使用福尔马林固定液的几个问题及解决方法
植物浸制标本的原色保持
植物浸制标本的原色保持1．标本绿色的保持方法方法1：将醋酸酮缓慢加入到50％的冰醋酸中制成饱和溶液，然后将此溶液按1∶4的比例稀释。
随后加热，当加热到80℃的时候，把绿色标本投入到溶液中，继续加热。
当绿色标本逐渐由绿色变黄、变褐，最后又变绿时即可停止加热。
这样绿色标本便可置于福尔马林固定液中长期保持绿色。
方法2：将标本置于硫酸铜、福尔马林溶液中，浸泡10-20天后，再更换一次硫酸铜与福尔马林溶液并浸泡10天后取出，用清水冲洗干净，再用福尔马林固定液可长期保持绿色。
方法3：以20％的氯化镁浸泡1-4天，然后分别用30％、50％、75％的氯化镁溶液依次浸泡，每次浸泡5-7天(pH值为5.8左右)，再用85％、95％、100％的氯化镁溶液依次浸泡，每次7-10天。
最后，在过饱和氯化镁固定溶液中保持原色。
(引自《生物》杂志，此法还可以保持花和果实的其他颜色)大凡绿色植物浸制标本制作过程中，浸泡或浸渍时间是关键。
浸渍时间的长短，要视植物老嫩程度和种类而定。
一般地说，植物幼苗浸3～5天即可，而成熟的植物则需浸8～14天。
最妥善的办法是从浸泡后的第三天起，每天检查一次，见到植物褪成黄色而又重新变成绿色时，即可取出。
用清水将浸泡液洗净，然后放到5％的福尔马林溶液中保存，标本就制成了。
2．标本红色的保持方法(1)固定液配制：4ml 40％的福尔马林溶液，3g硼酸，400ml水。
(2) 保存液配制：20ml 40％的亚硫酸，10g硼酸，580ml水。
(3) 保存方法：把红色果实浸泡在固定液中1-3天，等到果实变成深色的时候取出，用注射器向果实里注射少量的保存液，然后固定在保存液中，果实逐渐恢复本色。
这种方法还可以预防标本腐烂。
对红绿交错的果实，如剖开的红瓤西瓜、红辣椒，或是植物的红色根、茎，如红萝卜、红皮甘蔗等，可以浸泡在质量浓度为0.05g ／ml的硫酸铜溶液里约10天左右，当标本由红变褐时取出。
漂洗后移到盛有质量浓度为0.01～0.02g／ml的亚硫酸溶液的标本瓶里保存。
固定液和组织的比例依据
固定液和组织的比例依据
固定液和组织的比例是根据所需固定的组织的大小和类型来确定的。
一般而言，常用的固定液和组织的比例是10:1，即10部分的固定液与1部分的组织混合。
然而，不同的组织类型可能需要不同的比例。
以下是一些常用的组织固定液比例：
1. 大体组织：对于较大的器官或动物组织，通常使用10%缓冲福尔马林溶液（10% buffered formalin）固定。
这意味着将10部分的缓冲福尔马林溶液和1部分的组织混合。
2. 细胞和细胞簇：对于大部分细胞和细胞簇的固定，一般使用4%缓冲福尔马林溶液。
这意味着将4部分的缓冲福尔马林溶液和1部分的细胞或细胞簇混合。
3. 骨骼组织：对于骨骼组织的固定，常用的固定液是10%缓冲福尔马林溶液或中性缓冲福尔马林溶液。
需要较长的固定时间。
除了以上常用的固定液比例外，还有其他特殊组织和细胞类型可能需要不同的固定液比例。
此外，固定时间和固定温度也会影响固定效果，需要根据具体实验要求进行调整。
因此，最好根据实验需要和参考相关文献确定合适的固定液和组织比例。
石蜡切片免疫组化中抗原修复方法的选择和注意事项
石蜡切片免疫组化中抗原修复方法的选择和注意事项免疫组织化学（Immunohistochemistry，IHC）是一种通过抗原抗体特异性反应来检测并定位蛋白的方法，目前广泛应用于组织病理学诊断。
其中，抗原修复（Antigen repair，AR）是免疫组化过程中不可忽略的关键步骤。
原因是组织经福尔马林等固定液固定和石蜡包埋后，抗原决定簇与核酸易发生交联，引起蛋白质空间结构的改变，导致抗原决定簇被封闭，使抗原与抗体的结合点减少，从而令抗原的阳性检测率及着色强度相对减弱。
这种交联在高温加热或是蛋白酶水解的作用下会发生可逆反应，恢复蛋白的原有构象，这一过程就是抗原修复。
一AR常用的方法是否进行AR、采用什么方法进行AR 要按抗体说明书的要求决定，不同的抗体选择适合该抗体的AR方法，有的要求高温修复，有的要求酶消化。
➤微波法方法：切片于抗原修复液中经微波炉内微波辐射5-20min。
它是利用微波每秒以24亿5千万次的快速运动产生瞬间热。
微波辐射可以使各物质分子作极性运动，促进形成的醛键断裂开。
分子间运动所产生的瞬间热可导致甲醛固定后的蛋白的变性。
该法的特点是：产热迅速，容易操作，但也容易引起抗原修复液的沸腾，使得修复液温度不稳定。
➤高温高压法方法：切片于抗原修复液中在高压锅中加热至沸腾，盖上压力阀至喷汽后持续1-5min。
该法利用高压和高热来促进醛键的断裂，当加热至开锅，加上高压阀后，汽体喷出，此时的温度在100℃-120℃之间，而高压也易使蛋白变性。
➤真空负压法方法：切片于抗原修复液中在预先调至95℃的真空负压干燥箱中真空负压处理5-10min。
这是一种操作简单，效果特佳，温度恒定，能一次性处理大量切片的方法。
该法特点是分子在失重的情况下四处飘游，可以增加各分子间的碰撞机会，而且恒定的温度能保证使甲醛固定的蛋白发生变性又不会使抗原修复液达到沸点。
➤酶修复法方法：0.10%胰蛋白酶或0.40%胃蛋白酶在室温或37℃消化切片15-30min。
10中性福尔马林
产品名称：10%中性福尔马林组织固定液简介：10%中性福尔马林组织固定剂，是由10%中性福尔马林溶液（即4%甲醛）、磷酸盐缓冲液等组成。
用作固定的浓度为10%的福尔马林，实际含甲醛4%，10%福尔马林渗透力强，固定均匀，对组织收缩少。
对脂肪、神经及髓鞘、糖等固定效果好，是最常用的固定剂。
配制方法：在病理科、手术室中运用，10%福尔马林固定液具备两个条件。
条件一：福尔马林在溶液中的含量浓度为10%（即甲醛含量为4%），甲醛在水中最高浓度为40%，即10%的中性福尔马林溶液，其中甲醛含量即是10%的40%甲醛。
10%中性福尔马林固定剂条件二：10%中性福尔马林溶液的酸碱度为PH值7.2~7.4之间。
调配标准符合国家标准，具有完善的标准体系。
配制过程中特别注意事项：原料很重要，水、甲醛、磷酸二氢钠，磷酸氢二钠。
一般厂家很不注重水，自来水，蒸馏水、去离子水都不太标准。
康乃欣公司用的水是这样一个流程：自来水经过四次中性树脂过滤，目的是去除水中杂质和离子，接着经过紫外线灭菌，经过微纳米中性树脂过滤去菌体尸体，最后经过双重蒸馏后得到的水，才用于调配10%中性福尔马林固定剂。
康乃欣用的40%浓度甲醛，磷酸二氢钠、磷酸氢二钠都是分析醇。
在配制10%中性福尔马林固定液使用车间，都是三十万级车间、机械流水线灌装。
康乃欣质量标准高于国家标准，采用国际通用标准。
产品用途：维持保存、固定细胞和组织固原有的形态和结构。
适用范围：用于人体、动物组织标本的固定。
产品成分：10%中性福尔马林溶液（即4%甲醛）、磷酸盐缓冲液等。
产品特点：渗透力强、固定均匀；对组织收缩少，尤其对神经及髓鞘、脂肪、糖等固定效果最佳。
操作步骤：1、先在组织固定剂上编号及写上相关信息；2、将离体组织及时浸入固定剂中，离体时间一般不超多5分钟，固定时间为2—12小时。
产品说明：1、组织标本的体积与液体的比例为1:4，此值效果最佳；不大于1:3.2、小块组织标本﹙小于1.2cm×1.2cm×0.6cm）及各种活检验组织标本，固定2—12小时即可，可直接进行切片、脱水、染色、镜检等操作。
使用福尔马林固定液的几个问题及解决方法
使用福尔马林固定液的几个问题及解决方法
福尔马林固定液是一种广泛使用的无毒的固定液，它的主要作用是将组织片在玻片
上固定，以便进行检测。
尽管它在研究领域是有效的，但由于许多因素，这种化学物质也
存在着一些问题。
首先，福尔马林固定液很容易破坏样本，尤其是在一些复杂的实验中。
有时，它会分
解样本，从而影响样本中活性物质的完整性。
其次，福尔马林固定液容易分解，使样本变质。
虽然微生物细胞在极端pH条件下可以稳定存在，但福尔马林固定液的极点是非常脆
弱的，它只在pH4-7之间有效，pH偏离此范围会导致样本变质。
另外，福尔马林固定液本身就非常挥发，因此在使用时它需要定期进行更换，以确保其有效性。
为了解决这些问题，研究人员需要采取一些措施来提高福尔马林固定液的质量。
首先，要在实验中使用新的成分和技术，以减少溅射，从而避免样本被损坏。
其次，选择恒定的pH 值，可提高固定质的稳定性，从而有效地保护样本的完整性。
此外，加入某些稳定剂
也可以有效地防止挥发，从而降低固定质的流失。
最后，定期检查固定液的PH值，有助
于避免变质或失效。
总之，福尔马林固定液是一种重要的化学物质，但需要采取一定的措施来解决一些潜
在的问题，如溅射对样本破坏、产物稳定性差以及挥发性失效等，以保证实验进行顺利。
中性缓冲福尔马林
安徽雷根生物技术有限公司 组织固定液说明书【产品名称】组织固定液【包装规格】货号：DF0111包装规格分别为：500ml、5000ml。
【预期用途】用于新鲜组织标本的固定。
【检验原理】固定的目的在于保护细胞和组织的原有形态结构，固定剂能阻止内源性溶酶体酶对自身组织和细胞的自溶、抑制细菌和霉菌的生长，通过凝固、生成添加化合物等使蛋白质内部结构发生改变，从而使酶失活。
固定液主要分为醛类固定液、汞类固定液、醇类固定液、氧化剂类固定液、苦味酸盐类固定液等，较为常用的是醛类中的福尔马林、醇类中的乙醇。
本组织固定液主要由甲醛、磷酸盐组成，该固定液适合于绝大多数组织的固定，属于中性福尔马林固定液，pH接近于中性。
【主要组成成分】试剂组成主要成分组织固定液甲醛、磷酸盐【储存条件及有效期】5℃～35℃保存，原包装未开封固定液的有效期为24个月，在有效期内的已开封固定液建议在开封后6个月内使用完，每次用后及时拧紧瓶盖，以免挥发或变质。
【样本要求】组织尽量新鲜。
【检验方法】l、一般标本固定时间控制在1～4小时/mm，大标本应适当延长固定时间；2、固定好的组织，可在10%福尔马林固定液或70%乙醇中长期保存。
【检验方法的局限性】仅限于病理组织内容物固定。
【注意事项】l、避免过度延长固定时间，否则引起生物大分子过度交联，取材厚度不同，固定时间也不同。
2、固定液的容量应足够，一般固定液与组织块的体积比率应大于10:1。
3、温度对固定的影响很明显，提高温度可以加速固定作用，但温度不宜过高。
4、本产品仅用于体外诊断，应由专业人士使用及进行结果的判读。
5、使用前应详细阅读说明书，并做好个人卫生防护，在有效期内使用，生产日期、生产批号和失效日期见包装。
6、用后应按医院或环保部门要求处置废弃物。
【基本信息】备案人/生产企业名称：安徽雷根生物技术有限公司住所：淮北凤凰山经济开发区凤冠路三期标准化厂房三号厂房。
组织固定处理与包埋常见问题对策
组织固定处理与包埋常见问题对策组织固定处理与包埋是组织学基础实验的重要步骤，通过这一步骤可以使样本变得易于切片，并且能够持久保存。
不过在组织固定处理和包埋过程中，常会出现一些问题，我们需要采取相应的措施来解决这些问题，下面将详细介绍。
1. 组织过度固定：组织过度固定会导致标本变硬，难以切开，并且染色效果不好。
解决方法：对于异步性细胞，如肝、肾等组织，应采用较轻的固定方法，如乙醛、触发剂或冷冻等方法进行固定处理。
对于快速增殖的细胞，应使用更强的固定方法，如福尔马林、乙酸铅等方法进行固定，可以增加固定效果。
2. 组织固定不足：组织固定不足会导致组织在切片和染色过程中变形或脱离，影响最后的结果。
解决方法：应根据组织类型选择合适的固定方法，在固定过程中时间不宜过短。
对于大块切片，应保证固定液覆盖整个切片的表面。
对于不同的组织类型，还可以采用适当的预处理方法，如高压处理、冻切处理等方法，可以改善固定效果。
3. 细胞核破裂：细胞核破裂会导致核染色质扩散或缩小，影响染色效果。
4. 交叉污染：在固定过程中，不同样本之间会互相污染，导致结果出现误差。
解决方法：要遵循严格的实验操作规范，采用合适的消毒措施，避免不同样本之间发生交叉污染。
1. 组织断裂：组织在包埋过程中受到挤压或剪切力，容易断裂，影响切片质量。
解决方法：在包埋过程中应尽量避免施加压力，均匀地分布组织样本，避免组织之间出现空隙。
在包埋前，对组织进行预处理，包括脱水和浸透等操作，可以使组织更牢固地与包埋剂结合，避免断裂现象的发生。
2. 包埋剂不适：不同的包埋剂对不同的样本有不同的适应性，否则会导致样本变形或脱落。
解决方法：选择合适的包埋剂，根据样本性质和实验需要进行评估和比较，选择最佳的包埋剂。
对于不同的组织类型，还可以使用不同的包埋方法，如冷冻切片、半薄切片等，以提高样本质量。
3. 包埋剂固化不完全：包埋剂固化不完全会导致切片过程中出现裂纹或碎片。
解决方法：控制包埋剂的温度和时间，使包埋剂充分固化。
固定液
1．经过固定的组织可保持在10%福尔马林或70%乙醇中。
2．染色前脱掉组织中的苦味酸①自来水冲洗②50%乙醇③或70%乙醇饱和碳酸锂
乙醇BOUIN’S液（DUBOSCQ-BRAZIL FLUID）
用途：用于固定肾活检，组织学制备固定液。
试剂：
乙醇Bouin’s贮存液:
80%乙醇750.0ml
甲醛300.0ml
步骤：
1．活检标本要立即放入Hollande’s固定剂中，标本容器上注明时间。
2．标本完成固定后保持在70%乙醇中。
3．不能让Hollande’s液固定的标本与磷酸缓冲福尔马林接触，否则会出现蓝色沉淀。
ORTH’S液
用途：用于证实肾上腺胞浆中嗜络微粒，这种证明可能对嗜络细胞瘤的诊断很重要。不是一种好的多用途的固定剂。
苦味酸5.0g
充分混合，液体稳定性2年，标明配制日期。
工作液：
贮存液70.0ml14.0ml
醋酸5.0ml10.0ml
使用前加醋酸。
固定时间：1～4小时。
步骤：
1．把新鲜组织标本放进乙醇Bouin’s工作液中。
2．充分固定后把组织移到70%的乙醇中。
HOLLANDE’S固定液
用途：作为胃肠和前列腺活检基本固定剂，这种固定剂让H.E染色更清晰，它“软化”组织避免切片脆裂。苦味酸会溶解掉红细胞。
ZENKER’S液
用途：Zenker’s液是一种核固定剂。该液是细胞学及病理学常用的固定剂，对细胞核固定最好，最适合于造血和网状内皮组织的固定。也常作为三色染色的组织固定剂，在三色染色中还作为媒染剂使用。但对于含血量较多的组织标本尽量不要选Zenker’s液固定。
试剂：
Zenker’s贮备液：