我院常见微生物标本的规范送检
微生物标本采集送检及处理原则
微生物标本采集送检及处理原则一、标本采集1.采集时机：采集标本应在疾病出现初期进行，避免开始使用抗生素治疗前采集。
2.采集部位选择：根据病情选择合适的部位进行采集，一般可根据症状、疾病类型和临床表现进行判断。
3.采集方法：采集标本时应采取无菌手法，使用无菌采样器材，避免污染和交叉感染。
4.标本储存条件：采集后的标本应立即送往实验室进行检测，若无法及时送达实验室，则应储存在合适的条件下，避免细菌的生长和繁殖。
二、标本送检1.标注采集信息：标本送检前应在标本瓶或容器上标注病人信息、采集时间和采集部位等必要的信息，确保标本的准确性和唯一性。
2.冷藏和运输：对于易变质的标本，如粪便、尿液等，应冷藏并尽早送达实验室；对于其他标本，应采取适当的保存和运输方式，避免温度过高或过低，影响细菌的生存和检测结果的准确性。
三、标本处理1.标本处理前的准备：在对标本进行处理前，必须进行准备工作，如标记标本编号、记录标本类型、检查标本的一致性和完整性等。
2.标本处理方法：根据标本类型的不同，采取相应的处理方法，如深部标本(如脑脊液、关节液等)应优先进行细菌涂片、培养等方法，浅部标本(如咽拭子、鼻拭子等)可直接进行细菌培养。
3.标本处理的时间：不同类型的标本处理时间有所不同，但一般应尽快进行处理，避免细菌在标本中的生长和污染。
四、标本保存1.标本封存：处理完的标本应在标本瓶或容器上进行标注，并进行封存，避免污染和交叉感染。
2.标本保存时间：保存标本的时间应根据实验室的需求和标本的特性来确定，如对于一些常见的标本，如尿液、粪便等，一般保存时间较短，而对于其他一些特殊标本，如组织标本等，可保存更长时间。
总之，微生物标本采集送检及处理原则的正确遵守可以确保实验结果的准确性和可靠性，为疾病的诊断和治疗提供有力的支持。
同时，医务人员在进行标本采集和处理过程中应加强无菌操作和个人防护，有效避免交叉感染的发生，保障自身和他人的健康安全。
临床微生物标本规范化采集和送检
注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率，要采集新鲜粪便作培 养，且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养，或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等，以助诊断；从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间： 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查，若为 培养，患者应停药1-2天后再采样，以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后，挑取其脓血、 粘液部分2-3g，液状粪便取絮状物2-3ml， 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时，或排 泄困难的患者及婴儿，可用直肠拭子采取， 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后，插入肛 门内4-5cm（幼儿2-3cm）轻轻转动取出， 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液， 进行血培养；
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位，无菌采集2套血培养， 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者： （1）怀疑血流感染时，从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体，至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片：常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍，再用含生
微生物检验标本采集和运送原则
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
医院感染临床微生物检查标本采集与送检规范
测。 • 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液状便的效果最好
。 • 疑似致病性大肠埃希菌，气单胞菌，邻单胞菌，弧菌，小肠结肠
炎耶尔森菌感染的病人，需要培养时，须另外提出申请。
的，如果送检时间超过1小时，则会影响结果，在结果报告时， 在备注处注明此情况。
• • 如不能及时送检，可使用血培养瓶（怀疑脑膜炎奈瑟菌和淋病 奈瑟菌感染时，请勿使用血培养瓶）
•
穿刺液标本采集与运送
穿刺液标本的采集方法
• • 由临床医生进行。 • • 胆汁的采集方法有三种：十二指肠引流法（以“B”管—来自胆
最有价值的细菌学检测项目
• • 血液培养 • • 脑脊液培养 • • 胆汁培养 • • 胸腹水培养 • • 关节液 • • 其他无菌体液或分泌液
我国血培养现状—阳性检出率低<10%（国外约为 15％）
• 原因何在？？？ • ? ? 血流中含菌量低 • ? ? 血液中抗菌物质 • ? ? 抗生素的应用 • ? ? 培养条件限制
• • 3标本 采集时机不合适，未抓住菌血症时期，或在刚使用抗生 素不久。采血最好在：体温升高前半小时，使用抗生素前，或停 用抗生素24小时。
• • 4 标本消毒时 消毒酒精未完全挥发。
痰液标本采集存在的问题
• • 1、随机标本采集多而非晨痰 • • 2、痰培养送检的往往不是病人深部的咳痰，而是
唾沫居多。
• 标本接种后轻轻上下颠倒混匀防止血液凝固 • 切勿冷藏
•
血培养标本采集与运送
•
血培养的指征是什么? ? ? ?
血培养的指征是什么? 答 案
临床常见微生物标本的采集与运送
临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
微生物标本送检的基本原则
微生物标本送检的基本原则以微生物标本送检的基本原则为标题，本文将从以下几个方面介绍微生物标本送检的基本原则。
一、选择合适的标本选择合适的标本是进行微生物检测的第一步，标本的收集应根据患者的临床表现和病情进行选择。
一般来说，对于病原微生物的检测，最好选择有病灶或炎症的组织或分泌物作为标本。
例如，对于呼吸道感染，可选择痰液或咽拭子作为标本；对于尿路感染，可选择尿液作为标本。
此外，在选择标本时还需要考虑采样的时间、部位和方法等因素。
二、正确采集标本采集标本时需要保持严格的无菌操作，以避免外源性微生物的污染。
根据不同的标本类型，采集方法也有所不同。
一般来说，对于分泌物类标本如痰液、尿液等，可采用无菌容器进行采集；对于组织标本如活检组织、切片等，应采用无菌手术器械进行采集。
此外，还需要注意采集标本的数量和体积，以保证后续检测的准确性。
三、妥善保存标本采集完标本后，应妥善保存以保持其原有的微生物特性。
一般来说，液体标本应置于4℃冰箱保存，固体标本应置于干燥、通风的地方，并避免阳光直射。
同时，保存标本的容器应具备密封性和无菌性，以防止标本的变质和污染。
四、正确填写标本送检单标本送检单是进行微生物检测的重要依据，正确填写标本送检单可以提高检测的准确性和效率。
在填写标本送检单时，应包括患者的姓名、性别、年龄等基本信息，以及标本类型和采集时间等详细信息。
同时，还需注明临床表现、病史和疑似病原微生物等相关信息，以提供给检测人员参考。
五、及时送检标本采集后应尽快送至专业的微生物检测实验室进行检测，以避免标本的变质和微生物的繁殖。
一般来说，液体标本应在采集后的2小时内送检，固体标本应在采集后的24小时内送检。
如果无法及时送检，可使用运输培养基等方法进行临时保存，但应尽快送至实验室进行检测。
六、保持临床与实验室的密切联系在标本送检的过程中，临床医生应与实验室保持密切联系，及时了解检测结果并进行临床解读。
在检测结果出来后，临床医生应根据实验室提供的结果进行合理的治疗方案制定，并及时调整治疗方案。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
我院常见微生物标本的规范送检关键词：微生物标本规范送检
近年来，随着抗菌药物广泛使用，耐药菌株明显增加，卫生部提出重视和加强耐药菌的管理。
根据我院设备和条件及临床需要，常见有患者的血液、体液、排泄物为标本进行细菌分离培养、鉴定及耐药性测定，以达到诊断和治疗目的。
呼吸道标本采集、方法：1、自然咳痰，以晨痰为佳，采集标本前应用清水、冷开水漱口或用牙刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙，尽可能在用抗菌药物之前采集，用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入专用容器中，量应≥1ml，加盖，咳痰困难者可用雾化吸入加温至45℃的10%Nacl水溶液，使痰液易于排出，对难于自然咳痰患者可用无菌吸痰管抽取气管深部分泌物。
2、小儿取痰法，用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳痰时可喷出肺部或管分泌物粘在拭子上送检，幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
运送及保存：标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。
血液标本采集指征：不明原因1、发热（≥38℃）或体温过低（≤36℃）。
2、休克、寒颤、僵直。
3、严重的局部感染（脑膜炎、心内膜炎、肺炎、肾孟肾炎、腹部术后感染）。
4、白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”时），粒细胞减少（成熟的多）核白细胞<1×109/L。
5、血小板减少。
6、皮肤、粘膜出血。
7、昏迷、多器官衰竭或肝脾肿大。
采集方法：1、打开血培养瓶塑料盖用75%酒精消毒血培养橡皮塞并擦干表面残余酒精→消毒皮
肤。
①用75%酒精擦拭静脉穿刺部位约30S以上。
②用1%-2%磺酊作用30S 或10%碘状作用60S，从穿刺向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上，涂擦穿刺皮肤2遍，待干燥。
③75%酒精脱碘；用75%酒精由内向外方向外方向涂抹去碘酒液，待酒精挥发干燥后采血、采集量：新生儿、婴幼儿1-2ml；儿童：3-5ml；成人：8-10ml。
血培养次数和采血时间：1、采血培养应尽量在使用抗菌药之前进行，在患者发热期间越早越好，以发热高峰期前1h 内或病人寒战和发热开始采集为宜。
2、采取血培养后的2-5天内，不需要再重复采取血培养，因为进行治疗后的2-5天血液中的感染细菌不会马上消失。
运送、保存、采血后应该立即送检，如不能立即送检、需室温保存，切勿冷藏。
注意：1、多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤细菌丛污染的可能，除非无法作静脉穿刺取血。
否则不应从留置导管内取血。
2、如血培养是通过静脉植入管采集，不用弃去起始部分的血液，应同时向外用静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果。
3、培养瓶上标签的内容应包括病人基本信息，采血时间，采血部位。
尿液标本采集。
指证：1、典型的尿路感染症状。
2、肉眼脓尿或血尿。
3、尿常规检表现为白细胞或亚硝酸盐阳性。
4、不明原因的发热，无其他局部症状。
5、留置导尿管的患者出现发热。
6、膀胱排空功能受损。
7、泌尿系统疾病手术前。
采集方法：1、清洁中段尿法：嘱咐患者睡前少饮水，清晨起床后用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻起上包皮，仔细清洗，
再用清水冲洗尿道口周围，开始排尿，将前段尿排去，中段尿约5-10ml直接排入专用无菌试管中，不少于1ml。
2、耻骨上膀胱穿刺法：评估膀胱内细菌感染的金标准方法，但患者难以接受。
3、直接导尿：常规消毒后插入尿管后先让尿液流15ml再留取标本。
4、留置导尿管收集尿液，应消毒导尿管外部，按无菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取5-10ml，置于无菌试管中应注意防止混入消毒剂，不能从尿袋中采集，导尿管末端的尿液也不能用于培养，本法中滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。
运送、保存：采集后立即送检，如不能立即送检，室温保存不得超过2h，4℃保存不超过24h。
粪便标本采集：指征：1、粪便涂片镜检白细胞7/5个MP。
2、重度腹泻。
3、体温大于38.5℃。
4、血便。
5、便中有脓液。
6、未经抗生素治疗的持续性腹泻患者。
7、来自疫区的患者。
采集方法：1、自然排便法：注意如有脓血、粘液、组织碎片，则取该部分的粪便2-3g，液体粪便则取絮状物1-3ml。
2、直肠拭子法：用无菌拭子插入肛门2-4cm，轻轻旋转拭子，可在拭子上明显见到粪便，插入培养基内，适用于排便困难患者或婴幼儿，不推荐使用拭子做常规性病原菌培养。
运送、保存：标本尽快送检，不能及时送检的室温保存≤2h。
脑脊液标本采集操作规程，由医师在无菌操作下行腰穿取得，采集3-5ml，立即送检，绝不可冷藏。
无菌体液标本采集操作流程：由医师按相应规程无菌采取适量标本送检，当留取标本时，为防止凝固，应在无菌容器中先加入无菌肝素0.5mg （可抗凝5ml标本），再注入各种穿刺液，轻轻混合，尽快送检。
脓液标本采集：方法：1、开放脓肿用无菌盐水或70%酒精擦去表面渗出血，用拭子深入溃疡基底部或边缘部，采集两个拭子做培养。
2、闭锁脓肿，要消毒脓肿表面皮肤后用无菌注射器抽取，刺入无菌橡皮塞中送检。
3、烧伤伤口清创，渗出物用拭子采集，也可送组织标本。
4、脓疤或水疱酒精消毒、干燥，用针头挑破脓疱用拭子采集脓疱液和基底部标本。
运送：标本采集后应1h内尽快送检。
主殖道标本采集规程：男性标本：如疑为性病或其他化脓性细菌感染应清洗龟头部后，以碘伏或其他非粘膜刺激性消毒剂消毒后，挤出分泌物立即以无菌拭子采取，立即送检或以专用拭子插入尿道口1-2cm旋转采取。
女性标本：成年女性自宫颈采取标本，应在扩阴器的支持下选取有炎症或分泌物部分，先以无菌棉签拭去表浅层分泌物，再用拭子取宫颈分泌物送检，如做厌氧或真菌培养应另外采取标本，如怀疑淋球菌感染，应同时采集一份肛门拭子标本，注意未成年幼女疑患性传插疾病时，不应使用扩阴器，应以无菌拭子在阴道口处采取分泌物送检。
标本采集后应置于无菌试管内尽快送检，禁止冷藏。
临床上对微生物培养标本采集不正确可导致细菌及耐菌培养阳性低，以致耽误诊断和治疗，不能及时将耐药感染的患者隔离,错过患者的最佳治疗时机，因此，护士正确采集标本是保证检验结果准确的前提条件。