1.组织病理学制片技术

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组织病理学技术

组织病理学技术

组织病理学技术组织病理学技术一. 实验综述组织病理学切片技术是融解剖学、组织胚胎学及技术、病理学及技术和临床于一体的综合性课程。

是一门新兴的学科。

在当今不断发展、变革的社会中,在学科相互融合,知识相互渗透,技术不断发展、概念不断更新的时代,在时代要求综合素质人才辈出的今天,组织病理学切片技术的兴起尤为必要和重要。

主要任务是:使学生获得和掌握学会观察人体重要器官的解剖学特征、组织学结构、病理学变化并联系相关功能,从而在形态上观察、机能上分析、综合上判断和科学上研究疾病。

同时联系病变器官的代谢和机能的改变,探讨疾病的病因、发病机制以及病理变化与临床表现的内在联系和相互的关系。

为由基础走向临床打下坚实的基础。

二. 实验目的1. 掌握病理组织切片的基本制作过程步骤2. 掌握病变器官的代谢和机能的改变3. 明白病理组织切片制作过程中的注意事项4. 了解病理切片的制作程序及仪器的操作和注意事项二.实验材料1. 实验材料:手术盘、镊子、手术刀、石蜡、小鼠病理组织、纱布、烧杯、脱水机、塑料包埋盒、水浴锅、切片机、染色机、载玻片、盖玻片、铅笔、标签2. 实验试剂:福尔马林、酒精(50% 55% 70% 75% 80% 85% 95% 无水浓度)、二甲苯、苏木素、盐酸酒精、伊红染液、树胶四.实验步骤(一)取材从尸体解剖材料或临床手术切除的待检材料上选取供作切片标本的病理组织切块,称为取材。

1. 取材要全面具有代表性,能显示病变的发展过程。

为此要选取病变显著的区域和可疑灶,在统一组织块中最好包括病灶及其周围的健康组织,并应包含该器官的主要结构部分。

较大而重要的病变可从病灶中心到外周的不同部位取材,以反映病变各阶段的形态学变化。

2. 取材时要尽量保持组织的自然状态与完整性,避免认为变化。

为此,切取组织块的剪刀要锋利,切取时勿使组织受挤压、拉扯胡揉搓。

3. 组织块的大小要适当,通常其长、宽、厚以 1.5 X1X 0.4cm为宜,必要时可增大到2X 1.5 x 0.5cm,以便于固定液迅速浸透。

组织制片技术-病理检验技术PPT

组织制片技术-病理检验技术PPT
➢ 固定液分为常用固定液和选择性固定 液两大类。
1.常用固定液
➢ 浓度10%福尔马林(浓度4%甲醛) 配制:取40%的甲醛1份加水9份混合即成。 优点:渗透力强,组织收缩小,固定均匀; 固定后组织硬度适当 ; 可增加组织韧性 ; 成本较低,可用于固定和保存大标本。
1.常用固定液
➢ 浓度10%中性缓冲福尔马林(7.2-7.4)
定效果。 注意:因乙醇的渗透力弱,固定速度慢,细胞核
着色不太理想,所以用其固定的标本取材 要薄。
1.常用固定 ➢ 乙液醇-甲醛固定液(A-F固定液)
配制:95%乙醇或无水乙醇9份,加40%甲醛1份混 合而成。
特点:此液同时兼有固定与脱水作用,尤其适用于 皮下组织中肥大细胞的固定。
➢ 乙醇-醋酸-甲醛混合固定液(AAF固定液)
(二)固定的方法
➢ 浸泡固定法:最常用。用于浸泡固定液的体积不 得少于标本体积的5倍。
➢ 注射或灌注法:多用于整个器官或尸体的固定。 ➢ 微波固定法:主要用于少量或小块组织快速制片
时的固定。 ➢ 蒸汽固定法:主要用于可溶性物质、血液或细胞
涂片及某些薄膜组织等小而薄标本的固定。
(三)固定的注意事项
病理检验技术
组织制片技术
学习内容
➢ 组织块的处理 取材 固定及固定液选择 洗涤、脱水、透明 浸蜡、包埋
➢ 组织切片 切片机原理 切片技术
学习目标
取材、固定、脱水、透明、浸蜡、包埋、脱水

剂等概念
握 脱水、透明、浸蜡、包埋、切片等技术操作
熟 悉
组织切片制作的基本程序
了 常用固定液的配制和应用 解
配制:浓度40%甲醛10ml、冰醋酸5ml加入95%乙 醇85ml混 合而成。

病理组织切片制作技术

病理组织切片制作技术

病理组织切片制作技术病理组织切片制作技术病理组织切片常用的制作方法有三种。

即石蜡切片法,冰冻切片法和火棉胶切片法。

以石蜡切片法为代表,切片的基本制作过程是:组织取材→固定→冲洗→脱水→透明→浸蜡→组织包埋→组织切片→展片附贴→切片脱蜡→染色→脱水→染片透明→封固。

以上基本过程是互相联系的,任何一环节出现问题,都将使整个切片制作归于失败。

因此应细致、耐心、认真负责,并事先做好计划安排。

一、取材采取病料,要刀剪锐利,剪切时不可挤压,扯拉病料,以防人为损伤。

切取的工具要清洁。

采取病料越新鲜越好,一般不超过死后24小时。

应选择病变部与可疑病变部切取,切取时要由表及里,有浅入深并包括周围正常组织一部分。

特殊病料应根据器官的结构特点切取。

管状,囊状和皮肤组织应注意垂直切取(横切)。

带有薄膜的组织,要防止切时薄膜分离和脱落。

切取组织块大小,以1.5×1.5×0.3厘米为宜,最厚不宜超过0.5厘米。

组织块病变一面应平整光滑,另一面可不平整,以便包埋时辨认。

切取后,放入事先准备好的装有固定液的磨口玻璃广口瓶中,并做好标记。

二、固定固定的目的是迅速将组织细胞杀死,使细胞中的蛋白质,糖,脂肪等凝固,从而保持与活组织相似的结构状态。

材料取下后,应迅速固定。

固定液数量应为病理组织块的5到20倍。

由于一般把组织块浸入固定液后数小时,固定液渗入组织液的深度只达2到3厘米。

因此,可以放置冰箱内固定,使组织内酶失去作用,细菌也能停止滋生。

最常用的固定液是10%的福尔马林溶液:使用时,用40%的甲醛饱和水溶液10毫升,加水90毫升配成。

三、冲洗固定后的组织块,应将固定液洗去。

一般均用流水(自来水)冲洗12到24小时左右。

及时冲洗尚有停止固定的作用,防止固定过度,有利于制片染色。

冲洗时如不方便用流水冲洗,也可用较大容器盛装水浸洗,每隔相当时间换水一次。

整个浸洗时间比流水冲洗应稍长一些。

酒精固定的组织材料不需冲洗。

病理学的五种研究方法

病理学的五种研究方法

病理学的五种研究方法病理学是研究疾病诊断和治疗的一门学科,为了更好地了解疾病的本质,病理学家们采用了多种研究方法。

本文将介绍病理学的五种研究方法。

一、组织学方法组织学是病理学的基础,它主要研究组织结构的变化。

组织学方法是通过取材、制片、染色等技术,对组织进行观察和分析,以确定疾病的类型和范围。

组织学方法的优点是可以直接观察病变组织的形态和结构,有利于确定疾病的诊断和治疗。

但是它的缺点是不能直接观察病变组织的功能和代谢过程。

二、细胞学方法细胞学是病理学的重要分支,它主要研究细胞的形态和功能。

细胞学方法是通过采用细胞培养、细胞染色等技术,对细胞进行观察和分析,以确定疾病的类型和范围。

细胞学方法的优点是可以直接观察细胞的形态和功能,有利于确定疾病的诊断和治疗。

但是它的缺点是不能直接观察组织结构和代谢过程。

三、免疫学方法免疫学是病理学的重要分支,它主要研究免疫系统和免疫反应。

免疫学方法是通过采用免疫染色、免疫电镜等技术,对免疫反应进行观察和分析,以确定疾病的类型和范围。

免疫学方法的优点是可以直接观察免疫反应的特征和机制,有利于确定疾病的诊断和治疗。

但是它的缺点是不能直接观察组织结构和细胞形态。

四、分子生物学方法分子生物学是病理学的新兴分支,它主要研究生物分子的结构和功能。

分子生物学方法是通过采用PCR技术、DNA测序技术等技术,对生物分子进行分析和研究,以确定疾病的基因和突变。

分子生物学方法的优点是可以直接观察生物分子的结构和功能,有利于确定疾病的基因和突变。

但是它的缺点是不能直接观察组织结构、细胞形态和免疫反应。

五、影像学方法影像学是病理学的重要分支,它主要研究疾病的影像学表现。

影像学方法是通过采用X光、CT、MRI等技术,对疾病的影像学表现进行观察和分析,以确定疾病的类型和范围。

影像学方法的优点是可以直接观察疾病的影像学表现,有利于确定疾病的诊断和治疗。

但是它的缺点是不能直接观察组织结构、细胞形态和免疫反应。

病理组织制片技术基本流程

病理组织制片技术基本流程

病理组织制片技术基本流程病理组织制片技术是病理学中的一项重要技术,它通过将病理标本切片、染色和覆盖玻片,使得细胞和组织的形态结构能够被显微镜观察和分析。

这项技术在医学诊断、研究和教学中起到了关键作用。

下面将介绍病理组织制片技术的基本流程。

1. 标本采集与固定病理组织制片的第一步是标本采集与固定。

医生根据患者的病情,选择合适的组织或细胞标本进行采集。

常见的标本包括切除标本、活检标本等。

采集后,标本需要立即进行固定,以保持组织的形态结构和化学成分的稳定。

最常用的固定剂是10%的中性缓冲福尔马林溶液。

2. 组织处理与包埋固定后的标本需要进行组织处理与包埋。

首先,将固定的标本进行去除固定剂的处理,然后用乙醇逐渐脱水,最后用苯麻油进行透明处理。

透明处理后,标本需要被包埋在石蜡中,以便后续的切片操作。

3. 切片与染色石蜡包埋的标本需要进行切片与染色。

首先,使用组织切片机将石蜡块切割成薄片,通常厚度为4-6微米。

切片后,将切片浸泡在水中,使其展开。

然后,将切片依次浸泡在染色剂中,进行组织染色。

不同的染色剂可以突显不同的细胞和组织结构,例如血液常规染色、免疫组化染色等。

4. 脱脂与覆盖玻片染色后的切片需要进行脱脂与覆盖玻片。

首先,将染色后的切片依次浸泡在醇中,去除多余的染色剂。

然后,使用透明剂将切片与玻片粘结在一起,使其固定。

最后,将覆盖玻片放在切片上,使用压力将其压平,使切片与玻片紧密结合。

5. 干燥与封装覆盖玻片后的切片需要进行干燥与封装。

将覆盖玻片的切片放置在干燥箱中,通过温度和时间控制,将其彻底干燥。

干燥后,将切片放置在干燥剂中,以防止切片吸湿。

最后,将切片放入切片盒中,进行封装,以便长期保存和使用。

病理组织制片技术的基本流程包括标本采集与固定、组织处理与包埋、切片与染色、脱脂与覆盖玻片以及干燥与封装。

这一流程确保了病理标本的形态结构得以保留,并使其能够被显微镜观察和分析。

病理组织制片技术的应用广泛,对于疾病的诊断和治疗具有重要意义,同时也为病理学研究和教学提供了有力支撑。

病理制片技术规范

病理制片技术规范

病理制片技术的规范病理技术是病理学诊断不可分割的一部分,制片质量的好坏很大程度上影响病理医生做出正确的病理诊断。

因此,保证和提高制片质量是每个病理技术员的责任。

为了保证制片质量,减少差错,防范责任事故,避免医疗纠纷,有必要加强对病理技术进行科学规范管理和制片的控制,为提高临床病理诊断水平,促进临床病理学事业的发展做出我们应有的贡献。

一、高素质技术人员的规范管理1.要有敬业精神,强烈的工作责任心、2.努力学习,刻苦钻研,掌握过硬的基本功,引进和学习新技术,工作精益求精。

3.领导重视,为技术人员提供进修学习和提高的机会。

4.技术员和医生,技术员与技术员互相团结,密切配合,发挥团队精神的作用、二、仪器设备分规范管理1.配备先进,高质量的仪器设备是保证和提高制片质量的重要条件、2.正确使用,定期维修保养,保证仪器设备在最佳的状态下工作、三、标本和资料档案的规范管理1.标本和送检单的接收检查标本和送检单的名字是否相符,有否标本,有没有病史。

标本补充固定液,送检单编号登记。

2.资料档案的规范管理诊断报告发出后,附有诊断报告记录的送检单、玻片和组织蜡块存档并专人保管。

建立严格的资料借出制度,确保档案资料不被丢失。

四、技术操作规范1. 及时固定组织:应采用10%~20%甲醛液(10%甲醛液即用浓甲醛液1份加蒸馏水9份稀释)固定组织,因甲醛易氧化成甲酸,因此多会偏酸性,最理想的是配成中性甲醛液。

巨大组织要切开固定,小块组织的固定时间约4小时左右,然后取材时修切成大小约22 x 22mm,厚不超过2mm的组织块进行脱水。

取材时必须注意核对编号是否与送检单上的病理号一致,并记录好对大体标本的描述,取材组织的形状和数量。

l 常规固定液的配制(1) 10%甲醛液浓甲醛 10ml蒸馏水 90ml(2 ) 缓冲中性甲醛液浓甲醛 10mlPBS缓冲液(Ph7.2) 90ml(3 ) 10%中性甲醛液浓甲醛 10ml蒸馏水 90ml碳酸钙加至饱和•冷冻切片固定液(1) 乙醚酒精液无水乙醚 1份95%酒精 1份(2) 酒精—冰醋酸液95%酒精 100ml冰醋酸 3~5滴•细胞学涂片固定液的配制(1) 酒精—冰醋酸液95%酒精 97ml冰醋酸 3ml(2) 乙醚--酒精液95%酒精 50ml乙醚 50ml冰醋酸 1ml(3) Carney`s液无水酒精 60ml氯仿 30ml冰醋酸 10ml2. 脱水彻底:脱水液常用乙醇,用乙醇脱水要由低浓度逐级上行至高浓度(一般70%~100%的浓度),逐步置换组织内的水份。

病理标本切片技术

病理标本切片技术

病理标本切片技术病理学作为现代医学的重要组成部分,着重于通过病理学检查以确定疾病诊断及治疗方案。

而病理标本切片技术作为病理学检查中的关键步骤之一,对疾病的诊断及治疗起着不可替代的作用。

一、病理标本切片技术概述病理标本切片技术是将组织样本切割成非常薄的部分,以便进行显微镜检查的过程。

这一过程通常被称为“制片”,其一般包括如下步骤:1.组织预处理:该步骤包括固定、清洗、脱水、透明化等几个关键步骤,目的是使组织样本保持原有形态并易于切割。

2.切片:该步骤使用病理切片机将组织样本切割成具有一定厚度的切片,通常在3~10μm之间。

3.染色:该步骤是为了使组织样本结构更易于识别,通常使用的染色剂有常规的血液学染色剂、免疫组织化学染色剂等。

二、病理标本切片技术的重要性正确的病理标本切片技术可以帮助病理学家准确判断疾病病变的类型、性质及病变程度等。

其重要性主要表现在以下三个方面:1.诊断:病理标本切片技术可以提供病理学家直接观察、评估组织标本,从而给出准确的疾病诊断。

例如,肿瘤和白血病等疾病需要进行病理学检查并使用病理标本切片技术来确诊。

2.治疗:病理标本切片技术还可以对病人进行治疗方案的定制。

例如,通过病理标本切片技术可以判断某种瘤细胞是否对某种药物敏感,从而在治疗中选用更加有效的药物。

3.预后:病理标本切片技术还可以帮助病人对病程进行预测和评估。

例如,在肿瘤的治疗过程中,通过病理标本切片技术可以评估肿瘤对治疗的响应并进行预测,从而评估病人的预后。

三、病理标本切片技术中存在的挑战与未来发展方向病理标本切片技术虽然在现代医学中发挥了不可替代的作用,但其在实践中仍然存在一些挑战:1.样本收集限制:某些类型的病理标本很难取得,例如甲状腺和胰腺的病理标本。

2.自动化技术发展不足:虽然近年来出现了许多自动化切片仪器,但其切片精度和效率仍然需要进一步提高。

未来病理标本切片技术的发展方向主要包括:1.数字化技术:该技术可以将制片过程中得到的显微镜图像数字化,实现对图像的分析和存储。

《组织病理技术》课件

《组织病理技术》课件
解决方案
采用适当的固定液和保存方法,优化 染色流程,使用防脱片胶,提高制片 质量。
新技术的应用与展望
新技术
数字化病理技术、人工智能辅助诊断、 组织芯片技术。
VS
展望
数字化病理技术将使病理诊断更加便捷和 准确;人工智能辅助诊断能够提高诊断效 率和准确性;组织芯片技术可用于药物筛 选和疾病模型研究。
组织病理技术的伦理与法规问题
组织病理技术的发展历程
19世纪初
随着显微镜的发明和应用 ,人们开始对组织结构和 细胞形态进行研究。
20世纪初
石蜡切片技术的出现,使 得组织病理技术更加标准 化和规范化。
20世纪末至今
随着科技的不断进步和应 用,组织病理技术不断发 展和完善,应用领域也更 加广泛。
02
组织病理技术的基本原理
组织样本的获取与处理

恶性程度评估
组织病理技术可以评估肿瘤的恶性 程度,判断肿瘤的侵袭性和转移风 险,为制定治疗方案提供依据。
预后判断
通过组织病理技术对肿瘤的病理特 征进行分析,可以预测患者的预后 情况,帮助医生制定后续治疗方案 。
移植组织鉴定
组织匹配
在器官移植中,组织病理技术用 于检测供体和受体之间的组织匹 配程度,确保移植组织的兼容性
根据处理方法的不同,组织病理 技术可以分为石蜡切片技术和冷 冻切片技术等。
组织病理技术的应用领域
01
02
03
临床病理诊断
通过组织病理技术对病变 组织进行观察和分析,为 临床医生提供准确的病理 诊断。
药物筛选
利用组织病理技术观察药 物对病变组织的影响,为 新药研发提供实验依据。
毒理学研究
通过组织病理技术观察化 学物质对组织结构和细胞 形态的影响,评估其毒性 和安全性。
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(五)固定时的注意事项


1. 标本 应新鲜并及时取材,快速放入固定液中。 特殊标本应单独固定和存放。 2. 固定液的用量 一般固定液用量为组织块体积的 10~20倍,贵重的固定液不少于3~5倍。避免组织紧 贴容器底部,影响固定效果。对于特殊染色的组织 (如神经染色及酶组织化学染色等)固定时应考虑组 织块的大小、固定液种类、固定时间和温度等。酶 组织化学染色组织的固定应置于冰箱4℃固定。
二、冰冻组织的取材及保存方法 (一)取材

负责诊断的医师应亲自检查大体标本,做多 切面详细检查,必要时可在解剖镜下观察。 选取最具代表性的组织制片,必要时应多点 取材。如切面有特殊要求,应向技术人员说 明。取材和切片的剩余组织须进一步做石蜡 切片进行对照,有利于病理医师对照阅片, 不断提高观察冰冻切片的水平。

2. 混合固定液 (1) Bouin液 :用于结缔组织及脂肪染色; (2) Zenker液:常用于三色染色; (3) 4%多聚甲醛-磷酸二氢钠-氢氧化钠液;

(四)固定后的处理

1. 一般固定液(甲醛等)固定组织后,用流水冲洗以清除组 织内的固定液终止固定。 2. 含有乙醇、乙酸及苦味酸的固定液,组织固定后不需 要或不能用水冲洗。 3. 含有铬酸、重铬酸钾和锇酸的固定液,组织固定后应 充分水洗,一般为12~24h。 4. 用含汞的固定液固定组织后,要进行脱汞处理,可在 组织脱水前或切片染色前进行,一般多在染色前脱汞。其 方法为切片脱蜡入水后,入0.5%碘乙醇5~10min,水洗 后再入3%~5%硫代硫酸钠或95%乙醇1~2min,再充分水 洗,蒸馏水洗后进行染色。

3. 切片时刀是由下向上运动,为得到完整的切片, 防止组织出现刀纹裂缝,应将组织硬脆难切的部 分放在上端(如皮肤组织的表皮部分,胃肠等组织 的浆膜面等)。 4. 捞片时注意组织片的摆放位置,尽量整齐美观。 要留出贴标签的空间, 5. 捞片时注意在切片和玻片之间不要留有气泡。 捞好的切片应在60℃左右烤箱内烤至少30min。 以防染色时脱片。
a平凹形
b深平凹形
c平楔形
d双凹形
各种切片刀的剖面图
石蜡切片机用一次性钢刀片
二、组织切片(Tissue sectioning)
石蜡切片仍是目前各种切片制作方法中
最常用、最普遍的一种方法。
(一)切片前的准备
1. 备齐常用器具, 如玻片、毛笔和铅笔或 刻字笔。 2. 检查切片机的工作状态, 将固件都拧紧, 检查切片刀是否锋利, 切片刀质量是保证 切片的关键。如果使用一次性刀片, 应根 据切片情况及时调整刀刃位置。

用熔化的切片石蜡逐渐替换组织中 二甲苯的过程。
六、组织的包埋和包埋方法
(Embedding)
(一)常规石蜡包埋 (二)脱落细胞标本的包埋 (三)微小标本的包埋

第二节 组织切片法 (Tissue sectioning)

组织切片法包括石蜡切片法、冰冻切片法、火 棉胶切片法、树脂包埋薄切片法和大组织石蜡 切片法等。常用的切片工具包括组织切片机、 切片刀和自动磨刀机等。
一、取材(Samples collection)
1. 人为因素 2. 标本大小 3. 取材时间 4. 包埋方向 5. 边缘标记

6. 小标本的处理方法 7. 特殊情况取材 8. 取材数量 9. 清除多余成分 10. 重复取材 11. 核对取材 12. 剩余组织存放

(二)常用的固定方法
1. 浸泡固定法 2. 灌注固定法 3. 细胞涂片的固定方法 4. 微波固定法 5. 蒸气固定法

(三)常用的固定液
1. 单纯固定液 (1) 甲醛(formaldehyde) (2) 酒精(alcohol) (3) 苦味酸(picric acid) (4) 丙酮(acetone) (5) 醋酸(acetic acid)
(二)切片制作过程
1. 蜡块在冰箱中预冷,然后固定在切片机上。将 切片刀装在刀架上。调整蜡块与刀的位置,使蜡 块切面与刀刃接近。 2.切片机多为轮转式,使用时左手执毛笔,右手 旋转切片机转轮。先修出标本,直到组织全部暴 露于切面为止,标本过小时修块应多加注意,大 标本要切全。切出蜡带后,用毛笔轻轻挑起一端, 用镊子夹起另一端,正面向上放入展片水槽中(水 温一般低于蜡熔点10~12℃),待切片展平后,即 可进行捞片。

(2)盖玻片的处理:盖玻片可按以上方法处理, 但因盖玻片很薄,以上处理程序应缩短。清洁液 浸泡2h,流水冲洗。也可用以下方法清洗:盖玻片 立排于卧式染缸(排2行,中间隔以载玻片)。松紧 度以玻片可轻松转动为好,以下步骤应保持液体 进入每个玻片间隙,玻片之间不能有气泡。用 1%盐酸酒精浸泡2h,然后流水冲洗干净,再用 蒸馏水冲洗数次。入95%酒精浸泡2~3h,无水酒 精浸泡20min,倒掉酒精放60℃烘箱烤干备用。
Notice
1.上课请关手机(或调成振动,接电话到室 外)。 2. 选修课自愿选择,试听一次,下次课班 长提交选修课学生名单(包括email)。 3. 学分问题 ⑴ 平时表现 如:纪律、问答、作业。 ⑵ 结课测验? ⑶ 对本课程的意见和建议;
生命科学研究中心 邢立强 emxlq@
3.
防止组织变形 柔软或较薄的组织先平铺在吸水 纸上,再投入固定剂中;含气或脂肪多的组织易浮 于液面,可在组织表面覆盖棉花以达到充分固定。 4. 固定液的穿透性 一般固定液在24h内不能穿透 厚度大于2~3mm的实体组织或5mm的多孔疏松组织, 故取材组织块的厚度原则上不应超过3~4mm。 5. 固定时间 固定的时间与固定液的种类、组织类 型、块大小、温度等有关。一般1.5cm×1.5cm×0.2 ~0.3cm大小的组织块, 固定时间为12~24h。 6. 固定温度 大多数可在室温(25℃)固定,在低温 (如4℃)固定时,固定时间要相应延长。
(二)保存方法
组织速冻的方法很多,常用方法为液氮和干冰 ~丙酮法。 1. 液氮法:将组织块平放于瓶盖或标本盒等适 当容器内,缓慢放入盛有液氮的容器内。当组 织块冻结后,取出用铝箔包好,做好标记后入 液氮罐或-70℃低温冰箱保存。可保存数月至数 年。如短期内使用,可保存于-30℃冰箱。


2. 干冰-丙酮法:将组织块放入盛有OCT包埋 剂的标本盒内,使组织块完全浸没。将丙酮倒 入盛有10g干冰的保温杯调成糊状。将装有组 织块的标本盒放入保温杯,待包埋剂成白色冻 块时,取出如上法保存。此法组织速冻快,组 织结构保存好。
2
目的和要求
Aims and Requirements
了解生物组织的特点及取材的注意事项; 熟悉切片的原理、一般要求及注意事项; 掌握石蜡切片制作技术;

病理学常用的观察手段
The common survey means in pathology
1、大体标本观察:主要用肉眼、量尺及各种衡 器等辅助工具,对所检标本的大小、形状、色泽、 重量、表面及切面、病灶特点进行观察及测量。 2、组织切片的观察:取正常或病变组织进行切 片、染色(HE染色最常用)在显微镜下进行观察。
三、脱水(Dehydration)
组织经固定和水洗后含大量水分,水与石蜡 不能混溶。因此在浸蜡和包埋前,必须进行 脱水。 常见的脱水剂有乙醇、正丁醇、丙酮等。 为防止水份丢失过快,造成组织变形,一般 采用梯度脱水法。也就是使脱水剂的浓度逐 渐升高,脱水过程尽量缓和,减少组织变形。

四、透明(Transparentizing)
病理技术的应用
Application of pathologic technique
帮助临床查明死因(尸检); 手术后病变标本,明确诊断(临床活检); 为教学、科研提供资料;
第一节 组织处理 Tissue processing
Hale Waihona Puke 取材(Sample collection)→固定(Fixation)→ 脱水(Dehydration)→透明(Transparentizing) →浸蜡(Paraffin soaking)→包埋(Embedding)

二、固定(Fixation)

固定就是用物理或化学方法,阻止组织细胞离体 或培养细胞脱离生存环境后发生形态学变化。
(一)固定的目的
1. 迅速阻断组织细胞离体后的自溶性变化,防止 腐败,尽量保持组织细胞生活状态下的形态结构。 2. 使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变 成不溶性物质,并保持原有的空间位置。 3. 固定剂有硬化作用,增加组织的硬度,便于制片。 4. 组织中的各种物质经固定后产生对染料的亲和 力,利于染色和观察。
一、冰冻切片法


(一)恒冷箱切片机 提前开机预冷,一般工作温度设定在-22℃左右。 待刀台、样品台和箱内达到设置温度后即可切片。 顺序如下:①将组织用OCT粘在样品托后放置在速 冻台上;②组织冻结后,将样品托固定到样品台上; ③调整组织切面与刀刃位置,初步修出组织切面后, 放下防卷板,关闭观察窗,开始切片。④切出的切 片粘贴到载玻片上,直接冻存或吹干固定。 (二)半导体制冷切片机
常用的透明剂有二甲苯、苯、甲苯、氯仿、环己 酮、苯甲酸甲酯、香柏油、冬青油和苯胺油等。 目前也有用环己酮作为透明剂,环己酮为无色无 毒液体,可与苯、二甲苯和酒精等相混合,也可 溶解石蜡。而且脱水时组织不收缩变硬,用于快 速石蜡切片效果较好。

五、浸蜡(Paraffin wax soaking)

病理学标本的种类
Types of pathologic samples
1、活体组织检查(Biopsy):简称活检,从患者 活体局部切取、钳咬、细针吸取和摘取等手术 方法获取病变组织进行病理检查。 2、脱落细胞学检查(Exfoliative cytological exam):对患者痰液、胸腹水、尿液以及阴道刮 片、食管拉网、纤维胃/支气管镜所取得的材料 进行涂片,以检查脱落细胞,是早期发现和诊 断肿瘤的好方法。
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