家兔急性失血性休克-家兔失血性休克
医学课件家兔急性失血性休克
对家兔进行病理学检查，观察 组织器官的病理变化，进一步 了解失血性休克对机体的影响
。
04
家兔急性失血性休克的症 状与体征
症状
精神状态改变
家兔出现精神萎靡、反 应迟钝或兴奋不安等症
状。
呼吸急促
呼吸频率加快，呼吸幅 度变浅，甚至出现张口
呼吸。
心跳加速
心率明显增快，心音微 弱。
体温下降
由于大量失血导致体温 下降，甚至出现寒战。
严重影响。
总结词：心率加快
详细描述：为了维持基本的生理功能， 家兔的心率会加快，以增加心输出量。
总结词：血管收缩
详细描述：在休克状态下，家兔的血 管会发生收缩，以减少血液流失，但 这也可能导致器官缺血。
呼吸系统的变化
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总结词：呼吸急促
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详细描述：为了满足机体对氧的需求，家兔的呼吸频率会 增加，出现呼吸急促的现象。
体征
01
02
03
04
皮肤苍白
由于血液大量流失，皮肤呈现 明显的苍白或发绀。
血压下降
收缩压和舒张压均明显降低， 甚至无法测得。
尿量减少
由于肾脏灌注不足，尿量显著 减少或无尿。
肢体厥冷
四肢厥冷，耳部温度下降。
05
家兔急性失血性休克的实 验结果
循环系统的变化
总结词：血压下降 详细描述：由于大量失血，家兔的血 压迅速下降，导致血液循环系统受到
详细描述：由于循环血量减少 ，肾脏的灌注不足，导致尿量
明显减少。
总结词：尿液浓缩
详细描述：在休克状态下，家 兔的肾脏会加强尿液的浓缩， 以减少尿量，从而减少水分的
流失。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救（一）实验目的1.观察休克发展过程中机体的变化。
2.掌握急性失血性休克模型复制方法。
3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
实验中所采用的药物主要的作用是：●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。
●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。
③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。
在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。
●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。
②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。
可以逐一试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。
（三）实验材料1.实验对象：家兔。
2.实验器材及药品静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。
（四）实验方法1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。
麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。
2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。
穿两线，备用。
3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。
穿两线备用。
4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告
实验目的：探究家兔在不同程度失血后对身体机能的影响及失血性休克的发生。
实验方法：
1.实验前令家兔空腹24小时，保证实验数据更精确。
2.选取5只体重相近的家兔，用异丙酚进行麻醉。
3.将家兔置于手术台上，消毒操作后进行切腹手术，暴露血管并取血。
4.分别在实验一组、实验二组、实验三组、对照组分别取血量为7ml，10ml，13ml，无取血。
5.在实验过程中检查家兔的心率及呼吸率，并记录实验数据，如血压，心率等数据。
实验结果：
1.实验一组：取血量为7ml，失血后家兔发生心悸、呼吸急促、体温下降等症状，心率加快，下降到了96次/分钟。
4.对照组：没有进行任何失血处理，心率平稳，保持在120次/分钟左右。
1.家兔失血量较小时，如7ml左右，心率下降速度较慢，家兔出现的症状也较轻。
2.家兔失血量逐渐增大，呼吸急促、体温下降等症状逐渐显露，瞳孔扩大等症状也逐渐出现。
3.家兔失血量逐渐增大，心脏功能逐渐下降，最终可能导致失血性休克，甚至死亡。
4.对照组的数据表明，不进行失血处理的家兔的心率较稳定，生命体征不受任何影响。
通过本次实验，我们深刻认识到失血性休克对家兔身体的严重危害。
家兔失血量逐渐增大，症状逐渐加重，甚至会导致失血性休克、甚至死亡。
因此，在医学实践中，我们应当全面掌握失血性休克的处理方法，以保障患者生命安全。
实验四家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。
【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。
【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1. 选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2. 分离颈动脉，穿线以备插管。
3. 分离股动脉，穿线以备插管。
4. 从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5. 插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6. 结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管。
7. 从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT8. 观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT9. 继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素的杯子中），直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10. 10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT11. 将①②4000转离心五分钟，记录HCT勺数据。
12. 静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果。
【实验结果】放血量：30ml【实验讨论】1. 机体一般失血多少可以引起休克？答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2. 机体失血后为何导致相关生理指标的变化？答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。
失血休克使得循环血量减少，中心静脉压降低，心排出量降低，平均动脉压降低，弓I起心血管反射，迷走神经抑制，交感神经兴奋，释放大量去甲肾上腺素，作用于心脏B1受体，兴奋心脏，使心肌收缩力增强，心率加快；作用于血管a 1受体使血管平滑肌收缩。
家兔急性失血性休
【实验步骤】 实验步骤】
治疗分组 失血性休克30min后，各组按下列方案开始进行治疗： 失血性休克 后 各组按下列方案开始进行治疗： 注射去甲肾上腺素组:从耳缘静脉缓慢注射去甲肾上腺素 ①注射去甲肾上腺素组 从耳缘静脉缓慢注射去甲肾上腺素 2mg/只；②补液 输血 山莨菪碱组：将失血全血，加山莨菪 补液+输血 山莨菪碱组：将失血全血， 输血+山莨菪碱组 只 倍失血量的生理盐水， 碱1mg/kg，加2倍失血量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢推注； ， 倍失血量的生理盐水 从耳缘静脉缓慢推注； 补液组：将与失血量等量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢注； ③补液组：将与失血量等量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢注； ④输血组：将从股动脉抽出的血，全部沿股动脉会输到家兔体 输血组：将从股动脉抽出的血， 内;⑤灌药组：将汤药从家兔食道灌入；⑥对照组：不抢救。 ⑤灌药组：将汤药从家兔食道灌入； 对照组：不抢救。 从治疗开始后10min、20min、30min、1h，观察记录此 从治疗开始后 、 、 、 ， 时间段内各项指标的变化。 时间段内各项指标的变化。
家兔急性失血性休克的治疗
【实验目的】 实验目的】
壹 采用颈动脉快速放 血法复制兔失血性 休克模型。 休克模型。
贰 比较各组治疗方法 对失血性休克的疗 效。
【实验原理】 实验原理
传统经典失血性休克实验， 传统经典失血性休克实验，在有限的时间内难以区 分出输液、输血、灌药、去肾上腺素、补液+输血 输血+山莨菪 分出输液、输血、灌药、去肾上腺素、补液 输血 山莨菪 碱五组治疗效果的时间差异， 碱五组治疗效果的时间差异，但微循环的复苏效果却存在明 显差异，本实验在传统经典失血性休克实验的基础上， 显差异，本实验在传统经典失血性休克实验的基础上，增加动 物肠系膜微循环的观测，可以清楚比较出四组治疗方案的效果 物肠系膜微循环的观测， 差异。 差异。
家兔失血性休克及抢救-TL
淤 血 缺 氧 期 ： 灌多于流，血液淤滞 组织灌流状态 组织细胞淤血性缺氧
二、休克难治期
微循环的改变
二、休克难治期（微循环衰竭期）
微循环衰竭期 ： 不灌不流，血液高凝 组织灌流状态 组织细胞无血供
【实验步骤】
• 一、术前准备 • 1、称重 • 2、麻醉 • 药品：25%乌拉坦溶液 • 用量：4ml/kg • 途径：耳缘静脉注射 • 3、固定 • 4、手术（颈部、腹部、左侧腹股沟）
乱及器官功能障碍的病理过程。
休克的病因和分类
一、休克的病因
失血与失液 hemorrhagic shock
创伤 traumatic shock 过敏 anaphylactic shock 心脏和大血管病变 cardiogenic shock
烧伤 burn shock
感染 infectious shock 强烈神经刺激 neurogenic shock
正常
6---10
早期加 深加快， 35---45 放血后 晚期呼 吸抑制 回升， 未达到 正常水 平
减少
减慢
减少(0-4)
抢救后
减慢
增加
减小， 未恢复 有所增 但未恢 到正常， 加，但 复至正 仍然很 未恢复 常 慢 到正常
思考题目
• • 急性大量失血是如何引起休克发生的？ 为什么输回所失的全部血液后家兔血压仍 未能恢复至原来的水平？
以失血性休克为例，按照休克的发展过程分为三期： Ⅰ期： 休克的代偿期
Ⅱ期： 休克的进展期 Ⅲ期： 休克的难治期
一、休克的代偿期
微循环的改变
一、休克的代偿期（缺血性缺氧期）
缺 血 缺 氧 期 ： 少灌少流，灌少于流 组织灌流状态 组织缺血、缺氧
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高仁甫 卫生与健康系
烦躁不安
血压降低
大量出汗 四肢冰冷 脉搏细速
休克病人临床表现
休克的共同特征
机体微循环障碍
一．实验目的
掌握急性失血性休克模型复制方法
观察休克发展过程中机体的变化
分析讨论急性失血性休克发病机制
二．实验原理
休克(shock)的分期：
休克晚期微循环改变镜下视频
4.复制休克模型
少量放血（10% ） 大量放血（20%） 观察 观察 处死
模型复制成功
八．注意事项
麻醉 动脉插管 肠系膜的固定 分工协作培养团队精神
实验讨论
1.家兔发生休克过程中口唇颜色和 动脉血压有何变化并分析其机制？ 2.家兔发生休克过程中肠系膜微循 环有何变化并分析其机制？
一期:缺血性缺氧期
Ischemic anoxia phase
二期:淤血性缺氧期
Stagnant anoxia phase
三期:微循环衰竭期
Microcirculation failure phase
三．实验对象
雄性成年家兔（1.8-2.5kg）
四．实验药品
20%乌拉坦溶液
0.3%肝素生理盐水
分离气管 颈总动脉 动脉插管
气管插管
分离
动脉插管肝素化 全身肝素化
描记动脉血压
正常动脉血压曲线
3.腹部手术操作
腹部切口 出体外 探查小肠并牵拉 放入微循环灌流盒
显微镜下观察
固定肠系膜
4.复制休克模型
少量放血（10% ） 观察
休克早期微循环改变镜下视频
4.复制休克模型
少量放血（10%） 大量放血（20%） 观察 观察
九．实验报告
实验目的 实验原理 实验对象 实验药品与器材 观察项目 实验步骤 结果分析
珍惜每一天， 从现在开始！ Nhomakorabea台氏液
五．实验器材
兔实验台 动脉插管 恒温水浴箱
气管插管 微循环灌流盒
哺乳动物手术器械一套 BL-410生物信号采集系统
显微镜
注射器
六．观察项目
家兔口唇颜色的变化
家兔动脉血压的变化 家兔小肠肠系膜微循环变化
七．实验步骤
1.一般准备操作
2.颈部手术操作 3.腹部手术操作 4.复制休克模型
1.一般准备操作
抓取
称重 麻醉（20%
乌拉坦，5ml/kg)
固定
备皮
角 膜 反 射
夹 肢 反 射
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离组织与肌肉 气管插管
分离气管
气管插管
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离组织与肌肉
分离气管 颈总动脉 动脉插管
气管插管
分离
动脉插管肝素化
动脉插管
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离组织与肌肉