植物组织培养技术[1]

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植物的组织培养方法

植物的组织培养方法

植物的组织培养方法植物组织培养是一种无性繁殖技术,通过培养植物的各种器官组织,包括种子、茎、叶和根的细胞和组织,使其在适当的条件下进行生长和分化,从而产生新的植株。

这项技术已被广泛应用于农业、园艺、林业和植物学研究中。

以下是植物组织培养的一般步骤和方法:1. 材料准备:首先,选择适合的植物作为材料,常用的包括水果、蔬菜和花卉植物。

收集新鲜的种子、茎、叶或根,并进行消毒处理,以防止细菌、真菌和其他病原体的污染。

2. 植物组织的分离:将植物材料切成小块或将细胞分离开来。

对于植物的种子,可以直接将种子表面进行消毒处理后,在培养基上进行培养;对于茎、叶和根等组织,则需要进行切割处理。

3. 培养基的准备:制备适当的培养基是进行植物组织培养的重要步骤。

培养基通常由无机盐和有机添加剂组成,以提供植物生长所需的营养物质。

根据组织的不同类型,可以使用不同种类和浓度的培养基。

4. 培养基的调整:将分离的组织放入培养基上,可以将培养基涂覆在组织表面上,或者将组织植入培养基中。

然后,在无细菌的条件下,将组织培养在适当的温度、湿度和光照条件下。

5. 激素的添加:植物生长激素是控制植物生长和分化的关键因素。

在组织培养中,可以根据实验的需要添加适量的激素来促进细胞分裂和分化。

常用的激素有生长素、细胞分裂素和愈伤组织生成素等。

6. 愈伤组织的诱导:愈伤组织是植物组织培养中产生的一种可分化细胞。

通过搅拌、震荡或辐射等途径,诱导组织分化成愈伤组织,然后将其继续培养。

7. 植株的再生:通过培养基中激素的平衡调节,可以使愈伤组织再生为整个植株。

在培养基中,植株的幼苗养分丰富,需要的培养基成分和激素浓度可能与之前的不同。

8. 培养环境的控制:为了使植物组织正常生长和分化,需要控制培养环境的参数。

例如,可以调节培养基的pH值、光照强度、温度和湿度等因素。

9. 组织转化:经过培养,植物组织中可以引入外源基因,使其具有某种特定的性状,这被称为转基因。

《植物组织培养技术》 教学设计

《植物组织培养技术》 教学设计

《植物组织培养技术》教学设计一、教学目标1、知识与技能目标(1)学生能够理解植物组织培养的基本原理。

(2)学生能够掌握植物组织培养的操作流程,包括外植体的选择、消毒、接种、培养等环节。

(3)学生能够识别植物组织培养过程中常见的问题,并提出相应的解决措施。

2、过程与方法目标(1)通过实验操作,培养学生的动手能力和实践操作能力。

(2)通过小组合作,培养学生的团队协作能力和沟通交流能力。

(3)通过观察分析,培养学生的观察能力和问题解决能力。

3、情感态度与价值观目标(1)激发学生对生物技术的兴趣,培养学生的创新意识和探索精神。

(2)培养学生严谨的科学态度和实事求是的精神。

(3)增强学生对植物生命的尊重和保护意识。

二、教学重难点1、教学重点(1)植物组织培养的基本原理和操作流程。

(2)外植体的消毒和接种方法。

2、教学难点(1)植物激素在组织培养中的作用和调节。

(2)无菌操作技术的掌握和应用。

三、教学方法1、讲授法讲解植物组织培养的基本概念、原理和操作流程,让学生对植物组织培养有初步的了解。

2、演示法通过教师的现场演示,让学生更直观地了解外植体的消毒、接种等操作步骤和注意事项。

3、实验法组织学生进行植物组织培养的实验操作,让学生在实践中掌握植物组织培养的技术和方法。

4、讨论法针对实验过程中出现的问题和现象,组织学生进行讨论,培养学生的分析问题和解决问题的能力。

四、教学准备1、实验材料准备新鲜的植物材料(如胡萝卜、菊花等)、MS 培养基、植物激素、无菌水、75%酒精、01%氯化汞、无菌培养皿、无菌镊子、无菌剪刀等。

2、实验设备准备超净工作台、高压灭菌锅、光照培养箱等。

3、多媒体教学资源制作 PPT 课件,展示植物组织培养的原理、操作流程、实验结果等,辅助教学。

五、教学过程1、导入新课通过展示一些植物组织培养的成果图片(如花卉、蔬菜的组培苗),引起学生的兴趣,提问学生是否了解这些植物是如何培育出来的,从而引出植物组织培养的课题。

植物组织培养技术1(1)

植物组织培养技术1(1)
烟草
(三)、植物组织培养的类型
根据培养方式:固体培养、液体培养
固体培养:将培养物放在含有琼脂等固化剂的培养基表面进行 培养。 液体培养:将培养物放在未加固化剂的培养基内培养,一般需 进行震荡,又称液体震荡培养。
固体培养
液体培养
固体培养、液体培养的特点:
(1)固体培养法
是最常用的方法。该方法简单,易行,但养
组织培养实验室的 设计与主要设备
二、仪器设备和器皿用具

1、超净工作台或接种箱 2、空调

3、除湿机或加湿器

4、恒温培养箱
常 见 仪
5、高压灭菌锅 6、冰箱 7、天平 8、显微镜

9、水浴锅

10、摇床与转床

11、蒸馏水发生器 12、酸度计
13、离心机
组织培养实验室的 设计与主要设备
(二)各类玻璃器皿
脱分化(dedifferentiation):将已分化的不分裂的静止细 胞,放在培养基上培养后,细胞重新进入分裂状态。一个成 熟的细胞转变为分生状态的过程叫脱分化。
再分化(redifferentiation):经脱分化的组织或细胞在一定 的培养条件下可转变为各种不同的细胞类型,形成完整植株 的过程。
植物组织培养学
植物组织培养实验室 构建及操作技术
本节教学目的与要求:
(1)掌握组织培养实验室的设计; (2)掌握组织培养常用的实验仪器设备及其使用
方法; (3)掌握调控组织培养的主要环境条件。 (4)掌握灭菌和消毒的区别; (5)掌握灭菌的不同方法和具体操作过程;
本节主要内容
商业性组织培养实验室和小工厂的 设计与主要设备 培养基及其配制 外植体的选择与培养 试管苗的驯化与移栽

植物组织培养的方法

植物组织培养的方法

植物组织培养的方法植物组织培养(Plant tissue culture)是指利用无菌条件下培养植物细胞或组织,以实现繁殖、繁育新品种、生物合成化合物、环境污染处理等目的的技术。

其不仅可以大幅度提高植物材料的品质和数量,还可以在无限制地产生同一种植物。

方法一:赤潮法(Embryogenesis)这一方法是利用赤潮细胞发生器官(如胚性板)的细胞分化,诱导植物组织的胚胎发生,进而实现植物再生。

该方法适用于很多种植物,如玉米、大麦、水稻等。

步骤为:1. 准备培养基:含有赤潮素、氨基酸、维生素、植物激素和适当的糖类和盐类的基础培养基。

2. 处理材料:将植物的姿态板或种子材料在高温(35-40C)下进行消毒,使其无菌。

3. 材料分离:将消毒材料放入无菌条件下进行材料分离。

4. 培养细胞:将细胞或组织放入含有培养基的无菌培养皿中,保持恒定的温度、湿度和光照条件,促进发生素感应化。

5. 发生胚胎体:促进胚胎形成,通过培养发生胚胎胶囊或胚胎体。

6. 块茎冷藏:利用低温存储胚胎体或胚胎胶囊。

方法二:组织培养(Organogenesis)组织培养方法是通过培养植物的基本组织如叶片、茎尖、芽分根进而再生整个植株。

步骤为:1. 材料处理:对种子或植株进行表层消毒处理。

2. 制备组织片:将消毒好的植株切成组织片段,如茎尖、叶片等。

3. 培养基准备:准备无菌的培养基,其中含有植物的必需胰凡陈列如糖类、氨基酸、维生素、生长因子和植物激素等。

4. 组织分化:将组织片段放入含有培养基的培养皿中,使其分化成根、茎、叶等。

5. 干涸与移栽:将培养的加上适量水后,移栽到含有生长素适量的培养基中,促进植物以正常生长的形式营养。

方法三:悬浮细胞培养(Suspension Culture)在此方法中,使用悬浮培养细胞进行植物细胞或组织的生物合成和生物转化。

步骤为:1. 培养基准备:通常使用植物基础培养基加入氨基酸、维生素和植物激素等。

2. 细胞处理:将细胞分散在含有培养基的匀浆器中,使其悬浮在培养基中。

《植物组织培养技术》课件

《植物组织培养技术》课件

04 植物组织培养技术的应用实例
快速繁殖技术
快速繁殖技术是指利用植物组 织培养技术,快速、大量繁殖
植物种苗的一种方法。
该技术广泛应用于花卉、果树 、林木等植物的快速繁殖,能 够大大缩短繁殖周期,提高繁
殖系数。
快速繁殖技术还可以通过控制 培养条件,实现植物的定向繁 殖,如矮化、无病毒等。
快速繁殖技术具有高效、环保 、可重复利用等优点,是现代 农业和林业生产的重要手段之 一。
濒危植物保护与复壮是保护生 物多样性和维护生态平衡的重 要手段之一,具有深远的社会 意义和生态意义。
05 植物组织培养技术的挑战与前景
技术瓶颈与解决方案
技术瓶颈
目前植物组织培养技术面临的主要瓶颈包括培养基的优化、外植体的选择与处 理、污染控制以及基因转化效率等。
解决方案
针对这些问题,研究者们正在探索新型的培养基成分、优化外植体的选择标准 、开发新型的消毒方法以及改进基因转化技术,以期提高植物组织培养的效率 和成功率。
指任何一个植物细胞都包含该物种的 全套遗传信息,具有发育成完整个体 的潜在能力。
植物细胞全能性证明
植物细胞全能性的应用
植物组织培养技术利用植物细胞的全 能性,通过离体培养获得完整的植株 ,广泛应用于植物繁殖、品种改良、 基因工程等领域。
许多植物细胞如胡萝卜、烟草、草莓 等在适宜条件下能够发育成完整的植 株,证明了植物细胞的全能性。
技术发展趋势与展望
发展趋势
随着生物技术的不断发展,植物组织培 养技术也在不断进步和完善。未来,该 技术将更加注重与基因编辑、合成生物 学等新兴技术的结合,以实现更为精准 和高效的植物育种和种质资源保护。
VS
展望
未来,植物组织培养技术有望在农业、园 艺、林业等领域发挥更大的作用,为解决 全球粮食安全、生态恢复等问题提供有力 支持。

植物组织培养技术

植物组织培养技术

植物组织培养技术第一章绪论第二章植物组织培养实验室组成、仪器设备及无菌操作技术第三章植物组织培养基本原理第四章器官培养技术第五章植物胚胎培养第六章花粉及花药培养第七章细胞及原生质体培养第八章组培培养技术在中药学上的应用第一章绪论一、植物组织培养的概念1. 概念植物组织培养(Plant tissue culture)广义上是指无菌条件下,在特定的培养基上对离体的植物器官、组织、细胞和原生质体甚至包括完整植株进行培养的技术。

2.主要特征(1)在培养容器中进行;(2)无菌培养环境,排除了微生物如真菌、细菌以及害虫等的侵入;(3)各种环境因子如营养因子、激素因子以及光照、温度等物理因子处于人工控制之下,并可达到最适条件。

(4)通常打破了正常的植物发育过程和格局;(5)随着单细胞和原生质体培养技术的发展,对植物显微结构进行操作成为可能。

二、植物组织培养类型:根据不同分类的依据可以分为不同类型。

1、根据培养材料不同分为:(1)完整植株培养(Plant Culture):对幼苗和较大植株等的培养。

(2)胚胎培养(Embryo Culture):包括成熟胚、幼胚、子房、胚珠等的培养。

(3)器官培养(Organ Culture):包括离体根、茎、叶、果实、种子、花器官的培养。

(4)组织培养(Tissue Culture):如分生组织、薄壁组织、输导组织培养。

(5)细胞培养(Cell Culture):指对单细胞或较小的细胞团进行培养。

(6)原生质体培养(Protoplast Culture):指对去掉细胞壁后所获得的原生质体进行培养。

2、根据再生途径分为:(1)器官发生途径(Organogenesis):直接器官发生途径:植物器官可以直接由外植体上诱导。

如茎尖培养。

间接器官发生途径:成熟细胞经过脱分化(dedifferentiation)及再分化(redifferentiation)过程而形成新的组织和器官的过程。

植物组织培养(1)

• 组培的环境温度、光照强度和时间都是人为 设定的,其参数可调。
0.1.3 植物组织培养的研究类型和任务
• 组织培养:分生组织、形成层组织、薄壁组织、韧皮部组 织等。
• 器官培养:根、茎、叶、花、果实、种子。 • 胚胎培养:幼胚、成熟胚、胚乳、胚珠、子房等。 • 细胞培养:单细胞或较小细胞团,如性细胞、叶肉细胞、
1. Thimann和Wickson
• 1958年,他们发现腋芽(当顶芽存在时为休眠状态) 的生长,可以通过外源细胞分裂素的应用而启动。这 样,将茎段培养在含有细胞分裂素的培养基上,就可 以在一个具有完整顶芽的生长中的茎上诱导侧芽的形 成。这将消除顶端优势,得到大量不定芽。
Thimann
2. Morel-脱毒、快繁商业化
• 1922 年 , 植 物 离 体 组 织 培 养 取 得 了 一 些 进 展 。 德 国 人 Kotte和美国人Robbins两人同时分别独立地将分生组织作 为外植体。Kotte研究切下的根尖,如豌豆、玉米根尖, 将它们放在含有Knop溶液盐成分、葡萄糖、含氮化合物 如天冬酰氨酸、丙氨酸以及肉汁的各种营养液中。Kotte 观察到根尖生长持续了2周,但他没有进行继代培养。另 一方面Robbins通过继代,将玉米根尖离体培养了更长的 时间,但随着时间延长,生长量减少,最后消失。
• 1952年, Morel和Martin提出了植物脱毒(virus free)技 术,通过分离已被病毒感染的大丽花个体的根尖,并将其 离体培养,重新获得了无病毒的大丽花。
• 1960年,Morel利用兰花茎尖培养,实现了脱毒和快速繁殖 (rapid clone propagation)的两个目的。这一技术导致欧 洲、美洲和东南亚许多国家“兰花工业”的兴起。
0.2 植物组织培养的形成和发展

植物组织培养技术


初代培养( culture) 初代培养(primary culture):指在组织 培养过程中,最初建立的外植体无菌培 养阶段。由于首批外植体来源复杂,携 带较多细菌,要对培养条件进行适应, 因此,初代培养一般比较困难。 继代培养( subculture) 继代培养 ( subculture ) : 在组织培养过 程中,当外植体被接种一段时间后,将 已经形成愈伤组织或已经分化根、茎、 叶、花等的培养物重新切割,转接到其 它培养基上以进一步扩大培养的过程称 为继代培养。
另一为药物和生物制品的工业生产,探索 天然药物生产工业化的途径是当前药物生产 的一个新方向,有可能用组织培养法来代替 全植物提取有效成分。组织培养应用在药学 方面的工作虽然历史不长,但发展很迅速, 它具有如下一些优点: 1.利用组织培养代替原植物的栽培以获得 所需的有效成分,达到产量高,成本低的目 的,还可节约土地。 2.除了应用于产生次生物质外,还可应用 于生物转化。例如烟草组织培养中蒂巴因去 甲基后可能生成吗啡。
目前中国已成功地将麦角菌、灵芝、猴 头菇等真菌进行工业化生产,高等植物组织 培养在工业化中的应用也正在研究。 总之,植物组织培养这一新技术在中草药 方面应用的前途是无限广阔的,它不仅有利 于探讨和阐明药用植物生理、遗传和成分生 物合成等一系列理论问题,而且一旦工业化 生产问题得到解决,将可以为防病治病做出 很大的贡献。
2 培养基的种类 MS培养基、B5培养基、White培养基、N6培养基等等。 3 培养基的配制 (1)混和培养基中的各成分 (2)融化琼脂 (3)调整pH为5.8 (4)分装 (5)灭菌 (6)放置备用
二组织培养操作的一般流程
1 2 3 4 5 6 器皿的洗涤 培养基的配制和灭菌 接种室及用具消毒 材料灭菌:70%酒精、氯化汞 接种 无菌培养

植物组织培养技术

植物组织培养技术植物组织培养技术是一种在无菌条件下培养和再生植物细胞、组织和器官的方法。

该技术被广泛应用于植物生物学研究、种质资源保护和利用、植物育种以及生物工程等领域。

本文将为您介绍植物组织培养技术的原理、步骤以及在不同应用领域的具体应用。

一、植物组织培养技术的原理植物组织培养技术的原理是基于植物的无限生长能力和组织再生能力。

在无菌培养条件下,植物细胞、组织被分离、培养,通过提供适宜的培养基、光照、温度和激素等环境因素,可以促进细胞分裂和再分化,最终形成新的植物器官或整株植株。

二、植物组织培养技术的步骤1. 材料准备:收集植物组织样品,如叶片、茎段、花器官等,并进行表面消毒处理。

2. 培养基配制:根据具体需求配制适宜的培养基,培养基包括基础盐、有机添加物、糖类、维生素和激素等成分。

3. 组织切割和培养:将材料切割成适当大小的小块,接种到含有培养基的培养器皿中,置于恒温、恒湿条件下进行培养。

4. 培养条件管理:根据不同材料的需求,调节光照强度、温度、湿度以及培养基中激素和营养物质的浓度等条件。

5. 组织再分化和生长:培养的初期,细胞和组织会发生再分化现象,形成愈伤组织;随后,再生出新的植株。

6. 生根和移栽:对于培养的植株,进行生根处理,并移栽到土壤中进行进一步生长。

三、植物组织培养技术的应用领域1. 种质资源保护与利用:植物组织培养技术可以使濒危植物得到有效保护和大量繁殖,并为种质资源的利用提供便利。

2. 植物育种:通过植物组织培养技术,可以繁殖无性系、获得遗传变异体、加速杂交育种过程等,从而提高育种效率和品种纯度。

3. 生物工程:植物组织培养可以用于基因转导、基因工程以及体外合成药物等生物工程领域。

4. 药用植物生物学研究:利用植物组织培养技术,可以大量繁殖药用植物,并提取有效成分,用于药物研发和生产。

5. 植物组织培养的教学与科普:植物组织培养技术作为现代生物学的重要实验内容,被广泛应用于高等教育和科普教育。

植物的组织培养技术

稳定、可控的原料来源。
果树脱病毒技术的实践与应用
要点一
总结词
要点二
详细描述
植物组织培养技术可用于果树的脱病毒处理,提高果树的 抗病各种病毒病,导致产 量下降、品质变劣等问题。植物组织培养技术可以用于果 树的脱病毒处理,通过将感染病毒的果树组织进行离体培 养,再从中选择和繁殖出无病毒的植株。这种方法可以提 高果树的抗病性和产量,改善果实品质,对于果树的健康 生产和经济效益具有重要意义。
03 植物组织培养的操作流程
外植体的选择与处理
外植体的选择
选择健康、无病虫害的植物组织 作为外植体,如根、茎、叶、花 、胚等。
外植体的处理
清洗、切割、消毒等步骤,确保 外植体无菌,为后续培养提供良 好的基础。
无菌操作技术
无菌操作环境
在无菌操作室内进行,确保空气经过过滤,减少微生物污染 。
无菌操作工具
智能化监控与管理
借助物联网和大数据技术,实 现植物组织培养过程的智能监
控与管理,提高培养效率。
对环境与伦理的考虑
环境影响
植物组织培养技术的发展和应用需要考虑其 对环境的影响,如能源消耗、废弃物处理等 。
伦理问题
在应用植物组织培养技术时,需要关注伦理 问题,如基因改造和克隆技术的道德争议等 。
06 植物组织培养技术案例分析
VS
有机化学品生产
通过植物组织培养技术,可以生产具有工 业用途的有机化学品,如香精油、色素等 。
植物的脱病毒与复壮
脱病毒
通过植物组织培养技术,可以从感染病毒的植株中分离出无病毒的植株,提高植株的健 康水平。
复壮
通过植物组织培养技术,可以繁殖出具有优良性状的植株,恢复或提高植物的种质资源 价值。
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1.3 消毒间
配备实验台、高压灭菌锅、排风灭火设备、细 菌过滤设备、干热消毒柜、电炉等。灭菌锅的选择 应根据不同的要求选择不同型号的灭菌锅。一般实 验室可选用小型的医用手提式高压灭菌锅,较大的 实验室可选用立式自动控制压力和温度的灭菌锅。 生产性的实验室可选用大型的卧式灭菌锅。
如果没有条件的话,可以将上述工作间合并 成一个准备间,要求是设备的安装和排列要合理、 房间要宽敞、明亮、透风,地面要便于清洁、防滑。
D、金属用品洗涤
金属用品一般不宜用各种洗涤液洗涤(新的 可以用热洗衣粉水洗净),需要清洗时,一 般用酒精擦洗,然后火焰干燥。 E、除菌过滤器用清水冲洗后,用洗液冲洗, 再用清水冲洗,最后用蒸馏水冲洗,晾干备 用。
二.灭菌
(一)、灭菌工作是极其重要的。
首先应建立有菌和无菌的概念有菌的范畴: 有菌:凡是暴露在空气中的物体,至少其表面都是有菌的。 如植物的表面、超净工作台的台面,未处理的工具和手等。 无菌:高压高温处理(工具、器皿、培养基等)
培养室应配有培养架、转床、摇床、光照培养箱、 生化培养箱、自动控时器等。日光灯一般用40W,固定 在培养架的侧面或搁板的下面,每层有两支日光灯,距 离在20cm,光照强度为2000-3000lx。
2.辅助实验室
2.1鉴定室
细胞学鉴定室 其功能是对培养材料进行细胞学鉴定 和研究。要求清洁、明亮、干燥,使各种光学仪器 不受潮湿和灰尘污染。应配置各种显微镜、照相系 统等。
§1 实验室设置及仪器设备
实验室是进行组培研究的主要场所,应能 满足清洗、培养基制备、储藏、无菌操 作、培养、鉴定等多方面的工作。
1.基本实验室
1.1 洗涤间 根据工作量的大小决定其大小,一般面积控制
在30-50m2。在实验室的一侧设置专用的洗涤水 槽,用来清洗玻璃器皿。中央实验台还应配置2 个水槽,用于清洗小型玻璃器皿。如果工作量大, 可以购置一台洗瓶机。准备1-2个洗液缸,专门 用于洗涤对洁净度要求很高的玻璃器皿。此外还 应配置落水架、干燥箱、柜子、超声波清洗器等。 地面应耐湿并排水良好。
B、使用过的玻璃仪器的清洗
先用自来水洗刷至无污物,再用合适的 毛刷沾去污剂(粉)洗刷,或浸泡在0.5% 的清洗剂中超声清洗(比色皿决不可超声), 然后用自来水彻底洗净去污剂,用无离子水 洗两次,烘干备用(计量仪器不可烘干)。 清洗后器皿内外不可挂有水珠,否则重洗, 若重洗后仍挂有水珠,则需用洗液浸泡数小 时后(或用去污粉擦洗),重新清洗。
各种灭菌方法及其使用范围
干热灭菌 湿热灭菌 熏蒸灭菌 过滤灭菌 药剂灭菌 烧灼灭菌 辐射灭菌
玻璃器皿、器械 培养基、蒸馏水、器械、棉塞等 接种室、培养室 液体培养基、蒸馏水 培养材料 器械、瓶口、棉塞、包头纸 接种室。培养间
(1)干热灭菌
适用于玻璃器皿和金属器械的灭菌。操作方 法:150℃ 、40min或120℃ 、120min, 如果发现芽孢杆菌,160℃ 、90~120min
1.2培养基配制间
面积60平方米左右,配备的主要仪器设备有 :冰 箱、天平、微波炉、pH计、培养基分装器、药品 柜、器械柜、抽气泵、电炉、各种规格的培养瓶、 培养皿、移液管、烧杯、量筒、容量瓶、储藏瓶 等。冰箱以体积180-200L为宜,用于储存培养基 母液、激素维生素等贵重药品、彩色胶卷、及保 存植物材料。天平应有不同感量。
C、 塑料器皿的清洗
聚乙烯、聚丙烯等制成的塑料器皿,在生物化学 实验中已用的越来越多。第一次使用塑料器皿时, 可先用8mol/L尿素(用浓盐酸调pH = 1)清洗,接 着依次用无离子水、1 mol/L KOH和无离子水清洗, 然后用10—3 mol/L EDTA 除去金属离子的污染,最 后用无离子水彻底清洗,以后每次使用时,可只用 0.5%的去污剂清洗,然后用自来水和无离子水洗净 即可。
物理或化学处理; 火烤后的物体; 健康的动植物不与内外部表面接触的组织 内部可能是无菌的(有时也有内生菌,但 不会影响培养,也不会污染)
(二)、灭菌的方法
1、物理方法:干热、湿热、过滤(0.25微 米)紫外灯、超声波等。 2、化学方法:使用灭菌剂或抗菌素,如酒 精、次氯酸钠、升汞、漂白粉、高锰酸钾、 双氧水、福尔马林等
室内应配有超净工作台,紫外灯、解剖镜、各种 接种器械等。
1.5 培养室
为了控制培养室的温度和光照时间及其强度,培养 室的房间不要窗户,但应当留一个通气窗,并安上排气 扇。室内温度由空调控制,光照由日光灯控制。天花板 和内墙最好用塑料钢板装修,地面用水磨石或瓷砖铺设, 一般要分两间,一为光照培养室,一为暗培养室。培养 室外应有一预备间或走廊。
1.4 无菌操作室
无菌操作室主要用于实验材料的接种操作,所以又叫 接种室。通常由里外两间组成,外间是缓冲间,用于 准备工作,还有防止污染的作用。缓冲间的门应该与 接种室的门错开,两个门也不要同时开启,以保证无 菌室不因开门和人的进出带进杂菌。缓冲间内应该设 有水槽、实验台、鞋帽架、和柜子、紫外灯。无菌操 作室的内壁应当用塑钢板或瓷砖装修,工作人员进入 操作间前要穿上消过毒的工作服和拖鞋。
(2)湿热灭菌
适用于各种器皿、培养基、器皿、蒸馏水、 棉塞、纸等。121℃ 维持20~30min 注意点:加足水、排尽菌一般用高压高温处理,但如果培 养基中某些成分遇到高温分解(如某些生长调节剂 GA3、玉米素等),就需要过滤灭菌。另外酶、 血清等也需要过滤灭菌
生化分析室 在以培养细胞产物为主要目的的实验室 中,应建立相应的分析化验实验室,以便于对培养 物的有效成分随时进行取样检查。 离心机、酶联免 疫检测仪、天平、PCR仪等。
2.2、温室
为试管苗提供满足生长的适宜环境条件。
§2 实验基本操作
一.洗涤技术
(1)洗涤液的 配制
(2)洗涤方法
A、新购买的玻璃仪器表面常附着有游离的碱性 物质,可先用0.5%的去污剂洗刷,再用自来水洗 净,然后浸泡在1%~2%盐酸溶液中过夜(不可 少于四小时),再用自来水冲洗,最后用无离子 水冲洗两次,在100℃~120℃烘箱内烘干备用。
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