第六章 蛋白质定量和定性分析
蛋白质的定性定量分析
二、免疫印迹分析的基本流程
制备蛋白样品
电泳分离蛋白
蛋白质转移
转移至固相膜
封闭非特异结合位点
与第一抗体温育反应
与第二抗体交联物温育反应
抗体检测
现在您浏览的位置是第四十五页，共五十九页。
显色
免疫印迹操作流程图
现在您浏览的位置是第四十六页，共五十九页。
1. 样品的制备
➢ 组织或细胞中提取
❖ 裂解 ❖ 去污剂 (SDS、Triton X-100、NP-40、Tween-20)
现在您浏览的位置是第十九页，共五十九页。
原理
在碱性环境下蛋白质分子中的肽键能与Cu2
＋生成络合物，同时将Cu2＋还原成Cu＋。而BCA试
剂可敏感特异地与Cu＋结合，形成稳定的有颜色 的复合物，在562 nm处有高的光吸收值。颜色 的深浅与蛋白质浓度成正比，可根据吸收值的 大小来计算蛋白质的含量
现在您浏览的位置是第二十页，共五十九页。
尤其是高浓度蛋白质溶液在酸性条
件下易发生沉淀 • 若选用目的蛋白来做标准曲线或用 另一种方法来校正，所测蛋白浓度
较准确
现在您浏览的位置是第十三页，共五十九页。
三、Lowry检测法
这一标准、快速的蛋白质定量检测方法已得 到广泛应用.
现在您浏览的位置是第十四页，共五十九页。
原理
首先在碱性溶液中形成铜-蛋白复合物，然后这 一复合物还原磷钼酸-磷钨酸试剂(Folin-酚试剂)， 产生钼蓝和钨蓝复合物的深蓝色，这种深蓝色的 复合物在745 ～750 nm处有最大的吸收峰，颜色 的深浅(吸收值)与蛋白质浓度成正比，可根据750 nm的光吸收值大小计算蛋白质的含量
现在您浏览的位置是第四十一页，共五十九页。
印迹技术的类别及应用
蛋白质定性定量分析ppt课件
2021/6/15
29
2、利用微电极直接测定凝胶表面的p H而得知样品的等电点；
3、将凝胶切成等距离(5nm)的小块， 浸于水中，用精密试纸测定pH。以凝 胶块距正极的距离为横坐标，pH为纵 坐标作用图得出胶的pH梯度曲线。根 据待测样品在凝胶中的位置而得出蛋
白质样品的等电点。
2021/6/15
30
与标准蛋白比较，得出样品蛋白的含量。
2021/6/15
31
2021/6/15
32
2021/6/15
33
2021/6/15
34
免疫印迹技术的基本操作(例PKC)
1、细胞裂解物的制备 2、细胞裂解液蛋白含量测定 3、细胞裂解物SDS－PAGE电泳 4、蛋白质转膜 5、目的蛋白的检测
2021/6/15
转变为硫酸铵。
Pr＋H2SO4
CO2＋H2O＋(NH4)2SO4
(NH4)2SO4+2NaOH NH4OH+HCl
NH4OH+H2SO4 NH4Cl+H2O
2021/6/15
3
2021/6/15
4
2021/6/15
5
2021/6/15
6
凯氏法的评价： 优点：
1、适用于一切形态的样品； 2、不用比色，对混浊不透明的样品也可 进行分析； 3、结果的精、准度较高。
其它蛋白质定性定量分析技
术
蛋白质的电泳染色定量分析
特定蛋白质在总蛋白中所点比例的分析：最
早应用于血浆蛋白电泳分离后白蛋白和球蛋
白的比例测定。其方法有二，其一是将染色
后的蛋白区带剪下，用适当的溶剂提取后比
色测定；其二用反射扫描仪处理后，计算各
蛋白质定性
百泰派克生物科技
蛋白质定性
蛋白质定性分析是根据蛋白质相关性质对蛋白质的种类进行分析，定性蛋白质组学指在组学水平上进行蛋白质定性分析。
百泰派克生物科技提供蛋白质定性分析以及蛋白质组学定性分析服务。
蛋白质定性分析
蛋白质定性，指通过非量化的手段分析蛋白质性质以确定蛋白质的种类。
蛋白质分子非常复杂，与其性质相关的特征参数有很多，包括蛋白质的分子量、等电点、氨基酸序列（一级结构）、高级结构、以及蛋白质间的相互作用等等。
利用蛋白质的这些性质参数，可以借助相关的仪器设备进行蛋白质定性分析。
蛋白质定性的常见方法包括有电泳（如SDS-PAGE）、层析、ELISA、western blot、图像分析技术、测序（如基于Edman降解的N端测序）以及质谱法等。
蛋白质定性检测有助于推断蛋白质的功能和作用机理，且在对蛋白质进行定量之前可先进行定性分析。
蛋白质定性。
蛋白质组学定性分析
蛋白质组学定性分析指在组学水平上对蛋白质进行定性分析，也称为定性蛋白质组学。
定性蛋白质组学研究的方法有多种，其中基于质谱的方法是蛋白质组定性检测的主要方法之一。
质谱可以通过分子量测定、N/C端测序、全序列分析以及翻译后修饰分析等大规模、高通量地进行蛋白质组定性。
蛋白质的定量分析方法
蛋白质的定量分析方法1．蛋白质的常规检测方法1.1 凯氏定氮法一种最经典的蛋白质检测方法。
原理：样品中含氮有机化合物与浓硫酸在催化剂作用下共热消化，含氮有机物分解产生氨，氨又与硫酸作用变成硫酸铵。
然后加碱蒸馏放出氨，氨用过量的硼酸吸收，再用盐酸标准溶液滴定求出总氮量换算为蛋白质含量。
优点：范围广泛、测定结果准确、重现性好。
缺点：操作复杂费时、试剂消耗量大。
1.2 双缩脲法常用于需要快速但并不需要十分精确的蛋白质检测。
原理：双缩脲是三分子的脲经180℃左右加热，放出一份子氨后得到的产物，在强碱性溶液中，双缩脲与硫酸铜形成紫色络合物（肽链中的氮原子和铜离子配价结合），称为双缩脲反应。
紫色络合物颜色的深浅和蛋白质浓度成正比，因此可用来测定蛋白质含量。
优点：较快速、干扰物质少、不同蛋白质产生的颜色深浅相近。
缺点：灵敏度差、三羟甲基氨基甲烷、一些氨基酸和EDTA等会干扰该反应。
1.3 Folin酚试剂法原理：与双缩法大体相同，利用蛋白质中的肽键和铜离子结合产生双缩脲反应。
同时也由于Folin酚试剂中的磷钼酸-磷钨酸试剂被蛋白质的酪氨酸和苯丙氨酸残基还原，产生深蓝色的钼蓝和钨蓝的混合物。
在一定条件下，蓝色深度与蛋白的量成正比，由此可测定蛋白质的含量。
优点：灵敏度高、对水溶性的蛋白质含量的测定很有效。
缺点：费时，要精确控制操作时间；Folin酚试剂的配制比较繁琐，且酚类和柠檬酸、硫酸铵、Tris缓冲液、甘氨酸、糖类、甘油、还原剂（二硫代苏糖醇、巯基乙醇）、EDTA和尿素均会干扰反应。
1.4 紫外吸收法原理：蛋白质中的酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸残基使其在280nm处具有紫外吸收，其吸光度与蛋白质含量成正比。
此外，蛋白质溶液在280nm处的吸光值与肽键含量成正比。
利用一定波长下蛋白质溶液的吸光值与蛋白质含量的正比关系可以测定蛋白质含量。
优点：简便、灵敏、快速、不消耗样品，测定后能回收。
缺点：测定蛋白质含量的精确度差、专一性差；干扰物质多，若样品中含有嘌呤、嘧啶等能吸收紫外光的物质会出现较大的干扰。
蛋白质的定量和定性分析方法
蛋白质的定量和定性分析方法蛋白质是生物体内最重要的功能分子之一，对于研究生物体的结构和功能具有重要意义。
为了准确地了解蛋白质的含量和性质，在科学研究和实际应用中，我们需要使用定量和定性分析的方法来研究蛋白质。
一、定量分析方法1. 低里德伯法（Lowry method）低里德伯法是一种经典而广泛应用的蛋白质定量方法。
该方法利用蛋白质与碱式铜络合物在碱性条件下反应生成蓝色产物，通过比色法测定溶液的吸光度来计算蛋白质含量。
这是一种灵敏且相对简单的方法，适用于大多数蛋白质样品的定量分析。
2. 比色法（Colorimetric assay）比色法是一种常用的蛋白质定量方法，通过蛋白质与染料的结合来测定蛋白质浓度。
常用的染料有布拉德福蓝（Bradford）、库吉铃蓝（Coomassie Brilliant Blue）、BCA法（Bicinchoninic Acid assay）等。
这些染料与蛋白质结合后形成一种复色物，通过比色法测定溶液的吸光度可以定量分析蛋白质。
比色法具有操作简便、灵敏度高等特点，被广泛应用于蛋白质定量领域。
3. 分子标记法（Molecular tagging method）分子标记法是一种新兴的蛋白质定量方法，利用特定的分子标记物（如荧光染料、放射性示踪剂等）标记蛋白质，然后通过测定标记物的荧光强度或放射性信号来计算蛋白质浓度。
分子标记法具有高灵敏度、高特异性等优点，适用于微量蛋白质的定量测定。
二、定性分析方法1. SDS-PAGE（Sodium Dodecyl Sulfate Polyacrylamide Gel Electrophoresis）SDS-PAGE是一种常用的蛋白质定性分析方法，通过电泳将蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中分离出来。
在电泳过程中，蛋白质在SDS（十二烷基硫酸钠）的作用下具有相同的电荷密度，只受到大小的限制而移动。
蛋白质在凝胶中的分离程度取决于其分子量大小，可以通过对比标准品的迁移距离来估计样品中蛋白质的相对分子量。
蛋白质的定性和定量分析
• 为促进BCA法的反应进程，可将 样品适当加热
小结（Summary）
掌握常用的测定方法 不同方法的操作步骤 操作过程的注意事项
其它蛋白质的定性定量方法
1. 蛋白质的染色定量 2. ELISA测定 3. 放射免疫测定
第二节 蛋白质相对分子量测定
分子量测定 (molecular weight, MW)
• 许多干扰物质降低颜色反应 • 高盐浓度可引起沉淀
四、BCA (二喹啉甲酸)检测法
这是近年来新研制的一种改进的Lowry 测定法，反应简单而且几乎没有干扰物质 的影响
原理
在碱性环境下蛋白质分子中的肽键能与 Cu2＋生成络合物，同时将Cu2＋还原成Cu＋。 而BCA试剂可敏感特异地与Cu＋结合，形成 稳定的有颜色的复合物，在562 nm处有高的 光吸收值。颜色的深浅与蛋白质浓度成正比， 可根据吸收值的大小来计算蛋白质的含量
• 反应10～15 min后开始出现沉淀， 尤其是高浓度蛋白质溶液在酸性条 件下易发生沉淀
• 若选用目的蛋白来做标准曲线或用 另一种方法来校正，所测蛋白浓度 较准确
三、Lowry检测法
这一标准、快速的蛋白质定量检测方法已 得到广泛应用，在检测之前可通过蛋白质 沉淀将干扰物质去除
原理
首先在碱性溶液中形成铜-蛋白复合物，然 后这一复合物还原磷钼酸-磷钨酸试剂(Folin酚试剂)，产生钼蓝和钨蓝复合物的深蓝色， 这种深蓝色的复合物在745 ～750 nm处有最大 的吸收峰，颜色的深浅(吸收值)与蛋白质浓度 成正比，可根据750 nm的光吸收值大小计算 蛋白质的含量
SDS-蛋白质复合物分子构型也几乎相同(雪茄 烟形的长椭圆棒状的复合物)，而且具有相同的 荷质比，因此在SDS-PAGE中，SDS-蛋白质复 合物的电泳迁移率只与其分子量有关，而不再 受所带电荷及分子形状的影响，且在一定条件 下，迁移率与分子量呈对数线性关系
第六章 蛋白质定量和定性分析
5.0
5.0
摇匀，室温下放置10分钟
Folin-酚试剂乙/ml 0.5
0.5
0.5
0.5
0.5
0.5
摇匀，在30℃保温（或室温下放置）30分钟
A 500nm
0
• 2.样品中蛋白的测定
•
取2支试管，分别加入0.2毫升样品(待测)稀
释液，再加入0.8毫升蒸馏水使样品体积达到1毫
升。
•
将样品的光吸收值在标准曲线上查出相应的
(2)测定快速,简洁,只需要加一种试剂.完成一个样品的测定,只 要5分钟左右 .由于染料与蛋白质结合的过程,大约只要2分 钟即可完成,其颜色可以在1小时内保持稳定,且在5分钟至20 分钟之间,颜色的稳定性最好.
三 氨的吸收
1 、蒸馏器洗净后,从G加入小瓷片数粒,开放水龙头和P3使 瓷片随水流入A,水放至A球颈处即可.
2 、取150ml锥形瓶,加入2%硼酸20ml(内加2~3滴混合指示 剂),将锥形瓶置于M下并使管口接触至硼酸溶液底层.
3 、准确吸取稀释消化液5ml,由漏斗D注入蒸馏器,少量蒸 馏水冲洗漏斗,加入30%NaOH约5ml,再用少量蒸馏水冲洗, 夹紧螺旋夹并水封,使氨气不会从漏斗处流失.
e.一般消化至透明后,继续消化30min即可,但对于含有 特别难以消化的氮化合物的样品,如赖氨酸、组氨 酸、色氨酸等时,需适当延长消化时间.有机物如分 解完全,消化液呈蓝色或浅绿色,但含铁量多时,呈较 深绿色.
f.硼酸吸收液的温度不应超过40℃,否则对氨的吸收作 用减弱而造成损失.
g.蒸馏完毕后,应先将冷凝管下端提离液面,再蒸2min 后关掉热源,否则可能造成吸收液倒吸。
第六章 蛋白质定量和定性分析
(Qualitative and quantitative analysis of protein)
蛋白质定量与定性分析报告
蛋白质定量与定性分析报告蛋白质定量分析与定性分析报告此次“蛋白质定量分析与定性分析”报告总共包括蛋白定量、蛋白简单定性、蛋白功能定性三个部分组成。
师兄的报告内容翔实，介绍生动，让我受益匪浅。
1. 蛋白质定量分析蛋白质定量分析是确定样品中总蛋白含量，或者某种单一蛋白的含量。
蛋白质的定量分析一般可从三个方面入手，一是基于蛋白质的元素组成特点，二是基于蛋白质的化学显色反应，三是基于蛋白质的光吸收特性。
蛋白质定量分析的方法有:280紫外吸光比色法、经典Bradford与Lowry检测法、BCA(二喹啉加酸)检测法、疏基测定检测法。
280紫外吸光比色法这一方法可用来快速检测溶液中是否含有蛋白质成分及其含量，通常用于柱层分析过程中检测蛋白质的洗脱峰。
如下图，蛋白质中的Trp、Tyr、Cys残基含有共轭双键，在280nm有一紫外吸收高峰。
在一定浓度范围内，蛋白质的A280与其浓度成正比，所以测定蛋白质溶液280nm的光吸收值是分析溶液中蛋白质含量的快速简便的方法。
可以通过A280与A260的差值来计算出蛋白质浓度，如:蛋白质浓度(mg/l)=1.45×A280-0.74×A260。
蛋白质的第二吸收峰在240nm以下，214nm最大，此峰是由肽键引起。
可通过214nm与225nm的差值来计算出蛋白质的含量。
较为精确的公式为: ε(280) (M-1 cm-1)= (#Trp)(5,500) + (#Tyr)(1,490) + (#cystine)(125).1.2 经典Bradford与Lowery检测法1.2.1 Bradford检测法这是一种迅速、可靠的通过染色法测定溶液中蛋白质含量的方法。
该法基于考马斯亮蓝G-250有红、蓝两种不同颜色的形式。
在一定浓度的乙醇及酸性条件下，可配成淡红色溶液，当于蛋白质结合后，产生蓝色化合物，反应迅速而稳。
蓝色复合物在595nm波长处具有最大光吸收值，并与溶液中蛋白质浓度成正比，因此可检测595nm的光吸收值大小计算蛋白的含量。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
凯氏定氮装置
自动凯氏定氮仪
(三)、实验步骤
一、 消化
称取样品0.5~1g，置于凯氏烧瓶内，不使沾染瓶颈.加入 1gK2SO4,0.5gCuSO4及6ml浓H2SO4，在通风橱内的消化炉上 加热，先用小火,待水分蒸发完后,可用较大的火焰.消化到瓶 内溶液呈透明的蓝绿色为止,但要瓶内无黑点,有则需要瓶内 溶液把它冲洗下去,再加热至澄清为止. 冷却，转入100ml容 量瓶中，以少许蒸馏水冲洗烧瓶数次，洗液并入容量瓶中， 加水至刻度，摇匀。
蛋白质含量 = 含氮量×6.25
（二）实验原理
1. 有机物中的氮在强热和CuSO4、浓H2SO4 作用下，消化生成 (NH4)2SO4
含氮有机物+H2SO4→(NH4)SO4 +CO2+H2O+‥‥
2. 在凯氏定氮器中与碱作用，通过蒸馏释放出NH3，收集于 H3BO3 溶液中。
(NH4)SO4 +NaOH→Na2SO4+2NH3·H2O NH3·H2O-蒸馏→NH3+H2O NH3+H3BO3→(NH4)3BO3
第六章 蛋白质定量和定性分析
(Qualitative and quantitative analysis of protein)
本章内容
第一节 蛋白质含量测定 第二节 蛋白质分子量的测定 第三节 蛋白质纯度分析 第四节 糖蛋白中糖含量分析 第五节 蛋白质序列分析 第六节 生物质谱技术与蛋白质鉴定
第一节 蛋白质含量测定
三、计算 CP(mg/mL) = F×1/d×A280 F-校正因子 or CP(mg/mL) = 1.45×A280 – 0.74×A260
(经验公式） 四、优点及缺点 优点：⒈ 灵敏度高，20-100 μg/mL
⒉ 方法简单 ⒊ 盐类干扰少 ⒋ 蛋白质不需处理，可回收
缺点：对于测定与标准蛋白质中酪氨酸、色氨酸含 量差异较大的蛋白质有一定误差，故适于测定与 标准蛋白质氨基酸组成相似的蛋白质。
e.一般消化至透明后,继续消化30min即可,但对于含有 特别难以消化的氮化合物的样品,如赖氨酸、组氨 酸、色氨酸等时,需适当延长消化时间.有机物如分 解完全,消化液呈蓝色或浅绿色,但含铁量多时,呈较 深绿色.
f.硼酸吸收液的温度不应超过40℃,否则对氨的吸收作 用减弱而造成损失.
g.蒸馏完毕后,应先将冷凝管下端提离液面,再蒸2min 后关掉热源,否则可能造成吸收液倒吸。
四、考马斯亮蓝法
一、原理
考马斯亮蓝G-250（Coomassie brilliant blue G250）测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。考 马斯亮蓝G-250 在游离状态下呈红色，最大光吸收 在488nm；当它与蛋白质结合后变为青色，蛋白质色素结合物在595nm 波长下有最大光吸收。其光吸 收值与蛋白质含量成正比，因此可用于蛋白质的定 量测定。
标准蛋白溶液的浓度。然后乘以稀释倍数，得出
未稀释样品含蛋白质的克数。
四.实验结果
• 计算： • 总蛋白含量=(蛋白含量/0.2ml)×总体积
注意：蛋白质中酪氨酸含量不同，生色强度 不同，所以使用同种蛋白质（同源Pr)作标 准，灵敏度比双缩脲反应高100倍
三、紫外光吸收法
一、原理
由于含有酪氨酸和色氨酸，大多数Pr在280nm处 有一明显吸收峰，可利用此快速灵敏地测定Pr浓度。 由于Pr样品中经常杂有核酸，对280nm光波也有吸 收，但不如260nm光波吸收强，可通过统计计算， 排除测定Pr含量时核酸的干扰。
（3）乙醇 （4）磷酸（85％）
三、操作步骤
1．标准曲线制作
（1）0~100μg／mL 标准曲线的制作：取6 支10mL 干净的具 塞试管，按表1 取样。盖塞后，将各试管中溶液纵向倒转混 合，放置2min 后用1cm 光经的比色杯在595nm 波长下比色， 记录各管测定的光密度OD595nm，并做标准曲线。
二、Folin-酚试剂法
一、原理
蛋白质分子的肽键结构在碱性环境中能与Cu2+络合 成紫色络合物（双缩脲反应），但络合物颜色浅，吸 光度不易测出，故灵敏度低。
由于形成络合物后，蛋白质的肽链展开，使其中的 酪氨酸等残基充分暴露，而蛋白质中酪氨酸的酚基在 碱性条件下与酚试剂（磷钨酸-磷钼酸化合物）反应， 使高价的Mo6+和W6+还原生成低价的钼离子和钨离子， 呈铜蓝及钨蓝的颜色，蓝色的深浅与蛋白质含量成正 比。在一定范围内符合L-B定律（20-300μg/mL）
三.方法和步骤
• 1.标准曲线的制作:将6支干净试管编号，按下表进
行操作
表1.酪蛋白标准曲线的制作
管号
1
2
3
4
5
6
标准酪蛋白溶液/ml 0
0.20 0.40 0.60 0.80 1.00
蒸馏水/ml
1.00 0.80 0.60 0.40 0.20 0
Folin-酚试剂甲/ml 5.0
5.0
5.0
5.0
4 、用电炉加热,待第一滴蒸馏液从冷凝柱F顶端滴下时起 计时,继续蒸馏5min,然后将锥形瓶放低,使M管离开液面再 蒸馏2min,最后用蒸馏水洗导管外壁.取出锥形瓶,随即将 蒸馏器洗净
四、滴定
用0.01mol/LHCl滴定锥形瓶内溶液至淡紫色或灰色为止, 记录滴定所用HCl的量
五、蛋白质含量的计算
微量凯氏定氮法 Folin-酚试剂法 紫外光吸收法 考马斯亮蓝法
目前常用的有四种古老的经典方法:定氮法, 双 缩 脲 法 (Biuret 法 ) ， Folin- 酚 试 剂 法 (Lowry 法)和紫外吸收法.另外还有一种近十年才普遍 使用起来的新测定方法,考马斯亮蓝法 (Bradford法)。其中Bradford法和Lowry法灵敏 度高，比紫外吸收法高10-20倍，比 Biuret 法 高100倍以上。凯氏定氮法比较复杂，但较准 确，往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方 法的标准蛋白质。
一、微量凯氏定氮法
一、原理
蛋白质的主要组成元素C,H,O,N,S，各种蛋白质中含氮量 恒定在13%-19%，平均为16%。每100克蛋白质中含氮约为16 克。而且生物组织中的氮主要存在于蛋白质中，因此测定生 物组织中的氮含量可计算出蛋白质含量。
蛋白质是含氮的有机化合物。食品与硫酸和催化剂一同加热 消化，使蛋白质分解，分解的氨与硫酸结合生成硫酸铵。然后 碱化蒸馏使氨游离，用硼酸吸收后再以硫酸或盐酸标准溶液滴 定，根据酸的消耗量乘以换算系数计算出蛋白质含量。
二 蒸馏器清洗
图中所示的蒸馏器使用方法如下:
开放自来水龙头,使水从E进入G, 从K流出,(水不宜开得过大以免水 从G溢出).开放P3使水进入A,从漏 斗D中加蒸馏水约10ml入B,用拇指 将G管口掀紧.同时开放P1则B中水 从Y型管中冲出.随后A中水经K流 出.一般情况下,如此重复洗涤两次 即可.若蒸馏器内有氨存在,则应加 入5ml蒸馏水和30%NaOH溶液2ml 后蒸馏一次方可使用.
表1 低浓度标准曲线制作
四、结果计算
式中：X 为在标准曲线上查得的蛋白质含量（μg）。
Bradford法的突出特点:
(1)灵敏度高.其最低检测蛋白质含量可达1mg,这是因为蛋白质 与染料相结合后产生的颜色变化很大,蛋白质-染料复合物有 更高的吸光系数,因而光吸收要比Folin –酚试剂法大得多.
二取100mg 牛血 清白蛋白，溶于100mL 蒸馏水中，即为1 000μg／mL 的 原液。
（2）蛋白试剂考马斯亮蓝G-250 的配制：称取100mg 考马 斯亮蓝G-250，溶于50mL90％乙醇中，加入85％（W／V） 的磷酸100mL，最后用蒸馏水定容到1 000mL。此溶液在 常温下可放置一个月。
二.实验用品
• 1.材料：待测样品,使用前稀释至合适的倍数 • 2.试剂 • ⑴标准牛血清(或酪蛋白)溶液: 称取125毫克蛋白
粉末，用0.1N氢氧化钠溶液润湿，溶解，加蒸馏 水到250毫升，则配成500微克/毫升的标准蛋白溶 液。 • ⑵Folin-酚试剂甲 : • ⑶Folin-酚试剂乙: • 3.仪器设备
蛋白质与考马斯亮蓝G-250 结合在2min 左右的 时间内达到平衡，完成反应十分迅速；其结合物 在室温下1h 内保持稳定。
该法是1976年Bradford 建立，试剂配制简单， 操作简便快捷，反应非常灵敏，灵敏度比Lowry 法还高4 倍，可测定微克级蛋白质含量，测定蛋 白质浓度范围为0～1 000μg／mL，是一种常用 的微量蛋白质快速测定方法。
(2)测定快速,简洁,只需要加一种试剂.完成一个样品的测定,只 要5分钟左右 .由于染料与蛋白质结合的过程,大约只要2分 钟即可完成,其颜色可以在1小时内保持稳定,且在5分钟至20 分钟之间,颜色的稳定性最好.
(四)、注意事项
a.样品应是均匀的，若是固体样品应事先研细，液 体样要混合均匀。
b.样品放入凯氏烧瓶时，不要黏附瓶颈上，以免被 检样消化不完全，使结果偏低。
c.样品中若含脂肪或糖较多,消化过程中易产生大量 泡沫,为防止泡沫溢出瓶外,在开始消化时应用小 火加热,并时时摇动。
d.当样品消化液不易澄清透明时,可将凯氏烧瓶冷却, 加入30%过氧化氢2-3mL后再继续加热消化.
5.0
5.0
摇匀，室温下放置10分钟
Folin-酚试剂乙/ml 0.5
0.5
0.5
0.5
0.5
0.5
摇匀，在30℃保温（或室温下放置）30分钟
A 500nm
0
• 2.样品中蛋白的测定
•
取2支试管，分别加入0.2毫升样品(待测)稀
释液，再加入0.8毫升蒸馏水使样品体积达到1毫
升。
•
将样品的光吸收值在标准曲线上查出相应的
试样中蛋白质的含量=(V1-V2) ×HClmol/L× 0.014× 20× 6.25×100% /W