家兔急性失血性休克.
家兔失血性休克及其抢救(自己的)
失血性休克及其抢救[摘要]目的：复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响并探讨其发生机制。
用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。
待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min内记录并观察血压变化。
结果：放血后，家兔血压下降，大量放血后血压明显下降，输液输血后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
结论：家兔少量放血后，家兔血压下降，但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。
家兔大量放血后，家兔血压明显下降。
输血、输液后血压急剧上升，并最终达到正常水平。
[关键词]失血性休克抢救输液治疗休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的病因。
当机体失血量少于全身血量的10%时，机体可通过自身的代偿功能使血压和组织灌流量保持基本正常。
当机体快速失血超过总血量的20%左右时，血容量急剧减少，静脉回流不足，心输出量减少，血压下降；加之压力感受器反射性活动减弱，引起交感神经强烈兴奋，外周血管收缩，组织有效血液灌流量不足而发生休克。
休克对机体的影响是全方位的，临床上出现心脑功能障碍、心搏无力、皮肤发凉、紫绀的表现。
补充血容量是提高心输出量和改善组织灌流的基本措施。
本实验主要观察休克时心功能的改变，通过输血输液，了解休克的补液原则：需多少补多少。
1.实验材料1.1实验动物：家兔1.2主要试剂：生理盐水，氨基甲酸乙酯，肝素，微循环灌流液1.3仪器：家兔手术台，常用手术器械一套，止血钳，眼科剪，支架，动脉插管，动脉夹，血压换能器，生物信号采集处理系统，纱布，丝线，1ml、10ml、50ml注射器2.实验方法2.1系统连接打开RM6240生物信号采集处理系统，接通压力传感器。
兔失血性休克实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔失血性休克的病理生理过程。
2. 掌握家兔失血性休克的实验操作方法。
3. 观察家兔失血性休克的治疗效果，分析不同治疗方法的优缺点。
二、实验原理休克是指机体在有效循环血量锐减的情况下，由于组织器官灌注不足而引起的一系列病理生理变化。
失血性休克是指由于失血导致血容量急剧减少，引起组织器官灌注不足，进而发生的一系列病理生理变化。
三、实验材料1. 实验动物：新西兰纯种白兔（体重2.0-2.5kg）3只。
2. 实验仪器：手术器械、注射器、动脉夹、血压计、生理盐水、肾上腺素、去甲肾上腺素、氯化钙、葡萄糖、乳酸林格氏液等。
3. 实验药品：20%乌拉坦、利多卡因注射液、0.9％氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1％普鲁卡因，7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、去氧肾上腺素注射液，异丙肾上腺素注射液，重酒石酸去甲肾上腺素注射液，盐酸肾上腺素注射液，佩尔（乌拉地尔），硝酸甘油注射液。
四、实验方法1. 实验分组：将3只家兔随机分为3组，每组1只。
2. 实验步骤：（1）麻醉：采用20%乌拉坦（5ml/kg体重）进行全身麻醉。
（2）手术：将家兔仰卧固定，常规消毒后，在颈部暴露颈动脉，用动脉夹阻断血流，然后切开皮肤，分离颈动脉，插入动脉导管，连接血压计。
（3）失血性休克诱导：采用快速失血法，即在2分钟内使家兔失血量达到总血量的30%。
（4）观察指标：观察家兔失血性休克发生后的临床表现，如心率、血压、呼吸、精神状态等。
（5）治疗：分别给予3组家兔不同的治疗方法：A组：给予生理盐水（5ml/kg体重）静脉滴注，作为对照组。
B组：给予肾上腺素（0.01mg/kg体重）静脉注射，作为治疗组。
C组：给予去甲肾上腺素（0.1mg/kg体重）静脉注射，作为治疗组。
（6）观察治疗效果：观察治疗前后家兔的临床表现，如心率、血压、呼吸、精神状态等。
五、实验结果1. 家兔失血性休克发生后的临床表现：家兔失血性休克发生时，表现为心率加快、血压下降、呼吸急促、精神萎靡等。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救（一）实验目的1.观察休克发展过程中机体的变化。
2.掌握急性失血性休克模型复制方法。
3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
实验中所采用的药物主要的作用是：●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。
●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。
③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。
在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。
●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。
②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。
可以逐一试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。
（三）实验材料1.实验对象：家兔。
2.实验器材及药品静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。
（四）实验方法1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。
麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。
2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。
穿两线，备用。
3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。
穿两线备用。
4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告
实验目的：探究家兔在不同程度失血后对身体机能的影响及失血性休克的发生。
实验方法：
1.实验前令家兔空腹24小时，保证实验数据更精确。
2.选取5只体重相近的家兔，用异丙酚进行麻醉。
3.将家兔置于手术台上，消毒操作后进行切腹手术，暴露血管并取血。
4.分别在实验一组、实验二组、实验三组、对照组分别取血量为7ml，10ml，13ml，无取血。
5.在实验过程中检查家兔的心率及呼吸率，并记录实验数据，如血压，心率等数据。
实验结果：
1.实验一组：取血量为7ml，失血后家兔发生心悸、呼吸急促、体温下降等症状，心率加快，下降到了96次/分钟。
4.对照组：没有进行任何失血处理，心率平稳，保持在120次/分钟左右。
1.家兔失血量较小时，如7ml左右，心率下降速度较慢，家兔出现的症状也较轻。
2.家兔失血量逐渐增大，呼吸急促、体温下降等症状逐渐显露，瞳孔扩大等症状也逐渐出现。
3.家兔失血量逐渐增大，心脏功能逐渐下降，最终可能导致失血性休克，甚至死亡。
4.对照组的数据表明，不进行失血处理的家兔的心率较稳定，生命体征不受任何影响。
通过本次实验，我们深刻认识到失血性休克对家兔身体的严重危害。
家兔失血量逐渐增大，症状逐渐加重，甚至会导致失血性休克、甚至死亡。
因此，在医学实践中，我们应当全面掌握失血性休克的处理方法，以保障患者生命安全。
家兔急性失血性休
【实验步骤】 实验步骤】
治疗分组 失血性休克30min后，各组按下列方案开始进行治疗： 失血性休克 后 各组按下列方案开始进行治疗： 注射去甲肾上腺素组:从耳缘静脉缓慢注射去甲肾上腺素 ①注射去甲肾上腺素组 从耳缘静脉缓慢注射去甲肾上腺素 2mg/只；②补液 输血 山莨菪碱组：将失血全血，加山莨菪 补液+输血 山莨菪碱组：将失血全血， 输血+山莨菪碱组 只 倍失血量的生理盐水， 碱1mg/kg，加2倍失血量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢推注； ， 倍失血量的生理盐水 从耳缘静脉缓慢推注； 补液组：将与失血量等量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢注； ③补液组：将与失血量等量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢注； ④输血组：将从股动脉抽出的血，全部沿股动脉会输到家兔体 输血组：将从股动脉抽出的血， 内;⑤灌药组：将汤药从家兔食道灌入；⑥对照组：不抢救。 ⑤灌药组：将汤药从家兔食道灌入； 对照组：不抢救。 从治疗开始后10min、20min、30min、1h，观察记录此 从治疗开始后 、 、 、 ， 时间段内各项指标的变化。 时间段内各项指标的变化。
家兔急性失血性休克的治疗
【实验目的】 实验目的】
壹 采用颈动脉快速放 血法复制兔失血性 休克模型。 休克模型。
贰 比较各组治疗方法 对失血性休克的疗 效。
【实验原理】 实验原理
传统经典失血性休克实验， 传统经典失血性休克实验，在有限的时间内难以区 分出输液、输血、灌药、去肾上腺素、补液+输血 输血+山莨菪 分出输液、输血、灌药、去肾上腺素、补液 输血 山莨菪 碱五组治疗效果的时间差异， 碱五组治疗效果的时间差异，但微循环的复苏效果却存在明 显差异，本实验在传统经典失血性休克实验的基础上， 显差异，本实验在传统经典失血性休克实验的基础上，增加动 物肠系膜微循环的观测，可以清楚比较出四组治疗方案的效果 物肠系膜微循环的观测， 差异。 差异。
家兔失血性休克及抢救-TL
淤 血 缺 氧 期 ： 灌多于流，血液淤滞 组织灌流状态 组织细胞淤血性缺氧
二、休克难治期
微循环的改变
二、休克难治期（微循环衰竭期）
微循环衰竭期 ： 不灌不流，血液高凝 组织灌流状态 组织细胞无血供
【实验步骤】
• 一、术前准备 • 1、称重 • 2、麻醉 • 药品：25%乌拉坦溶液 • 用量：4ml/kg • 途径：耳缘静脉注射 • 3、固定 • 4、手术（颈部、腹部、左侧腹股沟）
乱及器官功能障碍的病理过程。
休克的病因和分类
一、休克的病因
失血与失液 hemorrhagic shock
创伤 traumatic shock 过敏 anaphylactic shock 心脏和大血管病变 cardiogenic shock
烧伤 burn shock
感染 infectious shock 强烈神经刺激 neurogenic shock
正常
6---10
早期加 深加快， 35---45 放血后 晚期呼 吸抑制 回升， 未达到 正常水 平
减少
减慢
减少(0-4)
抢救后
减慢
增加
减小， 未恢复 有所增 但未恢 到正常， 加，但 复至正 仍然很 未恢复 常 慢 到正常
思考题目
• • 急性大量失血是如何引起休克发生的？ 为什么输回所失的全部血液后家兔血压仍 未能恢复至原来的水平？
以失血性休克为例，按照休克的发展过程分为三期： Ⅰ期： 休克的代偿期
Ⅱ期： 休克的进展期 Ⅲ期： 休克的难治期
一、休克的代偿期
微循环的改变
一、休克的代偿期（缺血性缺氧期）
缺 血 缺 氧 期 ： 少灌少流，灌少于流 组织灌流状态 组织缺血、缺氧
实验三 家兔失血性休克
实验三家兔失血性休克【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型。
2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变。
3.了解失血性休克的治疗。
【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC 期）。
但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。
【实验步骤】⒈麻醉和固定家兔称重后，25%乌拉坦按4ml/kg体重耳缘静脉注射麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。
⒉颈部手术从甲状软骨向下作5cm长的颈正中切口，分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉。
⒊启动MedLad生物信号采集处理系统。
点击MedLad“文件”菜单“打开配置”，选择“失血性休克”。
⒋插管左侧颈总动脉插入与40kPa换能器相连的颈动脉导管，推入少量的0.3%肝素抗凝，保持动脉通畅；从右侧颈外静脉插入与10kPa换能器相连的静脉导管，深约5cm，推入少量的0.1%肝素抗凝，保持静脉通畅；气管插管，连接呼吸换能器，描记呼吸曲线。
5.放血前观察动物各项生理指标，包括一般情况、皮肤粘膜颜色、心率、血压、呼吸、肛温。
6.打开三通开关，使血液从颈总动脉流入含少量肝素抗凝的50ml注射器注射器内，注意观察血压变化，一直放血使血压（平均动脉压）降至45mmHg，并通过调节注射器内放出的血量，使血压稳定在45mmHg水平15～20min后，观察失血后动物各生理指标。
家兔失血性休克实验设计
家兔失血性休克实验设计【实验原理与目的】休克是一种全身性病理过程，失血、创伤、感染、过敏等多种原因都可以引起休克。
血容量急剧降低、血管容量扩大和急性心功能衰竭可以作为休克的始动环节。
本实验通过对家兔大量放血，使其血容量急剧降低，复制出家兔失血性休克模型，观察失血性休克时血流动力学改变及微循环变化，探讨其发生机制。
【实验对象】家兔1只，体重2．0～3．0 kg。
【实验器材与药品】1．仪器BL-410／BL-420生物机能实验系统(或MS一302生物信号记录分析系统)或二道生理记录仪，血压换能器，张力换能器。
光学显微镜，超级恒温水浴器。
2．器械哺乳类动物手术器械一套，中心静脉压测量及输液装置，微循环观察装置(恒温灌流盒)，动脉导管，静脉导管，输尿管插管，记滴器，500 ml烧杯，5 ml、10 ml及50ml注射器，体温计，三通管。
3．药物生理盐水，0．5％肝素生理盐水(5 mg／ml)，3％戊巴比妥钠溶液，微循环灌流液(1％明胶台氏液)。
4．其他丝线、纱布、吸管、连接大号针头的胶管、硅胶管、擦镜纸。
【实验步骤与观察指标】1．仪器装置按操作规程准备好BL-410／BL-420生物机能实验系统(或MS一302生物信号记录分析系统)或二道生理记录仪的血压、呼吸、尿滴记录装置(见《常用实验仪器》)，准备好微循环观察装置。
2．手术操作(1)动物麻醉与固定：动物称重后，以3％戊巴比妥钠1 ml／kg(30mg／kg)静脉注射麻醉。
将麻醉好的动物仰卧位固定于动物手术台上。
(2)备皮：剪去颈部、腹部及右侧腹股沟等手术部位的狗(或家兔)毛。
(3)颈部手术：在颈部正中切开皮肤(狗6～8 cm，家兔4～6 cm)，分离气管、左颈总动脉和右颈外静脉。
①行气管插管并连接马利氏鼓，通过鼓膜运动牵拉张力换能器的弹性敏感梁活动，张力换能器与仪器连接，记录呼吸。
②行左颈总动脉插管并经三通管一压力换能器与仪器连接，记录动脉血压。
③将静脉导管从右颈外静脉插入到上腔静脉入右心房口处(锁骨下1-2 cm)并与中心静脉压(CVP)测量输液装置连接，行测量中心静脉压和输液用。
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切开皮肤
分离组织与肌肉
分离气管
气管插管 分离
颈总动脉
动脉插管肝素化
动脉插管 全身肝素化
描记动脉血压
正常动脉血压曲线
3.腹部手术操作
腹部切口 探查小肠并牵拉 出体外 放入微循环灌流盒
显微镜下观察
固定肠系膜
4.复制休克模型
少量放血（10% ） 观察
休克早期微循环改变镜下视频
4.复制休克模型
少量放血（10%） 大量放血（20%）
四．实验药品
20%乌拉坦溶液 台氏液 0.3%肝素生理盐水
五．实验器材
兔实验台 动脉插管 恒温水浴箱 气管插管 微循环灌流盒 显微镜 哺乳动物手术器械一套 注射器 BL-410生物信号采集系统
六．观察项目
家兔口唇颜色的变化 家兔动脉血压的变化 家兔小肠肠系膜微循环变化
七．实验步骤
1.一般准备操作 2.颈部手术操作 3.腹部手术操作 4.复制休克模型
家兔急性失血性休克
Rabbit Acute Hemorrhagic Shock
张大伟 病理生理学教研室 Email: zdw@
烦躁不安 血压降低 大量出汗 四肢冰冷 脉搏细速
休克病人临床表现
休克的共同特征
机体微循环障碍
一．实验目的
掌握急性失血性休克模型复制方法 观察休克发展过程中机体的变化 分析讨论急性失血性休克发病机制
二．实验原理
休克(shock)的分期：
➢ 一期:缺血性缺氧期
Ischemic anoxia phase
➢ 二期:淤血性缺氧期
Stagnant anoxia phase
➢ 三期:微循环衰竭期
Microcirculation failure phase
三．实验对象
雄性成年家兔（1.8-2.5kg）
九．实验报告
实验目的 实验原理 实验对象 实验药品与器材 观察项目 实验步骤 结果分析
珍惜每一天， 从现在开始！
E-mail：zdw@
1.一般准备操作
抓取 称重 麻醉 乌拉坦，5ml/kg) （固2定0% 备皮
角 膜 反 射 夹 肢 反 射
2.颈部手术操作
切开皮肤
分离组织与肌肉
分离气管
气管插管
气管插管
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离气管
分离组织与肌肉 气管插管 分离
颈总动脉
动脉插管肝素化
动脉插管
动脉插管
2.颈部手术操作
观察 观察
休克晚期微循环改变镜下视频
4.复制休克模型
少量放血（10% ） 观察
大量放血（20%） 观察
模型复制成功
处死
八．注意事项
麻醉 动脉插管 肠系膜的固定 分工协作培养团队精神
实验讨论
1.家兔发生休克过程中口唇颜色和 动脉血压有何变化并分析其机制？ 2.家兔发生休克过程中肠系膜微循 环有何变化并分析其机制？