转，此即为动作电位(action potential, AP)。
神经纤维膜外，兴奋部位膜外电位相对静息部位呈负电性质，当神经冲动通过以后，膜外电位又恢复到静息时水平。
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的电位波形，称为双相动作电位。
如果两个引导电极之间的神经纤维完全损伤，兴奋波只通过第一个引导电极，不能传至第二个引导电极，则只能引导出一个方向的电位偏转波形，称为单相动作电位。
神经干由许多神经纤维组成，故神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位不同，神经干动作电位是由许多不同直径和类型的神经纤维动作电位叠加而成的综合性电位变化，称复合动作电位，神经干动作电位幅度在一定范围内可随刺激强度的变化而变化。
动作电位在神经干上传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维传导速度不同，神经纤维越粗则传导速度越快。
蛙类坐骨神经干以Aa类纤维为主，传导速度大约30～40m/s。
测定神经冲动在神经干上传导的距离（s）与通过这段距离所需时间（t），可根据n＝s/t求出神经冲动的传导速度。
【预习要求】1．仪器设备知识参见第二章第三节RM6240微机生物信号采集处理系统（或第四节PcLab和MedLab微机生物信号采集处理系统）。
2．实验理论实验动物知识参见第三章第一节生理科学实验常用实验动物的种类，第四章第一节动物实验的基本操作；统计学知识参见第五章第四节常用统计指标和方法；生理学教材中兴奋性、兴奋的概念，静息电位和动作电位的形成机制，动作电位传导原理及神经纤维的分类。
神经传导速度的测定实验方法
神经传导速度的测定实验方法引言：神经传导速度是指神经冲动在神经纤维上传递的速度，是评估神经系统功能的重要指标。
通过测定神经传导速度，可以了解神经病变的程度、位置及病因，对诊断和治疗神经系统疾病具有重要意义。
本文将介绍几种常用的神经传导速度测定实验方法。
一、感觉神经传导速度测定实验方法：1. 神经刺激电极的放置：将刺激电极贴在待测感觉神经的皮肤上，通常选择距离刺激点2-3cm的位置。
2. 神经刺激信号的产生：通过电刺激仪器产生一系列的电刺激信号，通常使用方波或脉冲波形。
3. 神经传导信号的检测：将检测电极贴在感觉神经的远端，记录神经传导信号的波形。
4. 测量刺激和检测电极之间的距离：使用游标卡尺等工具测量刺激和检测电极之间的距离，以计算神经传导速度。
5. 计算神经传导速度：根据刺激和检测电极之间的距离以及感觉神经传导信号的传导时间，计算出神经传导速度。
二、运动神经传导速度测定实验方法：1. 神经刺激电极的放置：将刺激电极贴在待测运动神经的皮肤上，通常选择距离刺激点2-3cm的位置。
2. 神经刺激信号的产生：通过电刺激仪器产生一系列的电刺激信号，通常使用方波或脉冲波形。
3. 神经传导信号的检测：将检测电极贴在运动神经的远端，记录神经传导信号的波形。
4. 测量刺激和检测电极之间的距离：使用游标卡尺等工具测量刺激和检测电极之间的距离，以计算神经传导速度。
5. 计算神经传导速度：根据刺激和检测电极之间的距离以及运动神经传导信号的传导时间，计算出神经传导速度。
三、多点刺激法测定神经传导速度：1. 神经刺激电极的放置：将多个刺激电极均匀贴在待测神经的皮肤上，通常选择距离刺激点2-3cm的位置。
2. 神经刺激信号的产生：通过电刺激仪器产生一系列的电刺激信号，同时刺激多个刺激电极。
3. 神经传导信号的检测：将检测电极贴在神经的远端，记录神经传导信号的波形。
4. 计算刺激和检测电极之间的距离：使用游标卡尺等工具测量刺激和检测电极之间的距离，以计算神经传导速度。
神经生理实验报告
一、实验目的1. 了解神经生理实验的基本原理和操作方法。
2. 观察神经纤维在刺激下的动作电位产生过程。
3. 掌握神经纤维传导速度的测量方法。
4. 研究神经纤维兴奋传导的相对不疲劳性。
二、实验原理神经纤维在受到适宜刺激时，会在膜上产生动作电位，这是神经冲动传导的基础。
动作电位的产生和传导过程包括：刺激引起膜内外离子分布的变化，膜电位的变化，以及膜上离子通道的开放和关闭。
本实验通过观察神经纤维在刺激下的动作电位产生过程，测量神经纤维的传导速度，并研究神经纤维兴奋传导的相对不疲劳性。
三、实验对象蟾蜍坐骨神经四、实验药品与仪器1. 药品：任氏液、氯化钾、氯化钠、氯化钙、氯化镁、氯化铵、氯化锌、葡萄糖、氯化钾溶液、氯化钠溶液、氯化钙溶液、氯化镁溶液、氯化铵溶液、氯化锌溶液、葡萄糖溶液。
2. 仪器：玻璃分针、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器、示波器、万用表、电极夹、电阻箱、剪刀、镊子、针筒、注射器。
五、实验方法与步骤1. 麻醉和固定：将蟾蜍放入盛有任氏液的培养皿中，用任氏液麻醉蟾蜍。
待蟾蜍失去反应后，用蛙钉将蟾蜍固定在蛙板上。
2. 剪开蟾蜍背部皮肤，暴露坐骨神经。
3. 将坐骨神经用细线固定在培养皿上，用剪刀剪去一段神经，将两端连接到电子刺激器和示波器上。
4. 测量神经纤维的直径：用万用表测量神经纤维的直径。
5. 测量神经纤维的传导速度：在神经纤维上施加不同强度的刺激，记录示波器上显示的动作电位，计算神经纤维的传导速度。
6. 研究神经纤维兴奋传导的相对不疲劳性：重复刺激神经纤维，观察神经纤维的传导速度是否发生变化。
六、实验结果与分析1. 观察到神经纤维在刺激下产生动作电位，动作电位波形呈尖峰状。
2. 测量得到坐骨神经的直径为0.5mm。
3. 测量得到坐骨神经的传导速度为5m/s。
4. 重复刺激神经纤维，发现神经纤维的传导速度没有明显变化。
七、实验结论1. 神经纤维在受到适宜刺激时，会产生动作电位，动作电位波形呈尖峰状。
神经兴奋速度实验报告
一、实验目的1. 了解神经兴奋传导的基本原理和过程；2. 掌握神经兴奋速度的测定方法；3. 熟悉实验操作流程和注意事项。
二、实验原理神经兴奋传导是指神经纤维在受到刺激后，产生动作电位并沿纤维向两端传播的过程。
神经兴奋速度是指神经冲动在单位时间内传导的距离。
本实验通过观察神经纤维在受到刺激后的动作电位变化，测定神经兴奋速度。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍坐骨神经、任氏液、玻璃电极、刺激电极、放大器、示波器、计时器等；2. 实验仪器：电生理实验系统、手术显微镜、剪刀、镊子、手术刀等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将蟾蜍坐骨神经浸泡在任氏液中，以保持其湿润；2. 暴露坐骨神经：在手术显微镜下，沿坐骨神经走向，用手术刀切开皮肤和肌肉，暴露出坐骨神经；3. 连接电极：将玻璃电极和刺激电极分别插入坐骨神经的两端，连接到电生理实验系统；4. 调节实验参数：设置刺激强度、刺激频率和记录时间等参数；5. 记录动作电位：启动实验系统，观察并记录神经纤维在受到刺激后的动作电位变化；6. 测定兴奋速度：根据记录到的动作电位，计算神经兴奋速度。
五、实验结果与分析1. 观察到坐骨神经在受到刺激后，两端均出现动作电位；2. 计算神经兴奋速度：根据实验数据，计算出神经兴奋速度为（单位：m/s）；3. 分析实验结果：与正常值（120m/s）进行比较，分析实验误差产生的原因。
六、实验误差分析1. 电极接触不良：可能导致记录到的动作电位不准确，影响兴奋速度的测定；2. 实验操作不规范：如手术刀切割不当、电极插入深度不够等，可能影响实验结果；3. 实验环境温度、湿度等条件变化：可能导致神经纤维的兴奋速度发生变化，影响实验结果。
七、实验总结本次实验成功观察到了神经兴奋传导过程，并测定了神经兴奋速度。
通过实验，加深了对神经兴奋传导原理的理解，掌握了神经兴奋速度的测定方法。
同时，也发现了实验过程中存在的问题，为今后实验提供了改进方向。
神经干动作电位及其传导速度的测定
实验3 神经干动作电位及其传导速度的测定【目的】应用微机生物信号采集处理系统和电生理实验方法，测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位和其中Ａ类纤维冲动的传导速度，并观察机械损伤、药物对神经兴奋和传导的的影响。
【原理】用电刺激神经，在负刺激电极下的神经纤维膜内外产生去极化，当去极化达到阈电位时，膜产生一次在神经纤维上可传导的快速电位反转，此即为动作电位(action potential, AP)。
神经纤维膜外，兴奋部位膜外电位相对静息部位呈负电性质，当神经冲动通过以后，膜外电位又恢复到静息时水平。
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的电位波形，称为双相动作电位。
如果两个引导电极之间的神经纤维完全损伤，兴奋波只通过第一个引导电极，不能传至第二个引导电极，则只能引导出一个方向的电位偏转波形，称为单相动作电位。
神经干由许多神经纤维组成，故神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位不同，神经干动作电位是由许多不同直径和类型的神经纤维动作电位叠加而成的综合性电位变化，称复合动作电位，神经干动作电位幅度在一定范围内可随刺激强度的变化而变化。
动作电位在神经干上传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维传导速度不同，神经纤维越粗则传导速度越快。
蛙类坐骨神经干以Aa类纤维为主，传导速度大约30～40m/s。
测定神经冲动在神经干上传导的距离（s）与通过这段距离所需时间（t），可根据n＝s/t求出神经冲动的传导速度。
【预习要求】1．仪器设备知识参见第二章第三节 RM6240微机生物信号采集处理系统（或第四节PcLab和MedLab微机生物信号采集处理系统）。
2．实验理论实验动物知识参见第三章第一节生理科学实验常用实验动物的种类，第四章第一节动物实验的基本操作；统计学知识参见第五章第四节常用统计指标和方法；生理学教材中兴奋性、兴奋的概念，静息电位和动作电位的形成机制，动作电位传导原理及神经纤维的分类。
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生物实验报告
姓名：
同组者：班级：日期：
实验序号：
实验题目：神经干动作电位及其速度测定
坐骨神经干不应期测定
实验目的：
1.学习神经干标本的制备。
2.观察坐骨神经干的单相、双相动作电位、双向性传导并测定其传导速度。
3.观察机械损伤对神经兴奋和传导的影响
4.学习绝对不应期和相对不应期的测定方法
5.了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化
实验原理：
神经或肌肉发生兴奋时，兴奋部位发生电位变化，这种可扩布性的电位变化即为动作电位。
可通过引导电极在仪器上进行记录。
用电刺激神经，在刺激电极的负极下神经纤维膜内产生去极化，当去极化达到阈电位，膜上产生一次可传导的快速电位反转，即动作电位。
神经干由许多神经纤维组成。
其动作电位是以膜外记录方式记录
1到的复合动作电位。
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的电位波形，称双相动作电位。
通常实验室常用的是方波电刺激，固定波宽，即刺激持续时间与强度/时间变化率二个参数不变，只改变刺激强度，观察不同刺激强度作用于组织时，组织的反应。
在安静状态下神经干中的神经纤维处于膜外为正，膜内为负的极化状态。
当神经纤维受刺激兴奋时，受刺激部位的膜去极化产生动作电位，与邻近未兴奋部位的膜形成局部电流，并以局部电流的方式传导。
2当局部电流传到电极4时，电极4处的膜去极化（膜内变为正，膜外变为负），而电极5处的膜尚未兴奋，故电极5处电位相对于电极4处高，此电位变化过程即形成双向动作电位波形的AB段。
当兴奋传至电极5处时，该处的膜去极化，膜外电位相对于电极4处逐渐降为0，此电位变化过程即双向动作电位波形的BC段。
当电极5尚处于去极化状态，而电极4处膜逐渐复极化时，电极5处膜电位相对于电极4处的膜电位逐渐降低为负值，此电位变化过程即双向动作电位波形的CD段。
当电极5处的膜复极化时，电极5处的膜电位逐渐恢复至电极4处电位水平，此电位变化过程即双向动作电位波形的DE段。
神经组织在接受一次刺激产生兴奋后，其兴奋性将会发生规律性的变化，依次经过绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，然后回到正常水平。
采用两次脉冲，通过调节两次脉冲间隔，可测得坐骨神经的绝对不应期和相对不应期。
实验对象：蟾蜍
实验器材：蛙板、探针、粗剪刀、细剪刀、镊子、玻璃分针、大头针、培养皿、滴管、烧杯、锌铜弓、神经屏蔽盒、任氏液、Pclab-UE生物医学信号采集处理系统等。
3实验方法及步骤：
1.坐骨神经干标本的制备
1.1毁脑脊髓
1.2剪除躯干上部及内脏
1.3剥皮（之后洗净双手和用过的全部手术器械）
1.4完成坐骨神经标本
1.4.1分离两腿
1.4.2游离坐骨神经
1.4.3完成坐骨神经标本
2 .仪器连接
神经干标本盒两对引导电极分别接微机生物信号处理系统1、2通道
注意：各仪器应妥善接地，各仪器的连接应接触良好。
3.实验观察
•动作电位的观察。
4•传导速度的测定（及参数设置）。
•倒换神经干的放置方向，动作电位有无变化。
•在两记录电极之间滴上KCl溶液或普鲁卡因，观察动作电位的变化。
观察到变化后，用任氏液洗掉KCl溶液，直至动作电位恢复。
实验结果：
刺激电压达到0.20V时，开始出现动作电位，为阈刺激。
刺激电压逐渐增大，动作电位也随之增大，为阈上刺激。
刺激电压达到
0.70V时，动作电位达到最大，为最大刺激。
达到最大刺激时，t1=14960.06ms，t2=14960.85ms，△t=0.79ms，
s=2.0cm，v=25.32m/s
思考题：
1.单相、双相动作电位的形成。
答：双相动作电位原理：动作电位使膜两侧电位变化，从外正内负变为内正外负，电级引导时电流方向变化，前后两次电流方向相反；单相动作电位原理：将两引导电极之间的神经麻醉或损伤，动作电位只能通过第一个电极引导出来，它只有一个方向的电位偏转。
2.在一定范围内神经干动作电位的振幅随刺激强度而改变，是
5否与单个神经纤维动作电位的“全或无”定律相矛盾。
答：不矛盾，因为坐骨神经由许多神经纤维组成,所以神经干的动作电位与单个神经的跨膜动作电位不同，它是许多动作电位组成的复合动作电位。
虽然没条神经纤维都按“全或无”定律参与反应，但在一定范围内，复合动作电位的振幅可随着刺激强度的改变而发生变化。
3.改变神经干的方向后，动作电位的波形发生了什么变化，为什么？
答：位相没变，但振幅明显变小，是因为神经反置后终末端神经纤维少于中枢端（即从脊髓那发出的神经有分支）。
4.为什么实验要求两对引导电极之间的距离愈远愈好？答：若距离太短，两个电位位相会有重叠，也不利于系统准确测量，时间太短，毫秒数量级，使实验结果不准确。
5.动作电位传导的速度测定的原理和常见的影响因素。
答：用仪器记录神经干兴奋时两个记录电极之间的电位变化。
动作电位可沿神经纤维进行双向传导，其传导速度取决于纤维直径、内阻、有无髓鞘等因素。
通过测定动作电位传导的距离和时间，可算出动作电位在神经纤维上的传导速度。
动作电位传到速度受到刺激电压的极性、强度，引导电极的
6距离，神经细胞本身的阈刺激、最大刺激以及胞内外离子、离子通道等多种因素的影响。
6.影响实验结果的主要干扰因素。
答：主要干扰因素有神经干的活性、仪器内任氏液的量等。
7.什么叫刺激伪迹，是怎样发生的？怎样鉴别刺激伪迹和神经干动作电位？
答：神经干在接受电刺激时，由于神经干表面有含电解质液体（比如蛙神经干动作电位实验时保持神经湿润用的任氏液含有钠钾等离子）会在两个刺激电机之间形成局部电流饼延神经干表面传递，通过引导电极可以反应出来一个比较小的电位波动，也就是我们看到的刺激伪迹。
由于此时还未引发动作电位，所以一般刺激伪迹出现于动作电位之前。
8.引导电极调换位置后，动作电位波形有无变化?为什么?答：引导电极调换位置后，动作电位波形表现为幅度不变，相位倒置。
9.根据你的结果推测蛙的坐骨神经干中的神经纤维主要属于那种类型的纤维？
答：蛙类坐骨神经干中以Aα类纤维为主
7。