细胞生物学实验-细胞凋亡观察
细胞凋亡的检测

细胞凋亡的检测实验人:生64范泓洋2006030003 同组实验:刘婧娟实验日期:2008年5月8日1. 实验目的1.1 了解细胞凋亡的基本概念及其意义1.2 了解细胞凋亡的诱导及检测方法,学会区分凋亡不同阶段的细胞1.3 学习Hoechst33258染色方法2. 实验原理细胞凋亡(apoptosis)或程序化细胞死亡(programmed cell death,PCD),是多细胞有机体为调控机体发育,维护内环境稳定,由基因控制的细胞主动死亡过程,是细胞衰老自然死亡的主要方式之一,并强调这一过程是一种自然的生理学过程。
由于细胞凋亡受到严格的由遗传机制决定的程序性调控,所以又被称为程序化细胞死亡。
通过细胞凋亡,机体得以消除不再需要的细胞,而不引起炎症反应。
细胞凋亡有确保正常生长、发育,维持内环境稳定,发挥积极的防御功能的作用。
凋亡过程中的细胞在形态学和很多生化指标上与正常细胞和坏死的细胞都有明显区别。
RNA结合,染色DNA时应调整染液的pH至7.0,这种染料不溶于磷酸缓冲液;所以配制时必须先以蒸馏水溶解配成储存液在4℃中避光保存。
3. 实验材料、试剂及器械3.1 材料:Hela细胞3.2 试剂:H2O2溶液,DMEM培养基,PBS溶液,胰酶-EDTA溶液,Hoechst33258染料,甲醇3.3器械:离心机,EP管,pippet,正置荧光显微镜,盖玻片,载玻片,镊子4. 实验步骤4.1 向传代24小时后的Hela细胞系(DMEM培养液1ml,贴壁50%)中加入100μlH2O2溶液,继续培养24小时4.2收集细胞(200uL胰酶37℃消化2min后,再加入1mL 培养基)至1.5mL EP管,1000g离心5min4.3 吸出上清,于沉淀中加入100uL甲醇,室温固定10min4.4 1000g离心5min4.5 弃上清,加100uL PBS洗涤沉淀细胞4.6 1000g离心5min,4.7弃上清,加40uL PBS和10uL Hochest33258染液,于37℃染色10min4.8 1000g,离心5min4.9 弃上清,加100uL PBS洗涤;4.10 1000g,离心5min4.11弃上清,加15uL PBS重悬细胞4.12 取15uL悬液于玻片上并于正置荧光显微镜下观察并选取典型凋亡阶段的细胞拍照5. 实验结果由于Hoechst33258染色法只能将细胞核染色,所以只能由核质的形态变化来推测正在凋亡的细胞处于哪一个凋亡阶段。
医学细胞生物学实验

细胞凋亡诱导与检测
细胞凋亡检测
细胞凋亡诱导
自噬诱导
通过饥饿、药物刺激等手段诱导细胞自噬,以研究自噬的生物学意义和作用机制。
自噬检测
采用荧光染色、电镜观察、蛋白质印迹等方法检测自噬体的形成、数量和相关蛋白的表达。
自噬诱导与检测
03
02
01
实验原理
实验设计
根据实验目的和原理,设计具体的实验方案和操作流程。
实验操作
按照实验方案进行实验操作,包括细胞培养、显微观察、分子生物学检测等步骤。
数据收集与分析
收集实验数据,进行统计分析,得出实验结果。
结果汇报与讨论
将实验结果以书面形式汇报,并进行讨论和总结。
实验步骤
02
细胞培养
CHAPTER
利用免疫荧光染色、荧光共振能量转移等技术,可以检测和定位细胞内特定信号分子的分布和动态变化,进而揭示其在信号转导中的作用机制。
详细描述
总结词
信号转导抑制剂的应用
总结词:信号转导抑制剂是一类能够干扰细胞信号转导过程的化合物,具有潜在的治疗作用。
07
细胞凋亡与自噬研究
CHAPTER
通过使用化学物质、射线、病毒等手段诱导细胞凋亡,以研究其发生机制和生物学意义。
电子显微镜
利用电子束代替可见光,观察细胞超微结构。
显微镜观察
通过显微镜或细胞计数板,统计细胞数量。
细胞计数
利用染色剂或荧光染料,检测细胞活性,如MTT法、染色排除法等。
细胞活力检测
细胞计数与活力检测
利用染色剂对细胞进行染色,以便观察细胞形态和结构。
染色技术
细胞实验报告反思总结(3篇)

第1篇一、前言细胞实验作为生物学研究的重要手段,在揭示生命现象、探索疾病机制、开发新型药物等方面发挥着至关重要的作用。
本次实验报告针对我所参与的细胞实验进行反思总结,旨在提高实验技能、优化实验设计、提升实验结果的可信度。
二、实验目的本次实验旨在:1. 掌握细胞培养的基本操作技能,包括细胞传代、细胞接种、细胞计数等。
2. 熟悉细胞实验所需的器材和试剂,了解其作用和用途。
3. 分析实验结果,探讨实验现象背后的生物学机制。
三、实验过程1. 细胞传代:在实验过程中,我们严格按照细胞传代操作规程进行,确保细胞在适宜的培养条件下生长。
通过观察细胞生长状态、调整传代比例,保证了细胞的活力和数量。
2. 细胞接种:在细胞接种过程中,我们遵循无菌操作原则,确保细胞在无菌条件下生长。
同时,根据实验需求调整接种密度,为后续实验提供充足细胞资源。
3. 细胞计数:在细胞计数实验中,我们熟练运用血球计数板进行细胞计数,并对计数结果进行统计分析。
通过对比不同处理组的细胞数量,分析实验现象背后的生物学机制。
4. 实验数据分析:在实验数据分析过程中,我们运用统计学方法对实验数据进行分析,探讨实验现象背后的生物学机制。
同时,对实验结果进行合理的解释和推断。
四、实验反思1. 实验操作方面:(1)在细胞传代过程中,我们应严格按照操作规程进行,避免细胞污染和传代失败。
(2)在细胞接种过程中,应注意无菌操作,防止细胞污染。
(3)在细胞计数过程中,应保证计数准确,避免人为误差。
2. 实验设计方面:(1)在实验设计过程中,应充分考虑实验目的和实验条件,确保实验结果具有可重复性和可靠性。
(2)在实验过程中,应密切关注实验现象,及时调整实验参数,优化实验设计。
(3)在实验结果分析过程中,应运用多种统计学方法,提高实验结果的可信度。
3. 实验结果分析方面:(1)在实验结果分析过程中,应充分挖掘实验数据,探讨实验现象背后的生物学机制。
(2)在实验结果解释过程中,应结合相关文献,对实验结果进行合理的解释和推断。
细胞凋亡实验报告

实验七、Hela细胞凋亡诱导及检测一、实验目的学习细胞凋亡诱导及检测。
二、实验原理1.细胞凋亡是多细胞有机体为调控机体发育,维护内环境稳定,由基因控制的细胞主动死亡过程,是细胞衰老自然死亡的主要方式之一,是一种自然的生理学过程。
与细胞坏死不同,不会引起炎症反应,不释放细胞内容物。
2.DAPI是一种荧光染料,它可以与DNA双螺旋的凹槽部分发生相互作用,从而与DNA紧密结合,可在紫外下激发蓝光。
三、实验材料8.8mol/L的H2O2溶液,甲醇,PBS溶液,10μg/mL的DAPI染液四、实验步骤1.细胞传代(上一次实验完成)2.凋亡诱导1)取做H.E染色的小皿,加H2O2溶液150μL使终浓度为0.8mol/L2)24小时后收集细胞进行染色和形态学观察。
3. 染色1)收集细胞,观察,贴壁细胞较多,直接用PBS溶液洗2)吸出洗液,加入500μL甲醇,室温固定10min3)倒掉甲醇,PBS洗净,加500μLPBS溶液和50μLDAPI母液,于37℃染色10min4)倒掉染液,用PBS洗净(注意避光),加入500μLPBS溶液,倒置荧光显微镜下观察并拍照。
五、实验结果与分析1.观察:实验开始前镜检:细胞贴壁较多,细胞有的仍呈不规则状,有的细胞已皱缩,还有一些细胞呈圆形浮在培养基中,核质分界不明显。
可以看到有的细胞处于裂解状态。
染色后:由于DAPI染料只对核进行染色,所以在紫外下只可见核的结构。
视野里最多的是正常细胞,其特点是染色质均一且核表面光滑,说明凋亡是不同步的。
凋亡各时期的细胞也都可见,其主要特点是染色不均一。
凋亡前期和中期的细胞较多。
很少看到凋亡末期的细胞,除了这个时期细胞较少外,还可能因为在前期操作中很多凋亡小体被洗掉了。
而且有的细胞在正常光下观察是明显的裂解状态,但是到紫外光路下就变得很不明显了。
另外,可以看到很多分裂期的细胞,其特点为染色深,细胞核染色质浓缩,但是看起来较均一,往往有对称性,特别是分裂末期的细胞两个子细胞会靠在一起。
凋亡实验的结果解读

凋亡实验的结果解读
"凋亡实验"这个术语在生物学和医学领域中并没有一个明确的
定义。
通常情况下,凋亡是指细胞按照程序性死亡的一种形式。
如果你能提供更多上下文或者具体的实验条件和方法,我将更容易帮助你解读实验结果。
在细胞生物学中,凋亡是一种细胞自我毁灭的过程,通常发生在细胞受到损害、寿命到期、或者在发育和组织修复过程中。
实验可能会使用某些指标来检测凋亡,例如:
DNA断裂:凋亡细胞的DNA通常会出现断裂,这可以通过凝胶电泳等技术来观察。
磷脂外翻:在凋亡过程中,磷脂会从细胞内翻转到细胞外,可以通过荧光标记的磷脂来观察。
凋亡相关蛋白:比如凋亡酶千层饼(caspases)、Bcl-2家族等凋亡相关蛋白的表达水平。
在医学研究中,凋亡实验可能会涉及到疾病治疗、药物筛选等方面。
凋亡的增加或减少可能对疾病治疗有重要影响。
要解读凋亡实验的结果,你需要查看实验设计、使用的细胞类型、处理条件以及选择的观察指标。
例如,如果你使用了特定药物,你可
能会观察到药物引起了细胞的凋亡。
这种情况下,你可以评估药物对细胞的治疗效果。
总体而言,解读凋亡实验的结果需要综合考虑实验的多个方面,包括实验设计、技术手段和相关背景知识。
如果你有具体的实验结果或问题,欢迎提供更多信息,我将尽力帮助你解读。
细胞凋亡实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除细胞凋亡实验报告篇一:实验14细胞凋亡的诱导和检测实验14细胞凋亡的诱导和检测20世纪60年代人们注意到细胞存在着两种不同形式的死亡方式:凋亡(apoptosis)和坏死(necrosis)。
细胞坏死指病理情况下细胞的意外死亡,坏死过程细胞膜通透性增高,细胞肿胀,核碎裂,继而溶酶体、细胞膜破坏,细胞内容物溢出,细胞坏死常引起炎症反应。
细胞凋亡apoptosis一词来源于古希腊语,意思是花瓣或树叶凋落,意味着生命走到了尽头,细胞到了一定时期会像树叶那样自然死亡。
凋亡是细胞在一定生理或病理条件下遵守自身程序的主动死亡过程。
凋亡时细胞皱缩,表面微绒毛消失,染色质凝集并呈新月形或块状靠近核膜边缘,继而核裂解,由细胞膜包裹着核碎片或其他细胞器形成小球状凋亡小体凸出于细胞表面,最后凋亡小体脱落被吞噬细胞或邻周细胞吞噬。
凋亡过程中溶酶体及细胞膜保持完整,不引起炎症反应。
细胞凋亡时的生化变化特征是核酸内切酶被激活,染色体DnA被降解,断裂为50~300kb长的DnA片段,再进一步断裂成180~200bp整倍数的寡核苷酸片断,在琼脂糖凝胶电泳上呈现“梯状”电泳图谱(DnALadder)。
细胞凋亡在个体正常发育、紫稳态维持、免疫耐受形成、肿瘤监控和抵御各种外界因素干扰等方面都起着关键性的作用。
1.细胞凋亡的检测方法凋亡细胞具有一些列不同于坏死细胞的形态特征和生化特征,据此可以鉴别细胞的死亡形式。
细胞凋亡的机制十分复杂,一般采用多种方法综合加以判断,同时不同类型细胞的凋亡分析方法有所不同,方法选择依赖于具体的研究体系和研究目的(表?)。
表凋亡的检测方法(引自DL斯佩克特等,20XX)形态学观察方法:利用各种染色法可观察到凋亡细胞的各种形态学特征:(1)DApI时常用的一种与DnA结合的荧光染料。
借助于DApI染色,可以观察细胞核的形态变化。
(2)giemsa染色法可以观察到染色质固缩、趋边、凋亡小体形成等形态。
08 细胞凋亡的诱导及观察

山东大学实验报告2018年5月28日________________________________________ _________________________姓名:丁志康系年级:2016级组别:周一下午科目:细胞生物学实验题目:细胞凋亡的诱导及观察学号:201600140055一、实验目的1.学习细胞凋亡的简史、概念和原理。
2.了解细胞凋亡的检测方法。
3.掌握诱导和形态学观察动植物细胞凋亡的基本方法。
二、实验原理1.细胞凋亡细胞凋亡(apoptosis)指为维持内环境稳定,由基因控制的细胞自主的有序的死亡,也称细胞程序性死亡。
细胞凋亡与细胞坏死不同,细胞凋亡不是一件被动的过程,而是主动过程,它涉及一系列基因的激活、表达以及调控等的作用,它并不是病理条件下,自体损伤的一种现象,而是为更好地适应生存环境而主动争取的一种死亡过程。
2.细胞凋亡的生理意义1)维持生物体内环境的稳定;2)参与防御反应;3)胚胎发育过程中清除一些细胞。
3.细胞凋亡的检测方法●细胞凋亡的形态学检测●磷脂酰丝氨酸外翻分析(Annexin V法)●线粒体膜势能的(△Ψmt)检测●DNA片段化检测●TUNEL法●Caspase-3活性的检测●WB检测●凋亡相关蛋白的表达和细胞定位分析4.细胞凋亡的形态学检测未染色细胞:凋亡细胞的体积变小、变形,细胞膜完整但出现发泡现象,细胞凋亡晚期可见凋亡小体。
贴壁细胞出现皱缩、变圆、脱落。
染色细胞:常用姬姆萨染色、瑞氏染色等。
凋亡细胞的染色质浓缩、边缘化,核膜破裂、染色质分割成块状和凋亡小体等典型的凋亡形态。
5.细胞凋亡的诱导因素➢物理因素:射线、热休克、冷激等。
➢化学因素:重金属离子、激素、毒素、活性氧、一氧化氮等。
➢生物因素:病毒、细菌、肿瘤坏死因子、抗肿瘤药物、DNA和蛋白质合成抑制剂等。
6.细胞坏死细胞坏死(necrosis)被认为是因病理而产生的被动死亡,如物理性或化学性的损害因子及缺氧与营养不良等均导致细胞坏死。
细胞生物学技术-细胞凋亡

例:强烈应激反应 糖皮质激素
淋巴细胞凋亡
病原体:细菌、病毒等。例:HIV
(2)抑制因素(抑制细胞凋亡)
CD4+T细胞凋亡
细胞生长因子:如IL-2 、神经生长因子
激素 例:ACTH
肾上腺皮质细胞凋亡
其他:如Zn2+、药物、某些病毒等
11
细胞凋亡信号的转导
凋亡诱导因素 作用于 细胞 转化为 凋亡信号 胞内信号转导途径 激活细胞死亡程序
➢ (3)凋亡小体的形成。核膜核仁破碎,核染色质断裂为大小 不等的片段,与某些细胞器如线粒体一起聚集,为反折的细 胞膜所包围;
➢ (4)凋亡小体逐渐被周围专职或非专职吞噬细胞吞噬。
7
细胞凋亡DNA的片段化
8
细胞凋亡的过程及机理
➢ 接受凋亡信号
➢ 凋亡调控分子间的相互作用
➢ 蛋白水解酶(caspases)的活化
31
细胞内氧化还原状态改变的检测
• 当细胞内GSH的排除非常活跃时,细胞液就由还原环境转为氧 化环境,这可能导致了凋亡早期细胞线粒体膜电位的降低,从 而使细胞色素C(三羧酸循环中的重要组分)从线粒体内转移 到细胞液中,启动凋亡效应器caspase的级联反应。
• 由于 GSH与氧化还原作用及线粒体功能密切相关,此项检测除 了对研究细胞凋亡的起始非常有用外,还可用于心脏病、中风 等疾病治疗的研究。但有些细胞如:HeLa 和3T3细胞凋亡时没 有明显的GSH水平的变化,不能用此法检测。
38
线粒体膜势能(DYmt)的检测
21
Caspase家族的结构与分类
ICE亚类Caspase蛋白酶:ICE(白介素1转换酶) 是单核细胞来源的参与成熟的一种蛋白酶,参与 凋亡,但不起主要作用: Caspase-1,Caspase-4, Caspase-5, Caspase-11,Caspase-12,Caspase13, Caspase-14。
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细胞凋亡检测
实验器材:
普通光学显微镜、荧光显微镜、剪刀、镊子、载玻片、盖玻片、注射器、滤纸、 胶头吸管、细胞计数板、移液器、移液管、24孔板、烧杯、容量瓶、酒精灯。
实验试剂:
1. 293 Cell、DMEM、FBS、H2O2、PBS、乙醇。 2. Gimsa染液:0.5 g Gimsa溶于50 ml 甲醇中,在研钵中充分研磨,溶解后加入50 ml
细胞凋亡检测
细胞凋亡的检测方法:
2、DNA凝胶电泳: 细胞发生凋亡或坏死,其细胞DNA均发生断裂,细胞内小分子量DNA片断增加,
高分子DNA减少,胞质内出现DNA片断。但凋亡细胞DNA断裂点均有规律的发生在 核小体之间,出现180-200bpDNA片断,而坏死细胞的DNA断裂点为无特征的杂乱 片断,利用此特征可以确定群体细胞的死亡,并可与坏死细胞区别:
细胞凋亡检测
细胞凋亡的检测方法:
1、形态学观察方法: ① Gimsa染色:凋亡细胞呈圆形,胞核深染,胞质浓缩,染色质成团块状,细胞表
面有“出芽”现象,晚期凋亡细胞可见凋亡小体。 ② 台盼蓝染色:台盼蓝染料可以进入细胞膜不完整、破裂的坏死细胞。 ③ Hoechst染色:细胞核为蓝色。凋亡细胞的染色质凝聚且边缘化,可见DNA碎片。 ④ PI (碘化丙啶)染色:正常细胞的细胞核呈红色;早期凋亡细胞胞核浓缩,染
细胞凋亡检测
细胞凋亡是指细胞对环境的生理、病理性刺激信号、环境条件的变化或缓和性 损伤产生的应答有序变化的死亡过程。细胞凋亡是一个主动过程,涉及一系列基因 的激活、表达以及调控等的作用,它并不是病理条件下的自体损伤,而是为更好地 适应生存环境的一种死亡过程。 1.细胞凋亡与细胞程序性死亡:
细胞程序性死亡的概念是指一个多细胞生物体中某些细胞的死亡是个体发育中 一个预定的,并受到严格程序控制的正常组成部分。例如蝌蚪变成青蛙,其变态过 程中尾部的消失伴随大量细胞死亡,高等哺乳类动物指间蹼的消失、颚融合、视网 膜发育以及免疫系统的正常发育都必须有细胞死亡的参与。这些形形色色的在机体 发育过程中出现的细胞死亡有一个共同特征:即散在的、逐个地从正常组织中死亡 和消失,机体没有炎症反应,而且这种死亡对整个机体的发育是有利和必须的。因 此认为动物发育过程中存在的细胞程序性死亡是一个发育学概念,而细胞凋亡则是 一个形态学的概念,但是一般认为这两个概念可以交互使用,具有同等意义。 2.细胞凋亡与坏死的区别:
溶剂 甲醇 二甲亚砜 二甲亚砜 沸水 二甲亚砜
水 乙醇
水
二甲亚砜, 热水 水
二甲亚砜 二甲亚砜 磷酸盐缓冲液
甲醇
细胞凋亡检测
细胞凋亡的检测方法:
1. 根据细胞凋亡的形态变化(如凋亡小体的出现、染色质浓缩) 2. 根据细胞核DNA变化(如测定高低分子质量DNA的变化、梯状条带) 3. 根据细胞膜通透性改变(如测定标记蛋白、标记酶的释放) 4. 根据细胞膜成分外露(如测定磷脂酰丝氨酸)
MitoSensorTM为一个阳离子性的染色剂,对此线粒体跨膜电位改变非常敏感,呈 现出不同的荧光染色。正常细胞中,它在线粒体中形成聚集体,发出强烈的红色荧 光。凋亡细胞中,因线粒体穿膜电位的改变,它以单体形式存在于细胞液中,发出 绿色荧光。用荧光显微镜或流式细胞仪可清楚地分辨这两种不同的荧光信号。
细胞凋亡检测
保留的细胞
不健康的细胞
细胞开 始收缩
细胞崩 溃分解 成碎片
不健康的细胞已被除去, 组织内附近的细胞进行 有丝分裂,合上缺口
细胞凋亡检测
细胞凋亡的诱导试剂:
名称 Actinomycin D
Aphidocolin A23187 Caffeine
Camptothecin Cycloheximide Dexamethasone
细胞凋亡的生物学特征:
形态学变化 形态学观察细胞凋亡的变化是多阶段的,细胞凋亡往往涉及单个细胞,即便是一小 部分细胞也是非同步发生的。首先出现的是核糖体、线粒体等聚集,细胞体积缩小, 细胞间连接消失,与周围的细胞脱离,然后是细胞质密度增加,线粒体膜电位消失, 通透性改变,释放细胞色素C到胞浆,染色质逐渐凝聚成新月状附于核膜周边,嗜碱 性增强。细胞核固缩呈均一的致密物,进而断裂为大小不一的片段,核膜核仁破碎, DNA降解成约180bp-200bp的小片段,胞膜有小泡状形成,膜内侧磷脂酰丝氨酸外翻 到膜表面,胞膜结构仍然完整,最终可将凋亡细胞遗骸分割包裹为几个由胞膜包裹 的凋亡小体,因为细胞膜保持完整,没有细胞内容物的外溢,因此不引起周围的炎 症反应,凋亡小体可迅速被周围专职或非专职吞噬细胞吞噬。
细胞凋亡检测
细胞凋亡的生物学特征:
生物化学变化 1、DNA的片段化 细胞凋亡的一个显著特点是细胞染色体的DNA降解,这是一个较普遍的现象。这种 降解特异并有规律,所产生的不同长度的DNA片段约为180-200bp的整倍数,而这正 好是缠绕组蛋白寡聚体的长度,提示染色体DNA恰好是在核小体与核小体的连接部 位被切断,产生不同长度的寡聚核小体片段,实验证明这种DNA的有控降解是一种 内源性核酸内切酶作用的结果,该酶在核小体连接部位切断染色体DNA,这种降解 在琼脂糖凝胶电泳中就呈现特异的梯状Ladder图谱,而坏死则为弥漫的连续图谱。 2、大分子合成 细胞凋亡的生化改变不仅仅是DNA的有控降解,在细胞凋亡的过程中往往还有新的 基因的表达和某些生物大分子的合成作为调控因子。如在糖皮质激素诱导鼠胸腺细 胞凋亡过程中,加入RNA合成抑制剂或蛋白质合成抑制剂即能抑制细胞凋亡的发生。
( 1000RPM离心2min )。 ② 95%乙醇固定15min后加入Gimsa染液染色15min。反扣在载玻片上,光学显微镜下观
细胞凋亡检测
细胞凋亡检测
实验目的: 1.了解凋亡细胞的形态学特征,加深对于细胞凋亡现象及本质的理解。 2.了解并掌握细胞凋亡检测的方法和基本原理。
实验原理: 细胞凋亡时,出现一系列形态学变化,包括凋亡细胞的染色质浓缩、边
缘化,核膜裂解、染色质分割成块状,染色质的DNA出现缺口甚至断裂, 出现DNA碎片,并逐渐形成凋亡小体等,经相应的染色后可以在普通光学 显微镜和荧光显微镜下观察到这些变化。从而把凋亡的细胞和正常的细胞区 分开来。
正常活细胞DNA 电泳出现阶梯状条带;坏死细胞DNA电泳为连续性条带。 3、磷脂酰丝氨酸外翻分析法(凋亡早期):
磷脂酰丝氨酸(Phosphatidylserine, PS)正常位于细胞膜的内侧,但在细胞凋亡 的早期,PS可从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面,暴露在细胞外环境中。AnnexinV是一种分子量为35~36kD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白,能与PS高亲和力特异性结合。 将Annexin-V进行荧光素标记后作为荧光探针,结合荧光显微镜或流式细胞仪可检测 细胞凋亡的发生。
Doxorubicin 5‐Fluorouracil Hydroxyurea
Paclitaxel Staurosporine
Thymidine Vinblastine
工作浓度 500ng/ml
2ug/ml 10uM 16mM 4ug/ml 100ug/ml 1uM
0.2ug/ml
25ug/ml 500nM 100‐580nM 500nM 2mM 60nM
细胞凋亡检测
细胞凋亡的过程:
接受凋亡信号→凋亡调控分子间的相互作用→蛋白水解酶的活化(Caspase)→进入 连续反应过程。 1、凋亡的启动阶段: 细胞凋亡的启动是细胞在感受到相应的信号刺激后胞内一系列控制开关的开启或关 闭,目前比较清楚的通路主要有: 1)细胞凋亡的膜受体通路 2)细胞色素C释放和Caspases激活的生物化学途经 2、凋亡的执行: 尽管凋亡过程的详细机制尚不完全清楚,但是已经确定Caspase(半胱天冬蛋白酶) 在凋亡过程中是起着必不可少的作用,细胞凋亡的过程实际上是Caspase不可逆有限 水解底物的级联放大反应过程(激活特定的核酸酶、破坏细胞结构、促使调节蛋白 丧失功能)。
色加深,或核染色质聚集于核膜一边,呈新月状;晚期凋亡细胞胞核碎裂成大小 不等的原形小体,并被细胞膜所包绕,即凋亡小体。 ⑤ AO(吖啶橙)和EB(溴化乙锭)双染色:AO可以透过细胞膜完整的细胞而嵌入 核DNA呈绿色,EB只能透过细胞膜破损的细胞而嵌入核DNA呈红色。显微镜下 观察,活细胞为荧光深浅不一的结构样特征,核染色质为绿色;凋亡细胞染色强, 亮度高,核染色质呈黄绿色浓聚在核膜内侧,可见细胞膜呈泡状膨出及凋亡小体 或均匀一致的圆状或固缩团状结构。 ⑥ 透射电镜观察:凋亡细胞表面微绒毛消失,核染色质固缩、边集,常呈新月形, 核膜皱褶,胞质紧实,细胞器集中,胞膜起泡或出“芽”,同时可以观察到凋亡 小体和凋亡小体被临近巨噬细胞吞噬。
TUNEL实际上是分子生物学与形态学相结合的研究方法,对完整的单个凋亡细 胞核或凋亡小体进行原位染色,能准确地反应细胞凋亡典型的生物化学和形态特征, 可用于石蜡包埋组织切片、冰冻组织切片、培养的细胞,并可检测出极少量的凋亡 细胞,因而在细胞凋亡的研究中被广泛采用。 6、凋亡相关蛋白的表达和细胞定位分析(凋亡不同时期)
细胞凋亡检测
实验步骤:
1.293细胞培养(实验开始前一天接种293细胞,接种密度为105个/ml) 2 . 诱 导 293 细 胞 凋 亡 ( 293 细 胞 换 液 后 加 入 双 氧 水 80μM 处 理 15 小 时 , 胰 酶 消 化 后 用 DMEM重悬细胞,1000RPM离心4min,用PBS重悬成单细胞悬液) 3.Gimsa染色 ① 调 整 细 胞 密 度 至 104 个/ml ,取100 μl细胞悬液用细胞甩片离心机制成细胞涂片
甘油,混合均匀后至于37℃恒温箱中放置10小时,用棕色瓶密封保存备用。 3. Hoechst33258染液:超纯水溶解Hoechst33258至终浓度为1mg/ml,在4℃长期保存。
PI(碘化丙啶)染液:PI溶于含0.1%TritionX-100的PBS中,终浓度为50 μg/ml, 含RNase 100μg/ml,避光保存。 4. AO+EB染液:AO和EB溶于PBS溶液中,终浓度为10 0μg/ml,避光保存。