实验报告-大鼠
大鼠排尿反射实验报告
通过本实验，了解大鼠排尿反射的生理机制，观察排尿反射的生理过程，并探讨外界刺激对排尿反射的影响。
二、实验原理排尿反射是人体生理活动中的重要环节，由大脑皮层、脊髓和盆神经共同参与完成。
当膀胱内尿液达到一定量时，膀胱壁感受器受到刺激，通过盆神经将信息传递至脊髓排尿中枢，进而通过盆神经和副交感神经控制膀胱括约肌松弛，使尿液排出。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年雄性大鼠若干只2. 实验器材：手术器械、生理盐水、电极、显微镜、记录仪、手术台等3. 实验试剂：生理盐水、麻醉剂、抗凝剂等四、实验方法1. 麻醉与固定：将大鼠用麻醉剂麻醉，固定于手术台上。
2. 膀胱穿刺：在无菌操作下，用手术器械进行膀胱穿刺，插入导管，连接记录仪。
3. 电刺激：用电极在膀胱壁上给予电刺激，观察大鼠的排尿反射。
4. 外界刺激：在电刺激的同时，给予外界刺激（如声音、光照等），观察排尿反射的变化。
五、实验步骤1. 将大鼠用麻醉剂麻醉，固定于手术台上。
2. 在无菌操作下，进行膀胱穿刺，插入导管，连接记录仪。
3. 将大鼠置于安静环境中，观察膀胱容积变化，待膀胱容积达到一定程度时，开始给予电刺激。
4. 在电刺激的同时，给予外界刺激，观察大鼠的排尿反射。
5. 记录排尿反射的持续时间、频率等数据。
6. 实验结束后，将大鼠处死，取出膀胱，观察膀胱壁变化。
1. 在给予电刺激后，大鼠出现明显的排尿反射，表现为排尿频率增加、持续时间延长。
2. 在给予外界刺激时，大鼠的排尿反射明显增强，表现为排尿频率增加、持续时间延长。
3. 实验结束后，大鼠膀胱壁出现明显的炎症反应。
七、实验分析1. 电刺激可以引起大鼠的排尿反射，说明膀胱壁感受器可以感知电刺激，并通过神经传导将信息传递至脊髓排尿中枢。
2. 外界刺激可以增强大鼠的排尿反射，说明外界刺激可以影响排尿反射的强度。
3. 实验结束后，大鼠膀胱壁出现明显的炎症反应，可能与电刺激和外界刺激有关。
八、实验结论本实验结果表明，大鼠的排尿反射可以通过电刺激和外界刺激来诱导，且外界刺激可以增强排尿反射的强度。
大鼠止咳实验报告
一、实验目的1. 探讨某中药成分对大鼠咳嗽反应的影响；2. 评价该中药成分的止咳作用；3. 为该中药成分的临床应用提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级SD大鼠，体重180-220g，雌雄各半，由XX实验动物中心提供；2. 实验药物：某中药成分提取物；3. 对照药物：磷酸可待因片（止咳药）；4. 试剂与仪器：生理盐水、滴鼻器、显微镜、电子天平、秒表等。
三、实验方法1. 动物分组与处理将大鼠随机分为以下五组，每组10只：（1）正常对照组：给予生理盐水；（2）模型组：给予生理盐水；（3）中药组：给予某中药成分提取物；（4）止咳药对照组：给予磷酸可待因片；（5）止咳药+中药组：给予磷酸可待因片和某中药成分提取物。
2. 建立咳嗽模型将大鼠置于安静、温度适宜的实验室内，采用滴鼻法使大鼠发生咳嗽反应。
具体操作如下：（1）将生理盐水或药物滴入大鼠鼻腔，使其发生咳嗽；（2）记录咳嗽次数；（3）重复操作，直至大鼠咳嗽次数稳定。
3. 观察指标（1）咳嗽次数：观察各组大鼠在实验过程中的咳嗽次数；（2）肺组织病理学观察：取大鼠肺组织，进行HE染色，观察肺组织形态变化；（3）血清生化指标：检测各组大鼠血清中的MDA、SOD、CAT等指标。
4. 统计学分析采用SPSS 19.0软件对实验数据进行统计分析，计量资料以均数±标准差（±s）表示，组间比较采用单因素方差分析（One-way ANOVA），以P<0.05为差异具有统计学意义。
四、实验结果1. 咳嗽次数与正常对照组相比，模型组、中药组、止咳药对照组、止咳药+中药组的咳嗽次数均显著增加（P<0.05）；与模型组相比，中药组、止咳药对照组、止咳药+中药组的咳嗽次数均显著减少（P<0.05）；与止咳药对照组相比，止咳药+中药组的咳嗽次数显著减少（P<0.05）。
2. 肺组织病理学观察与正常对照组相比，模型组的肺组织出现明显的炎症反应和纤维化；与模型组相比，中药组、止咳药对照组、止咳药+中药组的肺组织炎症反应和纤维化程度均显著减轻（P<0.05）。
解剖大鼠的实验报告
一、实验目的1. 掌握解剖学的基本方法与技能；2. 熟悉大鼠的解剖结构，了解其器官的形态和功能；3. 培养学生的观察能力和实验操作能力。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：成年雄性大鼠一只；2. 仪器：解剖盘、解剖剪、镊子、解剖刀、解剖针、解剖显微镜、解剖显微镜光源、解剖显微镜载物台、解剖显微镜镜头等；3. 药品：生理盐水、10%甲醛溶液、70%酒精、5%碘酊、5%氯化钠溶液等。
三、实验步骤1. 准备工作（1）将大鼠处死，解剖前应确保大鼠已死亡，以免造成实验者伤害。
（2）用生理盐水清洗大鼠体表，去除污物。
（3）将大鼠放在解剖盘上，用解剖剪沿背部正中线剪开皮肤，暴露肌肉和内脏。
2. 解剖顺序（1）从头至尾解剖：1）剪开颅骨，暴露大脑、小脑和脑干；2）剪开胸腔，暴露心脏、肺、气管、食管、胃、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等器官；3）剪开腹腔，暴露小肠、大肠、胃、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等器官；4）剪开盆腔，暴露生殖器官、膀胱、直肠等器官。
（2）器官解剖：1）大脑：观察大脑的形态、大小、重量，辨认大脑的各个叶和沟回；2）心脏：观察心脏的形态、大小、重量，辨认心脏的四个腔室；3）肺：观察肺的形态、大小、重量，辨认肺的叶和段；4）肝脏：观察肝脏的形态、大小、重量，辨认肝脏的叶和段；5）脾脏：观察脾脏的形态、大小、重量，辨认脾脏的叶和段；6）肾脏：观察肾脏的形态、大小、重量，辨认肾脏的皮质、髓质和肾盂；7）肾上腺：观察肾上腺的形态、大小、重量，辨认肾上腺的皮质和髓质；8）生殖器官：观察生殖器官的形态、大小、重量，辨认生殖器官的各个部分；9）膀胱：观察膀胱的形态、大小、重量，辨认膀胱的壁和腔；10）直肠：观察直肠的形态、大小、重量，辨认直肠的壁和腔。
3. 标本处理（1）将解剖好的器官用生理盐水清洗，去除血污和杂质；（2）将器官放入10%甲醛溶液中固定，浸泡24小时；（3）将固定好的器官取出，用70%酒精清洗，去除甲醛；（4）将清洗好的器官放入5%碘酊中染色，染色时间为30分钟；（5）将染色好的器官取出，用5%氯化钠溶液清洗，去除碘酊；（6）将清洗好的器官放入解剖显微镜下观察，拍照记录。
大鼠基本实验报告
一、实验目的1. 掌握大鼠的基本操作技术，包括捉拿、固定、称重、性别鉴定等。
2. 熟悉大鼠的解剖结构，了解各器官的位置和功能。
3. 学习实验动物的饲养管理，提高实验操作的熟练程度。
二、实验材料与器材1. 实验动物：成年大鼠若干2. 器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯、解剖显微镜、生理盐水等三、实验方法1. 大鼠捉拿与固定（1）捉拿：右手提起鼠尾，用左手拇指和食指捏住大鼠颈部皮肤，使其头部自然下垂，右手用食指和无名指夹住鼠尾，轻轻将大鼠拉出鼠笼。
（2）固定：将大鼠固定在手术台上，用手术剪剪去大鼠腹部毛发，用止血钳夹住大鼠腹部皮肤，用手术剪剪开皮肤，暴露腹腔。
2. 大鼠性别鉴定（1）外观观察：观察大鼠的体型、毛发、生殖器等特征，判断性别。
（2）解剖观察：将大鼠解剖，观察生殖器官，判断性别。
3. 大鼠称重将大鼠放在天平上，去皮称重，记录体重。
4. 大鼠灌胃给药（1）准备：将药物溶解于生理盐水中，配制成所需浓度。
（2）操作：右手提起大鼠，使其头部后仰，左手拇指和食指捏住大鼠颈部皮肤，右手用灌胃针插入大鼠口腔，缓慢注入药物。
5. 大鼠腹腔注射给药（1）准备：将药物溶解于生理盐水中，配制成所需浓度。
（2）操作：将大鼠固定在手术台上，用手术剪剪去大鼠腹部毛发，用止血钳夹住大鼠腹部皮肤，用手术剪剪开皮肤，暴露腹腔。
用注射器将药物注入腹腔。
6. 大鼠解剖（1）观察：观察大鼠的器官位置、形态、颜色等。
（2）记录：记录各器官的重量、长度等数据。
四、实验结果与分析1. 大鼠性别鉴定：实验过程中，共鉴定出雄性大鼠若干只，雌性大鼠若干只。
2. 大鼠体重：实验开始时，大鼠体重为（平均值±标准差）g；实验结束时，大鼠体重为（平均值±标准差）g。
3. 大鼠灌胃给药：实验结束后，观察大鼠的精神状态、活动能力等，未发现明显不良反应。
4. 大鼠腹腔注射给药：实验结束后，观察大鼠的精神状态、活动能力等，未发现明显不良反应。
大鼠骨骼实验报告
一、实验目的1. 探讨大鼠骨骼的结构、形态和生长发育规律；2. 分析大鼠骨骼的生理功能及影响因素；3. 为骨骼疾病的研究和预防提供理论依据。
二、实验材料与方法1. 实验动物：选用健康的Wistar大鼠，体重在180-220g之间，雌雄各半；2. 实验仪器：电子天平、解剖显微镜、切片机、显微镜、图像分析系统等；3. 实验方法：（1）骨骼标本采集：对实验大鼠进行麻醉，取其头骨、躯干骨、四肢骨等部位；（2）骨骼形态学观察：采用解剖显微镜观察大鼠骨骼的形态、大小、结构等特征；（3）骨骼生长发育规律研究：选取不同月龄的大鼠，比较其骨骼形态、大小、结构等特征；（4）骨骼生理功能研究：通过测量大鼠的骨密度、骨强度等指标，探讨骨骼的生理功能；（5）影响因素研究：研究不同环境、营养等因素对大鼠骨骼发育的影响。
三、实验结果1. 骨骼形态学观察（1）头骨：大鼠头骨呈椭圆形，分为颅骨和面骨，颅骨主要由额骨、顶骨、颞骨、枕骨等构成，面骨主要有上颌骨、鼻骨、泪骨等；（2）躯干骨：大鼠躯干骨包括颈椎、胸椎、腰椎、骶椎、尾椎等，颈椎较短，胸椎较宽，腰椎较长，骶椎和尾椎较短；（3）四肢骨：大鼠四肢骨包括肱骨、桡骨、尺骨、股骨、胫骨、腓骨等，四肢骨呈对称分布，具有明显的生长发育规律。
2. 骨骼生长发育规律研究（1）头骨：大鼠头骨的形态、大小、结构随月龄的增长而逐渐发育成熟；（2）躯干骨：大鼠躯干骨的形态、大小、结构随月龄的增长而逐渐发育成熟，其中腰椎的发育速度最快；（3）四肢骨：大鼠四肢骨的形态、大小、结构随月龄的增长而逐渐发育成熟，其中肱骨和股骨的发育速度最快。
3. 骨骼生理功能研究（1）骨密度：大鼠的骨密度随月龄的增长而逐渐增加，其中头部、上肢、大腿、躯干和肋骨部骨密度值均显著或极显著高于同月龄全身骨密度值；（2）骨强度：大鼠的骨强度随月龄的增长而逐渐增强，其中头部、上肢、大腿、躯干和肋骨部的骨强度均显著或极显著高于同月龄全身骨强度值。
医学生小鼠大鼠实验报告
医学生小鼠大鼠实验报告一、实验目的本实验旨在通过对小鼠和大鼠的实验观察，研究它们在不同条件下的生理和行为特征，为进一步研究人类疾病提供参考。
二、实验方法2.1 实验材料- 小鼠：品系为C57BL/6J，年龄为6周，雄性/雌性各半；- 大鼠：品系为Wistar，年龄为8周，雄性/雌性各半；- 实验箱：包括饲养箱、观察箱和运动箱；- 实验器械：包括计量器、光源、摄像等。
2.2 实验设计1. 小鼠实验组：将小鼠放入饲养箱，观察其饮水量、食物摄入量和运动状态。
每天记录一次，持续观察7天。
2. 大鼠实验组：将大鼠放入观察箱，暴露在不同温度环境中（分别为25和37），观察其体温变化。
每小时记录一次，持续观察4小时。
三、实验结果3.1 小鼠实验结果在实验期间，观察到小鼠的饮水量和食物摄入量逐渐增加，运动状态表现为跑动和探索环境。
具体数据如下表所示：日期饮水量（ml）食物摄入量（g）运动状态第1天10 5 跑动第2天12 6 跑动第3天14 7 跑动第4天16 9 跑动第5天18 11 跑动第6天20 13 跑动第7天22 15 探索环境3.2 大鼠实验结果在25的温度环境下，大鼠的体温保持在正常范围内，变化不大。
而在37的高温环境下，大鼠的体温显著升高。
具体数据如下表所示：时间体温（）第1小时36.8第2小时36.9第3小时37.0第4小时37.1四、实验讨论4.1 小鼠实验讨论小鼠在实验期间表现出较高的饮水量和食物摄入量，说明它们需要充足的能量来满足正常生长发育的需要。
而运动状态的增加可能与它们的活跃性有关，小鼠是夜行性动物，喜欢在夜晚活动。
4.2 大鼠实验讨论在25的温度环境下，大鼠的体温保持在正常范围内，说明它们能够通过自身调节保持体温的稳定。
而在37的高温环境下，大鼠的体温显著升高，说明它们对于高温有较弱的适应能力。
五、实验结论通过本实验的观察结果，我们可以得出以下结论：1. 小鼠在实验期间表现出较高的饮水量、食物摄入量和运动状态，提示其正常生长发育需要大量的能量和活动。
大老鼠解剖实验报告
大老鼠解剖实验报告引言解剖实验是生物学实验中的重要一环，通过解剖动物可以深入了解其内部器官的组织结构和功能。
本次实验旨在通过解剖大老鼠，观察和探索其特征解剖结构，进一步了解大老鼠的生物学特性。
实验材料与方法材料- 大老鼠- 刀具- 实验台方法1. 将大老鼠放置在实验台上，保持其身体放松。
2. 用刀具小心地剪开大老鼠的皮肤，从胸部开始向腹部剖开。
3. 慢慢解剖并移除腹肌，保留器官的完整性。
4. 依次观察并记录大老鼠的器官，包括心脏、肺、肝脏、胃、肾脏等。
实验结果1. 心脏：大老鼠的心脏位于胸腔的前部，包裹在围绕心脏的透明薄膜中，被肺脏所遮盖。
心脏分为心房和心室，具有明显的血管与动脉。
2. 肺：大老鼠的肺部位于心脏的两侧，呈粉红色。
通过观察可以看到肺组织细密且有弹性，能够进行有效的气体交换。
3. 肝脏：大老鼠的肝脏位于腹腔的上部，呈褐色。
肝脏是人和动物体内最重要的器官之一，具有解毒、代谢和贮存营养物质等多种功能。
4. 胃：大老鼠的胃位于肝脏下方，通过食道与口腔相连。
胃可以分为贲门、体部和幽门三个区域，用于食物的储存和初步消化。
5. 肾脏：大老鼠的肾脏位于胸腔和腹腔的后部，颜色深红。
肾脏是身体的排泄器官，通过滤波、重吸收和分泌等过程维持体内水和电解质的平衡。
结论通过本次解剖实验，我们对大老鼠的内部器官有了更加直观的了解。
大老鼠的心脏、肺、肝脏、胃以及肾脏等器官在结构和功能上有着与人类相似的特点，但也存在一些差异。
通过观察和学习大老鼠的解剖结构，可以为进一步研究大老鼠的生态学、行为学和疾病模型提供基础。
参考文献（此处列出使用到的参考文献）致谢（此处致谢实验中的指导教师和实验室成员等）。
大鼠自发活动实验报告
一、实验目的1. 了解大鼠的自发活动行为特征；2. 探讨不同实验条件下大鼠自发活动行为的变化；3. 为进一步研究大鼠的行为提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：清洁级SD大鼠10只，体重（200±20）g；2. 实验设备：动物活动箱、电子秤、秒表、温度计、湿度计、录音笔、摄像设备；3. 实验药品：生理盐水、苯巴比妥钠（镇静剂）。
三、实验方法1. 实验动物分组：将10只大鼠随机分为两组，每组5只，分别命名为A组和B组；2. 实验条件：A组大鼠置于正常活动箱中，B组大鼠置于活动箱中，温度（22±2）℃，湿度（55±5）%；3. 实验步骤：a. 实验前，将大鼠放入活动箱中适应环境，观察其活动情况；b. 使用电子秤称量大鼠体重，记录数据；c. 使用秒表记录大鼠在一定时间内（如10分钟）的活动次数；d. 使用温度计和湿度计记录实验箱内的温度和湿度；e. 实验过程中，观察大鼠的行为表现，如奔跑、跳跃、攀爬等；f. 实验结束后，使用录音笔和摄像设备记录大鼠的活动情况。
四、实验结果1. A组大鼠活动情况：a. 体重：平均体重（200±20）g；b. 活动次数：平均活动次数为（50±10）次/10分钟；c. 行为表现：大鼠在活动箱中表现出奔跑、跳跃、攀爬等行为。
2. B组大鼠活动情况：a. 体重：平均体重（200±20）g；b. 活动次数：平均活动次数为（35±8）次/10分钟；c. 行为表现：大鼠在活动箱中表现出奔跑、跳跃、攀爬等行为，但活动次数较A组明显减少。
五、实验讨论1. 通过本实验，我们了解到大鼠在正常活动条件下，具有一定的自发活动行为特征，如奔跑、跳跃、攀爬等；2. 实验结果显示，不同实验条件下大鼠的自发活动行为存在差异。
B组大鼠在活动箱中活动次数较A组明显减少，可能与实验箱内环境有关；3. 本实验为后续研究大鼠行为提供了实验依据，有助于深入了解大鼠的自发活动行为特征。
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姓名：薛桂凤学号：
实验报告（二）
一、实验目的：
1.掌握大鼠的抓取和固定。
2.掌握大鼠的编号与标记方法。
3.掌握大鼠的常用实验方法。
4.掌握大鼠的常用麻醉方法。
5.掌握大鼠的安死术。
6.掌握大鼠的釆血方法。
7.了解小鼠的采尿、粪的方法。
8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。
二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、
剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水
三、实验内容
1.抓取：两种方法。
第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右
手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。
第二种方法类似单手抓取小鼠的
方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。
2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。
3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。
4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色
可标记99只动物。
5.给药：
（1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于（麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针）
（3）腹腔注射（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药）
（4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药）
6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。
7.大鼠的采尿、粪的方法
（1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便
（2）长期大量采集：使用代谢笼
8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药
量为，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。
(1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒
(2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动
呼吸开始时止;2分30秒
(3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射
消失；
9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、
不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。
10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构
四、总结
大鼠没有胆囊，大鼠不能呕吐，故可以灌胃。
通过此次试验，学习了关于实验动物大鼠的一些基本操作技术，但还需克服心理的恐惧，多加练习，增加熟练程度。