实验动物麻醉
狗麻醉解剖实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 熟悉狗的解剖结构,了解各器官的形态、位置和功能。
2. 掌握狗的麻醉、解剖和操作技巧。
3. 培养学生严谨、细致的实验态度和团队合作精神。
二、实验材料与设备1. 实验动物:健康成年狗一只(雌性,体重约10kg)。
2. 实验器材:麻醉机、手术刀、剪刀、镊子、针筒、注射器、解剖器械、生理盐水、碘伏、酒精、纱布等。
3. 实验药品:普鲁卡因、利多卡因、肾上腺素、生理盐水等。
三、实验步骤1. 麻醉:(1)首先对狗进行全身麻醉,采用静脉注射普鲁卡因和利多卡因的混合液。
(2)麻醉成功后,将狗置于解剖台上,固定四肢,准备进行解剖。
2. 解剖:(1)皮肤:观察狗的皮肤颜色、厚度和弹性,注意皮肤与肌肉的连接方式。
(2)肌肉:分离皮肤与肌肉,观察肌肉的形态、颜色和纹理,了解肌肉的起止点和作用。
(3)骨骼:分离肌肉,暴露骨骼,观察骨骼的形态、大小和连接方式,了解骨骼的支撑和保护作用。
(4)内脏器官:a. 消化系统:观察胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊、胰腺等器官的位置、形态和功能。
b. 呼吸系统:观察气管、支气管、肺等器官的位置、形态和功能。
c. 循环系统:观察心脏、血管、淋巴等器官的位置、形态和功能。
d. 泌尿系统:观察肾脏、输尿管、膀胱等器官的位置、形态和功能。
e. 生殖系统:观察卵巢、输卵管、子宫、睾丸、附睾等器官的位置、形态和功能。
f. 神经系统:观察大脑、脊髓、神经等器官的位置、形态和功能。
g. 感觉器官:观察眼睛、耳朵、鼻子等器官的位置、形态和功能。
(5)神经系统:观察大脑、脊髓、神经等器官的位置、形态和功能。
3. 组织切片:(1)取狗的器官组织,如肝脏、肾脏、心脏等,进行固定、脱水、透明、浸蜡、切片、染色等步骤。
(2)在显微镜下观察组织切片,了解器官组织的微观结构。
4. 总结与讨论:(1)总结实验过程中观察到的狗的解剖结构特点。
(2)分析狗的器官功能与人体器官功能的异同。
(3)讨论实验过程中遇到的问题和解决方法。
实验动物麻醉

实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据,该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂,但必须在实验方案中予以详细说明,并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此,在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度,以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标,在条件许可时,推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时,一定要注意方法的可靠性,根据不同的动物选择合适的方法。
1.麻醉剂的用量,除参照一般标准外,还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说,衰弱和过胖的动物,其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中,特别是使用巴比妥类药物时,一般应首先使用较小剂量,随时检查动物的反应情况,并逐步提高剂量。
2.动物在麻醉期体温容易下降,要采取保温措施。
相比清醒的动物,麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此,推荐使用循环水浴保温垫,不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备,以免灼伤实验动物。
3.静脉注射麻醉剂发挥作用速度快,静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中,不可过高,以免麻醉过急;但也不能过低,以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时,不应使用腹腔注射麻醉剂。
4.气温较低时,麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5.注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食,以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6.如需使用抗生素以防止术后感染,手术前1小时应肌肉注射抗生素,并于手术过程中静脉注射抗生素。
动物全身麻醉实训报告

一、实训目的通过本次实训,了解和掌握动物全身麻醉的基本原理、操作方法和注意事项,提高动物实验操作技能,确保实验动物在实验过程中的安全和福利。
二、实训时间2023年11月15日三、实训地点XX大学实验动物中心四、实训内容1. 实训准备- 熟悉动物全身麻醉的原理和操作流程。
- 准备实验动物(如大鼠、小鼠等)。
- 准备麻醉药物(如戊巴比妥钠、乌拉坦等)、注射器、导管、呼吸机等设备。
2. 麻醉操作- 根据实验动物种类和体重,计算麻醉药物剂量。
- 选择合适的给药途径(如腹腔注射、静脉注射等)。
- 静脉注射麻醉药物,观察动物反应,调整麻醉深度。
- 连接呼吸机,调整呼吸参数,确保动物呼吸平稳。
- 观察动物生命体征,如呼吸、心率、血压等。
3. 麻醉深度判断- 根据动物呼吸频率、眼球、瞳孔、足和脚趾的刺激反应、肌肉紧张度等变化,将动物麻醉分为诱导期、浅外科期、深外科期和脱离深外科期。
4. 麻醉维持- 根据实验需要,调整麻醉药物剂量和给药频率,维持麻醉深度。
- 观察动物生命体征,确保麻醉效果。
5. 麻醉恢复- 实验结束后,逐渐减少麻醉药物剂量,观察动物恢复情况。
- 待动物完全清醒后,释放动物。
五、实训结果与分析1. 麻醉效果- 实验动物在麻醉过程中呼吸平稳,心率、血压等生命体征正常。
- 麻醉深度适中,动物在实验过程中无疼痛反应。
2. 麻醉操作- 麻醉药物剂量计算准确,给药途径选择合理。
- 麻醉操作规范,无操作失误。
3. 注意事项- 麻醉药物剂量不宜过大,以免导致动物死亡。
- 观察动物生命体征,确保麻醉效果。
- 麻醉过程中,避免动物挣扎,以免造成伤害。
六、实训总结通过本次实训,我掌握了动物全身麻醉的基本原理、操作方法和注意事项。
在实训过程中,我学会了如何根据实验动物种类和体重计算麻醉药物剂量,选择合适的给药途径,观察动物生命体征,调整麻醉深度,确保实验动物在实验过程中的安全和福利。
同时,我认识到麻醉操作的重要性,以及在实验过程中要严格遵守操作规范,确保实验结果的准确性。
附录二 实验动物的麻醉

100
50-70 60-80
腹腔注射
100
60 80-100
乌拉坦
静脉注射 腹腔注射 皮下注射
1000-2000 1000-2000
2000 2000 2000
1000 1000 1000-2000
同前
1250 同前 同前
附注:①生理学实验中常用氯醛糖-乌拉坦混合麻药。用加热法将氯醛糖溶解于 25%的乌拉 坦溶液中,氯醛糖的浓度为 5%。狗和猫静脉注射剂量为每公斤体重 1.5~2 毫升,家兔也可 用此剂量。②蛙可用 10%乌拉坦作淋巴囊注射麻醉,每只蛙的剂量约为 1 毫升,视蛙的大
(1)对中枢神经系统的作用:巴比妥类能引起意识消失,可能是阻断了脑干网状结构 上行机动系统的作用所致。但网状结构中尚含有抑制成分,它可被小剂量的巴比妥类所抑制。 因此,巴比妥类浅麻醉时,可表现为抑制的释放,痛阈会降低;深麻醉时方转入抑制。巴比
妥类的镇痛作用是不明显的,可能与经典的痛觉通路相对不受这类药物的影响有关。脊髓内
能阻滞唾液腺、肠平滑肌对乙酰胆碱的反应。
(2)对心血管系统的作用:高浓度的巴比妥类对心肌和血管平滑肌有抑制作用。巴比 妥类能抑制心血管反射活动,较小剂量的戊巴比妥钠(5~8mg /kg 体重,静脉注射)即可 使动物对阻断双侧颈总动脉的血压反应明显减小,对电刺激下丘脑、延髓和星状结的心血管
反应明显降低,并能使心交感及迷走神经节后纤维的传出冲动减少。迷走神经对心脏的紧张
肾血管反射性收缩,促进抗利尿激素的释放,引起肾血流量和尿量减少。
给药剂量及途经 常采用静脉及腹腔给药,也可作肌肉注射,其剂量见表:
动物麻醉常用药物及剂量
药物 给药途径
剂量(mg/kg 体重)
狗
实验动物的麻醉方法

实验动物的麻醉方法This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
麻醉兔子的实验报告

一、实验目的1. 掌握麻醉兔子的方法,确保实验动物的安全。
2. 学习观察麻醉兔子的生理变化,为后续实验打下基础。
3. 提高动物实验操作技能,培养严谨的科学态度。
二、实验原理麻醉是利用药物使动物暂时失去意识、感觉和反射能力的一种方法。
实验中常用的麻醉方法有吸入麻醉、静脉麻醉和肌肉注射麻醉等。
本实验采用肌肉注射麻醉,通过注射麻醉药物使兔子进入麻醉状态。
三、实验材料1. 实验动物:家兔1只2. 实验器材:注射器、针头、解剖盘、剪刀、镊子、纱布、酒精棉球、生理盐水等3. 实验药物:盐酸氯胺酮注射液(2%)四、实验步骤1. 准备工作(1)将兔子放入实验室内,适应环境。
(2)将实验器材和药物准备好。
2. 麻醉(1)在兔子耳朵后部找到肌肉丰满的区域,用酒精棉球消毒。
(2)选用合适长度的针头,抽取盐酸氯胺酮注射液(2%)。
(3)将针头垂直刺入兔子肌肉,缓慢注射药物。
(4)观察兔子反应,待兔子出现四肢无力、呼吸平稳、意识丧失等麻醉状态时,即可进行后续实验操作。
3. 观察麻醉兔子的生理变化(1)观察兔子呼吸频率、深度和节律。
(2)观察兔子心率、血压和脉搏。
(3)观察兔子瞳孔大小和反应。
(4)观察兔子肌肉松弛程度。
4. 实验结束(1)实验结束后,将兔子从实验器材中取出,放入笼内。
(2)观察兔子恢复情况,确保其安全。
五、实验结果与分析1. 麻醉效果兔子注射盐酸氯胺酮注射液后,迅速进入麻醉状态,呼吸平稳,肌肉松弛,符合实验要求。
2. 生理变化(1)呼吸频率:实验前兔子呼吸频率约为40次/分钟,麻醉后呼吸频率降低至20次/分钟。
(2)心率:实验前兔子心率约为120次/分钟,麻醉后心率降低至80次/分钟。
(3)血压:实验前兔子血压约为120/80mmHg,麻醉后血压降低至80/60mmHg。
(4)瞳孔大小:实验前兔子瞳孔大小适中,麻醉后瞳孔缩小。
(5)肌肉松弛程度:实验前兔子肌肉紧张,麻醉后肌肉松弛。
六、实验结论1. 肌肉注射盐酸氯胺酮注射液是一种有效的麻醉方法,可以安全地使兔子进入麻醉状态。
实验动物的麻醉方法

实验动物的麻醉方法 The Standardization Office was revised on the afternoon of December 13, 2020实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用%~%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。
医学实验手册:动物麻醉与术后护理

医学实验手册:动物麻醉与术后护理动物实验中麻醉的基本目的是为了消除实验过程中的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、麻醉方法实验动物一般较难合作,因此,实验中常采用全身麻醉。
通过使用吸入或静脉麻醉药、肌肉松弛药和镇痛药等多种药物,达到完全制动和有效镇痛的目的。
全身麻醉按照给药途径不同,分为吸入全身麻醉、静脉全身麻醉、腹腔全身麻醉、肌肉全身麻醉和复合全身麻醉。
1、吸入全身麻醉使用乙醚麻醉兔及大小鼠时,可将动物放入玻璃麻醉箱内,把装有浸润乙醚棉球的小烧杯放入麻醉箱,然后观察动物。
动物开始时自主活动,不久出现异常兴奋、不停挣扎的现象,随后排出大小便,渐渐由兴奋转为抑制,倒下不动,呼吸变慢。
若动物四肢紧张度明显减低、角膜反射迟钝、皮肤痛觉消失,则表示动物已进入麻醉,可进行手术和实验操作。
在实验过程中应随时观察动物的变化,必要时把乙醚烧杯放在动物鼻部,以维持麻醉的时间与深度。
2、静脉全身麻醉静脉全身麻醉具有操作用具和操作技术简单、麻醉诱导平稳、术中易于管理的优点,故广泛用于实验外科的动物麻醉。
3、腹腔全身麻醉腹腔注射简单易行,是实验动物常用的全麻给药途径之一,尤其是兔、鼠等小动物。
穿刺方法为先将动物固定,腹面向上,穿刺部位约在腹部后1/3处略靠外侧,注射针头刺入皮下后,以45°穿过腹肌,出现阻力突然减弱后固定针头,回吸无任何液体或气体吸出,即可缓慢注入药液。
为避免伤及内脏,可使实验动物处于头低位,使内脏移向上腹部。
4、肌肉全身麻醉肌肉全身麻醉操作用具和操作技术简单,术中易于管理,但麻醉效果不稳定,需依实际情况与其他方法结合应用。
将针头垂直迅速刺入大腿外侧肌肉,回抽如无回血,将药物注入。
5、复合全身麻醉单一静脉麻醉的效果和时间均受限,肌肉松弛程度很难达到手术要求,故一般需要多种药物复合应用。
复合全麻诱导平稳、肌肉松弛、血压脉搏容易保持稳定,有利于气管插管及实验的顺利进行,术后实验动物恢复平稳,及早清醒。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据,该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂,但必须在实验方案中予以详细说明,并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此,在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度,以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标,在条件许可时,推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时,一定要注意方法的可靠性,根据不同的动物选择合适的方法。
1.麻醉剂的用量,除参照一般标准外,还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说,衰弱和过胖的动物,其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中,特别是使用巴比妥类药物时,一般应首先使用较小剂量,随时检查动物的反应情况,并逐步提高剂量。
2.动物在麻醉期体温容易下降,要采取保温措施。
相比清醒的动物,麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此,推荐使用循环水浴保温垫,不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备,以免灼伤实验动物。
3.静脉注射麻醉剂发挥作用速度快,静脉注射必须缓慢,同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时,应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中,不可过高,以免麻醉过急;但也不能过低,以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时,不应使用腹腔注射麻醉剂。
4.气温较低时,麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5.注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食,以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6.如需使用抗生素以防止术后感染,手术前1小时应肌肉注射抗生素,并于手术过程中静脉注射抗生素。
7.手术过程中如实验动物大量失血,应补充大约3倍失血体积的0.9%生理盐水。
肌肉舒张剂肌肉舒张剂必须与全身麻醉同时使用。
如需使用肌肉舒张剂,必须在实验动物研究方案中予以详细说明,并得到实验动物管理委员会的批准。
止痛剂不同动物疼痛持续时间不同,因此应密切观察实验动物的行为等指标。
对创口较大的手术,至少在术后48小时内应给予实验动物适当的止痛剂,对较小的手术,至少在术后24小时内应给予实验动物适当的止痛剂。
如24小时或48小时后实验动物表现出明显的疼痛,应持续给药,并应与兽医讨论实验动物是否存在其它的健康问题。
通常同时给予两种以上不同的止痛剂有更好的效果,如鸦片类止痛剂与非类固醇类消炎药共同使用。
在手术前提前使用止痛剂也有助于帮助实验动物减轻疼痛感,并可减小麻醉剂和止痛剂的使用剂量。
实验动物疼痛表现啮齿类实验动物疼痛时常表现得更为安静,并可能表现出弓背、呼吸急促、竖毛,舔舐或抓挠疼痛部位,瞳孔增大。
有时会吞噬垫料或其它非食物物品(异食癖)。
在抓取时,该动物可能表现得更有攻击性。
必须强调,啮齿类实验动物有时并不表现出明显的行为异常,但这并不说明该实验动物没有疼痛问题。
麻醉前用药阿托品(Atropine)阿托品是从颠茄和其他茄科植物提取出的一种有毒的白色结晶状生物碱。
可通过皮下注射、肌肉注射或静脉注射使用。
生理作用阿托品为阻断植物神经系统胆碱受体的抗胆碱药,抑制口腔、咽喉、呼吸道黏膜腺体分泌,抑制消化道蠕动和分泌;解除迷走神经对心脏的抑制,使心跳加快;散大瞳孔,使眼压升高;兴奋呼吸中枢,舒张支气管。
注意事项在以下情况时,阿托品应在实验动物麻醉前使用:1.使用麻醉剂/止痛剂如甲苯噻嗪、安定等引起心动过缓;2.使用麻醉剂如克他命引起过量分泌唾液或引起胆碱类神经递质分泌的眼部、口腔、肠道手术。
在手术过程中可使用阿托品缓解心动过缓等症状;手术结束时,可使用阿托品或新斯的明解除神经肌肉阻断剂的作用。
阿托品抑制胃肠道蠕动,可能会影响造影。
实验兔对阿托品不敏感。
剂量小鼠:0.04mg/Kg;大鼠:0.05mg/Kg;兔:0.1-3.0mg/Kg。
格隆溴铵(Glycopyrrolate, Robinul-V)格隆溴铵是拮抗胆碱作用的合成药物,可通过皮下注射、肌肉注射或静脉注射使用。
生理作用格隆溴铵为季铵类抗胆碱药。
与阿托品相似,具有减缓胃肠蠕动、抑制咽喉、气管、支气管黏膜分泌;格隆溴铵作用时间比阿托品长,不会通过血胎屏障或血脑屏障,因此没有中枢性抗胆碱活性。
格隆溴铵抑制胃液分泌,而阿托品则不能抑制胃液分泌。
注意事项格隆溴铵应在实验动物麻醉前使用。
相比阿托品,格隆溴铵具有更强的抑制唾液分泌功能。
格隆溴铵可抑制胃酸分泌,可用于胃酸过高引起的心血管和呼吸系统问题,并可减轻插管术引起的抑制性迷走神经反射。
可能会出现轻微瞳孔放大、心动过速。
不能与碱性药物混合使用。
全身麻醉全身麻醉中麻醉剂经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失,全身不感疼痛,肌肉松弛和反射抑制等现象。
全身麻醉抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒,一般没有后遗症。
吸入性麻醉剂乙醚(Ether)乙醚为无色,具有高度挥发性、刺激性。
乙醚可燃,应注意避免明火。
生理作用乙醚通过抑制中枢神经系统发挥作用。
乙醚麻醉早期会引起心动过速和呼吸时胸廓运动加大。
乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,导致心律不齐。
乙醚麻醉时肝功能和肾功能降低;因代谢减慢、血管舒张引起体温降低。
注意事项乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,多数动物都可应用,但乙醚不适用于大型动物。
其麻醉量和致死量相差大,麻醉深度易于掌握,较为安全,而且麻醉后恢复比较快。
乙醚麻醉促进唾液分泌,可使用阿托品等抗胆碱药物。
乙醚可燃,遇明火会发生爆炸,应尽可能使用非可燃、爆炸性麻醉剂如甲氧氟烷(Methoxyflurane)、异氟烷(Isoflurane)、溴氯三氟乙烷(Halothane, Fluothane)。
乙醚可刺激上呼吸道粘液分泌增加,增大了手术后发生肺炎的可能性。
溴氯三氟乙烷(Halothane, Fluothane)溴氯三氟乙烷为无色、高度挥发性液体,无刺激性气味,不可燃,不会爆炸。
生理作用溴氯三氟乙烷抑制中枢神经系统,其作用有明显的阶段性,首先是中枢神经系统,其次影响感觉和运动神经,最后影响生命中枢。
溴氯三氟乙烷影响胆碱的运输过程。
溴氯三氟乙烷对呼吸道没有刺激作用,一般不会刺激唾液腺和支气管粘液分泌。
溴氯三氟乙烷逐步抑制呼吸,可能导致缺氧、呼吸暂停。
深度麻醉时可能发生血压降低、心动过缓,可配合阿托品等药物防止心动过缓症状。
注意事项麻醉速度及恢复速度快,较易调整麻醉深度。
溴氯三氟乙烷导致肌肉松弛。
溴氯三氟乙烷用量应精确控制,一般应使用可控制的吸入器。
使用溴氯三氟乙烷时不应使用肾上腺素或去甲肾上腺素。
使用溴氯三氟乙烷过程中和动物苏醒后短时间内不应使用氨基糖苷类抗生素。
异氟烷(Isoflurane)异氟烷无色、挥发性,不可燃,不会爆炸,有轻微刺激性气味。
其挥发性与溴氯三氟乙烷相似,可用于吸入器。
大部分异氟烷会随呼吸排出体外,无代谢反应和代谢产物。
生理作用异氟烷抑制中枢神经系统,但具体作用位点和机制还不清楚。
异氟烷对血细胞数量和血液生化指标没有大的影响,可降低动脉血压,促进大脑血流速度,升高颅内血压,但对颅内血压的影响比溴氯三氟乙烷小。
异氟烷舒张支气管;异氟烷可增强神经肌肉阻断剂的作用。
注意事项麻醉速度及恢复速度快,较易调整麻醉深度。
异氟烷用量应精确控制,一般应使用可控制的吸入器。
异氟烷舒张支气管,因此在慢性肺栓塞动物的麻醉中较为有利。
异氟烷产生最少量的代谢产物。
注射用麻醉剂常用的注射麻醉剂有戊巴比妥钠、硫喷妥钠、克他命等。
大鼠、小鼠常采用腹腔注射法进行全身麻醉。
兔等动物既可腹腔注射给药,也可静脉注射给药。
在麻醉兴奋期出现时,动物挣扎不安,为防止注射针滑脱,常用吸入麻醉法进行诱导,待动物安静后再行腹腔或静脉穿刺给药麻醉。
在注射麻醉药物时,先用麻醉药总量的1/2至2/3,密切观察动物生命体征的变化,如已达到所需麻醉的程度,余下的麻醉药则不用,避免麻醉过深抑制延脑呼吸中枢导致动物死亡。
巴比妥酸盐类麻醉剂(Barbiturate)巴比妥酸盐类麻醉剂通过抑制神经冲动向大脑皮层的传递抑制中枢神经系统。
巴比妥酸盐类除了用于实验动物麻醉外,还可用于催眠、镇定(但常用其它镇定剂)及局部麻醉过量引起的惊厥。
巴比妥酸盐类抑制心血管系统、呼吸系统及基础代谢,并引起体温降低。
因此,使用巴比妥酸盐类应注意实验动物保温。
过量使用巴比妥酸盐类将导致呼吸系统麻痹及动物死亡。
巴比妥酸盐类可扩散至全身,并可穿过血胎屏障。
巴比妥酸盐类作用终止主要通过代谢及经肾脏排出体外。
戊巴比妥钠(Pentobarbital Sodium, Nembutal)戊巴比妥钠为短效麻醉剂,一次给药的有效时间可延续3-5小时,适合一般实验要求。
用时配成1~3%生理盐水溶液,必要时可加温溶解,配好的药液在常温下放置1~2月可保持药效。
一般应通过静脉注射给药,但小鼠可通过腹腔注射给药。
戊巴比妥钠曾广泛使用于实验动物,但已逐步被其它麻醉剂代替。
生理作用戊巴比妥钠作用机制与GABA神经递质相似。
常用戊巴比妥钠为外消旋混合物,其中(+)异构体在抑制中枢神经系统前导致短暂的兴奋期,(-)异构体导致平稳进展的催眠。
戊巴比妥钠对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用,但可能导致体温下降,心跳加快。
注意事项戊巴比妥钠需在肝脏经代谢后发挥作用,因此静脉注射戊巴比妥钠后需经一段时间方可导致动物麻醉。
使用戊巴比妥钠时,应首先注射一半剂量的戊巴比妥钠,密切观察动物生命体征的变化,如已达到所需麻醉的程度,余下的麻醉药则不用,以免过度麻醉。
戊巴比妥钠麻醉速度及恢复速度较慢。
注射戊巴比妥钠前使用止痛剂或镇静剂可显著改善,并可大大减小使用戊巴比妥钠剂量(约1/2)。
静脉注射葡萄糖将延长戊巴比妥钠作用时间。
硫喷妥钠(Thiopental Sodium, Pentothal)硫喷妥钠为黄色粉末,有硫臭,易吸水,遇空气或水溶液不稳定,故一般需现用现配,常用浓度为1~5%。
生理作用硫喷妥钠作静脉注射时,由于药液迅速进入脑组织,故诱导快,动物很快被麻醉。
但苏醒也很快,一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。
代谢产物经尿液排出体外。
此药对胃肠道无副作用,但对呼吸有一定抑制作用。
注射硫喷妥钠短时间内(常为5分钟)会引起心跳加速、动脉压升高。
多次给药有累加效应。
注意事项硫喷妥钠在体内很快被富集在脂肪组织中,因此作用时间很短。
在时间较长的实验过程中,可重复注射,以维持一定的麻醉深度。