第十一章 动物实验技术

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新版gmp教程第十一章委托生产和委托检验

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新版G M P教程第十一章委托生产和委托检验(总6页)--本页仅作为文档封面,使用时请直接删除即可----内页可以根据需求调整合适字体及大小--第十一章委托生产与委托检验随着生产力的迅速发展,社会分工也越来越细致、越来越专业,而国内外贸易的迅速发展,使得企业对共享生产领域有关资源、进一步降低生产成本以及提高产品质量等要求也越来越迫切,委托生产与委托检验也随之迅猛发展。

但由于药品质量要求的严格性,药品的委托生产与委托检验也受到非常严格的控制。

帚一节委托生产与委托检验的概念实际上,委托生产和委托检验对于委托企业来说也是其生产与质量管理环节的一部分,这个环节的质量管理也应该和企业其他环节的要求保持一致,只有这样,才能确保药品质量。

一、委托生产的概念委托生产的基本定义为:一家厂商根据另一家厂商的要求为其生产产品,由对方贴上自己的品牌商标并负责销售的交易形态。

而药品委托生产(Cont,act Man.lfacture)指的是按照药品所有人提供的工艺、标准、规格,在不属于药品所有人的生产企业中生产出某一产品的全部或部分。

委托生产作为一项近年来发展非常迅速的企业合作形式,它的直接作用是可以降低产品的生产成本,使专业化分工协作在更大范围、更深层次上展开。

随着药晶生产全球化和降低成本的需要,药品的委托生产也不例外GMP生产方式在欧美等一些发达国家非常盛行,尤其是一些专注于药品研究开发的企业,它们无需配备任何生产设施,通过委托生产方式提高并加快了产品的后期回报,以便能有更多的资金投入新产品的开发。

2004年,我国完成了对原料药和药品制剂生产企业的GMP强制性改造,总体上使我国药品生产企业的生产质量管理水平产生了质的飞跃。

但是随之而来的是企业生产能力过剩、设备闲置率高等问题。

2004年修订的《药品生产监督管理办法》确立了我国药品委托生产的法律地位,制定了操作性强的实施细则,使我国的药品委托生产迎来了高速发展的时期。

沿海发达地区的药品生产企业还积极参与跨国药品委托生产,积极参与国际分工。

第十一章 毒理学实验方法讲解

第十一章  毒理学实验方法讲解

(1)染毒柜的容积以每只染毒小鼠每小时不少 于3L空气计,每只大鼠每小时不少于30L计。
(2)染毒浓度的计算:染毒浓度一般应采用实 际测定浓度。在染毒期间一般可测4~5次,求其 平均浓度。在无适当测试方法时。计算染毒浓度: C=(a×d/v) ×106
式中:C-- 染毒浓度(mg/m3) ;a-- 加入受试样品 的量(ml) d-- 化学品密度;v-- 染毒柜容积(L)

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试验目的:
(1)检测化学品对实验动物的急性 吸入毒性作用和强度。
(2)为亚急(慢)性等吸入毒性试验提 供剂量选择的依据。

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术语:
急性吸入毒性(Acute Inhalation Toxicity): 实验动物短时间(24h内)持续吸入一种可 吸入性受试样品后,在短期内出现的健康 损害效应。

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动式染毒法
动式染毒是采用机械通风装置,连续不断地将含 有一定浓度受试样品的空气均匀不断地送入染毒 柜,空气交换量大约为12~15次/h,并排出等量 的染毒气体,维持相对稳定的染毒浓度(对通过 染毒柜的流动气体应不间断地进行监测,并至少 记录 2 次)。一次吸入性染毒2h。当受试化合物 需要特殊要求时,应用其它的气流速率。染毒时, 染毒柜内应确保至少有19%的氧含量和均衡分配 的染毒气体。一般情况下,为确保染毒柜内空气 稳定,实验动物的体积不应超过染毒柜体积的 5%。且染毒柜内应维持微弱的负压,以防受试 样品泄露污染周围环境。同时,应注意防止受试 样品爆炸。

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染毒方法:
(1)静式染毒法 (2)动式染毒法

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第十一章 毒理学实验方法讲解

第十一章  毒理学实验方法讲解


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染毒方法:
(1)静式染毒法 (2)动式染毒法

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静式染毒法
静式染毒是将实验动物放在一定体积的密闭容器 (染毒柜)内,加入一定量的受试样品,并使其 挥发,造成试验需要的受试样品浓度的空气,一 次吸入性染毒2h。

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(3)剂量和分组
实验动物随机分为4~5个剂量组。若使用水、植 物油、凡士林、羊毛脂外的赋形剂,则需设赋形 剂对照组。豚鼠或大鼠每一剂量组(单性别)不 少于5只;家兔每一剂量组(单性别)不少于4只。
各剂量组间要有适当的组距,可按等比或等差级 设置剂量,以使各剂量组实验动物产生的毒性反 应和死亡率呈现剂量-反应(效应)关系。
试验基本原则:
以经口灌胃法给予各试验组动物不同剂量 的受试样品,每组用一个剂量,染毒剂量 的选择可通过预试验确定。染毒后观察动 物的毒性反应和死亡情况。试验期间死亡 的动物要进行尸检,试验结束时仍存活的 动物要处死并进行大体解剖。本方法主要 适用于啮齿类动物的研究,但也可用于非 啮齿类动物的研究。
(5)所用染毒浓度和动物分组,每组所用动物性别、数 量及体重范围;
(6)计算LC50的方法; (7)染毒后动物中毒表现及出现时间和恢复情况、死亡
时间、大体解剖所见;
(8)列表报告结果(建议的表格形式见附录1-D),计 算的LC50及其95%可信区间;
(9)结论。


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3、急性经口毒性试验
适用范围:
本方法规定了动物急性经口毒性试验 的基本原则、技术和要求。
本方法适用于评价化学品的急性毒性 作用。

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动物实验心得体会4篇

动物实验心得体会4篇

动物实验心得体会4篇细胞生物学是研究细胞生命活动规律的一门科学,细胞是生命的结构和功能单位,也是遗传和变异的单位。

有机体的一切病理现象都是细胞病理反应的结果,所以一切生命现象都可从细胞中得到解答。

现代分子生物学理论和技术的发展,科学家们开始在分子水平上逐步揭示细胞生命活动规律,并开始研究组织内和组织间细胞的相互关系和分子关联,这是现代细胞生物学的主要特点。

细胞生物学作为基础课,既有理论教学,又有实验教学,教学内容量大面广,对学生的知识、能力和素质具有直接和长远的影响。

教学内容要反映科学的发展,细胞生物学发展日新月异,新内容层出不穷。

因此,我们本着“实、宽、新、活”的原则,要求学生牢固掌握细胞的基本结构和功能及各细胞器间的关系的基本知识,并且能够掌握和了解细胞生物学的热点课题的现状和未来的发展趋势,包括生命信息流和细胞信息网络的研究、信号传递与细胞识别、蛋白质的加工、折叠与分选、发育的分子机制及遗传控制、细胞增殖、调控与编程死亡等。

《细胞生物学网络课程》集文字、图像、动画于一体,图文并茂。

既能作为本专科生的自学和教师教学使用、又能作为相关研究人员有价值的参考网络课程。

通过学习,掌握了课程的基本原理、内容体系、相关的研究手段以及细胞生物学在生命科学中的地位和应用,同时了解了相关的参考文献和网站,使自己既具有扎实的细胞生物学基础知识,又训练了获取知识的能力,从而使自己的综合素质进一步得到提高。

《细胞生物学网络课程》的总体教学模式是自主学习型。

通过大量的文本资料、图片、动画演示、多媒体辅助等手段为网上学习者展现细胞生物学的知识要点,通过多种表现手法,化解难点。

从章节内容考虑,第四章(细胞膜与细胞表面)、第五章(细胞的信号传递部分)、第六章(细胞基质与细胞内膜系统)、第八章(细胞核与染色体)、第十章(细胞骨架)、第十一章(细胞增殖及其调控)、第十二章(细胞分化与基因表达调控)和第十三章(细胞凋亡部分)是细胞生物学的重点内容,同时也是难点,需要认真学习和掌握。

动物实验基本操作技术

动物实验基本操作技术

动物实验基本操作技术动物实验作为一种科学研究手段,常用于医学、生物学等领域的实验研究。

为了确保实验的可靠性和安全性,研究人员需要正确掌握基本的动物实验操作技术。

下面将介绍一些常用的动物实验基本操作技术。

首先,动物实验前,需要对动物进行适当的饲养管理,确保其健康状态。

这包括提供适宜的饲料和饮水,保持合适的环境温度和湿度,以及定期清洁和消毒动物饲养环境。

此外,研究人员还需对动物进行身体检查,以排除可能影响实验结果的健康问题。

其次,对于需要进行手术的实验,研究人员需要具备相关的手术技术。

例如,动物麻醉技术是必不可少的,可以采用静脉注射麻药、局部麻醉或气管插管麻醉等方法。

在动物手术过程中,需要准确切割皮肤或组织,处理血管、神经和器官,以及进行缝合和止血等操作。

因此,研究人员需要熟练掌握相关手术技术,确保手术过程的顺利进行。

此外,动物实验中还常使用动物注射技术。

注射技术包括口服给药、皮下注射、肌肉注射和静脉注射等。

研究人员需要准确计量给药剂量,选择合适的注射部位和注射器具,并注意注射速度和注射途径的选择。

在实验中,研究人员还需要掌握注射后的观察和记录技巧,及时发现和处理可能的不良反应。

另外,动物实验还涉及到采集和处理生物样本的技术。

例如,研究人员需要采集血液、组织或其他体液样本,以进行生化分析、细胞培养或组织学检查等。

采样时需要注意卫生与无菌操作,避免交叉污染。

采样后,研究人员需要合理保存和处理样本,以保证实验结果的可靠性。

此外,动物实验中的数据记录与分析也是十分重要的。

研究人员需要仔细记录实验过程的各种参数,包括实验开始时间、操作步骤、药物剂量、实验结果等。

此外,研究人员还需要进行数据分析,以得出科学合理的结论。

在数据分析过程中,研究人员可以使用统计学方法,如平均值、标准差、方差分析等。

最后,动物实验的伦理与法规也是非常重要的。

研究人员需要遵守相关的伦理规范和动物保护法律法规,保证动物实验的道德性和合法性。

动物实验期末重点整理

动物实验期末重点整理

动物实验期末重点整理实验动物学期末重点题型:选择、判断、填空、名词解释第⼀章绪论1.实验动物的基本概念是什么?指的是⼈⼯饲养,对其携带的微⽣物实⾏控制,遗传背景明确或者来源清楚的,⽤于科学研究、教学、⽣产、检定及其它科学实验的动物。

2.实验动物的四个标准化包括哪些?它包括实验动物的:(1)遗传学控制标准、(2)微⽣物学和寄⽣⾍学控制标准、(3)设施环境控制标准、(4)饲料营养质量控制标准。

3.⽣命科学研究所必需的四个基本条件是什么?AEIRAnimal 实验动物Equipment 仪器设备Information 信息Reagent 试剂4.什么是动物福利?动物福利是指动物在整个⽣命过程中应得到⼈类的保护,其基本原则是要善待动物,保证动物的健康和快乐。

5.国际上对动物实验伦理有哪些要求?1.动物居住空间应符合标准,注意⽇常饲养管理,不使动物陷⼊饥饿、缺⽔和患病。

2.尽可能的采⽤替代法最少地使⽤和牺牲动物。

3.在必须使⽤⽝、猫和猴时,在实验前应进⾏训练,尽可能地减少动物的恐惧和不安。

4.实验结束和动物不可能恢复时,应采取安乐死。

5.要爱护动物和对由于试验死亡的动物应持有怜悯和感激之情。

6.什么是动物实验的“3R原则”?Replacement 替代:尽可能⽤低等实验动物替代⾼等实验动物,⽤离体培养的细胞、组织、器官代替动物个体,⽤微⽣物代替动物,并能获得相同试验效果的科学⽅法。

Reduction 减少:把使⽤动物的数量降低到实现科研⽬的最⼩量Refinement 优化:改善动物设施、饲养管理和实验条件,精选实验动物、技术路线和实验⼿段,优化实验设计和实验操作技术,熟练掌握动物实验技术,减少对动物的损伤,减轻动物的痛苦和应激反应。

第⼆章实验动物的遗传学控制1. 请说出实验动物种、品种、品系的概念。

(1)种(Species):是⽣物分类学上的基本单位,由⾃然选择形成。

(2)品种(stock):是种以下的⾮⾃然分类单位,是⼈们根据不同需要⽽对动物进⾏改良、选择、定向培育,具有某种特定外形和⽣物学特性的动物群体,其特性能较稳定遗传。

第十一章动物实验管理

第十一章动物实验管理

第十一章动物实验的管理内容提要:动物实验的管理是保证动物实验成功的可靠保证。

本章主要介绍了动物实验的质量管理、实验动物选择原则、动物实验的设计,目的在于了解动物实验的管理规范和动物实验基本设计思路,提高动物实验的科学性、创新性。

关键词:保动物实验;管理;实验动物选择;试验设计第一节 动物实验的质量管理动物实验质量的管理,首先要了解国家、各行业部门、地方颁布实施的有关实验动物和动物实验及涉及实验环节的有关法律、法规、质量标准,在已经获得国家或地方实验动物管理机构颁发的实验动物使用许可证的单位进行实验,然后依据实验单位的特点及实验目的,制定彻实可行的质量管理办法,在生产和实验过程中加以认真严格执行,以保证动物实验的质量达到标准。

当前动物实验要求达到实验室操作规范(Good Laboratory Practice, GLP)和标准操作程序(Standard Operating Procedure, SOP)这些规范和操作对实验动物和实验室条件,工作人员素质,技术水平和操作方法都要求标准化。

一.动物实验质量管理的标准动物实验质量管理是指在动物实验过程中由第三方即质量监督人员对动物实验全过程达到标准化所实施的职能和活动。

质量监督人员在动物实验过程中,应对操作程序、方法、环境条件、受试对象、施加因素和实施途径的标准化实施连续记录和分析。

进行动物实验质量管理参照的标准包括:(一) 国家、行业部门和地方已颁布的影响动物实验的标准如化学试剂的标准、药典、实验动物的质量标准、实验环境条件的标准、仪器设备的标准、饲料饮水标准等法规性标准,有关实验动物质量的标准参见相关章节中的内容。

(二) 洁净动物实验室自行制订的各种标准如灭菌净化标准、灭菌物品的贮存期标准、以及在国家、行业部门和地方已经颁布的标准或在此基础上本实验室自定的(高于标准)内部标准。

(三) 内部质量标准由动物实验室会同有关技术、管理部门专家共同制定,作为暂定依据,待批准公布后按国家、行业部门或地方、颁布的标准一起执行。

动物实验技术_中大伦理委员会章程

动物实验技术_中大伦理委员会章程

第一章总则第一条为了提高实验动物管理工作质量,维护实验动物福利与伦理,根据“实验动物管理条例”,依照国家有关标准、管理办法,制定本章程。

第二条实验动物福利与伦理是指善待实验动物,使其免遭伤害、饥渴、疼痛等行为和措施,包括良好地管理与照料,为其提供清洁、舒适的生活环境,提供充足、健康的饮食、饮水,避免或减轻其疼痛和痛苦,应用实验动物进行生命科学研究符合伦理等。

第三条实验动物是指SPF大小鼠、裸鼠、兔、犬、小型猪及实验动物化的实验动物。

适用于本单位及外单位从事实验动物研究的工作人员及使用实验动物进行教学、科研活动的教师和学生。

第四条实验动物伦理委员会宗旨是遵循国际通行的动物福利和伦理准则,贯彻执行国家和省有关实验动物管理法律、法规和政策,维护本机构实验动物福利,规实验动物管理和伦理审查,以及实验动物从业人员的职业行为。

本中心各类实验动物的饲养和动物实验,均应先申请实验动物管理及伦理审查,获得实验动物管理及伦理委员会的批准后方可开始,并接受监督检查。

第二章组织机构第五条实验动物伦理委员会由5名委员组成,委员会成员由单位行政管理者、实验动物专业人员、医学相关专业人员、和非专业人士担任,设组长1名,委员4人(兽医师1名)。

委员会任期为3年,可以连任。

由单位负责聘任、岗前培训、解聘,并及时补充成员。

第六条实验动物伦理委员会应制定章程、审查程序、监督制度、例会制度、报告制度、工作纪律、专业培训计划等。

每年组织委员会召开年度会议、召集重大项目评审活动及临时会议,签发或授权委员签发审查决议。

所有委员要承诺维护实验动物管理及福利伦理。

第七条委员会全体成员每年召开1次年度会议,议程包括:提交上年度实验动物伦理审查工作总结及本年度的工作要点;对本年度新申报涉及实验动物项目的福利伦理申请进行一次集中审查;其他事项。

第八条委员会委员由本中心聘任,为非职务任职,本中心将支持和保障委员会的工作运作。

第三章实验动物伦理委员会职责第九条审议及监督实验动物科学应用的有关事项1、订立实验动物使用规则或管理细则,审查、监督本动物中心开展的有关实验动物的饲养、管理、淘汰、尸体处理是否符合要求。

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复性。 ▪ 实验结果必须是建立在可重复实验的基础上。
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2. 实验内变异 1. 包括:实施实验过程造成的变异、分析变异、
个体内变异和固有的个体间变异。 2. 通过明显的减少实验结果中个体间变异来减
少实验动物数量是可行的。
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3. 动物实验间和实验内变异的来源 1. 动物实验中变异的一个重要来源是实验动物
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2) 按统计学方法测算的样本数 n=2б2(tα+tβ)2/δ2 n为样本含量,б为标准差; tα取有显著性的t分布值,t0.05=1.96; tβ为无显著性的t分布值,1-β为实验检验能力,动物 实验一般取1-β=0.80,t0.20=0.842; δ为处理组与对照组均值间的差异,可从预实验或文 献资料库中获得。
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1 空白
9 12 11 13 10 ∑ 55
2 HMG
12 11 14 15 13 65
3 HCG
14 17 16 13 19 79
4 HMG+HCG
39 29 41 46 40 195
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三、实验结果变异分析 1. 实验间变异 ▪ 处理会使对照组和实验组平均度量值发生变
化,即实验间变பைடு நூலகம் 。 ▪ 降低实验间效应变异将减少对同一实验的重
D(土SC1s1))、后月存77 龄活(日土数2天的)差、异生,理选精择神170同状品态系、、饲性养别条(件雌等、小雄95鼠各3半0)只、,体依重 随机数字2表随机分为3组,在相12同条件下接种菌苗,后11观察存活
日数如下5表。
6
6

4
6
3
4
7
10
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4. 随机区组设计
5.
在动物实验时,可将一窝小鼠或大鼠划为
犬、猫
大鼠、小鼠 兔
大鼠 兔
大鼠、小鼠
给药途径 静脉 腹腔 腹腔
静脉 腹腔 腹腔 腹腔
腹腔 静脉 腹腔 静脉 皮下或肌肉
剂量(mg/kg) 30
40~50 40~50
常用浓度(%) 3 3 2
15-20
2
40
1
15-20
1
10-40
10
100~200
10
80-100
2
50
2
750-1000
30
800-1000
自身。 2. 来源于动物的年龄、体重、同窝动物的数量
及其它可能在实验前就已经存在的差异。 3. 基因型和环境之间的相互作用对实验间和实
验内变异以及处理有不同的影响。
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实验动物的血样采取
一、小、大鼠 剪尾采血
1) 此法每鼠可采10次以上。 2) 小鼠每次0.1ml。 3) 大鼠每次0.4ml。
2. 眼眶后静脉丛采血 1) 小鼠每次0.2-0.3ml。 2) 大鼠每次0.5ml。
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3. 股动脉采血 1) 小鼠每次0.5ml。 2) 大鼠每次2.0ml。
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2. 在新药药效研究中多以下列公式转换人 及不同动物之间的药量:
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人及不同实验动物之间药物量对应值
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例如: 某药物在60kg体重的病人的剂量为 21.0g.kg-1 . d-1, 一只5kg的猴为53.6 g.kg-1 . d-1, 一只10kg重的犬为40.4 g.kg-1 . d-1 , 一只20g的小鼠则为260.6 g.kg-1 . d-1 。
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举例: 给某种动物饲喂一种药物,预实验中每月体重增
长比对照增加30±15g(均值±标准差)。设显著水平 为95%,检验能力为80%,则正式实验所需样本含量n 为:
n=2152(1.96+0.842)2/302=3.93 即每组只需4只动物。
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二、基本设计方法
1. 单组比较设计 指在同一个体上观察实验处理前后某种观测指
2.00
2.50
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3. 完全随机化设计
4.
将动物随机分配到处理组及对照组做实验观察。
▪ 优点:统计分析也比较简单,抗数据缺失能力较强。
▪ 缺点:对非实验因素缺乏有效控制 ,适用于实验对 象同质性较好的实验设计。
实用文档
9D
11C
DSC1
2
5
7
4
6
11
3
8
6
▪ 举例:为2 比较小白鼠接种3种不5 同菌型伤寒杆菌(9D、6 11C、
145
▪ 举例:2有人用4种不4同2种系的未成6年8大鼠做实验1,15每一
种雌以性同激3窝素(雌m大g白/1鼠003g7只0)后,,随在机相分同配1条注11件射下3种称不其同子剂宫13量重3 的量
(g),见4 表:
42
358
480

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5. 析因设计
6.
可以分析多种交互作用,但一般采用较简
单的析因试验。当水平和因素过多,不但计算复杂
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2.随机(random)化原则 动物实验一般采用完全随机分配或分层随机分配。
小动物实验一般先配对或配伍,然后“对”内或“伍” 内进行随机分配
大动物多半先分层,然后在层内随机分配。
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3.重复(repetition)的原则
指同一处理要设置多个样本例数降低试验误差。
应该在保证实验结果具有一定可靠性的条件下,确定 最低的样本例数
▪ 缺点:应考虑种属、品系、性别、年龄与体重、同 父母、同胎次出生等因素对实验结果的影响。
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大白鼠对别
正常饲料组
VitE缺乏组
1
3.95
2.65
2
3.80
3.35
3
3.45
2.45
▪ 举例:为研4究VitE缺乏饲料对大3.鼠35肝脏中VitA含量(u2/.6m5 g)的影
响,选取同5性别(雌、雄各半)、3同.70月龄(断乳1个月)、2同.65体重
5 1/2号 4mL 7号 5mL 7号
静脉注射 4mL 5号 0.8mL 4号 5mL 5号 10mL 6号
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人与实验动物之间药物剂量的换算
人与实验动物对同一药物的耐受性,动 物比人大,即单位体重的用药量比人要 大。 1. 一般可按下列比例换算,每单位体重人 的药量为1,则小鼠、大鼠为25-50, 兔、豚鼠为15-20,狗、猫为5-10。
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常用实验动物的 最大安全采血量与最小致死采血量
动物种类 小鼠 大鼠 豚鼠 家兔 狗 猴
最大安全采血量(mL) 最小致死采血量(mL)
0.1
0.3
1
2
5
10
10
40
50
300
15
60
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常用麻醉剂的用法及剂量
麻醉剂 戊巴比妥钠
硫喷妥钠
氯胺酮 氯醛糖 乌拉坦
动物种类 犬、兔
大鼠、小鼠、 豚鼠 犬、兔 大鼠 小鼠
实用文档
1) 一般估测的样本数 小动物(大鼠、小鼠、蛙、鱼):每组10-30例,计量资 料每组不少于10例, 计数资料每组不少于30例;
中等动物(豚鼠、家兔) 每组8-20例,计量资料每组不 少于8例, 计数资料每组不少于20例;
大动物(犬、猫、猪、羊等) 每组6-20例,计量资料每 组不少于6例, 计数资料每组不少于20例.
一个区组,确定数个区组后,按区组随机化原则将
各区组的动物随机分配到处理组和对照组。
▪ 优点:均衡性好,可减少误差,提高实验效率,统 计分析也较简易。
▪ 缺点:抗数据缺失能力较低。若一个区组的某个动 物发生意外,那么整个区组都得放弃,或不得已采 取缺项估计。
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大鼠种系
0.2
0.4
0.8
1
16
116
(50g+2g)6等正常大鼠配成10对3.,90对每对中每只大鼠3按.15随机数字
表(或抽签)7随机分配到给以正常3饲.80料组和VitE缺乏饲料2.9组0 ,分饲
条件相同的8不同笼中,经1个月3饲.05食后杀掉,按每对分1.9别0 取肝脏,
测得VitA含量(u/mg)如表。
9
3.65
1.70

10
20
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第五节 动物实验基本设计
一、设计原则 1.对照(antitheses)性原则:
是要求在实验中设立可与实验组比较,用于消除 各种无关因素影响的对照组。
空白对照:不施加任何处理因素 实验条件对照:
不用处理因素,但施加某种与处理因素相同的实 验条件。 标准对照 :
用现有标准方法对照,如已知有效药物、公认标 准疗法。
而且解释困难。
1. 举例:观察绝经促性腺激素(HMG)、绒促激素 (HCG)及其交互作用,随机将20只幼雌大白鼠分成4 组。第一组空白,第二组每天注射HMG l个单位, 第三组每天注射HCG 20单位,第四组每天HMG l 单位、HCG 20单位,一定时间后取卵巢称重,以每 10g大白鼠体重卵巢mg数表示(mg/10g),结果如 表:
第十一章 动物实验技术
▪第一节 实验动物的固定、标记 ▪第二节 实验动物的给药途径和采血方法 ▪第三节 实验动物用药量的确定及计算方法 ▪第四节 实验动物的麻醉和处死方法 ▪第五节 动物实验基本设计
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常用药物的最大给药量
动物 大鼠 小鼠 豚鼠 家兔
项目 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头 最大给药量 使用针头
灌 胃 皮下注射
2mL
lmL
16号(钝头) 6号
lmL 9号(钝头)
0.4mL 5 l/2号
3mL
LmL
16号(钝头) 6 1/2号
20 mL
10号导尿 管
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