常用实验动物的比较解剖学及其脏器的病理取材方法
常用实验动物脏器的病理取材方法
上海市计划生育科学研究所药理毒理学研究室 中国生育调节药物毒理检测中心
刘向云 阎晗 杨荣富 何桂林 谢琛静 孙祖越
内容提纲
一、实验动物器官取材的一般原则
二、常用实验动物的各脏器比较解剖学和取材位点
实验动物器官取材的一般原则（一）
1. 若无肉眼可视病变 2. 若有肉眼可视病变
呼吸系统
• 肺脏取材： 取两肺下叶组织各一块（包括肺膜），大 小为1.5×1.5×0.5cm3。若有病变可根据病变大小、多 少加取组织块。
• 气管取材：气管任意一段1.0-1.5cm。 大动物1.5×1.5×全层。
泌尿系统
• 肾脏：两侧各取一块组织，包括主要结构， 大小为1.5×1.5×0.5cm3。 • 膀胱：取膀胱组织一块包括全层结构， 大小为1.5×1.5cm2。 小动物整体取材。
神经系统
大脑
小脑
脊髓
垂体
1.5×1.5×0.5cm3
1.5×1.5×0.5cm3， 包括小脑中间部
颈、胸和腰髓三段 0.5－1.0cm
整体取材
大脑中央前、后回各一块组织 大小为1.5cm×1.5cm×0.5cm
垂体整体取材
欢迎批评指正！
可代表性取材，即重点参考下文第2部分。 取准标本病变部位，切勿漏取； 全面反映出各脏器病变，显示病变全貌； 若有肿瘤，包括肿瘤转移部位、切缘等； 全面描述病变状况，由表及里观察病变状况； 测重量、记录部位和脏器重量。
实验动物器官取材的一般原则（二）
3. 根据实验方法、目的、病变、特殊病变等尽量多取材 。选取的组织材料 要包括各脏器的主要结构 。
免疫系统
循环系统
泌尿系统
呼吸系统
(畜产检验)实验一 家禽解剖实验
实验一家禽解剖实验一、试验目的：通过对鸡的解剖，了解和认识健康家禽的外观、皮肤、各个脏器所处的位置、脏器的外形、颜色、脏器的组织结构，以及家禽各部位的淋巴结等，为进一步进行动物检验打下实践基础。
二、实验材料：以市场上购买的健康、宰杀去毛后的光鸡作为解剖对象。
三、实验用具：不锈钢盆、解剖刀、解剖剪、照相机（自备）。
四、实验步骤：1、颈部淋巴结：先将颈部皮肤延纵径解开、剥落，观察颈部皮下淋巴结，观察食管、气管和嗉囊。
仔细观察所处位置、颜色、外形、结构，必要时剪开观察内部状况。
并用相机拍照。
2、内脏：先延纵线剪开腹部，再剪开胸部肌肉，最后剪开胸骨，向两边拨开，观察各个脏器、淋巴结，并拍照。
注意观察其所处位置、颜色、外形、结构，必要时剪开观察内部状况。
3、内脏观察内容：心、肝、脾、肺、肾、肌胃、腺胃、胆囊、胰腺、卵巢、输卵管、肠道等。
五、实验结果列表说明所观察内容的颜色、外形、内部结构，并附上图片。
最好带上分析和自己的看法。
（仅供参考）淋巴结：圆形或卵圆形食管：从口腔通至腺胃肠，白色软质肌质管气管：从咽喉通至肺部白色由多个软骨环组成嗉囊：与食道并行，不进入体腔白色膨大部，具有伸缩性，，内部暂时贮存食物2、内脏心位于胸腔的后下方，夹于肝脏两叶之间红褐色圆锥形，肝位于腹腔前下方，浅巧克力色较大，分左右两大叶。
脾位干腺胃右侧。
红褐色，较小，呈圆形，肺紧贴于胸腔，嵌入肋骨之间，并与气囊相通。
浅红色能运动缩张，背侧有肋沟，腹侧光滑肾位于脊椎两侧，嵌于椎骨和额骨形成的凹窝处，呈红褐色，质软而脆，鸡肾分叶，即前、中、后三个肾叶。
肌胃腺胃胆囊胰腺卵巢输卵管肠道讨论（李忠晓 200630610313）在鸡病的诊疗过程中,解剖具有直观、简便、快速、费用低廉的特点。
鸡群发生异常时,早发现、早诊断、早治疗是控制疾病蔓延的有效措施,而快速诊断尤为重要。
1 解剖时的注意事项1．1要注意个人防护,重点是手与口的防护,就是戴口罩与戴手套,穿好工作服或防护服,解剖后还要注意手的消毒与清洁。
实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项
实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项[取材内容]大鼠肺组织、大鼠肝脏组织、大鼠胰腺组织、大鼠胃部组织、大鼠空场回肠组织、大鼠肾组织、门静脉血、淋巴组织、大鼠心脏。
[试剂及药品]戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3戊二醛磷酸盐缓冲液(PBS0.01mol/LP pH7.4)或4戊二醛、肝素钠、器械液器械清洗消毒液[器材]备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离2ml、1.5ml 、冻存管、肝素锂真空采血管、微量移液器、高速离心机、注射器10ml、5ml、2ml、无菌手套、冰箱、冰盒、液氮罐[取材动物]大鼠[取材步骤]1. 取材前夜禁食，自由饮水。
2. 小鼠称重，按照50mg/kg的比例用5ml的注射器配合针头抽取戊巴比妥钠备用。
3. 正左手的小指和无名指抓住大鼠的尾巴，另外三个手指抓住大鼠的颈部，使大鼠头部向向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
右手持注射器，从腹部近腿根处刺入后再腹部皮下穿行深入，动作轻柔，缓慢注射。
注射完药物后，缓缓拔出针头，手指按住针口对小鼠腹部轻柔按摩，促进麻醉药物的吸收，掐小鼠尾部检测小鼠麻醉程度。
4.将小鼠四肢固定于解剖台上，暴露小鼠整个胸部和腹部，修剪去腹部毛发，75%酒精消毒。
5.沿腹侧正中线自阴茎上源由下而上剪开腹部皮肤直至剑突，向两侧钝性剥开皮肤与皮下组织，暴露腹壁浅肌层。
沿白线钝性分离腹壁肌肉，剪开腹膜，暴露腹腔，将肝脏向上翻起，显露肝门。
6.门静脉血采集：将剪成斜口的聚乙烯管尖端背向肝门方向插入门静脉，抽取门静脉血2ml，无创血管夹夹闭门静脉止血。
将抽取门静脉血加入一次性离心管低温静置过夜，4℃离心，3000-3500/min，10分钟，吸出上清液，分装，-80摄氏度保存备用。
实验动物病理标本的标准化取材和量化诊断方法
根据需要计数l0-20个40倍镜视野。
(5)确定病灶大小及积分用40倍镜头进行观察。先将镜头的圆周与观察的病灶边缘相切，再观察该病灶在这一视野中的比例。≤40倍镜头视野的为小灶病变，积1分。＞＜的为小片病灶积2分。＞的为大片病灶积3分。计数所有病灶的积分。
2切片病变的定量观察
(1)常规HE染色，切片厚度应≤4μm。
(2)光镜下首先区分有否特异性病变及范围，然后由脏器一端向另一端进行整体观察和描述。
(3)观察小动物脏器有否肿大、增生，用l0倍镜由一端开始计数该脏器包含的l0倍镜镜头视野数，或计数整个切片中功能单位数。如脾生发中心、胸腺小叶、肝小叶、肾小球及整个切片中病变灶数量。
(6)实验动物肿瘤发生率的计算：
动物肿瘤的组织分化常不明显，在长期毒性试验或诱癌实验中出现的肿瘤不论良、恶性均计入肿瘤发生数，并计算肿瘤发生率。
xx比较医学杂志
1.动物的处死、组织的固定和取材
(1)小动物每试验组6-10只进行病理检验。大动物病理检验数依要求而定。动物处死前禁食12 h。均用麻醉放血法处死。
(2)按实验要求的顺序打开胸、腹腔，摘取脏器并准确称重。计算脏器系数。摘取时不可损伤所取脏器。心脏不挤压心腔内血块，肝脏分叶固定，肾脏去除包膜。除特殊要求外，均固定于10％中性甲醛溶液中。固定液体积应1倍于所固定脏器，组织须定时翻动。脏器固定24 h后即可取材，再固定48 h即可进行脱水、包埋。
取材时与心肌纤维长轴平行。肝：
小动物在肝脏上缘处与肝表面垂直作矢状切，应包括肝门血管及胆囊。每只动物至少取三叶肝。
常用实验动物的了解和解剖器械的使用
常用实验动物的了解和解剖器械的使用一、常用实验动物常用的实验动物有蟾蜍、小白鼠、大白鼠、豚鼠、猫、兔和狗等。
在医学实验中，常常根据不同的实验目的而选用不同的动物进行实验研究。
例如，蟾蜍可以用于观察离体心脏搏动情况的实验，小白鼠常用于样本很大的实验(如药物的半数致死量的测定等)，猫常用于测定脑内电位的实验，而狗是局解手术中常用的实验动物。
在我们细胞生物学实验中，除应用培养细胞外，最常用的动物是蟾蜍和小白鼠，下面对其特点及基本处置做一简单的介绍。
蟾蜍蟾蜍是两栖类动物，由于其取材方便，常用于各种实验。
其细胞较哺乳类动物的细胞大得多，因此常用于观察细胞形态的实验。
1．雌雄鉴别通常雄性蟾蜍较雌性的为小，且在其前肢的l～3趾基部有被称为婚垫的黑疣。
2．捉拿及处死方法：常用捣髓法处死蟾蜍，即用解剖针捣毁其脑组织和脊髓。
具体方法是，左手握住蟾蜍的身体和四肢，使其腹部贴着掌心，食指压住蟾蜍头部前端使其尽量腹屈。
在头与躯干之间可触及一凹陷(即枕骨大孔所在处)，右手持解剖针直插入此凹陷约l～2mm，随即将针尖转向头侧插入颅腔捣毁脑组织。
然后将解剖针抽回并转向尾侧刺入脊椎管内捣毁其脊髓。
如此直至其四肢松软，呼吸消失为止。
小白鼠小白鼠是哺乳动物，是最为常用的实验动物。
1．捉拿方法：将小白鼠放在鼠笼盖铁网上，用右手持其尾巴向后拉，小鼠则会尽力向前蹬。
用左手的拇指和食指抓住其头顶部皮肤，然后用左手小指与手掌之间夹住其尾巴。
2．处死方法：处死应以安乐死为原则，即使之无痛苦而迅速死亡。
常用的方法有颈椎脱位法，断头法和二氧化碳吸入法等。
断头法需用特殊的断头器，二氧化碳吸入法则将小鼠放入盛有二氧化碳的容器内即可。
颈椎脱位法的具体方法是：左手拇指和食指按住小白鼠的头部，左手捉住其尾巴迅速向后猛拉，使其颈椎脱位而立即死亡。
解剖动物内脏实验报告
一、实验目的1. 通过对动物内脏的解剖，了解动物内脏器官的结构和功能。
2. 培养观察和识别动物内脏器官的能力。
3. 学习和掌握动物解剖的基本方法和技巧。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：小白鼠（雄性）2. 实验器材：解剖盘、手术刀、解剖剪、镊子、解剖针、解剖针头、解剖放大镜、解剖图谱、生理盐水、75%酒精、碘酒、消毒棉签等。
三、实验步骤1. 解剖准备：将小白鼠处死，然后用生理盐水洗净其体表，置于解剖盘上。
2. 观察外形：仔细观察小白鼠的外形，了解其头、颈、躯干、四肢、尾等部位的结构。
3. 解剖皮肤：用手术刀在小白鼠的腹部做一横切口，用解剖剪剪开皮肤，暴露出腹部肌肉。
4. 解剖肌肉：沿腹中线切开肌肉，用镊子将肌肉向两侧轻轻拉开，暴露出内脏器官。
5. 观察内脏器官：- 消化系统：观察胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊、胰腺等器官的位置、形态和结构。
- 呼吸系统：观察气管、支气管、肺等器官的位置、形态和结构。
- 循环系统：观察心脏、血管等器官的位置、形态和结构。
- 泌尿系统：观察肾脏、输尿管、膀胱等器官的位置、形态和结构。
- 生殖系统：观察睾丸、卵巢、输卵管、子宫等器官的位置、形态和结构。
6. 观察血管和神经：用解剖放大镜观察血管和神经的分布情况，了解其与器官的连接关系。
7. 解剖完毕：将内脏器官按顺序摆放好，用碘酒和酒精消毒，然后进行清洗和干燥处理。
四、实验结果1. 消化系统：小白鼠的消化系统由胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊、胰腺等器官组成。
胃呈囊状，小肠分十二指肠、空肠和回肠，大肠分盲肠、结肠和直肠，肝脏呈红褐色，胆囊呈囊状，胰腺呈粉红色。
2. 呼吸系统：小白鼠的呼吸系统由气管、支气管和肺组成。
气管呈管道状，支气管呈树枝状，肺呈海绵状。
3. 循环系统：小白鼠的循环系统由心脏、血管组成。
心脏呈红色，分为四个腔室，血管呈管状，分布全身。
4. 泌尿系统：小白鼠的泌尿系统由肾脏、输尿管、膀胱组成。
肾脏呈红褐色，输尿管呈管状，膀胱呈囊状。
动物内脏标本实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉动物内脏的结构和功能。
2. 掌握动物内脏标本的制作方法。
3. 通过观察动物内脏标本，加深对动物解剖学知识的理解。
二、实验原理动物内脏标本的制作是通过对动物内脏进行解剖、清洗、固定、染色等步骤，使其保持原有的形态和结构，便于观察和研究。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：小白鼠（或其他实验动物）、解剖刀、剪刀、镊子、解剖板、解剖针、生理盐水、福尔马林、酒精、石蜡、切片机、显微镜等。
2. 实验仪器：解剖显微镜、显微镜、投影仪、数码相机等。
四、实验步骤1. 解剖小白鼠：在解剖显微镜下，沿小白鼠腹中线切开皮肤，分离肌肉，暴露内脏器官。
2. 清洗内脏：用生理盐水清洗内脏，去除血液和杂质。
3. 固定内脏：将清洗干净的内脏放入福尔马林溶液中浸泡24小时，使内脏固定。
4. 染色：取出固定的内脏，用苏木精-伊红染色液染色，使内脏结构更加清晰。
5. 切片：将染色后的内脏进行切片，切片厚度为5-10微米。
6. 观察：在显微镜下观察切片，观察内脏器官的形态、结构、功能等。
五、实验结果与分析1. 心脏：心脏由心肌构成，分为四个腔室：左心房、左心室、右心房、右心室。
心脏是血液循环的动力器官，负责将血液泵送到全身各个部位。
2. 肺：肺由肺泡和支气管组成，是呼吸系统的主要器官，负责氧气的吸入和二氧化碳的排出。
3. 肝脏：肝脏是人体最大的实质性器官，具有代谢、解毒、储存、分泌等功能。
4. 胃：胃是消化系统的重要器官，负责储存和消化食物。
5. 肠道：肠道是消化系统的主要器官，负责吸收营养和水分，排出废物。
六、实验讨论1. 通过本次实验，我们了解了动物内脏的结构和功能，加深了对动物解剖学知识的理解。
2. 在实验过程中，我们掌握了动物内脏标本的制作方法，为后续的学习和研究奠定了基础。
3. 实验过程中，需要注意以下几点：- 操作要轻柔，避免内脏器官损伤。
- 清洗内脏时要彻底，去除血液和杂质。
- 固定内脏时要充分，确保内脏保持原有形态。
小鼠解剖取肝脏实验报告
一、实验目的1. 学习小鼠解剖技术；2. 观察小鼠肝脏的结构；3. 掌握肝脏取样的方法。
二、实验原理小鼠肝脏是重要的解毒器官，具有代谢、储存、合成等多种功能。
通过解剖小鼠，观察其肝脏的结构，有助于了解肝脏的生理功能和病理变化。
三、实验材料1. 实验动物：成年小鼠；2. 实验仪器：解剖盘、剪刀、镊子、解剖针、解剖刀、注射器、生理盐水、酒精、碘酒、消毒纱布、载玻片、显微镜等；3. 实验试剂：肝素钠、甲醛、酒精、碘酒等。
四、实验步骤1. 实验动物处死：采用颈椎脱位法处死小鼠，处死过程中注意动作轻柔，避免动物挣扎。
2. 解剖皮肤：将小鼠尸体置于解剖盘上，用剪刀剪开腹部皮肤，暴露腹壁肌肉。
3. 分离腹壁肌肉：用剪刀剪断腹壁肌肉，暴露腹腔器官。
4. 观察肝脏：观察小鼠肝脏的位置、大小、颜色、形状等。
5. 肝脏取样：用解剖针在肝脏上刺一个小孔，插入注射器抽取肝素钠生理盐水，冲洗肝脏，使肝脏表面无血液。
再用剪刀将肝脏剪成小块，放入装有甲醛的容器中固定。
6. 肝脏切片：将固定好的肝脏取出，用刀片切成薄片，放置在载玻片上。
7. 肝脏染色：用碘酒染色肝脏切片，然后用显微镜观察。
8. 数据记录：记录肝脏的位置、大小、颜色、形状等特征。
五、实验结果与分析1. 肝脏位置：小鼠肝脏位于腹腔右侧，呈红褐色，质地柔软。
2. 肝脏大小：小鼠肝脏长约2-3cm，宽约1-2cm。
3. 肝脏颜色：小鼠肝脏呈红褐色，表面光滑。
4. 肝脏形状：小鼠肝脏呈不规则形，边缘有锐角。
5. 肝脏显微镜观察：肝脏细胞排列紧密，肝细胞呈多边形，有明显的细胞核。
六、实验结论通过本次实验，我们成功解剖了小鼠，观察了小鼠肝脏的结构，掌握了肝脏取样的方法。
实验结果表明，小鼠肝脏位于腹腔右侧，呈红褐色，质地柔软，具有代谢、储存、合成等多种功能。
七、实验讨论1. 在解剖过程中，注意动作轻柔，避免动物挣扎，以免影响实验结果。
2. 肝脏取样时，注意使用肝素钠生理盐水冲洗肝脏，以防止血液污染。
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可代表性取材，即重点参考下文第2部分。 取准标本病变部位，切勿漏取； 全面反映出各脏器病变，显示病变全貌； 若有肿瘤，包括肿瘤转移部位、切缘等； 全面描述病变状况，由表及里观察病变状况； 二）
3. 根据实验方法、目的、病变、特殊病变等尽量多取材 。选取的组织材料 要包括各脏器的主要结构 。
生殖系统
雌性生殖器官
雄性生殖器官
卵巢
子宫
睾丸
附睾
前列腺
宫颈和子宫角
两侧睾丸
两侧整体取材
附睾尾部
1.5cm ×1.5cm ×全层
1.5×1.5×0.5 cm3
整体取材
常用实验动物子宫比较
内分泌系统
• 甲状腺：因其较小应整体取材（包括 甲状旁腺）。 • 肾上腺：两侧肾上腺整体取材、固定。
循环系统
4. 应避免选取因解剖失误造成的凝血块和坏死组织等。
5. 取病理材料时勿压（组织变形）、刮抹（组织缺损）、冲洗（红细胞和 其他细胞吸水肿胀破裂）。 6. 所取材料应尽量保持肉眼标本的完整性，不宜过厚或过薄，一般认同 1.5×1.5×0.5cm3的取材。
常用实验动物的各脏器解剖和取材
神经系统
生殖系统
呼吸系统
• 肺脏取材： 取两肺下叶组织各一块（包括肺膜），大 小为1.5×1.5×0.5cm3。若有病变可根据病变大小、多 少加取组织块。
• 气管取材：气管任意一段1.0-1.5cm。 大动物1.5×1.5×全层。
泌尿系统
• 肾脏：两侧各取一块组织，包括主要结构， 大小为1.5×1.5×0.5cm3。 • 膀胱：取膀胱组织一块包括全层结构， 大小为1.5×1.5cm2。 小动物整体取材。
• 心脏：左心室取一块组织应包括瓣膜、心室壁 各层结构大小为1.5×1.5×0.5cm3。 • 主动脉：升主动脉一段1－1.5cm。
主动脉取材1.5cm长
免疫系统
• 脾脏：取1－2块组织，包括包膜， 大小为1.5×1.5×0.5cm3。 • 淋巴结：一般取肠系膜淋巴结和给药局部淋巴结， 较小淋巴结整体取材固定， 较大淋巴结切取1.5×1.5×0.5cm3的组织块。 • 胸腺：取胸腺组织一块并带包膜， 大小为1.5×1.5×0.5cm3。
常用实验动物的比较解剖学 及其脏器的病理取材方法
上海市计划生育科学研究所药理毒理学研究室 中国生育调节药物毒理检测中心
刘向云 阎晗 杨荣富 何桂林 谢琛静 孙祖越
内容提纲
一、实验动物器官取材的一般原则
二、常用实验动物的各脏器比较解剖学和取材位点
实验动物器官取材的一般原则（一）
1. 若无肉眼可视病变 2. 若有肉眼可视病变
免疫系统
循环系统
泌尿系统
呼吸系统
内分泌系统
消化系统
消化系统
胃
肠
肝
胰腺
1.5×1.5×全层cm3
十二指肠、小肠和
1.5×1.5×0.5 cm3
1.5×1.5×0.5cm3
大肠各一段1-2cm
大动物1.5×1.5×全层cm3
常用实验动物的肝脏比较
犬
大鼠
小鼠
猴
取左、右最大肝叶的一块组织 1.5cm×1.5cm×0.5 cm
神经系统
大脑
小脑
脊髓
垂体
1.5×1.5×0.5cm3
1.5×1.5×0.5cm3， 包括小脑中间部
颈、胸和腰髓三段 0.5－1.0cm
整体取材
大脑中央前、后回各一块组织 大小为1.5cm×1.5cm×0.5cm
垂体整体取材
欢迎批评指正！