动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量
一、动物麻醉的目的
1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法
1.全身麻醉的方法：
吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
随着吸入乙醚麻醉的加深，犬的呼吸加深，肌肉紧张度增加，可能会出现窒息。
预防的办法是：在犬每吸入数次乙醚后，取下口罩，让其呼吸一次新鲜空气。
非吸入麻醉：该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期，而且没有明显的兴奋期麻醉方法。
一般采用注射的方法，有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。
静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉，如兔、猫、猪、犬等；腹腔注射多用于较小动物的麻醉，如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。
静脉注射的部位是：兔、猫、猪由耳缘静脉注射，犬由后肢静脉注射，小鼠、大鼠由尾静脉注射。
肌肉注射多选择臀部。
腹腔注射部位约在腹部后1/3处略靠外侧（避开肝脏、膀胱）。
麻醉注意药物的浓度和使用量，后面的内容中介绍。
动物经注射麻醉药物后约几分钟到下，全身无力，反映消失，表明已经达到适宜的麻醉效果，是手术最佳的时间。
接近苏醒时，动物的四肢开始抖动，此时如果手术没有结束可采用乙醚麻醉。
在手术过程中如果发现动物抽搐、排尿，说明动物麻醉过深，是死亡的前兆，应立即进行急救。
动物做完手术后应注意保温，促使其苏醒。
注意事项
1）麻醉前注意：动物应禁食，大动物禁食10~12小时；不能使用泻剂，因为泻剂可降低血液的碱储，增加血液和组织的酸度，在麻醉和失血时容易发生酸中毒，容易降低损伤组织的抗感染能力；用犬做长时间的实验（1小时以上）时应灌肠，排除粪便；应检查麻醉剂质量、数量是否满足要求，麻醉固定器是否破损，深度麻醉应准备急救器材、药品；准确计算麻醉的剂量和浓度，书中介绍的麻醉剂量仅供参考；要考虑麻醉剂的纯度，如果使用国产的应增加麻醉剂的量。
2）麻醉时注意：静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉的紧张度、角膜反射和对皮肤疼痛的反应，当这些活动明显减弱或消失时，要立即停止注射并进行抢救。
3）麻醉后注意：采取保温措施，在麻醉期间动物的体温调节机能受到抑制，会出现提问下降，影响试验结果；必须保持动物的气道通畅和组织（眼球、舌、肠等）的营养；麻醉过深情况下应急救措施。
２．局部麻醉方法
局部麻醉的方法常采用的是浸润麻醉。
浸润麻醉时将麻醉药物注射在皮肤、肌下组织或手术视野深部组织，以阻断用药局部的神经传导，使其痛觉消失。
进行局部麻醉时应首先将动物固定好，后在实验操作的局部区域，用皮试针头作皮内注射，形成橘皮样皮丘。
然后换成局麻长针头，由皮点进针，放射到皮点周围继续注射，直到要求麻醉区域的皮肤都浸润到为止。
可以根据实验操作的要求的深度按照皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的顺序，依次注入麻药，以达到麻醉神经末梢的目的。
三、麻醉药物与麻醉剂用量（后续）
不同动物的全身麻醉剂用量和用法
3、常用动物麻醉药物剂量及使用方法
各论。
动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
小鼠麻醉大鼠麻醉兔麻醉狗麻醉
动物麻醉麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂：1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
通常在实验前半至一小时用药。
常用的大小鼠麻醉剂与剂量
國家實驗動物中心 實驗動物照護及使用委員會 參考資料 A 2.7-4.0 ml/kg 300-500 mg/kg
9
Chloral hydrate（ 5%）
IP
10 Halothane, Isoflurane, Sevoflurane 初生仔鼠（尚未長毛者）麻醉： Pentobarbital 5mg/kg, IP Halothane,isoflurane 低溫麻醉 止痛 1 Morphin 2 Butorphanol tartrate (Torbugesic™) 3 Buprenorphine(Buprenex™) 4 Ketorolac 11 5 6 Carprofen Meloxicam
誘導 4-5%, 維持麻醉 1-3% IH 誘導 5-8%, 維持麻醉 IH 2.5-4%
1. 建議經動物實驗管理委員會審查同 意 ,確定有其科學研究之需求與依據 , 才得以使用本藥劑 2. 此藥劑對腹腔刺激性強,易造成腹膜 炎及胃腸道異常蠕動 ,需注意 於抽氣櫃內或通風良好處使用 於抽氣櫃內或通風良好處使用
1.5-6 mg/kg, q2-4h 1-2 mg/kg, q4h 2.5-5 mg/kg, q2h 0.01-0.05 mg/kg 3-5 mg/kg, q12-24h 1 mg/kg, q12-24h 5 mg/kg, q12h 1 mg/kg,q24h
SC SC SC,IP PO IM SC SC,PO 注射劑不得作為口服藥劑使用
國家實驗動物中心 實驗動物照護及使用委員會 參考資料 A
常用的大小鼠麻醉劑與劑量
表一、小鼠（ MOUSE ）鎮靜、麻醉及止痛藥物參考劑量表
藥 劑 劑 量 投藥方式 備 註 動物保定/鎮靜/麻醉前給藥：進行注射、投藥、引起動物焦慮、低疼痛的實驗步驟或短時間保定時使用 1 Atropine 0.02-0.05 mg/kg SC 2 Diazepam(Valium™) 5 mg/kg IP 3 Acepromazine 0.75 mg/kg IP 4 Ketamine 20-44 mg/kg IM 5 Terazol™,Zoletil™ 40-80 mg/kg IM,IP 小鼠不建議用此藥劑 6 CO 2 + 10-50%O 2 混合氣體 To effect IH 1. 作用時間短 2. CO 2 + 10-50%O 2 混合氣體其作用 時間較短，且因兩種氣體密度不 同，易造成 O 2 在鋼瓶上層、 CO2 在底部，導致氣體混合不均，需注 意 動物麻醉：進行侵略性實驗、外科手術、或其他引起動物疼痛的步驟時使用。如需進行外科手術 , 動物必須進入手 術期麻醉之深度, 研究人員需確認動物已進入適當的麻醉深度（眼瞼反射、喉頭反射、腳趾反射）, 再 進行手術。 1 Pentobarbital 50-90 mg/kg IP 1. 品系差異性大, 需注意 2. 建議稀釋後使用 2 Thiopental 30-50 mg/kg IP 3 Ketamine 50-200 mg/kg IP 1. 建議使用於 minor surgery 40-60 mg/kg IM 2. 屬於第三級管制藥品，人員須先向 衛生署申請使用許可 4 Ketamine/Acepromazine 100 mg/kg K+ 5 mg/kg A IP 5 Ketamine/Xylazine 40-85 mg/kg K + 5-21 mg/kg IM 1. Yohimbine(1-2 mg/kg IP), X Tolazoline(20 mg/kg IP), 90-120 mg/kg K+5-10 mg/kg IP Atipamezol (1 mg/kgSC)為 Xylazine X 結抗劑 2. 如需追加劑量, 使用 1/3 ketamine 劑量 3. IM 由 40 mg/kg K + 10 mg/kg X 劑量開始麻醉 4. IP 由 80 mg/kg K + 10 mg/kg X 劑 量開始麻醉 6 Ketamine/Xylazine 1.0 ml K (100 mg/ kg)＋ 0.5 IP 同上 ml X (20 mg/ml)＋ 8.5 ml 注 射用水混合, 0.1 ml/10g 7 Ketamine/Medetomidine 0.38 ml K (100 mg/ kg)+0.5 IP Atipamezol (1 mg/kgSC)為 ml M(1 mg/ml) + 4.12 ml 注 Medetomidine 結抗劑 射用水混合, 0.1 ml/10g 8 Fentanyl/Fluanisone(Hypnorm TM )/ Fentanyl/Fluanisone :1 IP Buprenorphine, Butorphanol tartrate 為 Midazolam 注射用水 :2 結抗劑 Midazolam:1 混合, 0.1 ml/10g 9 Tribromoethanol (Avertin) 250 mg/kg (0.2 ml/10g) IP 1. 建議經動物實驗管理委員會審查 等量混合 Tribromyl ethyl alcohol ICR mice 建議使用 2.5% 400 同意 ,確定有其科學研究之需求與 和 Tertiary amyl alcohol (1.2% mg/kg 依據 ,才得以使用本藥劑 dilution) 2. 此藥劑對腹腔刺激性強,重複使用 於同一隻動物時易造成腹膜炎 10 Halothane, Isoflurane, 誘導 4-5%, 維持麻醉 1-3% IH 於抽氣櫃內或通風良好處使用 1
家兔麻醉剂量
家兔麻醉剂量《家兔麻醉剂量》一、常用麻醉药物家兔可以使用甲强龙（Ketamine）作为麻醉药物，常用剂量为80-110mg/kg。
二、小动物常用麻醉剂量1.甲强龙（Ketamine）：80-120mg/kg2.瑞芬太尼（Ropivacaine）：0.2-0.4ml/kg3.阿片类（opiates）：5-10mg/kg4.咪唑胺（Midazolam）：0.1-0.2mg/kg5.布比卡因（Bupivacaine）：0.3-0.5ml/kg三、用药说明1.甲强龙（Ketamine）：应按体重以80-120mg/kg计算，用醋酸甲强龙可混入2-5%糖水或0.9%氯化钠溶液或果糖溶液，每次给药量不超过1ml，用针注射，肌肉注射，耳静脉注射，口服均可，每次服药间隔不应少于2小时。
用药后可观察到家兔微微发抖，但不会引起太多痛苦。
2.瑞芬太尼（Ropivacaine）：应按体重以0.2-0.4ml/kg计算，必须在0.9%氯化钠溶液或0.2%碳酸氢钠溶液中稀释，以减少刺激性，降低副作用。
每次给药量不超过1ml，可静脉或肌肉注射，每次服药间隔不应少于2小时。
3.阿片类（opiates）：应按体重以5-10mg/kg计算，给药量不超过0.3ml，可静脉注射，也可肌肉注射，每次服药间隔不应少于2小时。
4.咪唑胺（Midazolam）：应按体重以0.1-0.2mg/kg计算，可静脉注射，也可肌肉注射，每次给药量不超过0.2ml，每次服药间隔不应少于2小时。
5.布比卡因（Bupivacaine）：应按体重以0.3-0.5ml/kg计算，必须稀释，稀释溶液可使用0.9%氯化钠溶液或0.2%碳酸氢钠溶液，可静脉或肌肉注射，每次给药量不超过1ml，每次服药间隔不应少于2小时。
四、注意事项1、用药前应全面检查家兔的体温、心率、呼吸率等，并合理安排麻醉剂量。
2、用药应在专业人员的指导下进行，用药完毕后应定期进行观察，及时发现异常反应，采取必要的措施。
动物麻醉方法及麻醉药剂量
常用麻醉药的剂量和用法
1、戊巴比妥钠：适用于犬、猫、兔时多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时剂量为３０mg/kg常用浓度为３％，用药量为１.０ml/kg，腹腔时剂量为４０-５０mg/kg，常用浓度为３％。
当对象为豚鼠时，用腹腔注射剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为２％。
大，小鼠时，用腹腔，剂量为４５mg/kg，常用浓度为２％。
2、氨基甲醛：主要用于犬、猫、兔采用腹腔和静脉注射的方法，一般剂量为７５０-１０００mg/kg常用浓度为２５％。
3、氨基甲酸乙酯（乌拉坦）：适用于豚鼠和大，小鼠时，多采用腹腔注射的方法，剂量为１３５０mg/kg，常用浓度为２０％家兔，可以静脉，也可以腹腔注射。
剂量1g/kg。
4、异戊巴比妥：适用于犬、猫、兔时，如果采用静脉时，剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为５％，用药量为０.８-１.０mg/kg，如果采用腹腔和肌肉注射时，剂量为８０-１００mg/kg常用浓度为１０％。
5、硫喷妥钠: 适用于犬、猫、兔时采用静脉和腹腔方法,剂量为25-50mg/kg,常用浓度为2％。
当是大白鼠时,采用静脉和腹腔方法,剂量为50-100/kg,常用浓度为1％。
麻醉时间为15-30min,效力强,宜慢注射。
6、乙醚：适用于各种动物，采用器官内插入吸入。
动物麻醉技术
--硫酸镁为导泄、利胆、降压、抗惊厥药。口服不易吸收， 并使肠内容物渗透压升高，水分吸收减少，肠容积增大，刺激肠蠕动而泄下。注射给药可使血中Mg2+增加，它能阻止神经末梢释放乙酰胆碱，使骨骼肌松弛。本实验通过不同给药途径对硫酸镁作用的影响。
速眠新麻醉剂
---肾损伤模型
做药理学时，按照“章蕴毅主编.药理学实验指导.人民卫生出版社2007.8北京”实验3，做的。
An animal model of lung transplantation: damage, protection and immune response
---乳腺癌模型
有两条需要大家注意：1、术后肺不张不好处理。2、用大鼠的话，相关抗体偏少可能会给术后的研究带来不利，建议改用小鼠做模型。个人认为，从大鼠向小鼠过度约需一到两周时间。
---30例大鼠肺移植手术成功率为90%，移植后存活率100%，左供肺摘取需时(3±1) min，供肺完成体外套管时间分别为：肺动脉(2.0±0.5) min、肺静脉(3±1) min、支气管(2.0±0.5) min，供受体动静脉和支气管套管吻合时间分别为：肺动脉(4±1) min、肺静脉(8±3) min、支气管(2.0±0.5) min，总手术时间(55±10) min。提示改良的三袖套技术建立大鼠肺移植模型操作供稳定可靠的动物模型。
---煮沸消毒后的水合氯醛溶液可分解为酸性液，注入后可使动物发生酸中毒。因此不能高压灭菌，主要按照以下配置方法我想不会感染的。
其方法如下：
1、溶媒：通常用生理盐水，最好是5～l0％葡萄糖注射液或5%葡萄糖硫酸镁注射液(5%葡萄糖液l00ml加硫酸镁5g)。
2、浓度：高浓度刺激性大，易引起溶血；低浓度则增加注入药液量而加重心肺负担。临床常用浓度为5～10％。
实验动物麻醉
实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。
1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。
2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。
3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。
4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。
动物麻醉方法及麻醉药剂量
常用xx的剂量和用法
1、戊巴比妥钠：
适用于犬、猫、兔时多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时剂量为３０mg/kg常用浓度为３％，用药量为１.０ml/kg，腹腔时剂量为４０-５０mg/kg，常用浓度为３％。
当对象为豚鼠时，用腹腔注射剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为２％。
大，小鼠时，用腹腔，剂量为４５mg/kg，常用浓度为２％。
2、氨基甲醛：
主要用于犬、猫、兔采用腹腔和静脉注射的方法，一般剂量为７５０-１０００mg/kg常用浓度为２５％。
3、氨基甲酸乙酯（xx）：
适用于豚鼠和大，小鼠时，多采用腹腔注射的方法，剂量为１３５０
mg/kg，常用浓度为２０％家兔，可以静脉，也可以腹腔注射。
剂量1g/kg。
4、异戊巴比妥：
适用于犬、猫、兔时，如果采用静脉时，剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为５％，用药量为０.８-１.０mg/kg，如果采用腹腔和肌肉注射时，剂量为８０-１００mg/kg常用浓度为１０％。
5、硫喷妥钠:
适用于犬、猫、兔时采用静脉和腹腔方法,剂量为25-50mg/kg,常用浓度为2％。
当是大白鼠时,采用静脉和腹腔方法,剂量为50-100/kg,常用浓度为1％。
麻醉时间为15-30min,效力强,宜慢注射。
6、乙醚：
适用于各种动物，采用器官内插入吸入。
常用的大小鼠麻醉剂与剂量
1
國家實驗動物中心 實驗動物照護及使用委員會
參考資料 A
11 Sevoflurane
誘導 5-8%, 維持麻醉 2.5-4% IH
於抽氣櫃內或通風良好處使用
初生仔鼠（尚未長毛者）麻醉：
Pentobarbital 5 mg/kg, IP
Halothane，isoflurane
低溫麻醉
止痛: 品系差異性大，需注意
50-100 mg/kg
IM
4 Ketamine/Xylazine
50-100 mg/kg K+10 mg/kg IM,IP 1. Yohimbine(1-2 mg/kgIP),
X
Tolazoline(20 mg/kgIP), Atipamezol
(1 mg/kgSC)為 Xylazine 結抗劑
2. 如需追加劑量, 使用 1/3 Ketamine 劑
Midazolam
注射用水:2
抗劑
Midazolam:1 混合,
2
國家實驗動物中心 實驗動物照護及使用委員會
參考資料 A
2.7-4.0 ml/kg
9 Chloral hydrate（5%）
300-500 mg/kg
IP
1. 建議經動物實驗管理委員會審查同
意,確定有其科學研究之需求與依據,
才得以使用本藥劑
90-120 mg/kg K+5-10 mg/kg IP
Atipamezol (1 mg/kgSC)為 Xylazine
X
結抗劑
2. 如需追加劑量, 使用 1/3 ketamine
劑量
3. IM 由 40 mg/kg K + 10 mg/kg X
(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。