大鼠血糖实验汇总

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糖尿病大鼠在不同血糖浓度下伤口愈合情况实验研究

糖尿病大鼠在不同血糖浓度下伤口愈合情况实验研究

糖尿病大鼠在不同血糖浓度下伤口愈合情况实验研究曾文超,巩茹,郭洪敏,巩超,王福宁,赵阳,岳震(山东省济宁市第一人民医院手足踝外科,山东济宁㊀272000)㊀㊀摘要:目的㊀探讨不同血糖浓度对糖尿病大鼠伤口愈合的影响.方法㊀选取普通3~4个月龄雄性大白鼠,通过链唑霉素诱导大白鼠糖尿病模型.将诱导成功的大白鼠根据胰岛素调控血糖水平分为四组,I组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在160~190m g/d L;Ⅱ组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在190~240m g/d L;Ⅲ组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在240m g/d L以上;Ⅳ组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在160m g/d L以下.手术形成创面模型.分别于伤后0(伤后当天)㊁3㊁7㊁14d处死大鼠.测量伤口愈合面积,观察创面组织病理学改变.结果㊀血糖浓度控制在160~190m g/d L时,伤口愈合速度最快,其次为血糖低于160m g/d L时,巨噬细胞无明显差异.血糖在更高水平时,伤口愈合速度明显减慢,伤口周围组织的巨噬细胞明显减少.结论㊀糖尿病大鼠在低水平高血糖浓度下有利于伤口愈合.关键词:糖尿病大鼠;血糖浓度;病理学改变;伤口愈合E x p e r i m e n t a l S t u d y o fW o u n dH e a l i n g P r o c e s s o fD i a b e t i cR a t s u n d e rD i f f e r e n t B l o o dG l u c o s eC o n c e nGt r a t i o nZ e n g W e n c h a o,G o n g R u,G u oH o n g m i n,e t a l(H a n da n dF o o t S u r g e r y D e p a r t m e n t,J i n i n g F i r s tP e o p l e'sH o s p i t a l,J i n i n g㊀272000,C h i n a)A b s t r a c t:O b j e c t i v e㊀T o s t u d y t h e e f f e c t o f b l o o d g l u c o s e l e v e l o n t h ew o u n dh e a l i n g o f d i a b e t i c r a t s.M e t h o d s㊀D iGa b e t e sm e l l i t u sm o d e lw a sb u i l t b y s t r e p t o z o t o c i n i n j e c t i o n i n m a l e r a t sa g e d3~4m o n t h s.T h ed i a b e t e sm e l l i t u s r a t s w e r ed i v i d e d i n t o f o u r g r o u p s a c c o r d i n g t o t h e l e v e l o f b l o o d g u l c o s e r e g u l a t e db y i n s u l i n.T h ew o u n dm o d e l w a s f o r m e d b y o p e r a t i o n.A f t e r w a r d s,r a t sw e r e k i l l e d a t0(t h e s a m e d a y o f i n j u r y),3,7a n d14d a y s a f t e r i n j u r y.T h ew o u n dh e a l i n g a r e aw a sm e a s u r e d,i nc o m b i n a t i o nw i t ht h eo b s e r v a t i o no f t h e p a t h o l o g i c a l c h a n g e so fw o u n dt i s s u e s.R e s u l t s㊀W h e n t h eb l o o d s u g a r c o n c e n t r a t i o nw a s c o n t r o l l e d a t160~190m g/d L,t h ew o u n d h e a l i n g r a t ew a s t h e f a s t e s t,f o l l o w e d b y a t t h e l e v e l l o w e r t h a n160m g/d Lw i t hn o s i g n i f i c a n t d i f f e r e n c e i nm a c r o p h a g e s.A t h i g h e r b l o o d s u g a r l e v e l s,t h e h e a l i n g r a t e o fw o u n d sw a sd e l a y e do b v i o u s l y,a n d m a c r o p h a g e s i ns u r r o u n d i n g t i s s u e se x h i b i t e dr e m a r k a b l ed e c r e a s e.C o n c l uGs i o n㊀I t i sb e n e f i c i a l t ow o u n dh e a l i n g a t l o wl e v e l s o f h i g hb l o o d s u g a r c o n c e n t r a t i o n i nd i a b e t i c r a t s.K e y w o r d s:d i a b e t i c r a t s;d i f f e r e n t b l o o d g l u c o s e c o n c e n t r a t i o n;p a t h o l o g i c a l c h a n g e s;w o u n dh e a l i n g㊀㊀糖尿病及其相关并发症已经成为一个公共健康问题,因为有较高的致残率及死亡率,积极预防㊁治疗糖尿病及其并发症成为一个至关重要的课题.糖尿病足近年来逐渐发展为糖尿病最重要的并发症[1G2].1/4的糖尿病患者苦于糖尿病足的困扰.糖尿病足部溃疡处置不当导致伤口不愈合,最终发展为难治性溃疡,甚至截肢.根据世界卫生组织的报告,到2030年,全球糖尿病的发病率将从1.71亿上升到3.66亿[3].本实验旨在研究糖尿病大鼠在不同血糖浓度下创面愈合情况,并与正常血糖浓度下伤口愈合情况进行比较,观察在低水平高血糖时难治性溃疡的生长愈合情况,为人类的糖尿病治疗提供参考.1㊀材料与方法1.1㊀动物准备㊀普通3~4个月龄雄性大白鼠(180~220g),生活环境为:温度(24ʃ1)ʎ,湿度45%~55%,昼夜12h 交替.独立透明鼠仓生活,食用全价营养颗粒饲料,饮用医用过滤水,所有实验操作均在上午6点至下午6点.饲养小鼠1个月,持续监测血糖,血糖值为(131.4ʃ36.2)m g/d L,雌雄动物间,各饲养单位间差异无统计学意义,正常血糖值范围可估计为60~160m g/d L.药物准备:链唑霉素由美国s i g m a公司生产,其余普通试剂均为国产.诱导及评估:单次剂量55m g/k g链唑霉素溶于柠檬酸盐缓冲液腹腔注射,诱导大白鼠糖尿病模型.10d后测量大白鼠空腹血糖,血清葡萄糖利用血糖分析仪(美国强生公司)评估.血糖水平不低于250m g/d L纳入样本范围,根据血糖水平高低分为三组,每组10只,分别给予皮下注射胰岛素基金项目:山东省医药卫生科技发展计划项目(2015W S0430)曾文超,巩茹,郭洪敏,等.糖尿病大鼠在不同血糖浓度下伤口愈合情况实验研究[J].实用骨科杂志,2019,25(2):140G142. 041 ㊀J o u r n a l o fP r a c t i c a lO r t h o p a e d i c sV o l.25,N o.2,F e d.2019㊀控制血糖,低血糖组(血糖控制在160~190m g/d L)㊁中血糖组(血糖控制在190~240m g/d L)㊁高血糖组(血糖控制在240m g/d L以上).血糖控制平稳后继续饲养1个月.动物分组:将诱导成功大白鼠根据血糖控制水平依次分为四组.I组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在160~190m g/d L;Ⅱ组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在190~240m g/d L;Ⅲ组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在240m g/d L以上;Ⅳ组:糖尿病诱导后给予胰岛素控制血糖在160m g/d L以下.各组均按照模具在相同部位给予相同面积皮肤切除.1.2㊀手术形成创面模型㊀选择的大白鼠模型均在局部麻醉下进行手术处理.麻醉药物选用5%利多卡因皮下注射,在每只大白鼠背侧去除面积约为1c mˑ1c m全厚皮,形成创面.1.3㊀术后处置㊀分别于伤后0(伤后当天)㊁3㊁7㊁14d处死大鼠,透明方格纸获取创面形状,利用O s i r i s软件进行创面愈合率测算.取创面组织标本:部分用体积分数10%甲醛固定后制成石蜡块保存,其余标本一80ħ保存待用.将石蜡标本制成薄切片,常规H E染色后,光学显微镜下观察创面组织病理学改变.统计学分析:采用S P S S13.0软件进行数据处理,所有数据以( xʃs)表示,组间比较采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义.2㊀结㊀㊀果2.1㊀伤口愈合情况㊀伤后3dⅣ组及Ⅰ组创面愈合率稍高于Ⅱ㊁Ⅲ组.但在伤后7d及14d,Ⅳ组及Ⅰ组创面愈合率明显高于Ⅱ㊁Ⅲ组,差异有统计学意义(P<0.01).Ⅰ组伤口愈合率相比Ⅳ组较快,差异有统计学意义(P<0.01,见表1).表1㊀糖尿病大鼠创伤模型术后伤口愈合情况( xʃs,mm2)组别3d7d14dⅠ组19.7ʃ2.049.8ʃ1.593.3ʃ2.0Ⅱ组10.3ʃ1.516.5ʃ2.321.5ʃ1.8Ⅲ组8.5ʃ1.913.2ʃ1.517.2ʃ2.0Ⅳ组16.5ʃ2.146.9ʃ2.189.3ʃ1.52.2㊀病理结果㊀显微镜下Ⅳ组㊁Ⅰ组与Ⅱ㊁Ⅲ组相比,皮肤组织结构更加完整,层次清晰,胶原含量较丰富,排列有序,真皮层内炎性细胞浸润少,创面炎性细胞浸润强烈而局限,坏死组织形成㊁脱落及时,创面愈合无明显延迟.巨噬细胞明显增加.Ⅰ组与Ⅳ组相比,巨噬细胞含量明显增加.但Ⅰ组与Ⅳ组巨噬细胞含量差异无统计学意义(见图1).a㊀I组,糖尿病诱导+胰岛素控制血糖在160~190m g/d L b㊀Ⅱ组,糖尿病诱导+胰岛素控制血糖在190~240m g/d L c㊀Ⅲ组,糖尿病诱导+胰岛素控制血糖在240m g/d L 以上d㊀Ⅳ组,正常血糖范围图1㊀糖尿病大鼠皮肤病理学改变3㊀讨㊀㊀论糖尿病所形成的溃疡是糖尿病后期最常见的并发症之一,也是导致截肢的主要原因之一.目前,关于糖尿病溃疡经久不愈的机制尚不清楚.其愈合过程与其他创面愈合类似,包括:炎症期㊁肉芽组织增生期和组织重建期.目前认为糖尿病溃疡不愈合的主要原因包括:a)局部组织胰岛素水平低下导致的创面组织细胞代谢异常;b)创面局部炎症反应失调;c)晚期糖基化产物在皮肤堆积.研究表明,炎症反应的失调是糖尿病引起的溃疡经久不愈的主要原因[4].在炎症早期,巨噬细胞在趋化因子的作用下,移行至创面周围,在内皮细胞等释放的一系列生物活性141㊀实用骨科杂志㊀第25卷,第2期,2019年2月㊀物质的作用下被激活.激活后的巨噬细胞吞噬周围病原微生物;清除异物㊁坏死组织;分泌多种细胞因子,促进创面愈合.创面巨噬细胞浸润数量和功能与皮肤愈合的关系已经得到广泛认同.K a r k k a i n e n认为[5]高血糖水平导致的伤口巨噬细胞浸润受阻是伤口延迟愈合或不愈合的重要原因.在创面修复增生期,巨噬细胞分泌单核细胞趋化蛋白G1㊁转化生长因子等促进肉芽组织形成,同时巨噬细胞也可以分泌血管内皮生长因子,可以促进新生组织中的血管形成.A l t aGv i l l a等[6]人认为,在皮肤组织中,巨噬细胞是分泌血管内皮生长因子C的主要细胞之一.M a r u y a m a等人认为糖尿病小鼠皮肤溃疡处的巨噬细胞数量减少,分泌V E G F C的功能降低[7].魏民在研究中发现糖尿病足部非缺血性溃疡难愈合,创面皮肤中巨噬细胞数量减少,分泌V E G F C的功能降低,其主要原因可能为高糖和/或糖基化终末产物的共同作用[8].这可能是糖尿病患者创面难愈合的重要原因之一.在血糖水平较高的情况下,葡萄糖分子与蛋白质分子容易发生一系列化学反应,生成A G E s[9],长时间的高血糖水平导致A G E s沉积于皮肤组织,促使胶原糖基化,形成相互交叉耦联的高分子量物质,不易被生物酶所降解[10],从而影响组织重塑,导致血管形成障碍,最终创面难以愈合[11].另外,糖基化反应可影响某些参与创面修复的功能蛋白质分子功能,如糖基化反应使表皮生长因子受体失去信号转导功能,导致血管内皮生长因子等生长因子的促细胞增殖功能减弱,不利于创面修复[12].另外非酶促糖基化反应过程会释放大量活性氧自由基,导致机体处于氧化应激状态,影响胶原合成,创面愈合延迟[13G14].在本项研究中,证实了高血糖环境下伤口周围组织的巨噬细胞会出现明显减少,并且皮肤组织中的A G E s含量明显增加.两个因素均对伤口的愈合过程产生了不利影响.从伤口愈合的比例来看,也如以前的研究结果相同,高血糖的环境下伤口愈合明显延迟,个别小鼠在高血糖环境下伤口不仅没有缩小,反而扩大.但比较第Ⅰ及Ⅳ组可发现,大鼠血糖维持在稍高于正常血糖(Ⅰ组)的环境下,对伤口愈合没有出现负面影响,反而伤口愈合速度较Ⅳ组快,巨噬细胞及皮肤A G E s无明显差异,可能有其他因素在低高血糖水平有利于伤口新生血管及肉芽组织的形成,这需要进一步实验研究.另外,血糖控制在什么范围会对伤口愈合产生有利环境,仍需进一步实验探索.临床实践中是否会与实验结果相符,也需要进一步临床认证.糖尿病大鼠高血糖浓度会严重影响创面愈合,并随着血糖浓度升高影响愈加明显,但在低水平高血糖浓度下会对伤口愈合产生一定有利环境,这仍需临床上的实践证明.参考文献:[1]B o u l t o n A J,V i l e i k y t eL,R a g n a r s o nGT e n n v a l lG,e ta l.T h e g l ob a l b u r d e no f d i a b e t ic f o o td i se a s e[J].L a nGc e t,2005,366(9498):1719G1724.[2]J e f f c o a t e W,B a k k e rK.W o r l dd i a b e t e sd a y:f o o t i n g t h eb i l l[J].L a n c e t,2005,365(9470):1527.[3]W i l dS,R o g l i cG,G r e e nA,e t a l.G l o b a l p r e v a l e n c e o fd i a be t e s:e s t i m a t e sf o r t h e y e a r2000a n d p r o j e c t i o n sf o r2030[J].D i a b e t e sC a r e,2004,27(5):1047G1053.[4]P i e r c e G E.I n f l a mm a t i o n i n n o n h e a l i ng d i a b e t i c w o u n d s:th es p a c eGti m ec o n t i n u u m d o e s m a t t e r[J].A mJP a t h o l,2001,159(2):399G403.[5]K a r k k a i n e n M J,H a i k oE,S a i n i o l('c t a1.V a s c u l a r e nGd o t he l i a l g r o w t hf a c t o r C i s r e q u i r e d f o r s p r o u t i ng o ft h e f i r s t l y m p h a t i c v e s s e l s f r o me m b r y o n i c v e i n s[J].N a t I mm u n o l,2004,5(1):74G80.[6]A l t a v i l l aD,S a i t t aA,C u c i n o t t aD.I n h i b i t i o no f l i p i d p c r o x i d a t i o nr e s t o r e si m p a i r e dv a s c u l a re n d o t h e l i a lg r o w t h f a c t o r e x p r e s s i o n a n d s t i m u l a t e sw o u n d h e a lGi n g a n da n g i o g e n e s i s i nt h e g e n e t i c a l l y d i a b e t i c[J].D i a b e t e s,2001,50(3):667G674.[7]K a z u i c h iM a r u y a m a,J u nA s a i,M a s a a k i I i.D e c r e a s e d m a c r o p h a g en u m b e ra n d a c t i v a t i o nl e a d t o d u c e dl y m p h a t i cv e s s e lf o r m a t i o n a n d c o n t r i b u t et oi mGp a i r e dd i a b e t i c w o u n d h e a l i n g[J].A m J P a t h o l,2007,170(4):1178G1191.[8]魏民,薛耀明.巨噬细胞损伤和淋巴管形成障碍导致的糖尿病足部非缺血性溃疡难愈合的机制研究[D].广州:南方医科大学,2008.[9]D e g e n h a r d tT P,F u M X,V o s sE,e t a l.A m i n o g u a n iGd i ne i n h i b i t sa l b u m i n u r i a,b u tn o t t h ef o r m a t i o no fa d v a n c e d g l y c a t i o ne n dGp r o d u c t s i ns k i nc o l l a g e no fd i a be t i cr a t s[J].D i a b e t e sR e sC l i nP r a c t,1999,43(1999):81G89.[10]S a j i t h l a lG B,C h i t h r aP,C h a n d r a k a s a n G.A d v a n c e dg l y c a t i o ne n d p r o d u c t s i n d u c e c r o s s l i n k i n g o f c o l l aGg e n i n v i t r o[J].B i o c h i m B i o p h y s A c t a,1998,1407(1998):215G224.[11]M a r t i nA,K o m a d a M R,S a n eD C.A b n o r m a la n g i oGg e n e s i s i nd i a b e t e sm e l l i t u s[J].M e dR e sR e v,2003,23(2):117G145.[12]P o r t e r oGO t i n M,P a m p l o n a R,B e l l m u n t M J,e ta l.A d v a n c e d g l y c a t i o ne n d p r o d u c t p r e c u r s o r s i m p a i re p i d e r m a l g r o w t hf a c t o rr e c e p t o rs ig n a l i n g[J].D i aGb e t e s,2002,51(5):1535G1542.[13]S t i t tAW,J e n k i n sA J,C o o p e r M E.A d v a n c e d g l y c aGt i o ne n d p r o d u c t s a n dd i a b e t i c c o m p l i c a t i o n s[J].E xGp e r tO p i n I n v e s t i g D r u g s,2002,11(9):1205G1223.[14]S i l h iN.D i a b e t e sa n d w o u n d h e a l i n g[J].J W o u n dC a r e,1998,7(1):47G51.收稿日期:2018G06G28作者简介:曾文超(1973-),男,副主任医师,山东省济宁市第一人民医院手足踝外科,272000.241 ㊀J o u r n a l o fP r a c t i c a lO r t h o p a e d i c sV o l.25,N o.2,F e d.2019㊀。

石花菜多糖对糖尿病大鼠降血糖作用的实验研究

石花菜多糖对糖尿病大鼠降血糖作用的实验研究
保 健 医 学 研 究 与 实 践
第 8卷 第 4期
2l O 1年

实验研究 ・
石 花 菜 多糖 对 糖 尿 病 大 鼠降 血 糖 作 用 的 实 验 研 究
王 慧 周 星 唐 菲 卓 书洪
( 南 省 药 物研 究 所 。 南 海 口 5 1 0 ) 海 海 7 1 0
摘要 : 目的 研 究 石 花 菜 多 糖 的 降 血 糖 作 用 。 方 法 建 立 大 鼠 四 氧 嘧 啶 糖 尿 c d da e i mo e wa sa l h d a d 5 a swi h i b o dg u o e> 1 . n u e ib t d l se tb i e n O r t t t e l o l c s c s h r 6 1mmo / r h s n a d r md n lL we ec o e n a o —
l iie nof eg o p :n meygo pwi ih d s eiim ma s oya eaie(4 0m k ) ru t ydvd dit i ru s a l ru t hg - oeg l u a n ip lseh r v h d i d 2 0 N/ g ,g o pwih me im eiim ma s oyae aie ( 2 0 mg k .g o p wih lw-o e g l im ma sip lseh r e du g l u a n i p lsch r d i d 1 0 / g) ru t o d s ei u a n i oyac ai d d
1 . 6 1mmo/ lL ̄ 大 鼠随 机 分 为 5组 : 花 菜 多糖 高剂 量 组 ( 0 g k ) 中剂 量 组 ( 0 g k ) 低 剂 量 组 石 2 t0r / g 、 a 12 0m / g 、

降血糖动物实验

降血糖动物实验

辅助降血糖作用检验方法1动物实验1、1动物选择选用健康成年动物,常用小鼠(25±2g)或大鼠(180±20g),单一性别,大鼠每组812只、小鼠每组1015只。

1、2材料1、2、1试剂四氧嘧啶(或链脲霉素)小鼠3550mg/kg、bw、iv(100160mg/kg、bw、ip)、大鼠5080mg/kg、bw、iv(200250mg/kg、bw、ip)用新鲜配制。

血溏测定试纸或试剂盒。

1、2、2仪器血糖仪、全自动生化仪、721B型分光光度计。

1、3剂量分组及受试样品给予时间设1个溶剂对照组与3个受试样品剂量组,根据人体每日每公斤体重推荐摄入量,小鼠扩大10倍作为其中一个剂量组(大鼠扩大5倍),根据受试样品得具体情况另设两个剂量组。

受试样品给予时间原则上不少于30天,也可根据实验需要自行设定期限。

1、4实验方法1、4、1降低空腹血糖实验1、4、1、1高血糖模型动物1、4、1、1、1原理四氧嘧啶(或链脲霉素)就是一种β细胞毒剂,可选择性地损伤多种动物得胰岛β细胞,造成胰岛素分泌低下引起实验性糖尿病。

1、4、1、1、2造型动物禁食24小时后,给予四氧嘧啶造型,57天后禁食35小时,测血糖,血糖值1025mmol/L为高血糖模型成功动物。

1、4、1、1、3操作步骤选高血糖模型动物按禁食35小时得血糖水平分组,随机选1个模型对照组与3个剂量组(组间差不大于1、1mmol/L)。

剂量组给予不同浓度受试样品,模型对照组给予溶剂,连续30天,测空腹血糖值(禁食同实验前),比较各组动物血糖值及血糖降低得绝对值(即实验前后血糖得差值)。

1、4、1、2正常动物选健康成年动物按禁食35小时得血糖水平分组,随机选1个对照组与1个受试样品组(高剂量)。

余操作同1、4、1、1、3。

1、4、2糖耐量实验高血糖模型动物禁食35小时,剂量组给予不同浓度受试样品,模型对照组给予同体积溶剂,1520分钟后经口给予葡萄糖2、0g/kg或医用淀粉352、0g/kg,测定给葡萄糖后0、0、5、2小时得血糖值或人医用淀粉后0、1、2小时得血糖值,观察模型对照组与受试样品组给葡萄糖或医用淀粉后各时间点血糖曲线下面积得变化。

进食状态对糖尿病大鼠血糖及肝糖原的影响

进食状态对糖尿病大鼠血糖及肝糖原的影响

5.8
4.6
4.7
4.8
实验前 4.1 4.1 4.0 4.5
血糖(mmol/L) 成模确定 32.7 32.7 33.3 22.6
处死前 8.4 6.2 24.4 32.8
各项数据汇总
正常饱食
正常饥饿
加碘液颜色
红褐色
浅黄色
血糖值 (mmol/L)
吸光度均值
7.9 0.634
4.8 0.071
肝糖原值 (g/100g)
进食状态对糖尿病大鼠血糖 及肝糖原的影响
实验汇报
实验流程
正常组
SD大鼠
糖尿病组
正常饥饿组 (禁食12小 时)
正常饱食组 (正常饮食)
实验饥饿组 (禁食12小 时)
实验饱食组 (正常饮食)
尾部取血
摘眼球取血 分离血清
肝脏组织匀 浆,去除蛋 白,提取糖原
血糖仪测血 糖,记录结果
ELASA测 血清胰岛素 水平
4号
日期(月/日)
11/30
12/1
12/2
大鼠平均饮食量对比
饮食量对比(g/只)
45.0
40.0
35.0
30.0
28.7
24.6 25.0
20.3 20.0
15.0
28.8 21.4 16.2
27.0 25.0
19.4
38.3 31.2
18.6
10.0
5.0
0.0 造模第一天
造模第二天
造模第三天 正常组 糖尿病组 第6组
血清胰岛素
含量 (mmol/L)
4.8
浅黄色 0.314
2.48
7.9
红褐色
3.41

大鼠血糖测定方法

大鼠血糖测定方法

大鼠血糖测定方法引言:血糖是人体能量代谢的重要指标之一,血糖水平的变化与多种疾病的发展密切相关。

因此,准确测定大鼠血糖水平对于研究人类疾病模型以及药物研发具有重要意义。

本文将介绍几种常用的大鼠血糖测定方法。

一、口服葡萄糖耐量试验(OGTT)口服葡萄糖耐量试验是一种常用的测定大鼠胰岛功能和糖代谢的方法。

实验操作步骤如下:1. 饲养大鼠至试验前12小时内禁食,但可以饮水。

2. 在试验开始前,取大鼠空腹血样测定胰岛素和葡萄糖基线水平。

3. 给予大鼠口服葡萄糖溶液(2g/kg),记录给药时间点为0分钟。

4. 在给药后的30、60、90和120分钟,分别采集大鼠血样,测定血糖水平。

5. 同时测定各时点的胰岛素水平。

6. 通过分析血糖曲线和胰岛素水平变化,评估大鼠胰岛功能和糖代谢状态。

二、静脉注射葡萄糖耐量试验(IVGTT)静脉注射葡萄糖耐量试验是一种常用的测定大鼠胰岛素敏感性和胰岛功能的方法。

实验操作步骤如下:1. 饲养大鼠至试验前12小时内禁食,但可以饮水。

2. 在试验开始前,取大鼠空腹血样测定胰岛素和葡萄糖基线水平。

3. 通过尾静脉注射葡萄糖溶液(1g/kg),记录给药时间点为0分钟。

4. 在给药后的1、3、5、7和10分钟,分别采集大鼠血样,测定血糖水平。

5. 同时测定各时点的胰岛素水平。

6. 通过分析血糖曲线和胰岛素水平变化,评估大鼠胰岛素敏感性和胰岛功能状态。

三、糖化血红蛋白测定法(HbA1c)糖化血红蛋白测定法是一种常用的长期血糖控制指标的测定方法。

实验操作步骤如下:1. 取大鼠全血样本。

2. 提取血红蛋白,去除干扰物质。

3. 通过高效液相色谱法(HPLC)或离子交换色谱法分离和测定糖化血红蛋白(HbA1c)的百分比。

4. 根据HbA1c的百分比,评估大鼠长期血糖控制状态。

四、血糖仪法血糖仪法是一种常用的快速测定大鼠血糖水平的方法。

实验操作步骤如下:1. 取大鼠尾静脉血样或耳朵尖血样。

2. 使用血糖仪将血样放入试纸上,等待血糖仪读数。

实验大鼠血糖正常范围的估算

实验大鼠血糖正常范围的估算

实验大鼠血糖正常范围的估算
血糖被认为是一种营养,它与动物内环境中和整体健康状态有关。

因此,了解小鼠血糖正常范围的研究对预防疾病和改善健康非常重要。

小鼠血糖正常范围受许多因素的影响,包括年龄、性别、营养状
况和有无保健药物的摄入。

一般而言,小鼠的血糖水平应在4.4~
7.8mmol/L之间,高于7.8mmol/L时则被认为是血糖过高,而低于
4.4mmol/L的则被认为血糖过低。

此外,血糖正常范围也会随着小鼠的情绪和健康状况而发生变化。

此外,实际血糖水平也会受到实验条件影响。

为了保证血糖检测
准确性,工作人员应定期训练小鼠来控制血糖,检查供试生物的身心
健康状况,并确保实验设施条件良好。

此外,正确使用细胞内分析仪、灵敏血糖仪等仪器设备也是血糖
检测精确性的关键。

未经实验室验证的血糖检测仪器在结果可靠性方
面很可能出现偏差,因此有责任心的研究人员应定期校验仪器,以确
保可靠测量数据。

综上所述,为了确定小鼠血糖正常范围,应该充分考虑小鼠的体质、环境因素、实验条件以及正确使用仪器等因素。

此外,应定期检
查小鼠的健康状况,以便尽早发现血糖异常的症状,并及时采取相应
的措施。

实验 激素对正常和糖尿病大鼠血糖和血脂的影响

实验 激素对正常和糖尿病大鼠血糖和血脂的影响

实验激素对正常和糖尿病大鼠血糖和血脂的影响一、实验目的:掌握血糖血脂测定的原理及方法;了解糖尿病大鼠血糖和血脂的代谢变化;了解激素对血糖浓度的影响;了解血浆脂蛋白分类、主要功能以及各类脂蛋白的临床意义。

二、实验原理:本实验通过给大鼠注射STZ破坏β细胞功能,进而构建糖尿病大鼠模型用于观察血糖和血脂的代谢变化。

血糖测定主要应用葡萄糖氧化酶法,养品种的葡萄糖被葡萄糖氧化酶氧化为葡萄糖酸,并释放过氧化氢。

过氧化氢在过氧化物酶作用下分解为水和氧,并使4-氨基安替比林和酚去氢缩合为红色醌类化合物。

同理,甘油三酯和胆固醇在相应氧化酶的作用下也释放出过氧化氢,进而发生类似的呈色反应。

三、实验步骤:1.取成年SD大鼠,分成对照组和糖尿病组。

对糖尿病组腹腔注射柠檬酸液配置的链脲霉素,对照组则注射等体积的柠檬酸溶液。

一周后在进行血糖和血脂的检测。

2.将两组动物再次分为两组,一组大鼠腹腔注射胰岛素,0.75UI/kg,分别于注射前、注射30min后取血0.2-0.3ml,标明:注前组、胰组。

另一组大鼠皮下注射肾上腺素,0.1%肾上腺素0.2mg/kg,30min后采血0.2-0.3ml,标明:肾组。

3.按照书上表格进行三种方法的测定。

三、实验结果:指标control STZpre int adr pre int adrglucose 3.02 0.87 3.51 1.48 TG 0.61 0.46 0.41 1TC 1.28 1.28 2.47 2.45glucose 3.906 4.627TG 0.592 0.214TC 1.499 1.171glucose 2.54 1.97 15.69 10.55 TG 1.9 2.25 3.26 3.29TC 8.27 1.2 4.02 5.27glucose 3.015 7.194 5.195 18.64 TG 0.703 2.442 1.978 1.95 TC 1.504 8.634 5.018 5.179 glucose 1.253 0.683 3.721 5.923 TG 1.386 0.859 2.622 7.458TC 1.136 0.926 1.046 8.278glucose 3.15 1.5 TG 0.565 0.484TC 1.35 0.76glucose 5.03 3.53 TG 2.88 2.54TC 5.17 14.16glucose 5.08 1.75TG 7.75 1.26TC 4.47 1.72四、实验思考:1.How does insulin regulate blood glucose?胰岛素如何调节血糖?体内血糖的产生和利用,受胰岛素和胰高血糖素等激素的调节。

糖尿病实验报告

糖尿病实验报告

食量对比图
40 30 20 10 01 2 3 4 5 6 实验鼠食量/g 22.4 21.2 21.6 26.8 29 28.8 对照鼠食量/g 27.4 23.1 25.1 17.7 19.1 18.8
天数
实验鼠食量/g 对照鼠食量/g
结果:
由图知:实验鼠的食量增加,对照 鼠的食量变化不明显。
糖尿病
2009级临床2班 第一组 组员;曹霞 陈佳龙
马燕 郭亚妹 郭瑜 吴嘉楠
一、实验材料
(1)、实验动物:实验鼠体重 300g,对照鼠253g,健康大鼠。
(2)、实验材料:链脲霉素 (STZ)、人胰岛素、血糖仪及 同批号血糖试纸、微量注射泵、水 合氯醛、无水葡萄糖、枸橼酸—枸 橼酸钠缓冲液。
二、I型糖尿病与胰岛素干预糖尿病模 型制备
29.0
6 282.0
28.8
75
33.1 耸毛、乳黄 活动减少、
萎靡
115
76.6 耸毛、乳黄 活动减少、
萎靡
← 第一天
第六天 →
对照鼠观察结果:
天 体重/g 数
1 262.0
食量/g 27.4
饮水量 /ml
25
尿量/g 毛色 14.5 乳白
2 263.0
23.1
21
6.6 乳白
3 262.0
三、实验鼠观察结果:
天 体重/g 数
1 293.0
食量/g 22.4
2 288.3
21.2
饮水量 /ml
25
85
尿量/g 20.0 77.5
毛色
精神状态
乳白、有光 泽
耸毛、乳白
正常 正常
3 286.8
21.6
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4、正常饥饿大鼠的血糖值与糖尿病饥饿大鼠血糖值,无明显差别;肝糖原 的含量也无明显差别。
血糖均值
血糖标准差
肝糖原均值
肝糖原标准差
正常饥饿大鼠
4.550
2.616
0.190
0.188
糖尿病饥饿大 鼠
9.150
7.693
0.476
0.318
t=0.713<t0.05/2 10=2.228,p>0.05;按照a=0.05的 水准,认为这两项不存在明显 的差别。
13.422
t=9.915>t0.05/2 11=2.201,p<0.05;按a=0.05的水 准,这两项的血糖值是存在明 显差别的。
t=2.715>t0.05/2 8=2.306,p<0.05; 按a=0.05的水准,这两项的血 糖值是存在明显差别的。
启示:糖尿病大鼠的血糖没能通过转化为肝糖原的途径恢复正常血糖水平, 处于高血糖,低肝糖原的状态。也说明胰岛素的功能之一是促进肝糖原的 合成。
2.糖尿病饱食大鼠血糖值与糖尿病饥饿组血糖值有明显差别,明显高于 饥饿组;但肝糖原含量无明显差别。
血糖均值
血糖标准差
肝糖原均值
肝糖原标准差
糖尿病饱食大 鼠
30.329
4.563
1.287
1.464
糖尿病饥饿大 鼠
9.150
7.693
0.476
0.318
t=6.491>t0.05/2 t=1.718<t0.05/215=2.131,p>0.05, 15=2.131,p>0.05;按a=0.05,认 按a=0.05的水准,认为这两项 为这两项的血糖存在明显差异。 不存在明显差别。 启示:糖尿病的大鼠的血糖与肝糖原的转化是存在问题的。
禁食12h
单次腹腔注 射1%STZ溶 液 (65mg/Kg 体重) 72小时后 检测血糖
两天后
挑选造模成 功的大鼠进 入检测流程
造模72h后实验组大鼠血糖值
大鼠编 号
72小时后 血糖值 (mmol/l)
1 12.9
2 20.7 12 17.9 22
3 21.9 13 17.7 23
4 13.7 14 16.0 24
t=1.202<t0.05/2 10=2.88,p>0.05; 按照a=0.05的水准,认为这两 项不存在明显的差别。
启示:理论上正常饥饿大鼠的血糖能从肝糖原转化得到补充而不会太低, 但为什么正常饥饿大鼠与糖尿病饥饿大鼠的血糖不存在差别呢?
碘液反 应鉴定 结果
实验的启示:
糖尿病人的饮食治疗原则: 1、适度进食,防止血糖过高。 2、减短两餐进餐时间,防止出现血糖过低的情况。 3、睡前要适当添加一次小吃,减低夜间低血糖的出现的风险。
进食状态对糖尿病大鼠血糖及 肝糖原的影响
二院3班
建模原理:STZ(链尿佐菌素)能选择性的破坏一定
种属的动物的胰岛B细胞,从而造成胰岛素的分泌不足的Ⅰ 型糖尿病(胰岛素依赖性糖尿病)。 模型的临床症状:“三多一少”,尿多,喝水多, 进食多,体重减轻。
造模过程
正常组6只
SD大鼠
糖尿病组(24 只)
适应性饲养1周
检测流程
正常组
SD大鼠
糖尿病组
正常饥饿组3 只(禁食12小 时)
正常饱食组三 只(正常饮食)
实验饥饿组11 只(禁食12小 时)
实验饱食组8 只(正常饮食)
尾部取血
肝脏组织匀浆, 去除蛋白,提 取糖原
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
血糖仪测血糖, 记录结果
碘液反应鉴定 肝糖原
蒽酮比色法测 定肝糖原含量
实验分组
分组 编号 1 2 3
正常 饱食 组
正常 饥饿 组 糖尿 病饱 食组
4
5
6
2
3
5
6
7
8
16
糖尿 病饥 饿组
9
10
11
12
13
14
15
19
21
22
23
实验结果分析:1、正常饱食大鼠血糖与正常饥饿大鼠血糖值 的无明显差别;肝糖原的含量也无明显差别。
血糖均值
血糖标准差
肝糖原均值
肝糖原标准差
正常饱食大鼠
8.100
1.375
14.083
13.422
正常饥饿大鼠
4.500
2.616
0.190
0.188
t=1.755<t0.05/2 3=3.182;p>0.05, t=1.389<t0.05/2 3=3.182;p>0.05, 按a=0.05的标准,认为这两项 按a=0.05的标准,认为这两项 的血糖没差别。 的血糖没差别。 启示:正常大鼠无论是饥饿还是饱食状态,其肝糖原与血糖的转化 是没有障碍的。
5 20.1 15 17.4
6 19.1 16 16.2
7 25.7
8 18.6
9 20.8 19 21.5
10 16.6 20
11 22.8 21
17 18 4.3/5.8 7.3
14.0
20.4
20.6
21.1
12.0
其中1、17、18、20以及24号大鼠血 糖浓度远不及16.7mmol/l,造模失败; 而10、14、及16号大鼠血糖浓度接近 16.7mmol/l,决定两天后在测一次血 糖,其血糖检测结果分别为: 10号:HIGH; 14号:23.2mmol/l 16号:24.4mmol/l 提示造模成功
3、糖尿病饱食大鼠血糖值与正常饱食大鼠的血糖值有明显的差别,明显高于正 常饱食大鼠;但肝糖原的含量也存在明显差别,糖尿病饱食大鼠的肝糖原含量明 显低于正常饱食大鼠。
血糖均值
血糖标准差
肝糖原均值
肝糖原标准差
糖尿病饱食大 鼠
30.329
4.563
1.287
1.464
正常饱食大鼠
8.100
1.375
14.048
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