引物合成步骤
引物合成的原理

引物合成的原理
引物合成是一项重要的实验技术,用于在分子生物学研究中进行DNA扩增、测序等实验。
其原理主要基于DNA的双链结构和配对原则。
在引物合成中,首先需要确定所需扩增的目标DNA序列,并根据该序列设计两个短的单链DNA片段,即引物。
这两个引物的5'端需要与目标DNA序列互补配对。
引物合成通常通过核苷酸化学合成方法进行。
该方法基于磷酸二酯链的扩增反应,通过使用已经含有保护基的核苷酸单元,逐个将核苷酸单元与反应基位点进行连接。
每次反应结束后,需要进行碱性水解以去除保护基,再次进行连接反应。
这样,在多次循环反应后,可以得到完整的引物。
在合成引物时,还需要注意控制反应条件,例如反应缓冲液的pH值、反应时间和温度等。
合成后的引物可以通过比色法或者聚丙酰胺凝胶电泳进行质量检测。
引物合成的原理基于DNA的双链结构和碱基配对规则,通过化学合成方法制备出目标DNA序列的互补链。
这些合成的引物可以作为DNA扩增、测序等实验中的起始点,有效地进行目标序列的扩增和分析。
引物设计原理及详细步骤

2、引物长度一般在15-30碱基之间。
引物长度(primer length)常用的是18-27bp,但不应大于38bp,因为过长会导致其延伸温度大于74℃,不适于Taq DNA 聚合酶进行反应。
3、引物GC含量在40%~60%之间,Tm值最好接近72℃。
GC含量(composition)过高或过低都不利于引发反应。
上下游引物的GC含量不能相差太大。
另外,上下游引物的Tm值(melting temperature)是寡核苷酸的解链温度,即在一定盐浓度条件下,50%寡核苷酸双链解链的温度。
有效启动温度,一般高于Tm 值5-10℃。
若按公式Tm=4(G+C+2(A+T)估计引物的Tm值,则有效引物的Tm为55-80℃,其Tm值最好接近72℃以使复性条件最佳。
4、引物3'端要避开密码子的第3位。
如扩增编码区域,引物3'端不要终止于密码子的第3位,因密码子的第3位易发生简并,会影响扩增的特异性与效率。
5、引物3'端不能选择A,最好选择T。
引物3'端错配时,不同碱基引发效率存在着很大的差异,当末位的碱基为A时,即使在错配的情况下,也能有引发链的合成,而当末位链为T时,错配的引发效率大大降低,G、C错配的引发效率介于A、T之间,所以3'端最好选择T。
6、碱基要随机分布。
引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是3’端相似性较高的序列,否则容易导致错误引发(False priming)。
降低引物与模板相似性的一种方法是,引物中四种碱基的引物自身不应存在互补序列,否则引物自身会折叠成发夹结构(Hairpin)使引物本身复性。
这种二级结构会因空间位阻而影响引物与模板的复性结合。
引物自身不能有连续4个碱基的互补。
两引物之间也不应具有互补性,尤其应避免3'端的互补重叠以防止引物二聚体(Dimer 与Cross dimer)的形成。
引物之间不能有连续4个碱基的互补。
引物二聚体及发夹结构如果不可避免的话,应尽量使其△G值不要过高(应小于4.5kcal /mol)。
引物合成过程

引物合成是指利用化学方法合成DNA或RNA序列的过程。
下面是引物合成的一般步骤:
1.设计引物:引物设计是整个引物合成过程的第一步。
引物需要与所需扩增的DNA或RNA序列互补。
在设计引物时,需要考虑引物长度、GC含量、3'端的簇脚结构、避免二聚体和互补引物的产生等因素。
2.订购引物:设计好引物后,需要将引物序列提交给专业的合成公司进行合成。
这些公司通常具备优良的合成引物能力,提供高纯度的合成引物产品。
3.合成引物:合成公司会根据所提供的引物序列,利用固相合成技术对引物进行合成。
合成引物的过程中,通过添加与相应的脱保护基团,即逐个步骤地将核苷酸单元与控制DNA合成的骨架上加入。
4.质检:合成的引物通常会经过质检确保其质量。
质检过程中常常包括高效液相色谱(HPLC)和质谱分析等技术,以检查引物的纯度和正确性。
5.发货和应用:合成完成的引物将会根据客户要求进行包装和发货。
用户可以用这些引物用于各种生物学应用,比如PCR扩增、测序、基因组编辑、基因表达分析等。
总的来说,引物合成是一项涉及引物设计、合成、质检和应用的多个环节的工作。
通过精心的设计和质量控制,合成的引物能够为科研工作者提供高效可靠的DNA或RNA序列。
同时,在进行引物合成过程中,需要遵守相关的伦理规范和知识产权法律,确保合法合规。
引物合成的步骤及方法介绍

引物合成的步骤及方法介绍Oligo DNA的人工化学合成始于50年代初期,1980年,全自动的固相DNA合成仪面市后,使得快速、高效合成Oligo DNA成为可能,这大大地推动了生物工程技术的蓬勃发展。
现在一般都采用β-乙腈亚磷酰胺化学合成Oligo DNA,将DNA固定在固相载体上完成DNA链的合成的合成时从3' →5' 方向进行,通常3' 端的第一个碱基结合在Glass担体 (Controlled Pore Glass,CPG)上。
其具有高效、快速的偶联以及起始反应物比较稳定的特点。
合成步骤Step1:脱掉附加在CPG担体上的第一个碱基5' -OH基团上的保护基 (DMTr),准备附加下一个新的碱基;Step2:活化新的碱基单体 (Phosphoramidite),准备与第一个碱基进行反应;Step3:第二个碱基与第一个碱基发生偶联反应;Step4:将没有反应的第一个碱基的5' -OH加帽封死 (Capping),使其不再进一步参与反应;Step5:将核苷亚磷酸酯氧化成更稳定的核苷磷酸酯 (即将三价磷氧化成五价磷)。
Step6:重复进行Step1~Step5的循环,直至合成完所需的Oligo DNA序列。
Step7:合成结束后,将Oligo DNA分子从CPG上切下,再进行进一步的纯化。
图1 Oligo DNA合成原理。
N1代表第一个碱基,N2代表第二个碱基,依此类推。
OD数的确定一般PCR扩增,2 OD引物,可以做200-500次50ul标准PCR反应。
如果是做基因拼接或退火后做连接,1 OD就足够了。
但是有些研究人员,就做几次PCR,但是却要5-10OD。
做全基因构建的引物都比较长,但是我们有些研究人员也要求高OD数。
片段越长, 最后全长得率就越低,出错的几率就越大。
超出需要之外的OD数要求,也是一种浪费。
引物纯度检测实验室方便的作法是用PAGE方法。
引物合成技术服务常见问答

引物合成常见问题Q1.引物是如何合成的?目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。
DNA合成仪有很多种,无论采用什么机器合成,合成的原理都相同,主要差别在于合成产率的高低,试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。
(1)去保护:加入Deblocking脱去碱基上5'- OH的保护基团DMT,获得游离的5'- OH;(2)耦合:同时加入活化剂和新的碱基,新的碱基5'-OH仍然被DMT保护,3'端被活化与溶液中游离的5'-OH发生耦合反应;(3)封闭:耦合反应中极少数5'- OH没有参加反应,用封闭试剂终止其后继续发生反应;(4)氧化:加入氧化剂使其由核苷亚磷酸酯形成更稳定的核苷磷酸酯。
Q2.引物合成如何处理?切割与脱保护基:将合成好的寡核苷酸链从支持物上化学切割下来。
常用新鲜的浓氨水来裂解CPG与初始核苷之间的酯键。
断裂下来的寡核苷酸带有自由的3’羟基。
纯化:根据所合成寡核苷酸的组成和应用来选定纯化的方法。
常用的纯化方法有:C18、OPC、PAGE和HPLC。
定量:根据寡核苷酸在260nm处的紫外吸收来定量。
储存:分装抽干。
Q3.合成的引物5’端是否有磷酸化?合成的引物5’为羟基,没有磷酸基团。
如果需要您可以用多核苷酸激酶进行5’端磷酸化,或者要求我们合成时直接在5’或3’端进行磷酸化,需要另外收费。
Q4.需要什么级别的引物?根据实验需要,确定订购引物的纯度级别。
应用引物长度要求纯度级别要求一般PCR扩增< 60base HEPD>60 base PAGE诊断PCR扩增< 40base HEPD, PAGEDNA测序20base左右HEPD亚克隆,点突变等根据实验要求定HEPD, PAGE,HPLC基因构建(全基因合成)根据实验要求定HEPD PAGE反义核酸根据实验要求定HEPD PAGE修饰引物根据实验要求定PAGE, HPLCQ5.需要合成多少OD数?根据实验目的确定。
引物合成的基本原理

引物合成的基本原理引物合成是一种重要的实验技术,用于检测和分析DNA、RNA或蛋白质序列。
引物合成的基本原理是通过化学方法合成一段与目标序列互补的短链核苷酸,以便在实验中用作引物。
以下是引物合成的详细基本原理的解释。
首先,引物合成需要知道目标序列的碱基顺序。
这可以通过DNA或RNA序列数据的在线数据库或实验室内部的测序技术得到。
获得目标序列后,可以确定所需引物的长度和序列。
引物的长度通常为15-30个碱基,最好是20-25个碱基。
较短的引物可能会导致特异性较差的扩增,而较长的引物可能会降低扩增效率。
因此,选择合适长度的引物是非常重要的。
同时,引物的序列也要尽量选择没有或较少重复区域的部分,以避免非特异性扩增。
引物合成一般使用化学方法,如磷酸二酯法或磷酸三酯法。
这些方法允许在无机硅胶或C18纯化柱上合成短链核苷酸。
具体步骤包括:1.碱基保护基团的去除:在引物合成开始之前,需要去除碱基的保护基团。
这可以通过二乙酰苯基(使用二乙酰氯)或9-氨甲基吲哚(使用氨甲基化试剂)进行。
2.磷酸二酯法合成:将合成核苷酸的3'-端与2-氧乙基基团反应,使其与下一个核苷酸的5'-端形成磷酸二酯键。
这个过程在固相合成柱上完成。
3.磷酸三酯法合成:将合成核苷酸的3'-端与N-4-二丁氨基甲酸保护基团反应,同时在5'-端加入磷酸二维碘苯基团作为保护基团。
然后,通过反应剂如二乙酰二硝酸酯或乙二酸二苄酯,将5'-端碱基上的保护基团去除,使其能够与下一个核苷酸形成磷酸三酯键。
这个过程在固相合成柱上完成。
4.引物的纯化与检验:合成的引物需要经过纯化步骤去除其他杂质所产生的杂交引物。
通常使用无机硅胶柱或高效液相色谱(HPLC)柱进行纯化。
纯化后,引物的纯度可以通过质谱分析或摄谱法进行检验。
5.应用:合成的引物可以用于PCR(聚合酶链反应)扩增DNA片段的特定区域,或用于探测目标DNA片段的存在与否。
pcr三个步骤(pcr技术三大步骤)

pcr三个步骤(pcr技术三大步骤)本文介绍了PCR的详细操作流程,强调了实验中的注意事项,列举了常用缓冲液的配方。
帮助我们在理解实验的基础上更顺利的操作。
聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction,PCR)是体外合成双链DNA的一种方法,其原理类似于天然DNA的复制过程,其特异性主要依赖于与其目的片段两端互补的特异引物和高特异性的酶(热启动酶)。
典型的PCR反应有三个步骤:变性,退火,延伸,经过多次循环反应,获得目的片段。
1.DNA模板2.特异性引物3.dNTP Mix4.PCR buffer5.热启动酶1.配置反应体系将各成分依次加入到0.5ml的离心管中扩增使用热启动酶,可在常温下操作,非热启动型的酶要在低温配置反应体系。
2.按照试剂盒说明书设置反应时间和温度,扩增结束后电泳鉴定3.琼脂糖核酸电泳·将电泳所用器具蒸馏水洗净,架好梳子·根据要分离的DNA片段大小制备合适浓度的琼脂糖凝胶,准确称取一定的琼脂糖加入到锥形瓶中,加入30ml左右的电泳缓冲液(TAE或TBE)·在微波炉中加热融化后冷却至40℃左右,充分混匀后倒入电泳槽中·室温下凝固40分钟左右,小心拔出梳子,将凝胶放置电泳槽中准备点样·在电泳槽中加入电泳缓冲液,漫过凝胶表面即可,点样孔内不要有气泡·样品点样前准备好,(在八连管中)加入5ul样品,1ul的6xLoding buffer和1ul的染料混合,用抢将混合后的样品缓缓注入到点样孔中,注意不要串孔·按照正负极(红正黑负),接通电源,电压40-60V,时间30-40min,可根据溴酚蓝的位置判断是否终止电泳·电泳结束,关闭电源,凝胶成像观察,并对比marker确定片段大小不同的琼脂糖浓度分离不同大小的DNA片段:引物引物是决定PCR反应成败的关键,要保证扩增的准确、高效,引物的设计要遵循如下原则:1.引物的设计在cDNA的保守区域,在NCBI上搜索不同物种的同一基因,通过序列分析的软件,得到不同基因相同的序列就是该基因的保守区2.引物的长度:15-28bp,长度大于38bp,会使退火温度升高,不利于普通Taq酶的扩增3.引物GC含量在40%-60%,Tm值最好接近72℃4.因密码子的简并性,引物的3’端最好避开密码子的第三位(最好为T)5.碱基分布错落有致,3’端不超过3个连续G或C6.引物自身不要形成发夹结构,引物设计完成,要BLAST验证模板PCR扩增对模板的要求不高,单链、双链DNA均可作为扩增片段,虽然PCR能够扩增微量的DNA,为了保证扩增的特异性,对不同来源的模板,起始浓度有一定要求,如下:模板可以是纯化后的样品也可以是粗制品,不同来源的模板采取不同的处理方法,实验模板的纯化越简单越好,但模板中如果含有任何的Taq酶抑制剂、蛋白酶、核酸酶等,会干扰反应。
引物合成步骤范文

引物合成步骤范文引物合成是分子生物学实验中常见的一项技术,用于PCR(聚合酶链式反应)、DNA测序、基因克隆等许多实验中。
引物是一小段单链DNA或RNA,它们用来定向扩增一个特定的DNA片段。
引物合成的步骤如下:1.设计引物序列:首先,需要知道待扩增DNA的目标序列。
通常情况下,我们选择一段特定区域的DNA用作引物。
在设计引物时,需要注意以下几点:-引物长度通常在18到30个碱基对之间,长度不宜过长或过短。
-引物G+C含量应在40%至60%之间。
-引物不应含有自身互补碱基序列。
-引物最好能避免出现二硫键或普鲁文结构(如三个或四个相邻的G或C碱基)。
2.设计引物的3'端末端:在引物的3'端末端,我们通常会引入一些修饰,如磷酸化或5-末端的过氧化磷酸,以便在引物合成的过程中提高合成效率。
3.引物合成:引物的合成通常是通过固相法进行的。
在合成之前,需要在化学结构上将4种碱基(脱氧鸟苷酸、脱氧鸟苷酸、脱氧鸟苷酸和脱氧胸腺嘧啶酸)与其相应的磷酸化修饰化合物连接。
这些修饰化合物通常会使用保护基团保护化学反应中的反应位点。
具体的合成步骤如下:- 选择一个适当的固相基质,例如琼脂糖微球(succinylated AminoLink Plus)。
-将固相基质准备好并装填到柱中。
固相基质上通常会通过共价键结合具有亲和力的修饰基团,以方便引物的连接和修饰。
-开始引物的合成,先连接引物的化学修饰基团。
-每一步都需要进行化学反应,并在反应中施加适当的条件(如温度、反应时间等)。
-在每一步反应完成后,需要使用合适的试剂和条件进行旧的保护基团的去除和新的保护基团的介入。
-最后,为了去除引物合成过程中引入的保护基团,通常需要将引物与氨水或氨溶液接触一段时间。
-合成的引物可以经过纯化和质检,通常使用离子交换柱或芯片进行纯化,通过比色反应或质谱分析进行质检。
4.引物存储:合成完的引物需要在低温(通常为-20℃)下存储,以保持其稳定性和活性。
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引物化学合成不同于酶促的DNA合成过程从5'→3'方向延伸,而是由3'端开始。
具体的反应步骤如下:
一、脱保护基(Deblocking) 用三氯乙酸(Trichloroacetic Acid,TCA)脱去连结在CPG(Controlled Pore Glass)上的核苷酸的保护基团DMT(二甲氧基三苯甲基),获得游离的5'-羟基端,以供下一步缩合反应。
二、活化(Activation) 将亚磷酰胺保护的核苷酸单体与四氮唑活化剂混合并进入合成柱,形成亚磷酰胺四唑活性中间体(其3'-端已被活化,但5'-端仍受DMT保护),此中间体将与GPG上的已脱保护基的核苷酸发生缩合反应。
三、连接(Coupling) 亚磷酰胺四唑活性中间体遇到CPG上已脱保护基的核苷酸时,将与其5'-羟基发生亲合反应,缩合并脱去四唑,此时合成的寡核苷酸链向前延长一个碱基。
四、封闭(Capping) 缩合反应后为了防止连在CPG上的未参与反应的5'-羟基在随后的循环反应中被延伸,常通过乙酰化来封闭此端羟基,一般乙酰化试剂是用乙酸酐和N-甲基咪唑等混合形成的。
五、氧化(Oxidation) 缩合反应时核苷酸单体是通过亚磷酯键与连在CPG 上的寡核苷酸连接,而亚磷酯键不稳定,易被酸、碱水解,此时常用碘的四氢呋喃溶液将亚磷酰转化为磷酸三酯,得到稳定的寡核苷酸。
经过以上五个步骤后,一个脱氧核苷酸就被连到CPG的核苷酸上,同样再用三氯乙酸脱去新连上的脱氧核苷酸5'-羟基上的保护基团DMT后,重复以上的活化、连接、封闭、氧化过程即可得到一DNA片段粗品。
最后对其进行切割、脱保护基(一般对A、C碱基采用苯甲酰基保护;G碱基用异丁酰基保护;T碱基不必保护;亚磷酸用腈乙基保护)、纯化(常用的有HAP,PAGE,HPLC,C18,OPC等方法)、定量等合成后处理即可得到符合实验要求的寡核苷酸片段。
固相合成Oligo是在DNA合成仪上进行的,上述方法合成的Oligo在脱去保护基后,目的Oligo纯度是极低的,含有大量的杂质,主要杂质有所脱下的保护基与氨形成的苯甲酸氨和异丁酸氨,腈磷基上脱下的腈乙基以及合成时产生的短链等,以至于粗产品中Oligo 含量仅为15%左右。
尽管合成时每一步的效率都在97%~98%,但累积的效率并不高。
以链长20mer和50mer为例,(97.5%)20≈60%、
(97.5%)50≈28%,可见在粗产品中目的Oligo含量很低,甚至10%都不到。
这些杂质,尤其是存在于粗产品中的大量盐和短链,不但造成定量不准,影响下一步的反应,因此必须对Oligo进行纯化。
建议采用聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)纯化,该方法纯化的产品纯度高,可用于绝大部份的分子生物
学实验,可避免许多意想不到的麻烦。
若考虑节约经费,对于要求较低的实验,如简单的PCR反应,则采用脱盐纯化即可。
Oligo DNA是以OD260值来计量的。
在1ml的1cm光程标准石英比色皿中,260nm波长下吸光度为1的Oligo溶液定义为1 OD260。
虽然对于每种特定的寡核苷酸来说,其碱基的组成不尽相同, 但1 260 OD Oligo DNA的重量约为33mg,每个碱基的平均分子量约为330 Da。
以下是合成简图:
感悟与讨论:1:在合成修饰碱基时,在固相化学合成法中合成的方向是从3端向5端进行,注意修饰碱基的生物试剂的用量和反应时间。
2:注意碱基用于标记引物时会在链的两端标记生物素或者地高辛等,或标记荧光素这样有助于在做PCR时的成功率。
3:合成碱基时的试剂用量以及其浓度和温度、种类等方面对合成的目标引物有很大的影响,所以在合成时注意操作条件。
4 :在进行HPLC纯化时注意出峰的峰形,分析并联用质谱来综合准确分析引物是否达到要求。
实验结果: 经过以上合成以及纯化分析后客户所需求的目标产物得以完成,经测定分子量,TM值等完全达到实验要求。
生工的引物合成这一部分主要是以上的步骤!平时注意的地方主要有试剂用量,每次引物在质量检测中如果出现问题则仔细寻找问题根源加以解决。