分泌型双荧光素酶报告试剂盒
双荧光素酶报告基因实验步骤
双荧光素酶报告基因实验步骤实验目的：本实验采用双荧光素酶（Dual-Luciferase）报告系统，探究基因调控机制。
通过构建表达报告基因的质粒，研究不同因素对基因转录的影响。
实验材料：1. 双荧光素酶检测试剂盒（Promega）2. 293T细胞系3. Lipofectamine 2000转染试剂4. 培养基（DMEM + 10% FBS）实验步骤：1. 构建表达报告基因的质粒。
选择含有目标基因启动子区域的DNA片段，与质粒载体pGL3-基因报告载体连接，形成表达质粒pGL3-目标启动子-火萤酶（Luciferase）。
2. 细胞培养。
将293T细胞接种于6孔板中，培养至70-80%的稳定生长。
注意，细胞仅用到2×105个，否则检测结果会受内源性酶的影响。
3. 细胞转染。
将转染试剂与质粒混合，加入到细胞培养皿中。
注意，Lipofectamine 2000转染试剂与质粒的比例应按照转染试剂说明书进行调整。
4. 点亮荧光素酶（Luciferase）。
在细胞转染后48小时，加入荧光素酶检测试剂和积木酶抑制剂，使细胞产生发光，并通过微量板阅读器记录荧光值。
5. 关闭荧光素酶（Luciferase）。
在荧光素酶检测试剂作用后加入积木酶检测剂，称为“阻滞液”，使细胞发出的光信号被阻断。
加入Renilla荧光素酶检测试剂，使细胞重新产生新的发光信号，并通过微量板阅读器记录荧光值。
6. 数据统计。
按照公式计算相邻荧光信号的比值（荧光素酶/Renilla荧光素酶），以此作为表达目标启动子的相对活性。
（注意，双荧光素酶检测试剂盒中已包含此项标准）实验结果：通过双荧光素酶报告系统，研究了不同生物因素对基因转录的影响。
在细胞实验中，通过记录不同重复单元（replicate）的相对活性，为科研人员提供基因调控机制的新思路。
（数据统计请参照附表）结论：本实验采用双荧光素酶报告系统，通过构建表达报告基因的质粒，检测对基因转录的影响。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒说明
双荧光素酶报告基因检测试剂盒说明一、测定原理：双荧光素酶报告基因检测试剂盒的原理基于双荧光素酶系统。
该系统由两个互补性的荧光素酶组成：荧光素酶1（Fluc）和荧光素酶2（Rluc）。
荧光素酶1通过氧化反应使荧光素发出蓝色荧光，而荧光素酶2通过氧化反应使荧光素发出绿色荧光。
同时，两个荧光素酶都能够自催化反应，从而有效降低假阳性结果的发生。
二、实验步骤：1.取适量细胞或组织，使用含有测试物的培养基或缓冲液进行处理。
2.将细胞或组织溶解，并离心收集上清液。
3.加入测试试剂盒提供的荧光素底物混合液，共孵育一段时间。
4.使用荧光分析仪测量反应混合物中蓝色和绿色荧光的强度。
5.根据荧光信号的强度计算得出相应的基因表达水平。
三、注意事项：1.本试剂盒需要严格按照说明书操作，避免操作失误导致结果错误。
2.在每一步操作前，请先将试剂保持在合适的温度下，以确保试剂的活性。
3.细胞或组织样本的采集、溶解和上清液的收集需要严格按照操作规范进行，避免样本的损失和污染。
4.在孵育过程中，避免剧烈振荡或震动，以免影响荧光素酶反应的进行。
5.在测量荧光强度时，确保荧光分析仪的参数设置正确，并注意避光操作，以免干扰荧光信号的测量。
四、结果解读：根据测量得到的蓝色和绿色荧光强度，可以计算得到相应的基因表达水平。
一般来说，荧光素酶1的荧光强度与被检测基因的表达水平成正比，而荧光素酶2的荧光强度则用作内参对照。
通过计算荧光素酶1与荧光素酶2的比值，可以更准确地反映被检测基因的表达水平。
结果解读时需要注意的是，双荧光素酶报告基因检测试剂盒只能提供相对量化的结果，无法给出绝对的基因表达水平。
因此，在结果解读时需要结合其他实验数据和相关文献进行综合分析。
总结：双荧光素酶报告基因检测试剂盒是一种常用的基因表达水平检测工具，该试剂盒通过双荧光素酶系统实现对基因表达水平的测定。
在使用时需严格按照说明书操作，注意操作规范和注意事项。
结果解读时应综合考虑其他实验数据和相关文献，以得到准确可靠的结论。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒说明
使用说明：
1. 裂解细胞：将报告基因细胞裂解液充分混匀，按如下方式加入报告基因细胞裂解液，充分裂解细胞。
对于贴壁细胞：吸尽细胞培养液后可以直接加入报告基因细胞裂解液；
对于悬浮细胞：离心去上清后加入报告基因细胞裂解液。充分裂解后，10,000-15,000g离心3-5分钟，取上清用于测定。 注：细胞裂解后可以立即测定荧光素酶，也可以先冻存，待以后再测定。冻存样品需融解，并达到室温后再进行测定。
得到的比值来比较不同样品间目的报告基因的激活程度。
对照。
6. 在完成上述测定萤火虫荧光素酶步骤后，加入100微升Renilla荧光素酶检测工作液，用枪打匀或用其它适当方式混匀后测
定RLU(relative light unit)。 7. 在以Renilla荧光素酶为内参的情况下，用萤火虫荧光素酶测定得到的RLU值除以Renilla荧光素酶测定得到的RLU值。根据
来说，如果不分装使用三次(期间冻融三次)，对测定结果无明显影响。 ¾ 样品和测定试剂混合后，必须等待1-2秒，再进行测定。测定时间通常为10秒，根据情ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ也可以测定更长或更短时间，但
是同一批样品最好使用相同的测定时间。 ¾ 特别注意：Renilla荧光素酶检测工作液后需配制后立即使用，不可配制成工作液后长期保存。Renilla荧光素酶检测
双荧光素酶报告基因检测试剂盒
双荧光素酶报告基因检测试剂盒双荧光素酶报告基因检测试剂盒是一种用于检测报告基因表达水平的试剂盒。
报告基因是在转染实验中用来评估转染效率和细胞活性的基因，常见的报告基因包括荧光素酶、β-半乳糖苷酶等。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒通过测定转染细胞中荧光素酶的活性，从而反映报告基因的表达水平，是科研实验室中常用的实验技术之一。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒的原理是利用荧光素酶底物来测定细胞中荧光素酶的活性。
荧光素酶底物在荧光素酶的作用下发生化学反应，产生发光信号，通过测定发光信号的强度来间接反映报告基因的表达水平。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒具有灵敏度高、操作简便、结果稳定可靠等特点，广泛应用于基因表达调控、信号转导、药物筛选等领域。
使用双荧光素酶报告基因检测试剂盒进行实验时，首先需要将转染后的细胞加入培养基中，然后加入荧光素酶底物，经过适当的反应时间后，用微量板阅读器或活体成像系统测定发光信号的强度。
根据发光信号的强度可以判断报告基因的表达水平，进而评估转染效果和细胞活性。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒的应用范围非常广泛，不仅可以用于体外细胞实验，还可以应用于体内动物实验。
在基因敲除、基因过表达、siRNA干扰等实验中，双荧光素酶报告基因检测试剂盒都可以发挥重要作用。
此外，双荧光素酶报告基因检测试剂盒还可以用于药物筛选实验，评估药物对细胞活性的影响，为药物研发提供重要参考。
总的来说，双荧光素酶报告基因检测试剂盒是一种在分子生物学实验中应用广泛的试剂盒，具有灵敏度高、操作简便、结果稳定可靠等特点，为科研人员提供了重要的实验工具。
在今后的科研工作中，双荧光素酶报告基因检测试剂盒将继续发挥重要作用，为基因表达调控、信号转导、药物筛选等领域的研究提供有力支持。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒
注意事项：
1) Fassay Buffer I和Fassay Substrate I应避免反复冻熔，可分装成合适体积分次使用。 Rassay Substrate II溶液应盖严存放，避免蒸发。配制好未用完的Fassay Reagent I和 Rassay Reagent II可在-20℃保存1月左右。
自动发光测定：
配制好的Fassay Reagent I和Rassay Reagent II置于测定仪内并连接好对应管道，Fassay Reagent I接第一注射管道，Rassay Reagent II接第二注射管道。各待测样品20 μl分别加 入测定管/板孔底部，启动自动测量程序。记录Firefly luciferase和Ranilla luciferase的发光 单位(RLU)。
测定前，在室温待Fassay Buffer I、Fassay Substrate I和Rassay Buffer II溶化，混匀（注意 避光）。按20/1比例用Fassay Buffer I稀释Fassay Substrate I，按50/1比例用Rassay Buffer II 稀释Rassay Substrate II，分别配制所需体积的Fassay Reagent I和Rassay Reagent II（注意 避光）。
2) 细胞裂解液一般在当天测定。如需隔日测定，应将样品于-20℃保存。长期保存应 在-80℃。测定样品量可为10~30μl个样品的两种试剂加入时间间 隔一致。
4) Rassay Reagent II可用于直接测定样品的Ranilla luciferase。需要注意的是，Rassay Reagent II直接测量的RLU要比双荧光素酶顺序检测获得的RLU高一些（反应体积 等因素的影响）。
双荧光素酶报告数据分析(3篇)
第1篇摘要：双荧光素酶报告系统（Dual Luciferase Reporter Assays, DLRA）是一种广泛应用于生物科学研究中的细胞功能检测技术。
通过分析荧光素酶的活性，可以评估细胞内信号通路的激活情况，从而研究基因表达调控、细胞增殖、细胞凋亡等多种生物学过程。
本文将对双荧光素酶报告数据分析的方法、注意事项以及结果解读进行详细阐述。
一、引言双荧光素酶报告系统是一种基于荧光素酶活性的细胞功能检测技术，具有灵敏度高、特异性强、操作简便等优点。
荧光素酶是一种在细胞内自然存在的酶，能够将荧光素底物催化生成荧光物质。
在双荧光素酶报告系统中，通常使用两种荧光素酶：萤火虫荧光素酶（Firefly Luciferase, FL）和海肾荧光素酶（Renilla Luciferase, RL）。
FL的荧光强度通常作为报告基因的活性，而RL的荧光强度则作为内参基因，用于校正实验误差和细胞活力。
二、实验原理双荧光素酶报告系统的基本原理是：将目的基因与荧光素酶基因（FL或RL）的启动子连接，构建报告基因质粒。
将报告基因质粒转染到细胞中，细胞内荧光素酶的活性与目的基因的表达水平成正比。
通过检测细胞内两种荧光素酶的荧光强度，可以评估目的基因的表达水平。
三、实验方法1. 构建报告基因质粒（1）设计荧光素酶基因（FL或RL）的启动子序列，并与目的基因序列连接。
（2）将连接好的基因序列克隆到载体质粒中，构建报告基因质粒。
2. 细胞培养与转染（1）培养细胞至对数生长期。
（2）用脂质体或电穿孔等方法将报告基因质粒转染到细胞中。
3. 荧光素酶活性检测（1）收集转染后的细胞，用荧光素酶底物进行孵育。
（2）使用荧光光度计检测细胞内FL和RL的荧光强度。
4. 数据分析（1）计算FL和RL的相对荧光强度（RFU）。
（2）计算目的基因的表达水平（FL/Rlu）。
四、数据分析方法1. 相对荧光强度（RFU）计算RFU = 荧光强度 / 标准曲线斜率2. 目的基因表达水平计算目的基因表达水平 = FL/Rlu其中，FL为FL的相对荧光强度，Rlu为RL的相对荧光强度。
双荧光素酶报告基因检测系统-promega
Dual—Luciferase® Reporter Assay试剂准备Luciferase Assay Buffer II 10mlLuciferase Assay Substrate 1vialStop ＆Glo® Buffer 10mlStop ＆Glo® Substrate，50X 200ulPassive Lysis Buffer （PLB)，5X 30ml1.1X PLB：加1体积的5X Passive Lysis Buffer （PLB)到4体积的dH20中，40C保存(一个月)。
R II：将Luciferase Assay Substrate重悬于10ml Luciferase AssayBuffer II 中（—200C保存1个月,-700C保存1年)。
3.1X Stop ＆Glo 试剂：1体积50X Stop ＆Glo® Substrate加入49体积的Stop & Glo® Buffer中（-200C保存15天）。
（每次试验需要100ul）细胞处理1. 吸除细胞培养液2. 1X PBS轻柔的冲洗细胞3. 加入1X PLB（推荐用量）4.细胞溶解室温条件下，轻摇细胞15min,瞬时转染和报告基因实验采用脂质体介导技术转染。
重组质粒分别为p-629/+100,p—401/+100,p—238/+100，p-80/+100,p—25/+100。
pGL3- basic为阴性对照；同时以转染phRL-tk(海肾荧光素酶)作内对照。
具体转染方法参照转染(Polifectamine Reaent）说明书进行。
1。
将质粒DNA(3。
2µg)与phRL-tk （0。
8µg）按1：4混合后为A液，混匀30s，PolyFect(QIAGEN)与无血清无抗生素的DMEM按1:50混匀后为B 液，混匀30s;2。
A+B混匀（B加入A）15s，室温下孵育5—10 min；3. 吸出六孔板中的培养液，用无血清无抗生素的DMEM洗3遍，然后加入AB混合液，每孔0。
双荧光素酶报告基因分析promega
双荧光素酶报告基因分析1. 介绍荧光素酶报告基因表达的转录调控常被用来研究培养细胞的生物学特性。
荧光素酶是理想的报告基因，因为哺乳动物细胞中不含内源性荧光素酶，一旦转录完成立刻就生成功能性的荧光素酶。
Dual-Luciferase®双荧光素酶报告基因检测系统中含有在同一细胞中同时表达的两种荧光素酶。
通常，报告基因实验中往往会受到各种实验条件的影响，共转染的“对照”报告基因会作为内对照，为试验提供一基准线。
实验报告基因经过内参照的处理可以减小细胞活性和转染效率对实验的影响，因此双报告系统减少了外部干扰，使得实验数据更可信。
实验中报告基因和对照基因的酶没有种源同源性，萤火虫荧光素酶和海肾荧光素酶对应不同的反应底物，反应中没有任何的交叉干扰。
萤火虫荧光素酶底物和海肾荧光素酶底物分别与检测试剂反应可以使灵敏度最大化。
由于超强的光信号和超高的信噪比，本系统被广泛用于制药和生物技术产业中。
双荧光素酶报告基因检测系统适配于各种培养哺乳细胞的培养基，如1640，MEM，DMEM，F12等。
这些试剂与被动裂解液所附带的试剂盒，可以从Promega试剂盒中分开，单独使用。
具有超高灵敏度和超宽线性范围的Veritas™微孔板发光检测仪特别适合DLR 报告基因检测系统，Veritas™软件中预装了DLR 的检测程序使得安装更为方便，内置自动加样器使得应用更为简单。
Veritas™微孔板发光检测仪使用荧光素酶检测试剂II (LAR II)最低可以检测到1X10-19 mol 荧光素酶分子，使用Stop & Glo®试剂可以检测到1X10-18 mol 海肾荧光素酶分子，检测线性范围分别为8 和6 个数量级。
所有的检测均采用纯化的重组萤火虫荧光素酶(E1701)和纯化的重组海肾荧光素酶。
图1－3 使用Promega 公司Dual-Luciferase®双荧光素酶报告基因检测系统，萤火虫荧光素酶(1x10-19 到1x10-11 mol)和海肾荧光素酶(1x10-14 mol)在Modulus™仪上测量结果。
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3)
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Secrete-Pair vs. Competitor -GLuc signal stability comparison
100 80 RLU/S (%) 60 40 20 0 0 5 10 15 20 Time (Min) 25 30 35 40 GL-S (Secrete-Pair) GL-H (Secrete-Pair) Competitor-S Competitor-H
© 2011 GeneCopoeia, Inc.
Secrete-Pair™ Luminescence Assay KitsANUAL Secrete-Pair™ Dual Luminescence Assay Kit Secrete-Pair™ Gaussia Luciferase Assay Kit
2
Secrete-Pair™ Luminescence Assay Kits User Manual
different conditions or other down-stream analysis. Since the sample collection and activity assay only take minutes, the GLuc system enables high-throughput screening and also monitors real-time activities. 2) GLuc is also the brightest luciferase available, which generates over 1000-fold higher bioluminescent signal intensity, when compared to firefly and Renilla luciferases, making it a highly sensitive 2 transcription reporter . GLuc is stable over a wide pH range and in the conditioned cell culture medium . In vivo, GLuc can be detected in blood or urine making it a sensitive tool for real-time monitoring of in 4 vivo processes .
Figure 2. Comparison of GLuc signal stability in different buffer systems from Secrete-Pair and a competitor Gaussia luciferase assay kit. Cell culture medium was collected from cells transfected with the humanized wild type GLuc reporter clones. 10 μl of the medium was used in each assay. Two buffer systems of each kit were tested and the assays were performed according to the manufacturer protocols. The percentage of signal retained (Y axis) is used as an indicator for signal stability. For both kits, the GLuc activities in buffers with a stabilizer (-S) are much more stable than those in buffers without a stabilizer (-H). However, when compared side-by-side, Secrete-Pair buffer systems provide more stable GLuc signal than the competitor kit. More than 90% of signal was retained within the first 10 minutes using GL-S buffer from Secrete-Pair (blue) and only about 70% of signal was retained using the competitor stable buffer (green).
User Manual
GeneCopoeia, Inc. 9620 Medical Center Drive, #101 Rockville, MD 20850 USA 301-762-0888 866-360-9531 inquiry@
I. Introduction and Principle
Secrete-PairTM Dual Luminescence Assay Kit The Dual Luminescence Assay kit is designed to analyze the activities of Gaussia Luciferase (GLuc) and Secreted Alkaline Phosphatase (SEAP) using luminescent assays side-by-side from a single sample such as cell culture medium. Both GLuc and SEAP are secreted reporter proteins. Samples can be easily obtained from cell culture medium without lysis of the cells. This assay kit has been optimized using GeneCopoeia GLuc-ON Promoter Reporter Clones. Each promoter clone contains a ~1-1.5 kb insert, corresponding to the 5'-flanking sequence located approximately 1-1.5 kb upstream of Transcription Initiation Site of a specific human gene. This insert is placed upstream of the GLuc reporter gene. Since the putative cis-acting enhancer elements are expected to exist in the cloned promoter region, the luciferase activity observed during the reporter assay closely resembles the actual promoter regulation of these genes within human cells. A secondary reporter gene, SEAP, can be used for transfection normalization. SEAP is available either on the same vector of GLuc or on a separate vector. Secrete-PairTM Gaussia Luciferase Assay Kit The Gaussia Luciferase Assay kit is designed to analyze the activities of Gaussia Luciferase (GLuc) only. Secreted GLuc can be easily obtained from cell culture medium without lysis of the cells. Gaussia luciferase as the reporter gene has strong advantages 1 Gaussia luciferase (185 aa, 19.9 kDa) is the smallest luciferase . It catalyzes the oxidation of the substrate 2 coelenterazine in a reaction that produces light (480 nm) .
I. Introduction and Principle II. Contents and Storage III. Protocol Overview IV. Preparation V. GLuc Assay Procedure VI. SEAP Assay Procedure VII. Signal Normalization VIII. Important Note IX. References X. Limited Use License and Warranty
G eneCopoeia Expressway to Discovery
TM
Secrete-PairTM Dual Luminescence Assay Kit
For parallel bioluminescence assays of Gaussia luciferase (GLuc) and secreted Alkaline Phosphatase (SEAP) Cat. No. SPDA-D010 (100 reactions) Cat. No. SPDA-D030 (300 reactions) Cat. No. SPDA-D100 (1000 reactions)
TM